Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Bioengineering

실험적 대동맥 판막 시술 및 새로운 의료 기기의 유체역학 테스트를 위한 생체 외 돼지 모델

Published: August 25, 2023 doi: 10.3791/65885

Summary

유체역학적 특성을 테스트하기 위해 펄스 복사기에 돼지 대동맥 판막을 장착하는 방법을 제시합니다. 이 방법은 대형 동물 모델에 사용하기 전에 실험 절차 또는 새로운 의료 기기를 적용한 후 유체 역학의 변화를 결정하는 데 사용할 수 있습니다.

Abstract

동물 모델에 사용하기 전에 새로운 심장 시술 및 조사 의료 기기를 테스트할 수 있는 옵션은 제한적입니다. 이 연구에서는 돼지 대동맥 판막을 펄스 복사기에 장착하여 유체역학적 특성을 평가하는 방법을 제시합니다. 그런 다음 조사 중인 절차가 수행되거나 조사 의료 기기가 적용되기 전과 후에 이러한 특성을 평가할 수 있습니다. 유입 세그먼트를 확보하는 것은 좌심실 유출로에 원주 심근이 없기 때문에 약간의 어려움이 있습니다. 이 방법은 승모판막의 전방 전단을 사용하여 유입 세그먼트를 고정한 다음 유입 고정 장치 주변의 좌심실 자유 벽을 봉합하여 이러한 문제를 해결합니다. 유출 분절은 대동맥궁의 상부 측면의 절개부에 고정구를 삽입하기만 하면 고정됩니다. 우리는 표본이 조직 고정 전과 후에 유체역학적 특성이 크게 다르다는 것을 발견했습니다. 이 발견은 우리가 시험에 새로운 표본을 사용하도록 유도했으며 이 방법을 사용할 때 고려해야 합니다. 본 연구에서는 이 방법을 사용하여 장착된 돼지 대동맥 판막에 대동맥 판막 신첨화 절차(Ozaki procedure)를 수행하여 판막 위치에서 사용할 새로운 심장 내 패치 재료를 테스트했습니다. 이 밸브는 기본 밸브와 비교하여 유체역학적 특성의 변화를 평가하기 위해 절차 전후에 테스트되었습니다. 여기에서 우리는 실험적 대동맥 판막 절차의 유체역학 테스트를 위한 플랫폼을 보고하며, 이를 통해 기본 판막과 비교하고 조사 중인 절차에 사용되는 다양한 장치 및 기술 간에 비교할 수 있습니다.

Introduction

대동맥 판막 질환은 공중 보건에 상당한 부담을 주며, 특히 대동맥 협착증은 전 세계적으로 900만 명이 앓고 있습니다1. 이 질병을 해결하기 위한 전략은 현재 진화하고 있으며 대동맥 판막 복원 및 대동맥 판막 교체를 포함합니다. 특히 소아 인구의 경우, 현재 사용 가능한 보철물은 구조적 판막 변성(SVD)이 발생하기 쉽고 성장에 강하지 않아 환자가 성장함에 따라 재수술을 위해 재수술이 필요하기 때문에 판막을 교체하는 것보다 수리하는 것에 대한 상당한 인센티브가 있습니다. 병든 대동맥 판막(AV)을 천연 폐 판막(PV)으로 대체하는 Ross 시술조차도 SVD가 적용되고 종종 성장 내성이 제한되는 폐 위치에 보철물 또는 이식편이 필요합니다2. 대동맥 판막 질환에 대한 새로운 접근법이 개발되고 있으며, 대형 동물 모델에 적용하기 전에 생물학적으로 관련된 맥락에서 테스트할 필요가 있습니다.

당사는 새로운 의료 기기의 조사 절차 또는 적용 전후의 판막 기능에 대한 통찰력을 제공할 수 있는 돼지 AV 테스트 방법을 개발했습니다. 시중에서 판매되는 펄스 복사기에 Porcine AV를 장착하여 역류 분율(RF), 유효 오리피스 면적(EOA) 및 평균 양압차(PPD)3,4를 포함하여 판막 보철물의 조사 및 최종 승인에 일반적으로 사용되는 유체역학적 특성을 비교할 수 있습니다. 그런 다음 중재는 대형 동물 모델에서 사용하기 전에 생물학적으로 관련된 맥락에서 미세 조정될 수 있으므로 인간에게 사용할 수 있는 절차 또는 보철물을 생산하는 데 필요한 동물의 수를 제한할 수 있습니다. 이 실험에 사용된 심장은 지역 도살장이나 다른 실험의 폐기물 조직에서 얻을 수 있으므로 이 실험의 목적만을 위해 동물을 희생할 필요는 없습니다.

우리의 작업에서 우리는 이 방법을 사용하여 밸브 수리 및 교체를 위한 새로운 패치 재료를 개발했습니다. 돼지 AV에 대해 대동맥 판막 신생 첨판 시술(오자키 시술 5,6,7)을 수행하고 시술 전후에 펄스 복사기에서 테스트하여 다양한 패치 재료의 유체역학적 기능을 테스트했습니다. 이를 통해 유체역학적 성능을 기반으로 재료를 미세 조정할 수 있었습니다. 따라서 이 방법은 대형 동물 모델에 적용하기 전에 AV에 사용하기 위한 실험 절차 및 새로운 의료 기기의 유체역학 테스트를 위한 플랫폼을 제공합니다.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

모든 연구는 동물 보호에 대한 기관 지침에 따라 수행되었습니다.

