En enkel och tillförlitlig metod för isolering och odling av neurala stamceller från kasserade mänskliga foster kortikal vävnad beskrivs. Kulturer från kända mänskliga neurologiska sjukdomar kan användas för karakterisering av patologiska cellulära och molekylära processer, samt ge en plattform för att bedöma farmakologiska effekt.
Neurala stamceller (NSCs) bor längs den ventrikulära zonen neuroepithelium under utvecklingen av den kortikala plattan. Dessa tidiga stamceller ger slutligen upphov till mellanliggande progenitorer och senare, de olika neuronala och gliacellsmarkörer subtyper som utgör hjärnbarken. Förmågan att skapa och utveckla mänskliga NSCs (sk neurospheres) från kasserade normala fostervävnad ger ett medel att direkt studera de funktionella aspekterna av människans normala NSC utveckling 1-5. Detta angreppssätt kan också riktas mot generering av NSCs från kända neurologiska sjukdomar, vilket ger möjlighet att identifiera sjukdomen processer som förändrar stamfader spridning, migration och differentiering 6-9. Vi har fokuserat på att identifiera patologiska mekanismer i människans Downs syndrom NSCs som kan bidra till den accelererade Alzheimers sjukdom fenotyp 10,11. In vivo eller in vitro-musmodeller kan reproducera samma repertoar av gener finns på människans kromosom 21.
Här använder vi en enkel och tillförlitlig metod för att isolera Downs syndrom NSCs från aborterade mänskliga foster cortex och odla dem i kultur. Den metod som ger specifika aspekter av skörd vävnaden, dissektion med begränsad anatomiska landmärken, cell sortering, plätering och passaging mänskliga NSCs. Vi ger också några grundläggande protokoll för att inducera differentiering av mänskliga NSCs till mer selektiva cell subtyper.
Det finns olika metoder mot kultur frisk vävnad och producera mänskliga cellinjer. Historiskt sett har färsk vävnad skördats och odlade omedelbart att generera olika typer av celler i centrala nervsystemet. Detta tillvägagångssätt är dock klart begränsad av det antal prover som kan erhållas-som i fallet för prover från människa, är oftast ganska liten. Med tanke på den minimala graden av manipulation, färska odlade neurala celler ger den mest tillförlitliga experimentella system genom att begränsa pot…
The authors have nothing to disclose.
Detta arbete stöddes delvis av National Institutes of Health: HD054347 och NS063997-01 till VLS. Detta arbete stöddes också delvis av Empire State Stem Cell fonden genom New York State Department of Health Kontrakt # C024324 till VLS. De åsikter som uttrycks här är enbart de av författaren och återspeglar inte nödvändigtvis de från Empire State Stem Cell styrelsen, New York State Department of Health, eller staten New York. VLS är en Doris Duke Clinical Scientist Developmental Award mottagare. Vi vill också tacka professor Timothy Vartanian för hans gåva av Anti-O1, Anti-O4 antikroppar.
Name of the reagent | Company | Catalogue number | Comments (optional) |
---|---|---|---|
KNOCKOUT DMEM/F12 | Invitrogen | 12660-012 | Dissociation medium |
Stem Pro NSC SFM | Invitrogen | A10509-01 | Culture medium |
Fetal Bovine Serum | Invitrogen | 10091-148 | Frozen medium |
Hanks solution (-Ca2+, -Mg2+) | Invitrogen | 14175-095 | Dissociation medium |
DMSO | Sigma-Aldrich | D2650 | Frozen medium |
EDTA | Sigma-Aldrich | 431788 | Dissociation medium |
Paraformaldehyde | Sigma-Aldrich | 158127 | Fixation solution |
bFGF | R&D | 234-FSE | Differentiation medium |
SHH | R&D | 1845-SH | Differentiation medium |
PDGF-AA | R&D | 221-AA | Differentiation medium |
B27 | Invitrogen | 17504-044 | Differentiation medium |
Mouse Anti-MAP2 | Sigma-Aldrich | M2320 | 1:200 |
Rabbit Anti-DCX | Cell signaling | 4604s | 1:200 |
Rabbit Anti-GFAP | DAKO | Z0334 | 1:200 |
Rabbit Anti-S100B | DAKO | Z0311 | 1:200 |
Rabbit Anti-O1 | gifts of Professor Timothy Vartanian* | 1:50 | |
Rabbit Anti-O4 | Gifts of Professor Timothy Vartanian* | 1:50 | |
40μm cell strainer | BD Falcon | 352340 |
* Timothy Vartanian, MD, PhD, Department of Neurology and Neuroscience, Weill Cornell Medical College, New York, USA