Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Neuroscience

نموذج الفئران لإصابة رضحية خفيفة مغلقة الرأس والتحقق من صحتها

Published: September 22, 2023 doi: 10.3791/65849
* These authors contributed equally

Summary

هنا ، نقدم نموذجا لإصابات الدماغ الرضحية الخفيفة (mTBI) مغلقة الرأس ويظهر التحقق من صحتها تشابها ملحوظا مع mTBI البشري فيما يتعلق بالمظاهر السلوكية خلال المراحل الحادة وتحت الحادة.

Abstract

تعد النماذج الحيوانية ضرورية لتعزيز فهمنا لإصابات الدماغ الرضحية الخفيفة (mTBI) وتوجيه البحوث السريرية. لتحقيق رؤى ذات مغزى ، يعد تطوير نموذج حيواني مستقر وقابل للتكرار أمرا ضروريا. في هذه الدراسة ، أبلغنا عن وصف تفصيلي لنموذج mTBI مغلق الرأس وطريقة التحقق التمثيلية باستخدام فئران Sprague-Dawley للتحقق من تأثير النمذجة. يتضمن النموذج إسقاط وزن كتلة 550 جم من ارتفاع 100 سم مباشرة على رأس فأر على سطح قابل للتدمير ، يليه دوران 180 درجة. لتقييم الإصابة ، خضعت الفئران لسلسلة من التقييمات السلوكية العصبية بعد 10 دقائق من الإصابة ، بما في ذلك وقت فقدان الوعي ، ووقت البحث الأول عن السلوك ، والقدرة على الهروب ، واختبار قدرة توازن الحزمة. خلال المراحل الحادة وتحت الحادة بعد الإصابة ، تم إجراء اختبارات سلوكية لتقييم قدرة التنسيق الحركي (مهمة الحزمة) ، والقلق (اختبار المجال المفتوح) ، وقدرات التعلم والذاكرة (اختبار متاهة موريس المائية). أنتج نموذج mTBI مغلق الرأس استجابة متسقة للإصابة مع الحد الأدنى من الوفيات وتكرار مواقف الحياة الواقعية. تحققت طريقة التحقق بشكل فعال من تطوير النموذج وضمنت استقرار النموذج واتساقه.

Introduction

إصابات الدماغ الرضحية الخفيفة (mTBI) ، أو الارتجاج ، هي أكثر أنواع الإصابات انتشارا ويمكن أن تؤدي إلى أعراض مختلفة قصيرة الأجل ومزمنة1. قد تشمل هذه الأعراض الدوخة والصداع والاكتئاب وانعدام التلذذ ، من بين أمور أخرى ، مما يؤدي إلى معاناة كبيرة للأفراد المصابين ب mTBI2. نظرا لأن معظم إصابات الدماغ الرضية المتنقلة ناتجة عن صدمة القوة الحادة3 ، يصبح من الضروري تطوير نماذج حيوانية تحاكي بدقة مثل هذه الإصابات. هذه النماذج ضرورية لاكتساب فهم أفضل للإصابة وآلياتها الأساسية ، مما يوفر بيئة خاضعة للرقابة مع تقليل التباين وعدم التجانس مقارنة بالدراسات البشرية.

تم تطوير العديد من نماذج القوارض الراسخة لإصابات الدماغ الرضحية (TBI) ، بما في ذلك إصابة قرع السوائل (FPI) 4 ، والتأثير القشري المتحكم فيه (CCI) 5 ، وإصابة انخفاض الوزن6 ، وإصابات الدماغ الرضحية7 ، وغيرها. ومع ذلك ، تركز هذه النماذج بشكل أساسي على تكرار سيناريوهات إصابات الدماغ الرضية المتوسطة إلى الشديدة. في المقابل ، حظيت النماذج التجريبية المصممة خصيصا لمحاكاة mTBI باهتمام أقل نسبيا ولا تزال غير مستكشفة8. لذلك ، هناك حاجة ماسة لإنشاء نموذج حيواني مستقر وقابل للتكرار يمثل بدقة mTBI. مثل هذا النموذج من شأنه أن يعزز بشكل كبير فهمنا للعواقب العصبية البيولوجية والسلوكية المرتبطة ب mTBI.

لا يمكن للمرء أن يميز العجز الوظيفي في الفئران mTBI مقارنة بالفئران العادية عن طريق الملاحظة العرضية بعد زوال آثار التخدير. لذلك ، من الضروري إجراء اختبارات محددة. في البشر ، يتم استخدام مجموعة واسعة من التقييمات السريرية لتقييم المرضى9،10،11. وبالمثل ، فإن إنشاء نموذج ناجح في نموذج الفئران يتطلب أيضا استخدام أدوات التقييم السريع لتحديد صلاحيته.