1. 실험에 대한 고려 사항 및 준비

  1. AV를 통한 심박출량 시뮬레이션에 적합한 펄스 복제기(PD)를 활용합니다. PD는 생물학적 물질을 수용할 수 있어야 하고 세척할 수 있어야 합니다.
    1. AV 테스트에 적합한 PD 설정 활용: 70mL 변위 부피 및 분당 70회(5L/min 심박출량), 수축기 내 심장 주기의 35%, 100mmHg 평균 판막경압 구배, 120 최대 압력 구배 및 80 최소 압력 구배.
    2. 실온(RT) 생리식염수(0.9% NaCl)를 유체 매체로 사용하십시오.
  2. PD에서 테스트하기 위해 돼지 AV를 장착하는 데 적합한 고정 장치를 찾거나 만듭니다(3D 프린팅 또는 유사한 방법 사용).
    1. 다음 사양의 펄스 복사기와 함께 제공된 고정 장치를 모델링한 고정 장치를 활용하십시오: 고정 장치의 내경이 연구 대상 AV의 직경과 유사하고, 부착 길이가 2cm 이상이고, 사용 가능한 부착 너비가 4cm 이상인지 확인합니다(그림 1).
    2. 고무 O-링을 고정 장치 끝의 개스킷으로 사용하십시오.
  3. 심장 절제술 후 심장 검체를 얻습니다(그림 2A).
    1. 도축장에서 채취한 돼지 심장 표본이나 건강하고 심장에 영향을 미치는 실험 프로토콜에 포함되지 않은 동물의 폐 조직을 사용하십시오.
    2. 대동맥궁 원위부에서 상대정맥, 하대정맥, 주폐동맥(PA), 모든 폐정맥 및 대동맥의 절개를 포함하여 심절제술 후 검체를 채취하거나 사후 심장절제술을 수행합니다.
      참고: 사후 6시간 미만 또는 1% 항생제 용액(페니실린 및 스트렙토마이신)과 함께 멸균 식염수에 넣어 4oC 냉장고에서 최대 7일 동안 보관한 신선한 검체를 이 실험에 사용해야 합니다. 포르말린 또는 글루타르알데히드에 고정된 조직은 강성 증가로 인해 유체역학적 결과가 변경됩니다.

Figure 1
그림 1: 펄스 복사기에 돼지 대동맥 판막을 장착하기 위한 맞춤형 3D 프린팅 고정 장치. 프로토콜에 명시된 바와 같이 부착 길이는 2cm 이상이어야 하며 사용 가능한 부착 너비는 4cm 이상이어야 합니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

2. 우측 구조물의 절제

  1. 심실 조직이 보일 때까지 Metzenbaum 가위로 대동맥에서 PA를 절개합니다(그림 2B).
  2. 대동맥에서 양쪽 관상동맥을 대동맥에서 연결하고 실크로 절개하고 결찰하여 부비동이 좁아지지 않도록 주의합니다.
  3. 관상 동맥을 실크 넥타이 원위부에 통과시킵니다.
  4. Metzenbaum 가위를 사용하여 폐 판막 기저부의 대동맥과 PA 사이의 우심실(RV)을 절개합니다(그림 2C).
  5. 앞쪽에서 시작하여 심실 중격을 따라 원주방향으로 절개를 계속하여 RV가 없는 벽을 제거합니다(그림 2D, E).
  6. 심방 간 격막을 따라 삼첨판 고리를 통해 후방으로 절개를 계속하여 모든 우심방 조직을 제거합니다(그림 2F).

Figure 2
그림 2: 심장 절제술 표본 및 우측 구조물의 절제 . (A) 심장 절제술 표본. (B) 심실 조직이 보일 때까지 대동맥에서 주요 폐동맥을 절개합니다. (C) 폐 판막 기저부의 우심실(RV)을 절개합니다. (D) 전방으로 심실 중격을 따라 절개를 계속합니다. (E) 심실 중격을 따라 원주방향으로 절개를 계속하여 RV가 없는 벽을 제거합니다. (F) 우측 구조물이 제거된 시편. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

3. PD 고정 장치를 사용한 캐뉼레이션을 위한 좌심실 유출로(LVOT) 준비

  1. Metzenbaum 가위를 사용하여 대동맥과 평행한 오른쪽 폐정맥 뼈를 통해 좌심방(LA)을 절개합니다(그림 3A).
    알림: 제한된 가변성이 존재하지만 돼지 폐 정맥 해부학은 일반적으로 LA8에 들어가는 두 개의 폐 정맥 ostia에서 끝납니다.
  2. 승모판막(MV)의 전외측 절개를 계속하여 대동맥 쪽에 최소 3mm의 심방 조직 커프를 남깁니다.
  3. 대동맥과 MV 고리에 있는 심방 조직의 3mm 커프를 원주형으로 유지하면서 과도한 LA 조직을 다듬습니다(그림 3B).
  4. MV의 전외측 교미를 통해 좌심실(LV)로 절개 부위를 확장하고 전외측 유두근을 보존하도록 주의합니다(그림 3C).
  5. 척삭 건을 전방 유두 근육에서 후방 MV 전단지로 나누어 전방 MV 전단지에 부착된 상태를 보존합니다.
  6. 심장 정점까지 절개를 계속합니다.
  7. 양쪽 유두근을 보존하면서 유두근 아래의 과도한 LV 조직을 다듬습니다(그림 3D).

