Summary
Este protocolo descreve a derivação de gliais Precursores restritos a partir de medulas espinais fetais e mantido in vitro, quer para transplantação ou para o estudo da linhagem oligodendrocytic.
Abstract
Este é um protocolo para a derivação de gliais restritas precursor (GRP), as células da medula espinal de fetos de rato E13. Estas células são precursores precoces dentro da linhagem de células oligodendrocytic. Recentemente, estas células têm sido estudadas como fonte potencial para terapias de reparação em doenças da substância branca. Leucomalácia periventricular (LPV) é a principal causa de não-genéticos doença da substância branca na infância e afeta até 50% dos prematuros extremos. Os dados sugerem uma maior suscetibilidade do cérebro em desenvolvimento de hipóxia-isquemia, estresse oxidativo e excitotoxicidade, que visa seletivamente substância branca nascente. Gliais precursores restritos (GRP), células progenitoras de oligodendrócitos (OPC) e oligodendrócitos imaturos (preOL) parecem ser os principais intervenientes no desenvolvimento de LPV e são objecto de prosseguimento de estudos. Além disso, estudos anteriores identificaram um subconjunto de tecido do SNC que tem aumentado a susceptibilidade a excitotoxicidade do glutamato comobem como um padrão de desenvolvimento para a suscetibilidade. O nosso laboratório está actualmente a investigar o papel das células progenitoras de oligodendrócitos em células PVL e utilização na fase de desenvolvimento de GRP. Nós utilizamos essas células derivadas de PRFV em vários paradigmas experimentais para testar sua resposta para selecionar tensões consistentes com LPV. GRP células podem ser manipuladas in vitro em OPCs e preOL para experimentos com modelos animais de transplante PVL e modelos in vitro de PVL-como insultos, incluindo hipóxia-isquemia. Ao utilizar células cultivadas in vitro e estudos não seria reduzida variabilidade entre os experimentos o que facilita a interpretação dos dados. Células de cultura também permite o enriquecimento da população GRP enquanto minimiza o impacto de contaminar as células de não-GRP fenótipo.
Protocol
Introdução
Neste protocolo vamos mostrar como extrair, selecionar e placa gliais restritas precursor (GRP), as células da medula espinhal de fetos de rato E13. Estas células são precursores precoces dentro dos linhagens celulares oligodendrocytic e astrocitária e são definidos pela sua expressão de A2B5. No meio de GRP suplementado com FGF-2, os A2B5 GRPs + de começará expressando o início dos anos oligodendrocytic linhagem marcadores PDGFαR e NG2 1,2. Estas células da linhagem de oligodendrócitos passar através de uma série de fases distintas fenotípicas, cada um deles caracterizada por alterações morfológicas, bem como a expressão de marcadores específicos para estádios de desenvolvimento.
Essas células precursoras estão actualmente a ser estudada como uma fonte potencial de células-abordagens terapêuticas baseadas nos distúrbios da matéria branca do sistema nervoso central, incluindo esclerose múltipla, leucodistrofias e leucomalácia periventricular (LPV) 3,4,5,6 6,7,8,9. Estas células precursoras da glia também têm sido utilizados em estudos de outros modelos de substância branca de doença tais como lesão da medula espinal e esclerose lateral amiotrófica 10,11,12,13.
Nosso laboratório desenvolveu um modelo de rato pós-natal precoce hipóxia-isquemia com a qual estamos avaliando a eficácia destes medula espinhal derivadas de células GRP como uma abordagem restaurativa no PVL, a principal causa de paralisia cerebral 14,15,16. Existe também um cérebro de roedores derivado modelo OPC que tem sido amplamente utilizada para estudar a lesão da substância branca uma vez que as células de GRP tem uma tendência para se diferenciarem em a via astrocítica 17. O fenótipo OPC já entrou no caminho linhagem de oligodendrócitos, um fenômeno que parece irreversible. No entanto, estamos interessados em avaliar a resposta de um espectro mais amplo de progenitores oligodendrócitos incluindo GRPs e, possivelmente, até mesmo os NEPS derivados em E10.5. Por este motivo adotamos o modelo derivado da medula espinhal GRP para o nosso trabalho.