في هذه الدراسة ، نقدم نموذجا مغلقا للفئران mTBI ، مما يتيح التحقيق في mTBI بطريقة تشبه إلى حد كبير الحالة البشرية. يوفر الوصف التفصيلي للنموذج وإجراءات التحقق من صحته فهما شاملا للنهج التجريبي المستخدم في دراسة mTBI.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

تمت الموافقة على التجارب على من قبل لجنة رعاية واستخدام بجامعة سنترال ساوث. أجريت جميع الدراسات بما يتماشى مع المبادئ الأخلاقية والرفاهية لحيوانات المختبر.

1. تغذية وإجراء التخدير

  1. منزل جماعي 280-320 جم من ذكور الفئران Sprague-Dawley والحفاظ عليها في دورة ضوء / ظلام لمدة 12 ساعة / 12 ساعة مع إمكانية الوصول إلى الطعام والماء حسب الحاجة. إجراء الدراسة بعد تأقلم الفئران لمدة 6 أيام.
  2. تخدير الجرذ ب 3٪ إيزوفلوران عند تدفق هواء 0.6 لتر / دقيقة في صندوق الحث حتى لا يستجيب لقرصة المخلب أو الذيل. الحفاظ على معدل التدفق لمدة 30 ثانية.
    ملاحظة: لم يتم استخدام مسكنات الألم لأنها تتداخل مع استجابة الفئران في التقييمات السلوكية العصبية.

2. الإعداد قبل الجراحة

  1. ضع إسفنجة ذات صلابة 35D (وزن 35 كجم / م 3 من الإسفنج) ، بطول وعرض متطابقين ولكن بسمك 12 سم ، داخل صندوق أكريليك (15 سم × 22 سم × 43 سم) يفتقر إلى الغطاء العلوي.
  2. قم بقص رقائق القصدير (بسمك 20 ميكرومتر) وثبتها على صندوق الأكريليك باستخدام شريط لاصق لتشكيل سطح قابل للتدمير قادر على دعم وزن الفئران. بالإضافة إلى ذلك ، ضع علامة على خط مقطوع يبلغ قياسه حوالي 10 سم ليكون الموقع المخصص لوضع رأس الفأر.
  3. بمساعدة حامل حديدي ، قم بتأمين أنبوب PVC بإحكام في مكانه. تحضير وزن مثقب ، يزن 550 غرام بقطر 18 ملم. نعلق الوزن على خط الصيد على ارتفاع 1 متر داخل كلوريد البولي فينيل أو أنبوب PVC. واضبط موضع أنبوب التوجيه 3 سم فوق ورق القصدير.
  4. تحضير خوذة ووسادة. اصنع خوذة باستخدام قرص من الفولاذ المقاوم للصدأ يبلغ قطره 10 مم وسمكه 3 مم. قم بإعداد وسادة إسفنجية على شكل إسفين لوضعها تحت رأس الجرذ ، مع التأكد من أنها متعامدة مع اتجاه الجاذبية.
    ملاحظة: يتم عرض رسم تخطيطي لجهاز التأثير في الشكل 1. تخدم الخوذة غرض تحديد موقع الارتطام وتعزيز توزيع القوة الخارجية. يتم استخدام الوسادة لضمان ضرر موحد ومستقر.

3. تحريض mTBI

  1. ضع بسرعة الفئران المخدرة على صدرها على رقائق القصدير.
    ملاحظة: هناك حاجة إلى عاملين لتحريض mTBI - أحدهما للتحضير والآخر للتحقق.
  2. طريقة التحضير: ضع الوسادة أسفل الجرذ ، وتأكد من أن رأسه مواز لورق القصدير. محاذاة الخوذة مع آذان الفئران وتثبيتها في مكانها.
  3. التحقق: تحقق من وضع أنبوب PVC مباشرة فوق الخوذة. بمجرد تأكيد كلا المشغلين للإعداد الصحيح ، انتقل إلى الخطوة التالية.
  4. تحريض دوران الرأس: حرر الوزن ، مما يسمح له بالسقوط وضرب رأس الجرذ ، مما يؤدي إلى السقوط على الإسفنج ودوران 180 درجة.
  5. ضع الفئران على ظهرها في قفص نظيف.

4. تحريض الشام

  1. تعامل مع الفئران بنفس طريقة وصف تحريض mTBI السابق ، ولكن لا تعرضه لتأثير الرأس.