Figure 3
그림 3: 펄스 복사기 고정 장치를 사용한 캐뉼레이션을 위한 좌심실 유출로 준비. (A) 우측 폐정맥의 오티움을 통해 좌심방(LA)을 절개합니다. (B) 과도한 LA 조직을 잘라내어 대동맥에 최소 3mm의 심방 조직 커프를 유지하고 승모판 고리를 원주형으로 유지합니다. (C) 승모판막의 전외측 commissure를 통해 좌심실(LV)로 절개를 확장합니다. (D) 유두근 아래의 과도한 LV 조직을 제거합니다. 가위는 이미지의 오른쪽 상단 모서리에 표시됩니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

4. PD 고정구로 캐뉼레이션을 위한 대동맥 준비

  1. 대동맥에서 과도한 림프관, 결합 동맥 또는 폐동맥 조직을 잘라냅니다(그림 4A).
  2. Metzenbaum 가위를 사용하여 하행 대동맥에서 좌측 쇄골하 동맥까지 대동맥궁의 상부를 절개합니다(그림 4B).
  3. 왼쪽 쇄골하 동맥에서 상완두부 몸통까지 대동맥궁의 상부 측면을 계속 절개합니다(그림 4C, D).
    참고: 돼지 대동맥궁의 원위부에서 근위부까지의 가지에는 좌측 쇄골하동맥과 상완두부 줄기가 포함되며, 이는 우측 쇄골하동맥, 우측 경동맥, 좌측 경동맥을 발생시킨다9.

Figure 4
그림 4: 펄스 복제기 고정장치를 사용한 캐뉼레이션을 위한 대동맥 준비. (A) 과도한 조직이 제거된 대동맥궁. 돼지 대동맥궁(porcine aortic arch)에 있는 두 개의 아치 혈관(arch vessels), 상완두부(brachiocephalic trunk), 좌측 쇄골하 동맥(left subclavian artery)에 주목하십시오. (B) 하행 대동맥에서 좌측 쇄골하 동맥까지 대동맥궁의 상부를 따라 절개를 시작합니다. (C) 좌측 쇄골하동맥에서 상완두부 몸통까지 대동맥궁의 상부를 따라 절개를 계속합니다. (D) 대동맥궁 절개 완료. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

5. PD 고정 장치를 사용한 LVOT의 캐뉼레이션

  1. LVOT에서 고정 장치의 위치를 테스트하고 과도한 LV 조직을 다듬습니다.
    1. MV의 앞쪽 전단지 아래에 있는 LVOT에 고정 장치를 삽입합니다.
    2. 조명기 주위에 LV가 없는 벽을 감쌉니다.
    3. 고정 장치 주위를 단단히 감싸기 위해 과도한 LV 조직을 다듬습니다.
    4. 봉합사 라인의 무결성을 유지하기 위해 자유 가장자리에서 최소 1cm의 심외막을 유지하면서 심실 중격에서 시작하여 LV 자유 벽 두께의 절반을 제거합니다(그림 5A).
    5. LV 프리 벽 랩의 상단 모서리에서 티슈 1cm를 잘라냅니다(그림 5A).
  2. LV 절개 부위 1cm 뒤에 지지 막대 부착 구멍이 있는 LVOT에 고정 장치를 배치합니다(그림 5B).
    1. AV 고리를 확장하도록 고정 장치를 LVOT에 너무 멀리 삽입하지 않도록 주의하십시오.
  3. 전단지의 척 건수 사이에 위치한 하나 또는 두 개의 6인치 지퍼 타이를 사용하여 MV의 전방 전단지를 고정 장치에 고정합니다(그림 5C).
  4. 고정 장치 주위에 LV가 없는 벽을 봉합합니다(그림 5D).
    1. 테이퍼 포인트 바늘이 있는 간단한 러닝 봉합사를 사용하여 대동맥에 있는 LA 조직의 커프를 MV 고리에 봉합하는 것으로 시작합니다.
    2. LV 조직을 찢지 않고 LV에 러닝 스티치를 계속합니다.

