Summary

Препарирование органов у взрослых данио рерио

Published: March 04, 2010
doi:

Summary

Этот протокол описывает процедуры выявления и рассекает органов у взрослых рыбок данио.

Abstract

За последние 20 лет, данио стал мощным организмом модель для понимания развития позвоночных и болезней. Хотя экспериментальный анализ эмбриона и личинки обширна и морфологии была хорошо документирована, описания взрослых данио анатомии и исследований развития взрослого структур и органов, а также приемы работы с взрослым не хватает. Органов личинки претерпевают значительные изменения в их общей структуре, морфологии и анатомического расположения во время личиночной для взрослых перехода. Внешне прозрачные личинки развивает свой характерный полосатый рисунок взрослых пигмента и парных плавников, в то время как внутри страны, органы подвергаются массивной роста и модернизации. Кроме того, bipotential зачаток гонады развивается в любом яичка или яичника. Этот протокол определяет многие из органов взрослых и демонстрирует методы вскрытия головного мозга, половые железы, желудочно-кишечного тракта, сердца и почек у взрослых рыбок данио. Расчлененные органы могут быть использованы для гибридизации на месте, иммуногистохимии, гистология, выделения РНК, белков анализа и других молекулярных методов. Этот протокол будет содействовать расширению исследований в данио включить реконструкцию личиночных органов, морфогенез органов, характерные для взрослого и других исследований взрослых систем организма.

Protocol

Мужской данио будет расчлененный первым, за ним женщина рыбы. Перед началом вскрытия, обезболить рыбы в 0,2% Tricaine а затем усыпить его инкубации в ледяной воде на 15 минут. Начните слегка похлопывая рыба сушить на бумажное полотенце и размещение его на вскрытии мат. Внешне данио имеют одну спинной, хвостовой и анальный плавники и парные грудные и брюшные плавники (рис. 1). Рисунок 1. Взрослый самец рыба с плавниками маркированы. Pin рыбы рассекает мат через мясистой части хвоста и вентральной части глазницы. Snip кожи на брюхе рыбы только впереди анального плавника. Вырезать кожи и подлежащих мышцах вдоль живота от анального плавника до жаберной крышки (твердым покрытием более жаберные) (рис. 2, п. 1). Рисунок 2. Этапы удаления кожи и мышц стенки тела раскрыть внутренние органы. Затем удалите жаберной крышки и грудных плавников, в том числе грудного пояса (толстые, костлявые область у основания плавника) (рис. 2, этап 2). Вырезать кожи и подлежащих мышцах начала сверху теперь подвергается жаберных сзади вдоль стороны рыбы, а затем вплоть до анального плавника (рис. 2, пункт 3). Осторожно снимите кожи и подлежащих мышцах со стороны рыбы. Многие из внутренних органов теперь видны (рис. 3). Рисунок 3. Взрослый самец с стенкой тела и мышц позволяет удалить визуализации внутренних органов. Яички длинные, белые, парных органов, которые прикреплены к спинной стенке тела. Удаление яичка и поместить его в блюдо PBS. Изучить яичка с отраженным светом для визуализации семенных канальцев (рис. 4), которые содержат кисты с различными стадиями развития половых клеток от spermatagonia к сперматиды (Лил и соавт., 2009). Рисунок 4. Препарирование яичка. Белый округлый структуры семенных канальцев. Затем удалите из желудочно-кишечного тракта в полости тела рыбы. Печени можно определить по его большой размер, лопастные морфологии, tannish цвета, а также обширные васкуляризации. Желчного пузыря, зеленые полупрозрачные заполненный жидкостью мешок, и селезенки, которая появляется ярко-красная, находятся в пределах внутренних органов. Отдельные кишечник от остальных органов и растянуть его. Передний, средних и задних отделах кишечника определяются высоты эпителиальных складок (Wallace и соавт., 2005). Место кусок кишки в PBS и наблюдать эпителиальные складки использованием проходящем свете. Далее, рассмотреть плавательного пузыря. Плавательный пузырь состоит из задней камеры, которая связана с пищеводом через пневматическую проток, и передняя камера, которая подключается к внутреннему уху через аппарат Вебера (Финни и соавт., 2006). Удаляют плавательного пузыря. Изъять рыбы и повторно-контактный его брюшной стороне до рассекают почку, которая расположена вдоль спинной стенке тела. Почка полупрозрачной розовой структурой, связанной с спинной аорты и пигментных клеток. Почке делится на голову, тело и хвост регионов (рис. 5). Рассеките кусок из почек и поместить его в PBS. Tease, кроме почечной ткани выявить почечные канальцы. Рисунок 5. Расположение головы, тела и хвоста почку вдоль спинной стенке тела. Рассеките самка рыбы. Как описано выше, усыпить рыбу в ледяной воде и насухо ему высохнуть, прежде чем закрепление его рассекает мат. Снимите кожу со стороны рыбы, как ранее продемонстрировано. Яичник двухлопастный структуру, которая висит в полости тела по васкуляризированной mesovarium. Удаление одной доле яичников, поместите его в PBS, и рассмотреть его в проходящем свете. Ооциты могут быть дразнили друг от друга с использованием тонких игл, а затем поставил (рис. 6, Зельман и соавт., 1993). I этап ооциты примерно 10 – 150 мкм и прозрачным. Стадия II ооцитов около 150 – 350 мкм и определяется появление кортикальных гранул. Стадия III ооциты 350 – 750 мкм и непрозрачные из-за накопления желтка. Зрелой стадии IV и V ооциты полупрозрачные и вообще не найден в яичниках самок, которые в последнее время повязана. Рисунок 6. Живая стадии I, II, III и ооцитов наблюдалось прирассекает микроскопом в проходящем свете. Далее рассекают сердце от рыбы. Сердце находится задний и нижний, чтобы жабры. Начните с вырезания сердца, и все окружающие ткани и размещение его в ФБР. Осторожно рассекают от ткани, окружающие сердце, будьте осторожны, чтобы не повредить тонкий атриум. Место расчлененный сердце в раствор Рингера для наблюдения сердцебиения. Определить предсердие, желудочек и артериальный бульбуса (рис. 7, Ху Цзиньтао и соавт., 2001). Рисунок 7. Расчлененный взрослого сердца. Полное вскрытие, удалив мозг от рыбы. Начните с открепления рыбы и удаления головы с лезвия бритвы. Удалите так много мягких тканей как можно дальше от брюшной стороне черепа щипцами. Удалить глаза с помощью небольших ножниц весной. Взламывай череп и удалить кости из брюшной стороне мозга. Теперь поместите голову в блюдо PBS и удалить кожу и кости черепа со спинной стороны головного мозга. Определить обонятельных луковиц, конечного мозга, уздечка, оптические покрышки, мозжечка и продолговатого мозга (рис. 8, Wullimann и др., 1996;. Шиллинг, 2002). Рисунок 8. Расчлененный взрослом мозге рыбок данио. Спинной зрения, впереди сверху.

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа была поддержана NIH грант R01 HD050901 к MCM и Американского онкологического общества Докторантура стипендий # PF-05-041-01-DDC к ТГ.

Materials

Reagents:

0.2% Tricaine (ethyl 3-aminobenzoate)
200 mg tricaine powder
97.9 ml DD water
~1 ml 1 M Tris (pH 9)
Adjust pH to 7.0

Phosphate buffered saline (PBS)
4.0 g NaCl
0.1 g KCl
100 ml 0.1 M PO4 Buffer, pH 7.3
150 ml dH2O

Ringer’s solution
6.7g NaCl
0.2g KCl
0.2g CaCl2
1.2g Hepes
1 L H2O
Adjust pH to 7.2

Equipment:

Dissecting dish with mat
Electron Microscopy Sciences
catalog #70540

Vannas spring scissors
Fine Science Tools
catalog #91500-09

References

  1. Finney, J. L., Robertson, G. N., McGee, C. A., Smith, F. M., Croll, R. P. Structure and Autonomic Innervation of the Swim Bladder in the Zebrafish (Danio rerio). J Comp Neurol. 495, 587-606 (2006).
  2. Hu, N., Yost, H. J., Clark, E. B. Cardiac morphology and blood pressure in the adult zebrafish. Anat Rec. 264, 1-12 (2001).
  3. Leal, M. C., Cardoso, E. R., Nóbrega, R. H., Batlouni, S. R., Bogerd, J., França, L. R., Schulz, R. W. Histological and stereological evaluation of zebrafish (Danio rerio) spermatogenesis with an emphasis on spermatogonial generations. Biol Reprod. 81, 177-187 (2009).
  4. Schilling, T. F., Nusslein-Volhard, C., Dahm, R. The morphology of larval and adult zebrafish. Zebrafish: A Practical Approach (The Practical Approach Series). , (2002).
  5. Selman, K., Wallace, R., Sarka, A., Qi, X. Stages of oocyte development in the Zebrafish, Brachydanio rerio. J. Morphol. 218, 203-224 (1993).
  6. Wallace, K. N., Akhter, S., Smith, E. M., Lorent, K., Pack, M. Intestinal growth and differentiation in zebrafish. Mech Dev. 122, 157-173 (2005).
  7. Wullimann, M. F., Rupp, B., Reichert, H. . Neuroanatomy of the zebrafish brain : a topological atlas. , (1996).

Play Video

Cite This Article
Gupta, T., Mullins, M. C. Dissection of Organs from the Adult Zebrafish. J. Vis. Exp. (37), e1717, doi:10.3791/1717 (2010).

View Video