5. إجراء التحقق من الصحة: التقييمات السلوكية العصبية الحادة

ملاحظة: تم تعديل التقييمات التالية بناء على درجات الخطورة العصبية9 والبروتوكول بواسطة Flierl et al.10. تم إجراء جميع هذه التقييمات بعد 10 دقائق من استعادة الجرذ لرد الفعل الصحيح.

  1. وقت فقدان الوعي: سجل المدة من وقت تخدير الجرذ إلى وقت تعافيه منعكس التصحيح.
    ملاحظة: رد الفعل الصحيح هو العملية التي ينقلب فيها الجرذ عند وضعه على ظهره. يجب اعتبار فقدان رد الفعل الصحيح نقطة نهاية إنسانية ، ويجب القتل الرحيم للحيوان وفقا للإرشادات المؤسسية.
  2. وقت سلوك البحث الأول: سجل المدة من وقت تخدير الجرذ إلى الوقت الذي يظهر فيه سلوك البحث لأول مرة.
    ملاحظة: البحث عن السلوك هو علامة على الاهتمام بالبيئة ، استجابة فسيولوجية.
  3. القدرة على الهروب
    1. ضع الجرذ في منتصف جهاز دائري (قطره 0.5 متر وارتفاعه 0.3 متر) مع مخرج (طوله 12.5 سم وعرضه 9 سم).
    2. سجل الوقت الذي يستغرقه الجرذ للخروج من الدائرة.
      ملاحظة: إذا لم يخرج الجرذ من الدائرة خلال 180 ثانية ، فقم بتسجيل الوقت على أنه 180 ثانية.
  4. اختبار قدرة توازن الشعاع
    1. ضع الجرذ على شعاع بعرض 3 سم و 2 سم و 1.5 سم لمدة دقيقة واحدة وفقا لذلك.
    2. إذا حافظ الجرذ على توازن مع وضع ثابت على العارضة ، فقم بتسجيله على أنه 0.
    3. إذا أمسك الجرذ جانب الحزمة ، فامنح درجة 1. إذا عانق الجرذ الشعاع وسقط أحد أطرافه ، فقم بتسجيله على أنه 2.
    4. إذا عانق الجرذ الشعاع وسقط الطرفان عنه أو دوران عليه (>60 ثانية) ، فقم بتسجيله على أنه 3.
    5. إذا حاول الجرذ التوازن على العارضة ولكنه سقط (> 40 ثانية) ، فقم بتسجيله على أنه 4.
    6. إذا حاول الجرذ التوازن على العارضة ولكنه سقط (>20 ثانية) ، فقم بتسجيله على أنه 5.
    7. إذا لم يحاول الجرذ التوازن أو التعليق على العارضة وسقط في غضون 20 ثانية ، فقم بتسجيله على أنه 6.
      ملاحظة: لا يتطلب اختبار توازن الحزمة تجربة مسبقة.

6. إجراء التحقق من الصحة: تقييم السلوك العصبي

ملاحظة: قبل التجارب السلوكية ، تم التعامل مع الفئران لمدة 2 دقيقة يوميا لمدة 3 أيام متتالية لتقليل التوتر واضطراب الجدة. تم إجراء جميع التجارب السلوكية عن طريق وضع في بيئة الاختبار لمدة 60 دقيقة قبل بدء التجربة.