Figure 5
그림 5: 펄스 복제기 고정 장치를 사용한 좌심실 유출로의 캐뉼레이션. (A) 자유 가장자리에 1cm의 심외막이 유지된 상태에서 LV 자유 벽의 1/2 두께를 제거했습니다. 점선은 LV 프리 월 랩의 상단 모서리에서 제거할 1cm 영역을 나타냅니다. (B) LV 자유 벽 절개 후 1cm 뒤에 위치한 지지 막대 부착 구멍. (C) MV의 전방 전단지를 근위 고정 장치에 고정하는 지퍼 타이. (D) 고정 장치 주위에 봉합된 LV 자유 벽. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

6. PD 고정을 통한 대동맥 캐뉼레이션 및 PD 검사를 위한 최종 준비

  1. PD 테스트 결과의 해석을 돕기 위해 Hegar 확장기를 사용하여 AV의 직경을 측정합니다.
  2. 대동맥을 잡고 검체를 테이블에서 들어 올려 대동맥의 중립 위치를 식별합니다(그림 6A).
  3. PD 고정 장치를 대동맥에 삽입하고 막대 부착 구멍이 대동맥의 중립 위치에 정렬되도록 주의합니다.
  4. 지지대를 삽입하여 시편의 길이를 확인합니다.
  5. 하나 또는 두 개의 6인치 지퍼 타이를 사용하여 PD 고정 장치를 대동맥에 고정합니다(그림 6B).
  6. 하나 또는 두 개의 8인치 지퍼 타이를 사용하여 PD 고정 장치 주위에 LVOT를 고정합니다.
  7. PD 세트와 함께 제공된 나사를 사용하여 지지대를 제자리에 고정합니다.
  8. 시편을 PD에 놓고 테스트를 시작합니다(그림 6C, 비디오 1 비디오 2).
  9. 필요에 따라 누출을 봉합합니다.

Figure 6
그림 6: 대동맥의 캐뉼레이션 및 펄스 복사기에서의 테스트. (A) 대동맥의 중립 위치를 식별하기 위해 대동맥으로 검체를 테이블에서 들어 올립니다. (B) 지퍼 타이로 대동맥에 고정된 원위 고정구. (C) 유체역학 시험을 위해 펄스 복제기에 장착된 시편. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

7. 실험 절차 수행

알림: 앞서설명한 5,6,7과 같이 Ozaki 절차와 같은 실험 절차를 수행하고 PD 테스트를 반복합니다.

  1. 시술 중에 조직이 건조해지면 지퍼 타이를 조이고 필요에 따라 봉합선을 강화하십시오.

8. 견본의 장기 저장 (원하는 경우에)

  1. 검체를 포르말린 10%에 168시간(1주) 동안 넣습니다10,11.
  2. 조직 고정 후 검체를 탈이온수로 세척하고 장기 보관을 위해 에탄올 70%에 넣습니다.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

펄스 복제기에서 수집된 대표 데이터에는 역류율(RF), 유효 오리피스 면적(EOA) 및 평균 양압차(PPD)가 포함됩니다. 특히 RF 및 EOA는 인공 판막에 대한 ISO 표준(ISO 5840)에서 사용되며 인공 판막 제품을 조사하는 경우 수집하는 것이 중요합니다. PPD는 판막을 여는 데 필요한 압력에 대한 정보를 제공하며 인공 판막 교체에 대해 논의할 때 일반적으로 참조됩니다 3,4. 이 실험에 사용된 HDTi-6000 펄스 복제기(BDC Laboratories, Wheat Ridge, CO)는 원하는 경우 폐쇄 부피, 누출 부피, 총 역류 부피, 총 순방향 유량, 수축기 지속 시간, 최대 양압 차이 및 평균 순방향 흐름을 포함한 다른 값을 수집할 수 있습니다.

올바르게 수행된 실험에서 천연 대동맥 판막(n=20)의 유체역학적 검사(RF, EOA 및 PPD) 값은 표 1에 나와 있습니다. 얻어진 값은 5.74%12의 평균 RF와 1.08 cm2/m2의 평균 예측 대동맥 판막 지수(평균 대동맥 직경을 기준으로 신체 표면적을 예측하고 평균 EOA를 해당 값으로 나누어 계산)13,14를 포함하여 대동맥 판막 측정의 정상 범위 내에 있습니다.

샘플을 포르말린 10% 또는 글루타르알데히드 0.6%로 고정하면 판막 주변 조직이 뻣뻣해지고 테스트를 위해 샘플을 적절하게 곧게 펴기가 어렵습니다. 모든 곡선 또는 굴곡이 강조되고 밸브 고리가 왜곡되어 RF가 전단지의 잘못된 응용으로 인해 잘못 상승될 수 있습니다. 예를 들어, 고리를 왜곡하는 환원 불가능한 굴곡이 있는 두 개의 고정 샘플에 대한 RF 값은 27.73%와 67.30%였습니다. 샘플이 테스트할 수 있을 만큼 충분히 직선인 경우에도 판막 주변 조직의 강성으로 인해 PPD가 잘못 상승하고 RF가 감소하며 EOA가 감소합니다. 포르말린과 글루타르알데히드에 고정하는 것 사이에는 큰 차이가 없습니다. 이 실험 모델에서 고정 조직을 사용하는 경우 이러한 문제를 고려해야 하며, 신선한 샘플이 생체 내 판막 기능을 더 잘 대표한다는 것을 시사합니다. 구부러지지 않은 방식으로 장착할 수 있는 고정 샘플에서 조직 고정 전후의 대표 값은 표 2에 나와 있습니다.