Além da utilização de GRPs para substituição de células, a derivação destas células de tipo selvagem e modelos de roedores transgénicos de doenças da substância branca permite um estudo mais aprofundado diferenciação glial em condições normais e de doença em um em configuração vitro. Publicações anteriores mostram evidências de vulnerabilidade seletiva de células precursoras da linhagem oligodendrocytic a vários estressores externos, como a maturação excitotoxicidade do glutamato dependente, estresse oxidativo, e os fatores envolvidos na escolha neuroinflamação 18,19. Nossos estudos têm-se centrado na compreensão dos mecanismos celulares e moleculares por trás do desenvolvimento dessas lesões da substância branca, avaliando a suscetibilidade das células emo espectro linhagem de oligodendrócitos para insultar, bem como analisar supostas abordagens terapêuticas.
Materiais
Todos os procedimentos que envolvem animais em conformidade com a política eo PHS IACUC JHU. Todos os procedimentos devem ser realizados em uma câmara de fluxo laminar a fim de manter condições assépticas. Comumente dissecações são realizadas de uma câmara de fluxo horizontal e in vitro trabalho numa câmara de fluxo vertical. Todos os meios utilizados frio durante dissecações. Os ratos utilizados em nosso estudo são um tipo selvagem CD-1 e uma cepa transgênica GFP em um fundo C57/BL6. Um CD-1 represa mouse normalmente produz 10 fetos + que são suficientes para sementes 1-2 T25 frascos. Normalmente, duas barragens são sacrificados em um tempo e fetais medulas espinhais agrupados e semeadas em 1 frasco T25 por barragem. Uma vez que as células foram derivados podem ser expandidos e caracterizadas in vitro para estudos posteriores.
1. Preparação de Mídia e garrafas
- GRP estoquemeio é utilizado como o meio de dissecção: DMEM / F12 1:1 (Invitrogen) + B27 (50x; Invitrogen) N2 (100X; Invitrogen) Suplementos e albumina de soro bovino (BSA; 0,5% w / v).
- A dissociação média: mesmo como meio de dissecção.
- O meio de cultura: meio GRP estoque + FGF-2 (10-20 ng / ml; Invitrogen) e heparina (1 ug / ml; Sigma).
- PLL / laminina revestidos 75 cm 2 ou 25 cm 2 frascos T75 (ou T25).
- Frascos de cultura de tecidos (75 cm 2, Falcon) foram revestidas com 15-20μg/ml poli-L-lisina (PLL; Sigma) em H2O destilada, incubados a 37 ° C durante 1 hora, em seguida, aspirado. Frascos são lavadas com PBS 1X, em seguida, revestidas com ug 15-20 / laminina ml (Sigma) em PBS a 37 ° C durante 1 h, então aspirado e PBS fresco ou meios adicionado até que as células estão prontas para ser revestido. Após revestimento, frascos nunca deve ser deixada a secar, mas pode ser mantido em PBS ou meio a 4 ° C durante breves períodos antes da utilização.
2. Instrumentos e M Outrosaterial
- Placas de Petri: 4 barragens por: 3 placas de Petri para dissecção (75 mm), um prato de 20 mm para recolher os cabos colhidos da coluna vertebral.
- Tesoura maior (43 mm tesoura operacionais, Roboz) e uma pinça para a abertura do abdome da barragem s.
- Tesoura pequena para dissecar o útero e remover os fetos (15 mm Micro tesoura de dissecção, Roboz).
- Micro tesoura mola Dissecando (6 mm) para dissecar a medula espinhal do feto.
- Dissecando Micro Pinça angulada para ancorar o corpo da barragem e fetal durante a cirurgia e depois a remoção da medula espinhal, uma vez exposta.
- 40 ou 70 células filtro micrômetro para a remoção de detritos de células antes da semeadura.
- 0,05% de tripsina pré-aquecida a 37 ° C.
- 10 mg / ml de ADNase 1 (Sigma), preparado como um stock 100x (1 g / ml).
- Bio perigo-saco para cadáveres de animais.
- 15 e 50 tubos de centrífuga ml para o processamento extraída medulas espinais.
