Overview
Este video describe el protocolo que se desarrolla para diseccionar lentes de pez cebra adultos y larvarios para analizar la morfología de las lentes corticales y la integridad estructural de las suturas de la lente.
Protocol
1. Disección de lentes de pez cebra larvarias y adultas
- Anestesia peces de larvas de 6 dpf a la edad adulta con tricarina hasta que no responden al tacto, pero todavía muestran un latido del corazón fuerte. Mida la longitud estándar del pescado según Schilling (2002) para la puesta en escena.
-
Excisa inmediatamente los ojos usando tijeras de micro-disección y colóquelas en un plato de disección en PBS (Figura 1 que se muestra para los ojos adultos).
- Haga un plato personalizado de 35 mm lleno de silicona para disecciones de lentes. Una vez que la silicona se ha ajustado, excitar un divot de alrededor de 2-3 mm de diámetro y 0,5 mm de profundidad para inmovilizar los ojos/lentes adultos durante la disección.
-
Disección de lentes de pez cebra adultos
- Coloque un ojo adulto en el lado posterior del plato divot lleno de PBS. Inmovilice el ojo insertando fórceps en un ángulo de <45° a través del disco óptico. Tenga cuidado de no cortar o comprimir la lente. Realice dos o tres incisiones radiales a través de retina y escleras desde el disco óptico hasta la zona ciciliaria con tijeras de disección.
- Pelar la retina y las escleras como pétalos de flores e invertir el ojo, lado de córnea hacia arriba. Inmovilizar la lente indirectamente a través de la manipulación de la esclerótica y córnea con el lado plano de las tijeras, mientras tira de la retina y los tejidos unidos con fórceps. Recorte cuidadosamente el exceso de tejido de la lente.
NOTA: Es vital diseccionar cuidadosamente para obtener lentes consistentemente saludables.
-
Disección de lentes larvarias de pez cebra
- Coloque un lado posterior del ojo larvario en la parte plana de la silicona llena de PBS y use una aguja de tungsteno afilada para hacer cortes radiales a través de la retina y la esclerótica mientras inmoviliza el ojo con otra aguja o fórceps de tungsteno.
NOTA: Tenga cuidado de no dañar la lente.- Agudizar la punta de una longitud de 2 cm de alambre de tungsteno de 0,1 mm electrolíticamente suspendiendo la punta del cable en 10% (w/v) NaOH y aplicando una corriente alterna de baja tensión14. Asegure la aguja en una pipeta Pasteur derritiendo el extremo de vidrio usando un quemador Bunsen.
NOTA: También se pueden utilizar herramientas alternativas de disección fina.
PRECAUCIÓN: NaOH es corrosivo.
- Agudizar la punta de una longitud de 2 cm de alambre de tungsteno de 0,1 mm electrolíticamente suspendiendo la punta del cable en 10% (w/v) NaOH y aplicando una corriente alterna de baja tensión14. Asegure la aguja en una pipeta Pasteur derritiendo el extremo de vidrio usando un quemador Bunsen.
- Saque suavemente la lente del ojo disociado con un lado contundente de la aguja y tire cuidadosamente del tejido unido.
- Coloque un lado posterior del ojo larvario en la parte plana de la silicona llena de PBS y use una aguja de tungsteno afilada para hacer cortes radiales a través de la retina y la esclerótica mientras inmoviliza el ojo con otra aguja o fórceps de tungsteno.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Figura 1: Disección de lentes de pez cebra. (A) Los ojos se diseccionan de los peces anestesiados y se colocan hacia arriba (B). (C) Los ojos son inmovilizados por fórceps a través del disco óptico (od) y dos o tres incisiones radiales se hacen en retina y esclerótica desde el disco óptico hasta las zonules. (D) Doble las solapas para revelar la lente. (E) Gire el ojo a cara la córnea hacia arriba, inmovilice la lente indirectamente a través de la córnea y tire de la esclera-retina. (F) Recortar la retina restante y la zona ciliaria /zonules de la lente
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Materials
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Phosphate buffered saline (PBS) | Fisher Scientific | BP399 | |
Glass bottom microwell dish (35mm Petri dish, 14 mm microwell, #1.5 coverglass) | MatTek Corporation | P35G-1.5-14-C | |
Dumont #5 forceps | Dumont & Fils | Keep forceps sharpened | |
Vannas micro-dissection scissors | Ted Pella Inc | 1346 | Sharp/sharp straight tips |
Confocal microscope | Nikon | Eclipse Ti-E | |
Sodium Hydroxide beads | Fisher Scientific | S612-3 | CAUTION - corrosive/irritating to eyes and skin, target organ - Journal of Visualized Experiments www.jove.com Copyright © 2019 Journal of Visualized Experiments Page 2 of 2 respiratory system, corrosive to metals |
Disposable Pasteur glass pipets | Fisherbrand | 13-678-20A |