  1. قدرة التنسيق الحركي (مهمة الشعاع)
    1. الإعداد التجريبي
      1. ضع الفئران على أحد طرفي عارضة التوازن (طولها 1.5 متر و 75 سم فوق الأرض). ضع صندوق هروب (قفص منزلي مائل للفراش) على الطرف الآخر.
      2. ضع حشوة رغوية أسفل العارضة للتخفيف من المخاطر المحتملة لإصابة الفئران في حالة السقوط أثناء الاختبار.
      3. قم بتشغيل كاميرا الفيديو.
      4. حدد أيام الاختبار في نقاط زمنية محددة بعد الإصابة أو بعد العلاج الوهمي (على سبيل المثال ، اليوم 1 واليوم 3 واليوم 7).
    2. مرحلة التدريب (2 أيام)
      1. تدريب الفئران على عبور شعاع 4 سم واسعة 3 مرات متتالية ، تليها تجربتان على شعاع 2 سم.
      2. أثناء التدريب ، قم بتوجيه الفئران برفق عبر الحزمة حتى يتمكنوا من عبورها بسهولة دون تدخل.
    3. تجربة عارضة التوازن
      1. ضع الفئران على شعاع بعرض 2 سم لمدة 5 تجارب متتالية.
      2. سجل بداية ونهاية كل تجربة عندما يعبر أنف الجرذ خطي البداية والنهاية ، على التوالي.
      3. أعد الفئران إلى أقفاصها في نهاية التجربة.
    4. اختبار خط الأساس
      1. قم بإجراء تجربة عارضة التوازن قبل الإصابة أو العلاج.
      2. احسب متوسط القيم من هذه التجارب المتتالية ال 5 لتحديد خط الأساس لكل فأر.
    5. تحليل البيانات
      1. تحليل الوقت اللازم لعبور العارضة والعدد الإجمالي للانزلاقات الخلفية باستخدام تحليل الفيديو من قبل الباحثين الذين أعموا الظروف التجريبية.
  2. القلق (اختبار المجال المفتوح)
    1. الإعداد التجريبي
      1. جهز ساحة الحقل المفتوح ، وتأكد من نظافتها وخلوها من أي إشارات رائحة سابقة. قسم الساحة إلى ثلاث مناطق: منطقة داخلية مركزية (33 سم × 33 سم) ، ومنطقة متوسطة (66 سم × 66 سم) ، ومنطقة خارجية.
    2. مرحلة الاختبار
      1. ضع فأرا في وسط ساحة الحقل المفتوح وابدأ المؤقت. اسمح للفأر باستكشاف الساحة لمدة 5 دقائق بحرية. بعد 5 دقائق ، أعد الفئران بعناية ورفق إلى قفص المنزل.
    3. جمع البيانات
      1. قم بقياس المسافة الإجمالية التي قطعها الجرذ خلال فترة الاستكشاف التي تبلغ 5 دقائق. حدد الوقت الذي يقضيه الجرذ في المناطق الداخلية والمتوسطة والخارجية المركزية.
    4. تحليل البيانات
      1. استخدم المسافة الإجمالية المقطوعة كمقياس للسلوك الاستكشافي العام والقدرة الحركية. احسب الوقت الذي يقضيه في المنطقة الداخلية المركزية كمؤشر على الاستجابات الشبيهة بالقلق.
  3. قدرات التعلم والذاكرة (اختبار متاهة موريس المائية)
    1. تأكد من أن جهاز متاهة المياه في حالة جيدة. صبغ الماء باللون الأسود وضع الإشارات في الاتجاهات الأساسية الأربعة. ضع المنصة 2.5 سم تحت سطح الماء.
    2. قم بإعداد نظام مراقبة لتسجيل ومراقبة سلوك الفئران.
    3. يوم درب
      1. ضع الفئران بسرعة في متاهة الماء. إذا فشل الجرذ في الوصول إلى المنصة في غضون 2 دقيقة ، قم بتوجيهه برفق باستخدام العصا الخشبية.
      2. اسمح للفأر بالتعرف على بيئة المتاهة أثناء الوقوف على المنصة لمدة 20 ثانية ، ثم قم بإزالتها. بمجرد أن يكون الجرذ على المنصة ، اتركه يبقى لمدة 20 ثانية ، ثم قم بإزالته.
    4. التكرار اليومي
      1. كرر إجراء يوم التدريب ، ووضع الفئران في الماء من أرباع مختلفة. كرر الخطوة 6.3.3. استمر في التدريب لمدة 5 أيام متتالية.
    5. يوم اختبار التحقيق:في اليوم 6 ، قم بإزالة المنصة ووضع الجرذ في نفس الربع لمدة 2 دقيقة.
    6. المراقبة والتسجيل: استخدم نظام المراقبة لمراقبة سلوك الفئران في أيام اختبار التجربة والتحقيق.
    7. التنظيف: بعد إزالة الجرذ من متاهة الماء ، استخدم منشفة لتجفيفه جيدا.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

كان الجهاز المستخدم في هذا العمل نسخة معدلة من نموذج كين ونموذج الأطفال لريشيل ميشاسيوك11,12. في هذه الدراسة ، تم تعيين الفئران SD لمجموعات وهمية و mTBI. لإثبات قابلية استنساخ هذا النموذج ، أجرينا ثلاث نسخ مكررة مستقلة لهذا النموذج جنبا إلى جنب مع التقييم السلوكي العصبي الحاد ، مع كل تجربة شملت 8-12 فئران. في هذه الدراسة ، استخدمنا أكثر من 30 فأرا mTBI ، مع 2 فئران تعاني من الوفيات بسبب التخدير. ومع ذلك ، لم تستسلم أي فئران لإصابة الدماغ أثناء التجربة. نتائج هذه التجارب معروضة في الشكل 2. بالإضافة إلى ذلك ، تم إجراء تقييمات سلوكية عصبية خلال المراحل الحادة وتحت الحادة (الشكل 3 والشكل 4 والشكل 5).