RF는 시편에서 누출, 특히 밸브에 근접한 누출로 인해 잘못 상승할 수 있습니다. 약간의 누출이 예상되며, 일반적으로 연속 흐름(물방울과 반대)으로 나타나는 모든 누출은 유체역학적으로 중요합니다. 봉합사 라인에서 누출되는 것은 보강 봉합사 (다른 실행 봉합사 또는 8 바늘 그림)를 사용하여 해결할 수 있습니다. 일반적으로 이 모델을 사용할 때 봉합사 구멍에서 누출이 있으므로 절단 바늘을 사용해서는 안 됩니다. 고정 장치 삽입 부위의 누출은 기존 지퍼 타이를 조이거나 더 추가하여 해결할 수 있습니다. 한 가지 대표적인 사례에서 누출을 해결하기 위해 지퍼 타이를 조이면 RF가 13.7%에서 9.5%로 감소했습니다. 유입 측의 지퍼 타이를 과도하게 조이면 EOA가 잘못 감소하고 PPD가 잘못 상승할 수 있으므로 주의해야 합니다. 한 가지 대표적인 사례에서 과도하게 조여진 지퍼 타이를 풀면 EOA가 0.98cm2에서 1.08cm2로 증가하고 PPD가 20.2mmHg에서 18.0mmHg로 감소했습니다. 지퍼 타이는 판막에 근접한 심실 조직이 유연하게 유지될 수 있을 만큼 충분히 느슨해야 하며, 누출을 반드시 완전히 제거할 필요는 없으며 유체역학적 측정에 영향을 미치지 않는 물방울 상태로 느려지기만 하면 됩니다.

기본 밸브를 테스트한 후에는 유체역학적 기능의 변화를 결정하기 위해 조사 중인 절차를 수행할 수 있습니다. 우리의 연구에서 우리는 Ozaki 절차 5,6,7을 통해 전단지를 교체하여 판막 위치에 다른 패치 재료를 사용하는 효과를 조사했습니다. 전단지를 다른 임상시험용 자료로 교체하여 대동맥판막 수리 및 교체에 사용되는 다양한 물질의 기능을 평가할 수 있었습니다. 대조군 패치 재료(글루타르알데히드 0.6%에 고정된 자가 심낭)를 사용한 오자키 시술 후 얻은 값은 적절한 크기의 판막 보철물을 사용한 판막 교체와 일치하는 기준선 판막의 변화를 생성했습니다(RF < 10%, PPD < 20mmHg, EOA 변화 < 기준선 대비 0.3cm2 감소)4. 대조 패치 재료로 오자키 절차를 수행한 후 얻은 대표 값은 표 3에 나와 있습니다.

비디오 1: 펄스 복사기의 내부 카메라를 사용하여 기록된 대동맥 판막의 기능. 이 비디오를 다운로드하려면 여기를 클릭하십시오.

비디오 2: 펄스 복사기에서 테스트 중인 대동맥 판막의 측면도. 이 비디오를 다운로드하려면 여기를 클릭하십시오.

견본 직경(mm) RF (%) EOA(cm2) PPD (밀리미터Hg)
P1 (피1) 20 4.90 1.20 7.50
P2 (P2) 18 6.50 1.08 8.00
P3 시리즈 17 3.40 1.25 13.80
P4 시리즈 21 8.87 1.55 13.60
P5 시리즈 19 5.93 1.46 14.73
P6 (영어) 19 4.30 1.47 14.53
P7 (피7) 17 3.33 1.30 16.53
P8 시리즈 18 5.47 1.23 15.50
P10 시리즈 18 3.17 1.28 13.43
P11 16 4.03 1.04 16.70
P12 (영어) 17 4.17 1.33 11.33
P13 17 6.90 1.37 9.97
P14 시리즈 15 5.67 1.22 11.57
P15 14 8.33 1.23 11.80
P16 16 6.10 1.29 10.33
P17 17 5.80 1.40 8.03
P18 16 3.77 1.29 9.73
P19 15 4.53 1.17 11.40
P21 시리즈 22 11.73 1.26 8.30
P22 17 7.83 1.17 9.27
의미하다 17.45 5.74 1.28 11.80
표준 편차 2.01 2.18 0.13 2.92

표 1: 올바르게 수행된 실험에서 유체역학 테스트로 얻은 대표 값. 샘플 P9 및 P20은 기본 밸브가 비정상적이기 때문에 포함되지 않았습니다. 펄스 복제기 소프트웨어에서 얻은 값입니다. RF, 역류 분율; EOA, 유효 오리피스 면적; PPD, 양압 차이.