3. Determinar Timed Pregnancy
Barragens rato grávidas ou são ordenadas a partir de fontes comerciais, especificando a entrega no dia embrionário E12 ou E13 do desenvolvimento fetal ou gravidez determinado in-house. Em suma, duas fêmeas são colocadas junto com um macho no final da tarde e saiu durante a noite juntos. No dia seguinte, as fêmeas são observadas para a presença do tampão de muco vaginal localizado. O tampão de muco é apenas uma indicação de que o acasalamento ocorreu tão animais são subsequentemente pesados diariamente para monitorar taxa de aumento de peso. O dia em que o tampão de muco é observada é definido como um dia embrionário (E1).
4. Derivação tecido
- Trabalhar sob uma capela de fluxo horizontal para manter as condições assépticas.
- Pulverizar para baixo do capô e área de trabalho com etanol 70%.
- Instrumentos autoclave ou pulverização liberalmente com etanol 70%.
- Prepare instrumentos, mídia e microscópio para uso.
- Despeje 20 ml de meio de dissecção fria em estéril Petri dish.
- Anestesiar animal com hidrato de cloral (500 mg / kg) administrado intraperitonealmente (IP), seguido por deslocamento cervical ou decapitação.
- Pulverizar a área abdominal da mãe com etanol 70-90% (desinfecção)
- Abra abdômen com tesoura grande e fórceps.
- No CD1 e C57/BL6 cepas: Geralmente de 8 a 14 fetos estarão dentro do útero. O número de fetos é a estirpe dependente.
- Extraia o útero do rato, incluindo os filhotes e coloque em meio dissecção fria e fresca em uma placa de Petri limpa para lavar o sangue e restos de tecido do feto.
- Extraia cada feto do corno uterino e separá-los do saco embrionário e placenta usando as pequenas tesouras. Transfira os fetos extraídos em meio de dissecção fresco numa nova placa de Petri.
- Meio de dissecção deve ser a uma temperatura baixa para reduzir a actividade metabólica e preservar a viabilidade das células derivadas.
- Trabalhe a partir de agora com duas pinças emicro dissecação mola-tesoura.
- Trabalhando sob microscópio de dissecção, corte a pele ao longo da medula espinhal com a tesoura micro cirúrgicos e pele casca de volta para expor a medula espinhal.
- Transecão da medula espinal com a tesoura microcirúrgicos menos cerca de C1 e no início da cauda.
- Retire a medula espinhal com uma pinça sem corte, garantir que todos os ossos e cartilagens são removidos e transferir a 3 ª placa de Petri de dissecar médio.
- Para evitar o crescimento excessivo do tecido meníngea em culturas de células subsequentes tentar remover o máximo das meninges possível da medula espinhal. Devido às nascentes salientes nervos periféricos isto é mais difícil do que a remoção de tecido de cérebro meníngea extraído.
- Uma vez meninges foram removidos, transfira medulas espinhais de 20 milímetros prato Petri
- Limpar cuidadosamente por pulverização a área com etanol 70-90%.
- Os passos seguintes para a dissociação deve ser feito rapidamente para manteruma alta viabilidade do tecido da medula espinal derivada.
5. Estabelecimento Cultura
- Tripsina deve ser pré-aquecido durante pelo menos 30 min, em um 37 ° CH 2 O banho-maria. Uma alíquota apropriado deve ser removido a partir do stock para reduzir a exposição do material a flutuações de temperatura.
- Transferir colhidos os cordões da coluna vertebral para um tubo de centrífuga de 50 ml contendo 10 ml de pré-aquecida de tripsina (0,05%; Qualidade Biologicals) e 100 uL de DNAse (10 mg / ml) e tritura-se brevemente.
- Incubar em 37 ° CH 2 O banho-maria durante 10 minutos.
- Tritura-se e incubar durante mais 10 min.
- Adicionar 5 ml de GRP médio (definido acima) e centrifugação durante 5 min a 1000 RPM.
- Aspirar o sobrenadante e ressuspender pelete com 10 médio GRP ml e adicionar DNAse-1 (10 mg / ml; Sigma).
- Incubar em 37 ° CH 2 O banho-maria durante 10 minutos.
- Centrifugar 5 min a 1000 RPM e aspirar o sobrenadante.
- Ressuspender o pellet com fresh médio GRP detritos, em seguida, com um filtro de 40-70 coador de células mM.
