Overview
Questo video descrive il protocollo sviluppato per sezionare lenti zebrafish adulte e larvali per analizzare la morfologia corticale delle lenti e l'integrità strutturale delle suture delle lenti.
Protocol
1. Dissezione di lenti larvali e zebrafish adulte
- Anestetizza i pesci da 6 larve dpf all'età adulta con tricaina fino a quando non risponde al tatto ma mostra ancora un forte battito cardiaco. Misurare la lunghezza standard del pesce secondo Schilling (2002) per la messa in scena.
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Asportare immediatamente gli occhi utilizzando forbici a microsezione e posizionare in un piatto di dissezione in PBS (Figura 1 mostrata per gli occhi adulti).
- Crea un piatto personalizzato da 35 mm riempito con silicone per le dissezioni delle lenti. Una volta impostato il silicone, asportare un divot di circa 2-3 mm di diametro e 0,5 mm di profondità per immobilizzare gli occhi / lenti degli adulti durante la dissezione.
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Dissezione di lenti zebrafish adulte
- Posizionare un occhio adulto nel piatto divot lato posteriore riempito con PBS. Immobilizzare l'occhio inserendo le forcep con un angolo di <45° attraverso il disco ottico. Fare attenzione a non graffiare o comprimere l'obiettivo. Fare due o tre incisioni radiali attraverso retina e sclera dal disco ottico alla zona ciliaria con forbici di dissezione.
- Sbucciare la retina e lo sclera come petali di fiori e invertire l'occhio, lato cornea verso l'alto. Immobilizzare la lente indirettamente attraverso la manipolazione della sclera e della cornea con il lato piatto delle forbici, mentre si tira via la retina e i tessuti attaccati con le forcelle. Tagliare con cura il tessuto in eccesso dall'obiettivo.
NOTA: È fondamentale sezionare attentamente per ottenere lenti costantemente sane.
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Dissezione delle lenti larvali zebrafish
- Posizionare un lato posteriore dell'occhio larvale sulla parte piatta della piastra di silicone piena di PBS e utilizzare un ago di tungsteno affilato per effettuare tagli radiali attraverso la retina e lo sclera immobilizzando l'occhio con un altro ago di tungsteno o pinza.
NOTA: Fare attenzione a non danneggiare l'obiettivo.- Affilare elettroliticamente la punta di un filo di tungsteno di 2 cm di filo di tungsteno da 0,1 mm sospendendo la punta del filo in NaOH al 10% (w/v) e applicando una corrente alternata a bassa tensione14. Fissare l'ago in una pipetta Pasteur sciogliendo l'estremità del vetro utilizzando un bruciatore Bunsen.
NOTA: È inoltre possibile utilizzare strumenti alternativi di dissezione fine.
ATTENZIONE: NaOH è corrosivo.
- Affilare elettroliticamente la punta di un filo di tungsteno di 2 cm di filo di tungsteno da 0,1 mm sospendendo la punta del filo in NaOH al 10% (w/v) e applicando una corrente alternata a bassa tensione14. Fissare l'ago in una pipetta Pasteur sciogliendo l'estremità del vetro utilizzando un bruciatore Bunsen.
- Estrarre delicatamente l'obiettivo dall'occhio dissociato con un lato smussato dell'ago e tirare via con cura il tessuto attaccato.
- Posizionare un lato posteriore dell'occhio larvale sulla parte piatta della piastra di silicone piena di PBS e utilizzare un ago di tungsteno affilato per effettuare tagli radiali attraverso la retina e lo sclera immobilizzando l'occhio con un altro ago di tungsteno o pinza.
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Representative Results
Figura 1: Dissezione delle lenti Zebrafish. (A) Gli occhi sono sezionati da pesci anestetizzati e posizionati sul lato posteriore verso l'alto (B). (C) Gli occhi sono immobilizzati da force attraverso il disco ottico (od) e due o tre incisioni radiali sono fatte in retina e sclera dal disco ottico agli zonuli. (D) Piegare i lembi per rivelare l'obiettivo. (E) Ruotare l'occhio per affrontare cornea verso l'alto, immobilizzare l'obiettivo indirettamente attraverso la cornea e tirare via la sclera-retina. (F) Tagliare via la retina rimanente e la zona ciliaria/zonules dall'obiettivo
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Materials
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Phosphate buffered saline (PBS) | Fisher Scientific | BP399 | |
Glass bottom microwell dish (35mm Petri dish, 14 mm microwell, #1.5 coverglass) | MatTek Corporation | P35G-1.5-14-C | |
Dumont #5 forceps | Dumont & Fils | Keep forceps sharpened | |
Vannas micro-dissection scissors | Ted Pella Inc | 1346 | Sharp/sharp straight tips |
Confocal microscope | Nikon | Eclipse Ti-E | |
Sodium Hydroxide beads | Fisher Scientific | S612-3 | CAUTION - corrosive/irritating to eyes and skin, target organ - Journal of Visualized Experiments www.jove.com Copyright © 2019 Journal of Visualized Experiments Page 2 of 2 respiratory system, corrosive to metals |
Disposable Pasteur glass pipets | Fisherbrand | 13-678-20A |