نتائج التقييم السلوكي العصبي الحاد

تم إجراء جميع هذه التقييمات بعد التخدير / التأثير 0 دقيقة (وقت فقدان الوعي ووقت سلوك البحث الأول) أو 10 دقائق (خروج الدائرة وتوازن الحزمة) ، على التوالي.

كما هو موضح في الشكل 2 أ ، قضت الفئران mTBI وقتا أطول بكثير في التعافي من فقدان الوعي ، وهو ما يتماشى مع النتائج التي تم الحصول عليها في الدراسات السابقة12،13. أظهر سلوك البحث في الفئران الذي يعتبر نشاطا فسيولوجيا طبيعيا ، زيادة ذات دلالة إحصائية في فترة التعافي داخل مجموعة mTBI (الشكل 2B). تشير هذه النتيجة إلى أن الفئران mTBI تتطلب مدة أطول لاستعادة حركتها ، والشم ، والتحقيق عن طريق اللمس ، وقدرات المسح البيئي.

حل الاختبار الحالي للدائرة محل الاختبارات الحسية الأصلية في درجة الشدة العصبية ، والتي كانت تعتمد في السابق على الملاحظات الذاتية للفاحصين مثل اختبارات التنسيب واختبار الحس العميق. أمضت الفئران mTBI وقتا أطول بكثير في الخروج من الدائرة مقارنة بالفئران الوهمية (الشكل 2C). أظهر التحليل الإحصائي باستخدام ANOVA ثنائي الاتجاه لوقت خروج الدائرة تأثيرا رئيسيا كبيرا للإصابة (F [1 ، 36] = 21.29 ، p < 0.0001) ، مما يشير إلى وجود فرق بين mTBI والمجموعات الوهمية. ومع ذلك ، لم يكن للتجارب المختلفة تأثير كبير (F [2 ، 36] = 0.1396 ، p = 0.87).

تم تحليل نتائج اختبار توازن الحزمة باستخدام ANOVA ثنائي الاتجاه ، تليها مقارنات Bonferroni المتعددة للاختلافات بين وسائل المجموعة (الشكل 2D). كان هناك تأثير عام كبير للإصابة في جميع مهام الحزمة الواسعة (3 سم: F = 13.89 ، p < 0.001 ؛ 2 سم: F = 42.7 ، p < 0.001 ؛ 1.5 سم: F = 27.25 ، p < 0.001) ، مما يشير إلى أن الفئران mTBI أظهرت ضعفا في التوازن مقارنة بالفئران الوهمية بعد 10 دقائق بعد الاصطدام. وفقا لثلاث تجارب متكررة مستقلة ، أظهرت حزمة التوازن بعرض 2 سم و 1.5 سم تمييزا أفضل بين المجموعتين الوهمية و mTBI من الحزمة التي يبلغ عرضها 3 سم.

نتائج تقييم السلوك العصبي

تم تقييم قدرة التنسيق الحركي باستخدام مهمة الحزمة في يوم واحد قبل التخدير / الإصابة و 1 يوم و 3 أيام و 7 أيام بعد التخدير / الإصابة (الشكل 3). تم تحليل العدد الإجمالي لزلات الأطراف الخلفية (الشكل 3 أ) من خلال قياس ANOVA ثنائي الاتجاه المتكرر ، ووجدت مقارنات Bonferroni المتعددة أن الفئران mTBI أظهرت انزلاقات أطرافها الخلفية بشكل ملحوظ في اليوم الأول بعد الإصابة مقارنة بالفئران الوهمية (الشكل 3 أ ؛ ص < 0.01). ومع ذلك ، بعد انتعاش 2 يوم ، لم يلاحظ أي تغييرات في الأخطاء الخلفية ، مع إجمالي عدد الزلات التي تم حلها مرة أخرى إلى مستويات زائفة بعد 7 أيام. والجدير بالذكر أن جميع الفئران ال 6 mTBI كان لديها انزلاقات خلفية بعد الاصطدام أكثر من أدائها الأساسي. قد تترافق زلات الأطراف الخلفية المتزايدة قليلا في الفئران الوهمية مع عدم وجود عارضة توازن الممارسة. في يوم واحد و 3 أيام بعد الإصابة ، أمضت الفئران mTBI وقتا أطول في اجتياز شعاع 150 سم (39.8 ثانية ± 3.79 ثانية مقابل 28.68 ثانية ± 0.82 ثانية ، 37.06 ثانية ± 4.06 ثانية مقابل 29.28 ثانية ± 3.42 ثانية) ، على الرغم من عدم وجود فروق بين الفئران mTBI والفئران الوهمية في الوقت المستغرق لاجتياز الحزمة في جميع النقاط الزمنية (الشكل 3 ب).