- Placa no PLL / laminina 25 cm revestido 2 frascos (T25) e incubar a 37 ° C, humidade de 95% e 5% de CO 2.
- 100 mídias% em mudar do dia seguinte.
- Neste ponto, GRPs ter ligado e começou a estender processos.
6. Immunopanning da População GRP
- Placa de tecido da medula espinhal em PLL / laminina frascos revestidos até balão é de 85-90% confluentes ou cerca de uma semana.
- Células de colheita por raspagem balão com um polícia de borracha ou com tripsina a 0,05%, tritura-se cuidadosamente, mas com cuidado, centrifugar a 1000 rpm durante 5 min e completamente pelete ressuspender com 3 ml médio GRP.
- Transferir 1 ml de cada para 3 T25 frascos ou 3 ml de uma T75 balão adicionar volumes adequados de meio para cobrir completamente as células e permitir frascos para atingir confluência de 80-90%.
- Alterar mídia todos os dias, mais cedo se esgota rapidamente médio.
- Brasão bacteriológica Pepratos tri (75 mm) durante a noite a 4 ° C com um anticorpo IgM anti-rato (Southern Biotech), 10 ug / ml em PBS.
- Aspirar o tampão em excesso e lavar os pratos de Petri 3x com PBS.
- Adicionar A2B5 anticorpo (Millipore), a uma concentração de 5 ug / ml diluído em PBS e incubar durante 1 hora à temperatura ambiente (RT).
- Lavar as placas de novo 3x com PBS, em seguida, adicionar 8 ml de meio de GRP para evitar a secagem da placa.
- Transferir 5 ml de meio de GRP a partir de placas de Petri e células GRP colheita por raspagem frascos com um polícia de borracha para separar todas as células
- Triturar suspensão de células rapidamente para quebrar pedaços e transferir suspensão de células 5ml aos A2B5 revestidos pratos de Petri bacteriológicos.
- Incubar 1 hora à temperatura ambiente sem agitação.
- Após 1 h de mídia aspirado e as placas de lavagem 8x com PBS.
- Raspe as células com um policial de borracha em 2 ml GRP mídia, em seguida, transferir para PLL / laminina placas revestidas ou frascos com volume adequado de meio GRP.
7. Congelamento e armazenamento de células derivadas
- As células são colhidas a partir de um 85-90% T25 ou T75 balão confluente com 2 ml de tripsina a 0,05%.
- Tripsina é diluído e inactivada com 8ml médio estoque GRP e centrifugadas a 1000 rpm durante 5 min.
- Pelotas de T25 frascos são ressuspensas em 1 ml de GRP meio de congelação, (GRP médio estoque suplementado com 10% (v / v) de DMSO e, opcionalmente, de FBS 20%). Os peletes maiores a partir de frascos T75 são diluídas duas vezes.
- As suspensões de células de 1,5 - 3 x 10 10,11,12,13 células são transferidas para frascos criogénicas (Nalgene) e armazenados durante a noite num recipiente criogénico (Nalgene) contendo isopropanol a -80 ° C a congelar lentamente durante a noite.