네이티브(n = 6) 고정(n = 6) p 값
RF (%) 5.81 ± 3.10 2.36 ± 1.20 0.01
EOA(cm2) 1.21 ± 0.08 0.77 ± 0.35 0.04
PPD (밀리미터Hg) 9.17 ± 2.42 23.50 ± 10.69 0.02
글루타르알데히드 고정(n = 2) 포르말린 고정(n = 4) p 값
RF (%) 1.86± 2.52 2.28 ± 1.11 0.89
EOA(cm2) 0.81 ± 0.34 0.76 ± 0.40 0.89
PPD (밀리미터Hg) 19.33 ± 2.31 25.58 ± 13.09 0.42

표 2: 포르말린 10% 또는 글루타르알데히드 0.6%로 조직 고정 전후의 유체역학적 테스트로 얻은 대표 값. 데이터는 평균 ± 표준 편차로 표시됩니다. P 값은 쌍체 t-검정(네이티브 대 고정) 또는 짝을 이루지 않은 t-검정(글루타르알데히드 대 포르말린)을 사용하여 계산되었습니다. 펄스 복제기 소프트웨어에서 얻은 값입니다. RF, 역류 분율; EOA, 유효 오리피스 면적; PPD, 양압 차이.

네이티브(n = 6) 오자키 이후 (n = 6) p 값
RF (%) 4.51 ± 1.43 8.57 ± 3.25 <0.01
EOA(cm2) 1.26 ± 0.12 1.07 ± 0.05 <0.01
PPD (밀리미터Hg) 13.91 ± 2.81 16.77 ± 2.31 <0.01

표 3: 글루타르알데히드 고정 자가 심낭으로 오자키 시술을 수행하기 전과 후의 유체역학 테스트에서 얻은 대표 값. 데이터는 평균 ± 표준 편차로 표시됩니다. P 값은 쌍체 t-검정을 사용하여 계산되었습니다. 펄스 복제기 소프트웨어에서 얻은 값입니다. RF, 역류 분율; EOA, 유효 오리피스 면적; PPD, 양압 차이.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

여기에 제시된 방법은 실험 절차 또는 새로운 의료 기기의 효과를 조사하기 위해 AV의 유체역학적 테스트를 위한 플랫폼을 제공합니다. 펄스 복사기에 천연 대동맥 판막을 장착하여 새로운 판막 보철물(ISO 5840)의 조사 및 승인에 사용되는 모든 유체역학적 매개변수에 대한 실험 절차의 효과를 확인할 수 있습니다. 이는 대형 동물 모델에 사용하기 전에 절차와 보철물을 미세 조정할 수 있는 기회를 제공합니다.

유입 세그먼트를 확보하는 것은 좌심실 유출로에 원주 심근이 없기 때문에 약간의 어려움이 있습니다. 이 방법은 승모판막의 전방 전단을 사용하여 유입 세그먼트를 고정한 다음 유입 고정 장치 주변의 좌심실 자유 벽을 봉합하고 심실 커프에 추가 지퍼 타이를 적용하여 이러한 문제를 해결합니다. 다른 유사한 방법들은 폴리에틸렌 테레프탈레이트(Dacron) 튜브를 LVOT(15,16)에 봉합하거나 유입 고정구를 AV 고리(17,18)에 가깝게 고정시키는 것에 의존하였다. 이러한 방법은 고리를 기본 직경보다 큰 상대적으로 단단한 유입 고정 장치에 고정하여 RF를 희생하여 EOA를 인위적으로 상승시킬 위험이 있습니다. 마찬가지로, 기본 직경보다 작은 단단한 마운트에 고정하여 직경을 좁힐 수 있으므로 EOA를 희생하여 RF를 인위적으로 줄일 수 있습니다. 결과적으로, 많은 유사한 방법들은 RF 및 EOA 15,16,18 둘 다를 보고하지 않는다. 이 방법의 장점 중 하나는 밸브의 개폐 매개변수를 동시에 평가할 수 있다는 것입니다.

실험의 보다 유연한 타이밍을 위해 고정 샘플을 사용하여 이 실험을 수행하고 싶지만 고정 후 밸브의 유체역학적 특성이 크게 변하고 장착 공정이 훨씬 더 어려워집니다. 포르말린 10% 또는 글루타르알데히드 0.6%로 고정하면 판막 주변 조직이 매우 뻣뻣해지고, RF는 인위적으로 감소하는 반면 PPD는 인위적으로 증가하고 EOA는 인위적으로 감소합니다. 대동맥의 자연스러운 곡선도 검사를 위해 곧게 펴기가 매우 어려워지며, 그 결과 고리가 왜곡되어 경우에 따라 판막을 더 이상 검사할 수 없게 될 수 있습니다. 이러한 이유로, 당사는 6시간 이내에 테스트하거나 멸균 식염수와 1% 항생제 용액(페니실린 및 스트렙토마이신)에서 최대 7일 동안 4°C에서 냉장 보관하는 신선한 조직을 실험에 사용했습니다.

기본 밸브를 테스트한 후에는 조사 중인 절차를 수행할 수 있습니다. 우리의 연구에서는 대동맥 판막 수리 또는 교체에 사용될 때 이러한 각 재료의 유체역학적 특성을 평가하기 위해 다양한 패치 재료를 사용하여 Ozaki 절차를 수행했습니다. 기존의 패치 재료는 시간이 지남에 따라 변질되기 쉬우며, 이러한 용도에 사용할 수 있는 내구성 있는 패치 재료에 대한 상당한 필요성이 있다19. 이 방법을 사용하여 조사할 수 있는 시술 유형의 예로, 대조 물질인 글루타르알데히드 고정 자가 심낭을 사용하여 오자키 시술을 수행할 때의 유체역학적 효과를 평가한 결과, 결과적인 유체역학적 특성의 변화가 적절한 크기의 AV 보철물 이식과 관련된 변화와 일치함을 발견했습니다4.