لم تكن هناك فروق ذات دلالة إحصائية في المسافة المقطوعة بين المجموعتين الوهمية و mTBI (الشكل 4 أ). تم تقييم السلوك الشبيه بالقلق عن طريق قياس الوقت الذي يقضيه في المنطقة المركزية أثناء اختبار المجال المفتوح. في كل من 3 أيام و 7 أيام بعد الإصابة ، أظهرت الفئران mTBI انخفاضا كبيرا في الوقت الذي تقضيه في المنطقة الوسطى مقارنة بالفئران الوهمية. تشير هذه النتيجة إلى أن الفئران mTBI أظهرت مستويات أعلى من السلوك الشبيه بالقلق بعد التأثير في غضون 7 أيام (الشكل 4B ، C).

كشفت نتائج أيام تعلم متاهة موريس المائية أن الفئران mTBI تتطلب وقتا أطول لتحديد موقع المنصة المخفية من الفئران الوهمية ، مما يشير إلى ضعف التعلم المكاني والذاكرة في مجموعة mTBI (الشكل 5). بعد ذلك ، أثناء تجربة المسبار ، أظهرت فئران mTBI عجزا في الاحتفاظ بالذاكرة المكانية ، كما يتضح من قضاء وقت أقل في البحث عن المنصة التي تمت إزالتها. والجدير بالذكر أنه لم يلاحظ أي فرق كبير في سرعة السباحة بين المجموعتين الوهمية و mTBI ، مما يدعم النتائج المتسقة التي لوحظت في تحليل المسافة المقطوعة الذي تم إجراؤه في اختبار المجال المفتوح. تشير هذه النتائج إلى أن التأثير لم يكن له تأثير ملحوظ على الوظيفة الحركية التلقائية.

Figure 1
الشكل 1: جهاز تأثير mTBI في الفئران. أ: المنظر العلوي والمنظر الجانبي للوسادة والخوذة في الموضع النسبي لرأس الجرذ. يظهر الخط الأحمر المنقط موضع الخوذة. (ب) صورة للمجموعة بأكملها توضح أنبوب توجيه رأسي للوزن المتساقط الموضوع فوق مرحلة الجرذ والإسفنجة الجامعة. (ج) لقطة تم التقاطها من مقطع فيديو ارتطام يصور دوران الجرذ بزاوية 180 درجة بعد اصطدام الرأس والتسارع / الدوران اللاحق. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

Figure 2
الشكل 2: نتائج التقييم السلوكي العصبي الحاد بعد الجرذان الوهمية ، mTBI ، تتكرر ثلاث مرات بشكل مستقل. (أ) زيادة كبيرة في وقت فقدان الوعي بعد التوقف عن التخدير في الفئران التي تلقت mTBI مقابل الفئران الوهمية. كان هناك تأثير مجموعة معنوي (P < 0.0001 ، ثنائي الاتجاه ANOVA) ولكن لم يكن هناك تأثير زمني كبير (P = 0.6226) أو تفاعل مجموعة x time (P = 0.5803). (ب) أظهرت فئران mTBI أول سلوك بحث لها بعد التخدير. (ج) قضت فئران الشام وقتا أقل في الهروب من دائرة 60 سم (* p < 0.01 ، ** p < 0.001 ، اختبار t غير مزاوج). (د) الأداء في درجة توازن الشعاع بعرض 3 سم و 2 سم و 1.5 سم. نتائج مقارنات بونفيروني المتعددة لكل مجموعة موضحة في الأشكال. البيانات المقدمة كمتوسط ± الخطأ المعياري للمتوسط. N = تم استخدام 8-12 فأرا لكل تجربة. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

Figure 3
الشكل 3: أداء مهمة الحزمة قبل الاصطدام وبعد الاصطدام في اليوم 1 واليوم 3 واليوم 7. (أ) قامت فئران mTBI بمزيد من الانزلاقات الخلفية في اليوم الأول بعد الإصابة (* p < 0.001 ، تم قياس 2-way ANOVA). (ب) متوسط وقت اجتياز الفئران الوهمية أقل من متوسط وقت اجتياز الفئران mTBI. البيانات المقدمة كمتوسط ± الخطأ المعياري للمتوسط (N = 6 / مجموعة). يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

Figure 4
الشكل 4: أداء اختبار المجال المفتوح في اليوم 1 قبل الإصابة واليوم 1 بعد الإصابة واليوم 3 واليوم 7 واليوم 14. (أ) لم يكن هناك فرق بين الجرذان الوهمية والفئران mTBI في المسافة المقطوعة. (ب) أمضت الفئران mTBI وقتا أقل في المركز من الفئران الوهمية في اليوم 3 واليوم 7 (* p < 0.01 ، ** p < 0.001 ، تم قياسها بشكل متكرر في اتجاهين ANOVA) ، مع عدم وجود اختلافات واضحة في اليوم الأول قبل الإصابة وبعد الإصابة 1 واليوم 14. (ج) خريطة تتبع الفئران mTBI في اليوم 1 واليوم 3 واليوم 7 واليوم 14 بعد mTBI. البيانات المقدمة كمتوسط ± الخطأ المعياري للمتوسط (N = 6-10 / مجموعة). يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

Figure 5
الشكل 5: الأداء في متاهة موريس المائية. (أ) لم يكن هناك فرق في السرعة في اختبار القدرة على السباحة بين الفئران الوهمية و mTBI. (ب) زمن الانتقال إلى النظام الأساسي المخفي لمهمة الذاكرة المرجعية في يوم المحاكمة. (ج) عبرت الفئران المنصة مرات أكثر في تجربة اختبار المسبار لمدة 2 دقيقة بعد 5 أيام تجريبية. الشام (5.14 ± 0.65) مقابل mTBI (3.56 ± 0.6) ، (* p < 0.01 ، اختبار t غير المقترن). البيانات المقدمة كمتوسط ± خطأ معياري للمتوسط (N = 9 / مجموعة). يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

يحاكي هذا النموذج بنجاح mTBI مغلق الرأس دون الحاجة إلى شق فروة الرأس أو فتح الجمجمة ، مما يوفر تمثيلا أكثر دقة لسيناريو التأثير الذي لوحظ في الحالات البشرية. يساعد تجنب شق فروة الرأس على منع الاستجابات الالتهابية التي قد لا تتوافق مع الوضع الفعلي. بالمقارنة مع نموذج Richelle Mychasiuk للأطفال12 ، فإن النموذج المستخدم في هذه الدراسة مصمم خصيصا للفئران البالغة التي يتراوح وزنها بين 280-320 جم ، مما يمكننا من الحصول على رؤى قيمة حول تأثيرات mTBI على الأفراد البالغين. بالإضافة إلى ذلك ، فإن دمج المكونات الرئيسية مثل الوسادة والخوذة يسهل توصيل قوة تأثير أكثر اتساقا ويساعد المشغل في تحديد المنطقة المستهدفة للتأثير بدقة.

من المهم التأكيد على أن إجراء التأثير في الفئران تم إجراؤه دون صيانة التخدير ، لذلك تم تأكيد عمق التخدير قبل بدء التأثير. تأكدنا من أن الفئران لم يكن لديها استجابة عن طريق هز صندوق تحريض التخدير برفق وتمديد وقت التخدير بمقدار 30 ثانية إضافية لضمان مستوى مناسب من التخدير. يوصى بإكمال عملية التأثير بأكملها في غضون 1 دقيقة.

من السهل نسبيا بناء جهاز التأثير الموصوف في هذه الدراسة ويمكن تكراره في أي مختبر تقريبا باستخدام المواصفات المقدمة. وهذا يعزز المزيد من التوحيد القياسي وقابلية المقارنة للبيانات التجريبية عبر بيئات البحث المختلفة. علاوة على ذلك ، فإن بيانات التحقق التي تم الحصول عليها من هذه الدراسة بمثابة مورد قيم للباحثين في معالجة أسئلة علمية محددة. من خلال تحليل النتائج السلوكية العصبية التي لوحظت في هذه الدراسة ، يمكن للباحثين اتخاذ قرارات مستنيرة وتصميم النهج التجريبي ليتماشى مع أهدافهم البحثية المحددة. وهذا يعزز الجودة الشاملة وأهمية الدراسات المستقبلية حول mTBI ويسهل التقدم في فهمنا لآلياته الأساسية والنتائج المرتبطة به.

شملت هذه الدراسة حصريا ذكور الفئران أو تنفيذ نموذج mTBI مغلق الرأس. بالنظر إلى الأبحاث السابقة التي تشير إلى اختلافات خاصة بالجنس في السلوك الشبيه بالقلق والأعراض المعرفية والجسدية المستمرة المتعلقة ب mTBI14،15 ، يجب إجراء دراسات مستقبلية على إناث القوارض.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

ليس لدى أصحاب البلاغ أي مصلحة مالية للكشف عنها.

Acknowledgments

نود أن نشكر جميع الزملاء في قسم المختبر بجامعة سنترال ساوث. ودعمت هذه الدراسة المؤسسة الوطنية للعلوم الطبيعية في الصين (رقم 81971791)؛ مختبر شنغهاي الرئيسي للطب الشرعي، المختبر الرئيسي لعلوم الطب الشرعي، وزارة العدل، الصين (أكاديمية علوم الطب الشرعي) (No. KF202104).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Acrylic box In-house N/A 15 cm x 22 cm x 43 cm
Anesthesia Machine RWD Life Science Co. R540 Mice & Rat Animal Anesthesia Machine
Helmet In-house N/A Stainless-steel disk measuring 10 mm in diameter and 3 mm in thickness
Morris water maze RWD Life Science Co. Diameter 150 cm, height 50 cm,platform diameter 35 cm
Open field RWD Life Science Co. 63007 Width100 cm, height 40 cm
Panlab SMART V3.0 RWD Life Science Co. SMART v3.0
Perforated weight In-house N/A Weight of 550 g and diameter of 18 mm
Pillow In-house N/A Wedge-shaped sponge to place beneath the rat's head

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Silverberg, N. D., Duhaime, A. C., Iaccarino, M. A. Mild traumatic brain injury in 2019-2020. JAMA. 323 (2), 177-178 (2020).
  2. Kim, K., Priefer, R. Evaluation of current post-concussion protocols. Biomedicine & Pharmacotherapy. 129, 110406 (2020).
  3. Peeters, W., et al. Epidemiology of traumatic brain injury in Europe. Acta Neurochirurgica (Wien). 157 (10), 1683-1696 (2015).
  4. Kabadi, S. V., Hilton, G. D., Stoica, B. A., Zapple, D. N., Faden, A. I. Fluid-percussion-induced traumatic brain injury model in rats. Nature Protocols. 5 (9), 1552-1563 (2010).
  5. Smith, D. H., et al. A model of parasagittal controlled cortical impact in the mouse: cognitive and histopathologic effects. Journal of Neurotrauma. 12 (2), 169-178 (1995).
  6. Feeney, D. M., Boyeson, M. G., Linn, R. T., Murray, H. M., Dail, W. G. Responses to cortical injury: I. Methodology and local effects of contusions in the rat. Brain Research. 211 (1), 67-77 (1981).
  7. Cernak, I., et al. The pathobiology of blast injuries and blast-induced neurotrauma as identified using a new experimental model of injury in mice. Neurobiology of Disease. 41 (2), 538-551 (2011).
  8. Shultz, S. R., et al. The potential for animal models to provide insight into mild traumatic brain injury: Translational challenges and strategies. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 76 (Pt B), 396-414 (2017).
  9. Chen, J., et al. Therapeutic benefit of intravenous administration of bone marrow stromal cells after cerebral ischemia in rats. Stroke. 32 (4), 1005-1011 (2001).
  10. Flierl, M. A., et al. Mouse closed head injury model induced by a weight-drop device. Nature Protocols. 4 (9), 1328-1337 (2009).
  11. Kane, M. J., et al. A mouse model of human repetitive mild traumatic brain injury. J Neuroscience Methods. 203 (1), 41-49 (2012).
  12. Mychasiuk, R., Farran, A., Esser, M. J. Assessment of an experimental rodent model of pediatric mild traumatic brain injury. Journal of Neurotrauma. 31 (8), 749-757 (2014).
  13. Pham, L., et al. Mild closed-head injury in conscious rats causes transient neurobehavioral and glial disturbances: A novel experimental model of concussion. Journal of Neurotrauma. 36 (14), 2260-2271 (2019).
  14. Jacotte-Simancas, A., Molina, P., Gilpin, N. W. Repeated mild traumatic brain injury and JZL184 produce sex-specific increases in anxiety-like behavior and alcohol consumption in Wistar rats. Journal of Neurotrauma. , (2023).
  15. Levin, H. S., et al. Association of sex and age with mild traumatic brain injury-related symptoms: A TRACK-TBI study. JAMA Network Open. 4 (4), e213046 (2021).

Tags

نموذج حيواني ، إصابة دماغية خفيفة مغلقة الرأس ، MTBI ، التحقق من الصحة ، فئران Sprague-Dawley ، التقييمات السلوكية العصبية ، الاستجابة للإصابة ، الوفيات ، مواقف الحياة الواقعية ، الاستقرار ، الاتساق
نموذج الفئران لإصابة رضحية خفيفة مغلقة الرأس والتحقق من صحتها
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Liu, Y., Wang, T., Zhang, C., Cai,More

Liu, Y., Wang, T., Zhang, C., Cai, J. Rat Model of Closed-Head Mild Traumatic Injury and its Validation. J. Vis. Exp. (199), e65849, doi:10.3791/65849 (2023).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter