خلايا الموت تنبثق من الأنسجة الطلائية التي تقلص متضافرة من الخلايا المجاورة دون تعطيل وظيفة الحاجز. الوضوح البصري الزرد النامية يوفر نظاما ممتازا لتصور البثق في العيش ظهائر. نحن هنا وصف أساليب للحث على صورة وقذف في البشرة الزرد اليرقات في القرار الخلوية.
استتبابي صيانة الأنسجة الطلائية المستمر يتطلب إزالة الخلايا التالفة من دون تعطيل وظيفة الحاجز. ووصف عملية دراستنا وجدنا أن الخلايا الميتة إرسال إشارات إلى جيرانهم العيش في تشكيل وعقد حلقة من الأكتين والميوسين التي يقذف بها من ورقة الظهارية في حين إغلاق أي ثغرات يمكن أن تكون قد نتجت عن خروجها ، قذف الخلية 1. الوضوح البصري الزرد النامية يوفر نظاما ممتازا لتصور البثق في العيش ظهائر. نحن هنا وصف الأسلوب للحث على صورة وقذف في البشرة الزرد اليرقات. لتصور البثق ، ونحن حقن بروتين فلوري الأحمر المسبار المسمى لأكتين F – الأجنة في مرحلة واحدة خلايا معدلة وراثيا الزرد التعبير عن بروتين الفلورية الخضراء في البشرة ويحفز موت الخلايا المبرمج عن طريق إضافة إلى G418 اليرقات. ثم نستخدم الوقت الفاصل بين التصوير على القرص الغزل مبائر المجهر لمراقبة ديناميات أكتين والسلوكيات الخلايا الظهارية أثناء عملية قذف الخلية أفكارك. هذا الأسلوب يتيح لنا للتحقيق في عملية قذف في ظهائر العيش وسوف توفر وسيلة لدراسة الحالات المرضية الناجمة عن الفشل في القضاء على الخلايا أفكارك.
بروتوكول الموصوفة هنا يوضح طريقة بسيطة ومباشرة لتصور عملية البثق في منديل الظهارية حية. هذا النوع من التجربة تسمح لنا دراسة ديناميات أكتين الدقيقة لا تقدر سابقا في تحليل الأنسجة الثابتة ، وبالتالي يكمل أساليب مناعي مشترك. يمكننا استخدام هذا البروتوكول في تركيبة مع ?…
The authors have nothing to disclose.
نشكر أعضاء روزنبلات المختبر العلمي للمناقشات والاقتراحات والتعليقات. نود أيضا أن نشكر الذين قدموا ماري هالوران يرجى الترميز البلازميد RFP – UtrCH وجرونوالد ديفيد الذي قدم CK : GFP الزرد المعدلة وراثيا. أيضا بفضل جريتشين الملك وموظفي الموارد اسماك الزرد المركزية في جامعة ولاية يوتا لصيانة ممتازة ورعاية الزرد. وأيد هذا العمل من قبل المعاهد الوطنية للصحة ، جائزة NIGMS NIH المدير الجديد المبتكر 1 DP2 OD002056 – 01 إلى JR. كان مدعوما من قبل GTE التدريب NIH السرطان المتعدد التخصصات 5T32 برنامج منح CA03247 – 8.
Name | Type | Company | Catalog Number | Comments |
---|---|---|---|---|
RNeasy Mini Kit | Reagent | Qiagen | 74104 | |
mMessage mMachine SP6 Kit | Reagent | Ambion | AM1340 | |
Crossing Tanks | Tool | Thoren Aquatic Systems | ||
The Pipet Pump | Tool | Bel Art Products | F3789 | |
5 ¾ Pasteur Pipet | Tool | VWR | 14672-608 | |
Microinjection Mold | Tool | Adaptive Science Tools | I-34 | |
100x15mm Culture Plate | Tool | Fisher | 08-757-12 | |
Flamming/Brown Micropipet Puller | Tool | Sutter Instrument Company | Model P97 | |
Borosilicate Glass Capillaries with Filament | Tool | Sutter Instrument Company | B1400-78-10 | OD 1.0mm, ID 0.78mm, 10cm length |
Electrode Storage Jar | Tool | World Precision Instruments | E210 | |
Phenol Red | Reagent | Sigma | P0290 | 0.5% in DPBS |
Pressure-Controlled Microinjector and Micromanipulator | Tool | Harvard Apparatus | PLI-100 | |
35x10mm Culture Dish | Tool | Cellstar | 627-160 | |
G418 (Geneticin) | Reagent | GIBCO | 10131-035 | 50 mg/mL in dH20 |
Dumont #5 Forceps | Tool | Fine Science Tools | 11253-20 | |
12cm Pin Holder | Tool | Fine Science Tools | 26016-12 | |
Insert Pins | Tool | Fine Science Tools | 26007-02 and-03 | |
Glass Bottom Culture Dish with 1.5 coverglass | Tool | MatTek | P35G-1.5-10-C | |
Low Melt Agarose | Reagent | Fisher | BP1360-100 | |
Tricaine | Reagent | Sigma | A-5040 | |
Dissecting Microscope | Microscope | Leica | MZ6 | |
Dissecting Microscope | Microscope | Nikon | SMZ645 | |
Fluorescent Dissecting Microscope | Microscope | Olympus | S2X12 | |
Spinning Disc Confocal Microscope | Microscope | Nikon | Eclipse Ti | Outfitted with a Yokagawa spinning disc head |
CCD Camera | Camera | Andor | DV-885-VP | 1002x1004x8 micron square pixels |