이 방법의 주요 한계는, 상술한 바와 같이, 원주 심근 없이 유입 세그먼트를 확보하는 데 내재된 어려움과 관련이 있다. 절차의 이 부분은 위의 대표 결과 섹션의 사양에 따라 신중하게 수행해야 합니다. 생체 외 대동맥 판막 유체역학 검사를 위한 모든 기술과 마찬가지로 장착 공정에 의해 값이 변경될 수 있으며 가장 유익한 결과는 실험 절차를 수행하기 전과 후에 한 밸브의 유체역학적 특성을 비교하는 것입니다. 또한 조직 고정을 거친 표본을 안정적으로 테스트할 수 없기 때문에 실험을 수행해야 하는 기간과 가능한 적용 범위가 제한됩니다. 돼지 AV와 인간 AV 사이의 해부학적 차이는 제한적이며, 가장 중요한 것은 돼지 AV의 오른쪽 관상 동맥 교두 아래에 근육 선반이 있지만 이러한 결과를 인체 해부학20,21로 일반화할 때 고려해야 합니다.

PD 기계에서 돼지 AV를 테스트하는 이 방법은 AV에 사용하기 위한 다른 조사 절차 및 보철물의 테스트에 적용할 수 있습니다. 특히 새로운 대동맥 판막 보철물과 대동맥 치환술이 적용이 가능합니다. 이 방법은 이러한 절차와 보철물에 의해 유도된 유체역학적 변화를 테스트하고 정량화할 수 있는 플랫폼을 제공합니다. 따라서 대형 동물 모델에 사용하기 전에 생물학적으로 관련된 환경에서 재료와 절차를 비교하고 미세 조정할 수 있는 기회를 제공합니다.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

저자는 공개할 관련 재정적 이해 상충이 없습니다.

Acknowledgments

줄리 반 하셀(Julie Van Hassel), 모하메드 다이앤(Mohamed Diane), 판판 첸(Panpan Chen)을 포함한 Gordana Vunjak-Novakovic 박사의 연구실에서 실험에서 나온 심장 폐기물 조직을 사용할 수 있게 해주신 것에 감사드립니다. 이 연구는 뉴저지주 버틀러에 있는 선천성 심장 결함 연합(Congenital Heart Defect Coalition)과 메릴랜드주 베데스다에 있는 국립보건원(National Institutes of Health)의 지원을 받았습니다(5T32HL007854-27).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
3D Printer Ultimaker Ultimaker S5 Used for printing custom fixtures for hydrodynamic testing
Crile-Wood Needle Driver Emerald Instruments 2.0638.15 Used for suturing ventricle
Debakey Forceps Jarit 320-110 Used for dissection and sample preparation (can use multiple if working with an assistant)
Ethanol 200 proof Decon Labs Inc. DSP-MD.43 Used for fixed tissue storage
Formalin 10% Epredia 5701 Used for tissue fixation
Gerald Forceps Jarit 285-126 Used for dissection and sample preparation
Glass jars QAPPDA B07QCP54Z3 Used for tissue storage
Glutaraldehyde 25% Electron Microscopy Sciences 16400 Used for tissue fixation
HEPES 1 M buffer solution Fisher BP299-100 Used to make glutaraldehyde 0.6%
Mayo Scissors Jarit 099-200 Used for cutting suture
Metzenbaum Scissors Jarit 099-262 Used for dissection and sample preparation
O-ring Sterling Seal & Supply Inc. AS568-117 Used as a gasket on the end of the 3D printed fixtures
Polylactic acid resin Ultimaker 1609 Used for 3D printing fixtures
Polyproplene suture Covidien VP-762-X Used for suturing ventricle, tapered needle
Pulse Duplicator BDC Laboratories HDTi-6000 Used for hydrodynamic testing
Silk ties Covidien S-193 Used for ligating coronary arteries
Tonsil Clamp Aesculap BH957R Used for coronary artery dissection
Zip ties (6 inch) Advanced Cable Ties, Inc. AL-06-18-9-C Used for securing sample to fixtures, 157.14 mm long (6 inches), 2.5 mm wide
Zip ties (8 inch) GTSE GTSE-20025B.1000 Used for securing sample to fixtures, 203 mm long (8 inches), 2.5 mm wide

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Aluru, J. S., Barsouk, A., Saginala, K., Rawla, P., Barsouk, A. Valvular heart disease epidemiology. Medical Science. 10 (2), Basel, Switzerland. 32 (2022).
  2. Herrmann, J. L., Brown, J. W. Seven decades of valved right ventricular outflow tract reconstruction: The most common heart procedure in children. The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 160 (5), 1284-1288 (2020).
  3. Rotman, O. M., Bianchi, M., Ghosh, R. P., Kovarovic, B., Bluestein, D. Principles of TAVR valve design, modelling, and testing. Expert Review of Medical Devices. 15 (11), 771-791 (2018).
  4. Pibarot, P., et al. Imaging for predicting and assessing prosthesis-patient mismatch after aortic valve replacement. JACC Cardiovascular Imaging. 12 (1), 149-162 (2019).
  5. Ozaki, S., et al. Aortic valve reconstruction using self-developed aortic valve plasty system in aortic valve disease. Interactive Cardiovascular and Thoracic Surgery. 12 (4), 550-553 (2011).
  6. Krane, M., Amabile, A., Ziegelmüller, J. A., Geirsson, A., Lange, R. Aortic valve neocuspidization (the Ozaki procedure). Multimedia Manual of Cardiothoracic Surgery. , (2021).
  7. Ozaki, S., et al. A total of 404 cases of aortic valve reconstruction with glutaraldehyde-treated autologous pericardium. The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 147 (1), 301-306 (2014).
  8. Vandecasteele, T., et al. The pulmonary veins of the pig as an anatomical model for the development of a new treatment for atrial fibrillation. Anatomia Histollogia Embryologia. 44 (1), 1-12 (2015).
  9. Góes, A. M. O., et al. Comparative angiotomographic study of swine vascular anatomy: contributions to research and training models in vascular and endovascular surgery. Journal Vascular Brasilerio. 20, 20200086 (2021).
  10. Hołda, M. K., Klimek-Piotrowska, W., Koziej, M., Piątek, K., Hołda, J. Influence of different fixation protocols on the preservation and dimensions of cardiac tissue. Journal of Anatomy. 229 (2), 334-340 (2016).
  11. Hołda, M. K., Klimek-Piotrowska, W., Koziej, M., Tyrak, K., Hołda, J. Penetration of formaldehyde based fixatives into heart. Folia Medica Cracoviensia. 57 (4), 63-70 (2017).
  12. Spampinato, R. A., et al. Grading of aortic regurgitation by cardiovascular magnetic resonance and pulsed Doppler of the left subclavian artery: harmonizing grading scales between imaging modalities. International Journal of Cardiovascular Imaging. 36 (8), 1517-1526 (2020).
  13. Capps, S. B., Elkins, R. C., Fronk, D. M. Body surface area as a predictor of aortic and pulmonary valve diameter. The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 119 (5), 975-982 (2000).
  14. Baumgartner, H., et al. Recommendations on the echocardiographic assessment of aortic valve stenosis: a focused update from the European Association of Cardiovascular Imaging and the American Society of Echocardiography. European Heart Journal - Cardiovascular Imaging. 18 (3), 254-275 (2017).
  15. Saisho, H., et al. An ex vivo evaluation of two different suture techniques for the Ozaki aortic neocuspidization procedure. Interactive Cardiovascular and Thoracic Surgery. 33 (4), 518-524 (2021).
  16. Saisho, H., et al. Ex vivo evaluation of the Ozaki procedure in comparison with the native aortic valve and prosthetic valves. Interactive Cardiovascular and Thoracic Surgery. 35 (3), (2022).
  17. Paulsen, M. J., et al. Comprehensive ex vivo comparison of 5 clinically used conduit configurations for valve-sparing aortic root replacement using a 3-dimensional-printed heart simulator. Circulation. 142 (14), 1361-1373 (2020).
  18. Al-Atassi, T., et al. Impact of aortic annular geometry on aortic valve insufficiency: Insights from a preclinical, ex vivo, porcine model. The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 150 (3), 656-664 (2015).
  19. Sun, M., et al. A biomimetic multilayered polymeric material designed for heart valve repair and replacement. Biomaterials. 288, 121756 (2022).
  20. Waller, B. F., McKay, C., Van Tassel, J., Allen, M. Catheter balloon valvuloplasty of stenotic porcine bioprosthetic valves: Part I: Anatomic considerations. Clinical Cardiology. 14 (8), 686-691 (1991).
  21. Crick, S. J., Sheppard, M. N., Ho, S. Y., Gebstein, L., Anderson, R. H. Anatomy of the pig heart: comparisons with normal human cardiac structure. Journal of Anatomy. 193, 105-119 (1998).

Tags

생체 외 돼지 모델 유체 역학 검사 대동맥 판막 절차 새로운 의료 기기 심장 절차 동물 모델 펄스 복사기 유체 역학적 특성 조사 의료 기기 유입 세그먼트 좌심실 유출 기관 승모판막 봉합 좌심실 자유 벽 유출 세그먼트 대동맥궁 조직 고정 심장 내 패치 재료 판막 위치 대동맥 판막 신첨화 절차 오자키 절차
실험적 대동맥 판막 시술 및 새로운 의료 기기의 유체역학 테스트를 위한 <em>생체 외</em> 돼지 모델
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

LaSala, V. R., Beqaj, H., Sun, M.,More

LaSala, V. R., Beqaj, H., Sun, M., Castagnini, S., Ustunel, S., Cordoves, E., Rajesh, K., Jackman, S., Kalfa, D. An Ex Vivo Porcine Model for Hydrodynamic Testing of Experimental Aortic Valve Procedures and Novel Medical Devices. J. Vis. Exp. (198), e65885, doi:10.3791/65885 (2023).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter