Summary
هذا البروتوكول يحدد الخطوات المطلوبة لتشريح ، transfect electroporation عبر الماوس والخلايا العصبية قرن آمون والثقافة القشرية. يمكن استخدامها على المدى القصير للدراسات الثقافات ثمرة محوار والتوجيه ، في حين يمكن استخدامها على المدى الطويل للدراسات الثقافات synaptogenesis وتحليل شجيري العمود الفقري.
Abstract
وقد استخدمت الخلايا العصبية قرن آمون والقشرية على نطاق واسع لدراسة الجهاز العصبي المركزي (CNS) الاستقطاب العصبية ، ثمرة محوار / تغصن ، وتشكيل المشبك وظيفة. ميزة هذه استنبات الخلايا العصبية هي أنها استقطاب بسهولة ، وتشكيل المحاور المميزة والتشعبات ، على ركيزة ثنائية الأبعاد في كثافة منخفضة جدا. وقد جعلت هذه الخاصية مفيدة جدا لهم لتحديد العديد من جوانب التنمية العصبية. علاوة على ذلك ، من خلال توفير تكييف الدبقية لهذه الخلايا العصبية فإنها تستمر في تطوير وتشكيل اتصالات متشابك وظيفية والباقين على قيد الحياة لعدة أشهر في الثقافة. نحن في هذا البروتوكول مخطط تقنية لتشريح والثقافة وtransfect الخلايا العصبية الجنينية الماوس الحصين والقشرية. ويتم إنجاز ترنسفكأيشن electroporating بواسطة الحمض النووي في الخلايا العصبية قبل الطلاء عبر nucleofection. هذا البروتوكول لديه ميزة للتعبير عن البروتينات الانصهار fluorescently الموسومة في وقت مبكر في عملية التنمية (~ 4 - 8hrs بعد الطلاء) لدراسة ديناميات وظيفة من البروتينات خلال ثمرة الاستقطاب المحور ، والمتفرعة. اكتشفنا ايضا ان هذا ترنسفكأيشن واحد قبل الطلاء يحافظ fluorescently الموسومة بروتين تعبير الانصهار عند مستويات مناسبة للتصوير طوال مدة الخلايا العصبية (> 2 أشهر في الثقافة). وبالتالي ، فإن هذه المنهجية هي مفيدة لدراسة توطين وظيفة البروتين في جميع أنحاء التنمية اضطراب الجهاز العصبي المركزي مع ضئيلة أو معدومة في وظيفة الخلايا العصبية.
Protocol
1. إعداد Coverslips والدوائر
- إعداد coverslips غرف نظيفة وضروري للثقافات صحية. لا ينبغي أن تؤخذ اختصارات في أي من هذه الخطوات.
- غسل coverslips (الجولة 22mm و 12mm أو والزجاج ألماني -- كارولينا مساعد العلامة التجارية) بين عشية وضحاها في تركيز حمض النتريك (HNO3) في وعاء زجاجي مخصص أو الكأس.
- إزالة coverslips من حمض النتريك وتغسل على نطاق واسع (5 - 7X) في الماء منزوع الأيونات.
- فصل coverslips والجافة في التدفق الصفحي أو غطاء لمجلس الوزراء للسلامة الأحيائية. عندما تجف ، وتعقيم لهم ضوء الأشعة فوق البنفسجية لمدة 30 دقيقة. تعقيم مكان coverslips إلى أطباق بتري معقمة للتخزين. إذا الخلايا العصبية الطلاء على coverslips 12mm مكان coverslips مباشرة في طبق 35mm العقيمة ، والشروع في القسم 2.
- هي التي شيدت غرف التصوير عن طريق حفر حفرة 15mm في الجزء السفلي من أطباق بتري 35mm (إزالة جميع نتوءات) ، وربط coverslips تنظيفها بمزيج 03:01 من البارافين والفازلين.
- ذوبان البارافين / هلام البترول خليط في أنبوب مخروطي داخل حمام ماء يغلي. استخدام فرشاة الدهان الصغيرة ومعطف السفلي من صحن حول الثقب 15mm. تأكد للحفاظ على تحريك البارافين / هلام البترول خليط لأنها سوف منفصلة. هذه النتائج عادة في غرف لصقها معا مع تركيز أعلى من الفازلين ، والتي سوف تصبح لزجة عندما توضع الأطباق في الحاضنة ، مما أدى إلى انفصال ساترة. ويمكن تخزين البارافين المتبقية / الفازلين في درجة حرارة الغرفة.
- مكان الطبق رأسا على عقب على صينية مسطحة ومكان ساترة فوق الحفرة. الحرارة 80 درجة مئوية في الفرن حتى يذوب الخليط البارافين (~ 10 دقيقة). إزالة الأطباق على سطح مستو ، والسماح للمجموعة خليط البارافين.
- بدوره عبر الأطباق وتعقيم كل من الدواخل من الأغطية وقيعان من غرف للأشعة فوق البنفسجية.
- coverslips معطف أو المناطق زجاج الغرف مع 1.0mg/mL بولي د يسين (30kDa) في المخزن بورات (0.1M بورات الصوديوم ، ودرجة الحموضة 8.5) لمدة ساعة. شطف 3-5 مرات مع كميات وفيرة من المياه وزراعة الأنسجة الصف منزوع الأيونات. تأكد من إزالة جميع آثار العازلة بورات. الجافة واستخدامها على الفور أو تخزين غرف / coverslips لاستخدامها لاحقا. نستخدم عادة coverslips تنظيفها غضون شهر واحد من الإعداد.
2. إعداد تشريح الخلايا العصبية ومتوسطة الثقافة
- إعداد المتوسطة تشريح (DM) وذلك بإضافة كميات مناسبة من HBSS 10x وHEPES 100X لزراعة الأنسجة المياه الصف. المحل في 4 درجات مئوية. تبقي على الجليد خلال التشريح.
- قبل يوم من تشريح تحضير الطلاء المتوسطة (AM) وخالية من مصل المتوسطة (SFM). PM يتكون من متوسطة Neurobasal ، ملحق B27 ، 2 ملي الجلوتامين ، والجلوكوز بنسبة 0.3 ٪ ، 37.5 ملم وكلوريد الصوديوم 5 ٪ مصل بقري جنيني (FBS). SFM يتكون من متوسطة Neurobasal ، ملحق B27 ، 2 الجلوتامين مم ، غلوكوز 0.3 ٪ و 37.5 ملي كلوريد الصوديوم.
- تقديم ما يكفي فقط للتشريح وتخزينها في الأنسجة ثقافة حاضنة ليلا مع الغطاء قليلا حتى مواربا أن درجة الحرارة وثاني أكسيد الكربون 2 مضمون equilibrates المتوسط. نضيف السكر وزيادة اضافية الأسمولية ل310mOsm تقريبا مع كلوريد الصوديوم. نجد أن الثقافات ما هو أفضل في الأسمولية أكثر الفسيولوجية (الأسمولية Neurobasal عادة 245mOsm 205).
3. طبقة قشرية الطاعم الدبقية التحضير الطويلة الأجل الثقافات
- إذا الثقافات على المدى الطويل هي أن نكون مستعدين ، تنفيذ هذا الجزء من اسبوعين الى ثلاثة اسابيع قبل البروتوكول المستمر مع تشريح القشرية أو قرن آمون.
- إعداد المتوسطة الدبقية (GM) مع MEM والجلوكوز بنسبة 0.3 ٪ ، البنسلين / الستربتوميسين و 10 ٪ مصل الحصان.
- الموت ببطء الجراء الماوس P1 - P3 عن طريق التبريد على الجليد لمدة 5 دقائق. إزالة كل الجرو من الجليد ورذاذ مع الايثانول 70 ٪. قطع رأس بسرعة مع المقص. إزالة المخ بأكمله إلى صحن يحتوي الباردة DM (الخطوة 2.1).
- إزالة نصفي الدماغ والسحايا. استئصال وإزالة القشرة المخية الحديثة إلى طبق جديد لا تحتوي على وسائل الإعلام. إعداد القشور من مجموع 4 العقول.
- اللحم المفروم مع القشور ونظيفة ، وشفرة حلاقة معقمة كما غرامة ممكن ، وإزالة الأنسجة المفروم مع ماصة بلاستيكية لأنبوب مخروطي 50 مل تحتوي على 12 مل من DM الباردة. إضافة التربسين والدناز لتركيزات النهائي 0.25 ٪ (1.5 مل) و 0.1 ٪ (1.5 مل) على التوالي. احتضان في حمام الماء ° 37 مئوية لمدة 10 دقيقة مع تحريكها على فترات متقطعة.
- إزالة الأنبوب الذي يحتوي على أنسجة القشرية ونظيفة تماما مع الايثانول 70 ٪ قبل ان يصل إلى الأنسجة هود الثقافة. الأنسجة الماصة القشرية صعودا ونزولا مع ماصة 10 مل تقريبا 10-15 مرات ، أو حتى تختفي معظم أجزاء.
- عودة الأنبوب إلى 37 درجة مئوية في حمام مائي لمدة 10 دقيقة مع تحريكها على فترات متقطعة.
- تنظيف الأنبوب جيدا مع الايثانول 70 ٪ وإعادته إلى الأنسجة هود الثقافة. الماصة النسيج القشرية صعودا وهبوطا مع 5 مL ماصة حوالي 10-15 مرة ، أو حتى قطع تختفي.
- إضافة 15 مل من جنرال موتورز دافئة والطرد المركزي في 200xg (1000rpm) لمدة 10 دقيقة.
- تجاهل طاف ، resuspend الخلايا مكعبات في 20 مل من جنرال موتورز الجديدة والعد مع عدادة الكريات. لوحة 5 - 7.5x10 6 خلايا في 15 مل من جنرال موتورز في قارورة 75cm 2.
- بعد يوم واحد كل 2-3 أيام لاحقة في الثقافة ، وطرد الخلايا فضفاضة يطرق القارورة ضد يدك. إزالة المتوسطة جنبا إلى جنب مع أية خلايا فكها واستبدالها مع 15 مل من جنرال موتورز جديدة.
- يمكن حصاده الدبقية بعد 1-2 أسابيع من النمو في قوارير ، وعندما توشك 7-10 ٪ متموجة. لإعداد coverslips الفردية المغلفة مع الدبقية ، وحامض النيتريك المركز 6 نظيفة ومعقمة 25mm coverslips جولة في صحن 10cm ، والمكان 3 نقاط من مزيج 03:01 من البارافين / الفازلين على كل ساترة في نمط الثلاثي مع فرشاة الدهان الصغيرة . علاج أطباق مفتوحة مع ضوء الأشعة فوق البنفسجية لمدة 30 دقيقة. معطف coverslips بنسبة 0.1 ملغ / مل بولي د يسين (30kDa) في المخزن بورات لمدة ساعة ، ثم تغسل على نطاق واسع (3 - 5X) مع الماء المعقم نسيج ثقافة الصف منزوع الأيونات واسمحوا الجافة.
- إزالة القارورة التي تحتوي على الدبقية من الحاضنة ، تجاهل المتوسطة والشطف مع 5 مل من قبل تحسنت التربسين / حل EDTA. إزالة الحل التربسين / EDTA من القارورة وماصة 3 مل من التربسين قبل تحسنت طازجة / EDTA في القارورة. احتضان القارورة لمدة 1 دقيقة عند 37 درجة مئوية قبل ان يضيف 5 مل من جنرال موتورز لوقف trypsinization.
- إزالة الدبقية من القارورة التي تتكرر pipetting 10-15 مرات ، ومن ثم نقل وسائل الإعلام على أنبوب 15 مل المخروطية. الطرد المركزي في 200xg (1000rpm) لمدة 8 دقائق. إزالة طاف وإضافة 10 مل من جنرال موتورز ، وعدد الخلايا ، والخلايا لوحة 5x10 5 في 12.5 مل من جنرال موتورز في صحن يحتوي على coverslips 10cm.
- تبادل المتوسطة مع الطازج قبل أيام تحسنت كل جنرال موتورز 2-3. قبل يوم من تشريح الخلايا العصبية ، وإزالة واستبدال جنرال موتورز مع SFM (القسم 2.2). استخدام هذا SFM الدبقية مكيفة في الخطوة عند 4.12 الفيضانات الثقافات القشرية أو قرن آمون.
4. قشري و / أو تشريح الحصين وElectroporation
- إزالة الكميات المناسبة من الحلول nucleofection (Lonza) ، والجمع ، وإلى درجة حرارة الغرفة دافئة قبل البدء في تشريح. منذ حل Nucleofection لديه محدود مدى الحياة عند الجمع ، ونحن فقط الجمع بين المبلغ اللازم لإعداد كل (100 ميكرولتر في ترنسفكأيشن).
- الموت ببطء ماوس حاملا في E15.5 مع CO 2 (اليوم هو من المكونات E0.5) وإزالة الرحم إلى 10cm طبق بتري. إزالة قطع رأس الأجنة وإلى DM الباردة (القسم 2.1).
- إزالة المخ بأكمله في طبق منفصل DM الباردة وبإبرة التنغستن عازمة ، إزالة كل neocortices. إزالة السحايا مع microforceps والقشور مكان في صحن جديد من DM الباردة. مع مقص القزحية أو يكر الصغيرة ، وإزالة القشرة أو الحصين ومكان في أنبوب 1.5 مل إيبندورف مليئة 1.0 مل من DM الباردة. الحفاظ على هذا الانبوب على الجليد.
- بعد تشريح جميع القشور أو الحصين ، إضافة 110 ميكرولتر من التربسين 2.5 ٪ إلى الأنبوب الذي يحتوي على أنبوب إيبندورف النسيج وضعها في حاضنة 37 درجة مئوية لمدة 20 دقيقة.
- إزالة القشور ويغسل أو طاف الحصين مع 1.0 مل م (القسم 2.2) عن طريق أنبوب إيبندورف عكس بلطف و. تكرار غسل مرتين ، وترك 1 مل من بعد الظهر في الأنبوب.
- يسحن على قطع 15 مرة مع ماصة P1000 ، وإزالة الخلايا طاف / لأنبوب جديد 15 مل مخروطي يحتوي على 4 مل م ، ترك أي مساحات التي لا تزال في أنبوب إيبندورف.
- تدور في أنبوب 15 مل 20xg (350rpm) لمدة 7 دقائق مع قبالة الفرامل. تجاهل طاف وإضافة 100 ميكرولتر من خلط حل الغرفة ، nucleofection درجة الحرارة (Lonza) لكل ترنسفكأيشن. متمزج 5 مرات مع اقتراح لطيف صعودا وهبوطا من ماصة P1000.
- إزالة 100 ميكرولتر من خليط محلول / خلية nucleofection لكل أنبوب إيبندورف جديدة وإضافة كمية مناسبة من الحمض النووي. للثقافات على المدى الطويل التي نستخدمها عادة 1 - 2μg من الحمض النووي لكل ترنسفكأيشن. ومع ذلك ، فإن هذه التسميات إلا نسبة صغيرة <10 ٪ من الخلايا العصبية في الثقافة. نستخدم عادة 5 - 10μg من الحمض النووي لكل ترنسفكأيشن إذا أردت كفاءة أعلى للثقافة ترنسفكأيشن المدى القصير. وقد استخدمنا تصل إلى ما مجموعه 40μg من الحمض النووي عند transfecting مع اثنين من البلازميدات مختلفة. يتم تخزين في المخزن المؤقت البلازميدات TE في 1μg / ميكرولتر.
- إضافة تعليق خلية / الحمض النووي للكفيت (Lonza) وelectroporate الخلايا في Nucleofector (Lonza) ، وذلك باستخدام برنامج O - 005 (الماوس الجهاز العصبي المركزي الخلايا العصبية).
- العمل بسرعة ، وإضافة 500 ميكرولتر من قبل PM تحسنت ومعايرتها إلى حل وإزالة كفيت / الخلايا الجديدة إلى 1.5 مل أنبوب إيبندورف. إضافة PM كافية لجعل حجم كل ترنسفكأيشن إلى 1.0 مل. عدد الخلايا مع عدادة الكريات والخلايا في لوحة 3 3 - 5x10 / سم 2 للثقافات الشباب ، أو 5 - 10x10 3 خلية / سم 2 لمدة طويلة الأجل الثقافات </ لى>
- على المدى القصير الثقافات والفيضانات الأطباق الثقافة 35mm مع مل 2.0 من الدفء ، CO 2 - SFM معايرتها بعد ساعة واحدة من الطلاء. إذا باستخدام coverslips ، ونحن بإزالة واحد من نصف عدد الوزراء واستبداله SFM ، ثم كرر مرتين أخريين. الفيضانات إما غرف التصوير أو غسل النتائج coverslips في محتوى المصل منخفضة جدا (<0.5 ٪). على المدى القصير الثقافات لا تحتاج إلى أن يكون مثقف بطبقة المغذية الدبقية ولست بحاجة إلى أن يعاد تغذيتها.
- على المدى الطويل الثقافات ، ونحن إزالة ساترة الدبقية مغطاة تحتوي على ثلاث نقاط من البارافين / الفازلين وعكس ذلك خلال ثقب 15mm في الطبق 35mm ، بعد ساعة واحدة الطلاء الأولي. ثم يتم إضافة اثنين ملليلتر من SFM مشروطة من الطبق الدبقية إلى غرفة التصوير. لتغذية الثقافات على المدى الطويل ، ونحن إزالة ثلث من SFM كل 2-3 أيام واستبدالها SFM - 2 معايرتها العذبة ، وقبل حرارة وثاني أكسيد الكربون.
5. ممثل النتائج :
الشكل 1. وتظهر الخلايا العصبية الحصين يعيشون في مراحل متتالية من التنمية. الصور المقترنة ممثل يعيشون الخلايا العصبية الحصين على حد سواء على النقيض من الصورة وتدخل الفرق المقابلة مجهرية الفلورسنت. وقد transfected كل من هذه الخلايا مع تويولين - EGFP وDsRed2 في ناقلات pCAX. وكان تصوير الخلايا العصبية في الأيام التالية في المختبر (DIV) : المرحلة 1 (1DIV) ، المرحلة 2 (1DIV) ، المرحلة 3 (2DIV) ، المرحلة 4 (11DIV) والمرحلة 5 (32DIV). شريط المقياس 20μm.
Discussion
وقد تم تطوير هذا البروتوكول من أجل استنبات الخلايا العصبية الجنينية الماوس قرن آمون والقشرة وتعديل البروتوكول بانكر ، التي تستخدم الخلايا العصبية الفئران 1،2. وقد استخدمنا هذا البروتوكول للماوس وزراعة الخلايا العصبية كما الهامستر 3،4،5،6،7 جيدا. هذا البروتوكول يعمل بشكل جيد على قدم المساواة كل من الخلايا العصبية للقرن آمون والقشرة المخية الحديثة ومشابه لبروتوكول نشرتها Meberg وميلر 8. عموما ، نحن نستخدم الخلايا العصبية الحصين على المدى الطويل لأن ثقافة تتميز أيضا أنها نموذج ونظام أكثر رسوخا. علاوة على ذلك ، من المرجح أن تحتوي على مجموعة من السكان أكثر تجانسا من الخلايا العصبية من القشرة المخية الحديثة. ومع ذلك ، الخلايا العصبية مثقف القشرة المخية الحديثة باستخدام هذا البروتوكول أيضا البقاء على قيد الحياة والتفريق بالمثل (بيانات غير منشورة). نستخدم عادة الخلايا العصبية قرن آمون والقشرة المخية الحديثة للثقافة على المدى القصير. نتائج تشريح القشرة المخية الحديثة أيضا في الخلايا العصبية أكثر بكثير (1.5x10 6 الخلايا العصبية لكل زوج من القشور) من تشريح الحصين (2.5x10 5 الخلايا العصبية لكل زوج من الحصين) ، مما يجعله خيارا أفضل المواد لالنشاف الغربية ، على سبيل المثال.
كما هو الحال مع أي ثقافة الأولية ، فإنه من الضروري لتقليل الوقت الذي يستغرقه من موت الحيوان إلى طلاء للخلايا. وسوف يستغرق عادة 10-20 تشريح لتصبح سريع باستمرار في تشريح والطلاء. أيضا ، عند العمل مع Nucleofector Lonza ، من الأهمية بمكان العمل بسرعة أثناء إجراء electroporation ، وبقاء الخلايا العصبية يتناقص بسرعة إذا ما تركت في المنطقة العازلة nucleofection.
ويجري تصوير الكثير من علاقاتنا مع الانعكاس الداخلي الكلي المجهري مضان (TIRFM). هذا النوع من الفحص المجهري هي الوحيدة القادرة على عدة مئات من نانومتر التصوير خارج ساترة. ولذلك ، فإن مناطق الخلايا العصبية التي كثيرا ما كنا الصورة ، مخروط النمو محواري والعمود الفقري شجيري ، والحاجة إلى التقيد مباشرة إلى ساترة. وبالتالي ، فإننا نستخدم الثقافات منخفض الكثافة التي تتطلب تغذية الدبقية لمدة طويلة الأجل الثقافة. وقد استخدمنا الثقافات العالي الكثافة (> 2x10 4 خلايا / سم 2) ، من دون طبقات المغذية الدبقية ، على المدى الطويل الثقافات وجدت أنها البقاء على قيد الحياة بشكل جيد جدا مع قليل التغذية. ومع ذلك ، العمود الفقري شجيري من هذه الخلايا العصبية هي في كثير من الأحيان بعيدا جدا من الركيزة لصورة في TIRFM ، على الرغم من أنها يمكن الكشف عنها بسهولة مع واسعة المجال المجهري أو المجهري متحد البؤر.
في معظم الدراسات لدينا نحن transfect الخلايا العصبية قبل الطلاء ، ولقد التقط fluorescently البروتينات التي تحمل علامات لمدة تصل إلى ثلاثة أشهر في مجال الثقافة. هذا التعبير على المدى الطويل من البروتينات التي تحمل علامات fluorescently يعطينا الثقة بأن باستخدام تركيزات منخفضة من الحمض النووي (1 - 2μg) ونحن لا تنتج القطع الأثرية overexpression في الخلايا العصبية. ومع ذلك ، يمكن أيضا أن تستخدم هذا الإجراء لدراسة overexpression من البروتينات إذا تم استخدام كميات كبيرة من الحمض النووي (10 20μg). والبلازميدات التي نستخدمها لtransfect الخلايا العصبية عادة ما تحتوي على البروتينات أو الانصهار EGFP mCherry ، على الرغم من أننا أيضا تسمية السيتوبلازم العصبية مع DsRed2 أو EGFP وحدها. هذه التقنية تعمل بشكل جيد electroporation مع عدد من النواقل. نحن نفضل البلازميدات التي تحتوي على مروج β - أكتين مع محسن CMV وβ غلوبين بولي - A الذيل (pCAGGs أو البلازميدات pCAX) 9 ، ويرجع ذلك الى مستويات عالية نسبيا من التعبير ، والحقيقة التي تحملها جيدا من قبل الخلايا العصبية في كل ثقافة قصيرة الأجل وطويلة الأجل. عموما ، تبدأ في التعبير عن البروتينات داخل نحو 4 ساعات من الطلاء والوصول إلى مستويات كافية للتصوير في غضون 10 - 10 24hrs. وقد استخدمنا بنجاح CMV - المروج يحركها البلازميدات في الثقافات المدى القصير ، ولكن وجدت أنها يمكن أن تسبب مستويات عالية من overexpression التي تقتل الخلايا العصبية في المدى الطويل الثقافة. ومع ذلك ، فقد وجدنا أن تكييف الدبقية الثقافات منخفض الكثافة يساعد على بقاء الخلايا العصبية مع transfected CMV - المروج البلازميدات مدفوعة ، مقارنة مع ارتفاع الكثافة (غير الدبقية فدان) الثقافات.
Disclosures
الإعلان عن أي تضارب في المصالح.
Acknowledgments
وقد وافق جميع الإجراءات المتبعة في جامعة ولاية ويسكونسن على لجنة رعاية الحيوان ، وكانت متفقة مع المبادئ التوجيهية المعاهد الوطنية للصحة. نشكر الدكتور كاثرين قليل قرب نابلس لاستخدام الجهاز سخية لها Nucleofector. ونشكر أيضا أعضاء في مختبر دنت للتعليق على هذا البروتوكول. وأيد هذا العمل من قبل المعاهد الوطنية للصحة منح R01 - NS064014 ، ومؤسسة دانا وايتهول لمؤسسة EWD
ساهم Viesselmann كريستوفر ، وجايسون Ballweg Lumbard ديريك بالتساوي على هذه الورقة.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Sodium Borate | Fisher Scientific | S93356 | Store borate buffer at room temperature (RT). |
| Poly-d-Lysine | Sigma-Aldrich | P7886-100mg | Dissolve in 0.1M borate buffer. Sterile filter and store aliquots at -80°C. |
| Trypsin (10x) | Invitrogen | 15090-046 | Store aliquots at -80°C. |
| DNase (10x) | Sigma-Aldrich | DN25-1G | Store aliquots at -80°C. |
| MEM | Invitrogen | 11095-080 | Store at 4°C. |
| HBSS (10x) | Invitrogen | 14185-052 | Store at RT. |
| HEPES (100x) | Invitrogen | 15630-080 | Store at 4°C. |
| Penicillin/Streptomycin (100x) | Invitrogen | 15140-122 | Store aliquots at -80°C. |
| Horse Serum | Hyclone | SH3007403 | Store aliquots at -80°C. |
| Trypsin/EDTA | Invitrogen | 25200-056 | Store at 4°C. |
| Neurobasal E (NB) | Invitrogen | 21103-049 | Store at 4°C. |
| B27 Supplement (50x) | Invitrogen | 17504-044 | Store aliquots at -80°C. |
| Glutamine (100x) | Invitrogen | 25030-081 | Store aliquots at -80°C |
| 30% Glucose in NB (100X) | Fisher Scientific | BP350-500 | Dissolve glucose in NB and sterile filter. Store at 4°C. |
| 3.75M NaCl in NB (100X) | Fisher Scientific | BP358-1 | Dissolve NaCl in NB and sterile filter. Store at 4°C. |
| Fetal Bovine Serum (FBS) | Hyclone | SH3007003 | Store aliquots at -80°C. |
| Paraffin/Petroleum Jelly (3:1 w/w) | Fisher Scientific | Paraffin – P31-500 Petroleum – P66-1 | Combine in conical tube and melt in boiling water. |
| Concentrated Nitric Acid (HNO3) | Fisher Scientific | A509-212 | Store at room temperature. Can be reused several times. Discard if it yellows. |
| 5mM cytosine –B-D-arabinofuranoside hydrochoride (AraC) in NB (1000X) | Sigma-Aldrich | C6645 | Dissolve AraC in NB and sterile filter. Store at -80°C |
*Most reagents that we store at -80°C can be stored at -20°C as well. Storing them at -80°C lengthens their shelf life and results in slightly more consistent cultures. |
|||
References
- Goslin, K., Asmussen, H., Banker, G. Chapter 13. Culturing Nerve Cells. Goslin, K., Banker, G. , The MIT Press. 339-370 (1998).
- Kaech, S., Banker, G.
- Dent, E. W., Callaway, J. L., Szebenyi, G., Baas, P. W., Kalil, K. Reorganization and movement of microtubules in axonal growth cones and developing interstitial branches. J Neurosci. 19, 8894-8908 (1999).
- Dent, E. W., Kalil, K.
- Dent, E. W. Filopodia are required for cortical neurite initiation. Nat Cell Biol. 9, 1347-1359 (2007).
- Hu, X., Viesselmann, C., Nam, S., Merriam, E., Dent, E. W. Activity-dependent dynamic microtubule invasion of dendritic spines. J Neurosci. 28, 13094-13105 (2008).
- Lebrand, C. Critical role of Ena/VASP proteins for filopodia formation in neurons and in function downstream of netrin-1. Neuron. 42, 37-49 (2004).
- Meberg, P. J., Miller, M. W. Chapter 7. Neurons: Methods and Applications for the Cell Biologist. Hollenbeck, P. J., Bamburg, J. R. , Academic Press. Volume 71 112-129 (2003).
- Osumi, N., Inoue, T. Gene transfer into cultured mammalian embryos by electroporation. Methods. 24, 35-42 (2001).
- Zeitelhofer, M. High-efficiency transfection of mammalian neurons via nucleofection. Nat Protoc. 2, 1692-1704 (2007).