- Na sequência durante a noite células de congelamento são transferidos para caixas de congeladores e armazenado 6 meses a 1 ano à temperatura de -80 ° C ou a longo prazo em N (l). As células descongeladas são tipicamente de 60-80% viável dependendo em grande parte a qualidade do revestimento PLL / laminina. 8. Os resultados representativos
CO 2 não é usado para anestesiar o animal por causa do efeito possível a jusante na viabilidade dos fetos e, finalmente, as células derivadas. Além disso, será muito difícil de remover totalmente as meninges da medula espinhal durante o procedimento de derivação, mas a combinação de GRP médio e immunopanning irá eliminar estas células de crescimento rápido. Do mesmo modo, toda a medula espinhal é colhida, apesar de uma maior concentração ventral da população GRP, devido à sua origem na medula espinal ventral e migrar dorsalmente 20. No entanto, o meio de GRP selecciona para o fenótipo GRP e de que a população é maximizada por A2B5 immunopanning. Após o plaqueamento tecidos medulares, as culturas in vitro são incubadas durante duas passagens ou cerca de uma semana. Após 2 dias em cultura, as células de diferentes morfologias pode ser observado nos frascos de cultura de tecidos que indicam o heteroátomogeneidade da população, mas o meio de GRP selecciona para o fenótipo GRP. Essas células são uma combinação de A2B5 + de GRP, E-NCAM + de precursores neuronais restritas (PNR) e nestina + e A2B5-neuroepiteliais células e possivelmente fibronectina + meníngeos células. Além disso, fenótipos mais maduras podem estar presentes marcadores que expressam incluindo doublecortin e TUJ1 para a linhagem neuronal, GFAP para astrócitos e PDGFaR e GalC para a linhagem oligo A fim de maximizar uma altamente GRP população enriquecida a partir da piscina de partida heterogénea (Figura 1A), as células podem ser duas vezes immunopanned para seleccionar e eliminar os E-NCAM + de células seguida por selecção para o A2B5 + população GRP uma vez densidade celular aumentou para cerca de 85-90% de confluência em frascos T75. Estas células GRP manter a sua capacidade de se tornar astrócitos apesar de estar em um meio que selecciona para o fenótipo A2B5 oligodendrócito assim immunopanning subsequente pode ser necessária para manter uma população altamente enriquecida GRP. Immunopanning Generrendimento aliado até 95% A2B5 + de células, mas para o rendimento de ainda maior A2B5 conjugados esferas magnéticas (Miltenyi Biotec, Inc.) pode ser usado para fornecer um rendimento de até 97%. Vigilância nas culturas de manutenção GRP, tais como mudanças regulares meios irá minimizar a proliferação de tipos de células não-GRP. Mesmo na ausência de BMP-4 astrócitos pode ainda ser encontrado e empobrecido meios de comunicação em particular, parece induzir a diferenciação para um fenótipo astrocítica. Embora o suplemento B27 contém tri-iodotironina hormonal (T3), não houve nenhuma tendência observada para se diferenciarem em oligodendrócitos na população GRP, apenas quando os níveis mais elevados de T3 são adicionados ao meio de não ocorrer este fenómeno. No entanto, um T3 B27 suplemento livre pode ser substituído se existe uma preocupação para a contaminação por oligodendrócitos maduros (Figura 1B). Estas células GRP podem ser prontamente identificados pela sua morfologia de soma pequena com 2 ou 3 processos curtos, mas para o rastreio de outros tipos de células que podem estar presentes, immunocytochemistry pode ser realizada para as anteriormente denominadas marcadores comuns do tipo de desenvolvimento e de células específicos. Há será normalmente uma pequena população persistente de A2B5 de células que são neuroepitelial (NEP) e capaz de se tornar, quer GRP ou NRP. Felizmente, as células mais longos são mantidas no meio de GRP o mais provável que o meio irá seleccionar para o fenótipo GRP.
Figura 1. A) Plated células da medula espinal de morfologia heterogénea são observados após 2 dias em cultura. B) Immunopanning maximiza uma população altamente GRP enriquecido a partir da piscina de partida heterogénea.
Discussion
Disclosures
Este estudo foi financiado pelo Instituto Nacional de Saúde [NICHD P30HD024061 (AWP), NINDS K08NS063956 (AF), e R01NS028208 (MVJ)] e da Fundação de Neurologia Infantil. O conteúdo deste relatório são da exclusiva responsabilidade dos autores e não representam necessariamente as opiniões oficiais do Instituto Nacional de Saúde, DHHS. Os autores não têm conflitos de interesse relevante para este estudo.
Acknowledgments
Queremos agradecer ao Dr. Devin Gary por sua introspecção e feedback sobre o uso de células GRP.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| DMEM/ F12 1:1 | Invitrogen | 11320033 | |
| B27 | Invitrogen | 17504044 | |
| N2 | Invitrogen | 17502048 | |
| rH-FGF-basic | Invitrogen | PHG0026 | |
| Trypsin (0.05%) EDTA | Quality Biological, Inc. | 118-087-721 | |
| POLY-L-LYSINE HBr | Sigma-Aldrich | P1274-25MG | |
| Laminin | Sigma-Aldrich | L2020-1MG | |
| Dnase 1 | Sigma-Aldrich | DN25 |
References
- Kalyani, A., Hobson, K., Rao, M. S. Neuroepithelial stem cells from the embryonic spinal cord: isolation, characterization, and clonal analysis. Developmental biology. 186, 202-202 (1997).
- Rao, M. S., Mayer-Proschel, M. Glial-restricted precursors are derived from multipotent neuroepithelial stem cells. Developmental biology. 188, 48-48 (1997).
- Goldman, S. A., Lang, J., Roy, N. Progenitor cell-based myelination as a model for cell-based therapy of the central nervous system. Ernst Schering Research Foundation workshop. (60), 195-195 (2006).
- Goldman, S. A., Schanz, S., Windrem, M. S. Stem cell-based strategies for treating pediatric disorders of myelin. Human molecular genetics. 17, 76-76 (2008).
- Goldman, S. A., Windrem, M. S. Cell replacement therapy in neurological disease. Philosophical transactions of the Royal Society of London. 361, 1463-1463 (2006).
- Walczak, P., All, A. H., Rumpal, N. Human glial-restricted progenitors survive, proliferate, and preserve electrophysiological function in rats with focal inflammatory spinal cord demyelination. Glia. 59, 499-499 (2011).
- Liu, S., Qu, Y., Stewart, T. J. Embryonic stem cells differentiate into oligodendrocytes and myelinate in culture and after spinal cord transplantation. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 97, 6126-6126 (2000).
- Windrem, M. S., Schanz, S. J., Guo, M. Neonatal chimerization with human glial progenitor cells can both remyelinate and rescue the otherwise lethally hypomyelinated shiverer mouse. Cell stem cell. 2, 553-553 (2008).
- Groves, A. K., Barnett, S. C., Franklin, R. J. Repair of demyelinated lesions by transplantation of purified O-2A progenitor cells. Nature. 362, 453-453 (1993).
- Back, S. A., Han, B. H., Luo, N. L. Selective vulnerability of late oligodendrocyte progenitors to hypoxia-ischemia. J. Neurosci. 22, 455-45 (2002).
- Johnston, M. V., Trescher, W. H., Ishida, A. Neurobiology of hypoxic-ischemic injury in the developing brain. Pediatric research. 49, 735-735 (2001).
- Lepore, A. C., Han, S. S., Tyler-Polsz, C. J. Differential fate of multipotent and lineage-restricted neural precursors following transplantation into the adult CNS. Neuron glia biology. 1, 113-113 (2004).
- Rothstein, J. D., Dykes-Hoberg, M., Pardo, C. A. Knockout of glutamate transporters reveals a major role for astroglial transport in excitotoxicity and clearance of glutamate. Neuron. 16, 675-675 (1996).
- Johnston, M. V., Ferriero, D. M., Vannucci, S. J. Models of cerebral palsy: which ones are best. Journal of child neurology. 20, 984-98 (2005).
- Comi, A. M., Johnston, M. V., Wilson, M. A. Strain variability, injury distribution, and seizure onset in a mouse model of stroke in the immature brain. Developmental neuroscience. 27, 127-127 (2005).
- Comi, A. M., Weisz, C. J., Highet, B. H. A new model of stroke and ischemic seizures in the immature mouse. Pediatric neurology. 31, 254-254 (2004).
- Dietrich, J., Noble, M., Mayer-Proschel, M. Characterization of A2B5+ glial precursor cells from cryopreserved human fetal brain progenitor cells. Glia. 40, (2002).
- Alberdi, E., Sanchez-Gomez, M. V., Marino, A. Ca(2+) influx through AMPA or kainate receptors alone is sufficient to initiate excitotoxicity in cultured oligodendrocytes. Neurobiology of disease. 9, 234-234 (2002).
- Volpe, J. J. Brain injury in premature infants: a complex amalgam of destructive and developmental disturbances. Lancet neurology. 8, 110-110 (2009).
- Warf, B. C., Fok-Seang, J., Miller, R. H. Evidence for the ventral origin of oligodendrocyte precursors in the rat spinal cord. J. Neurosci. 11, 2477-2477 (1991).
- Deng, W., Poretz, R. D. Oligodendroglia in developmental neurotoxicity. Neurotoxicology. 24, 161-161 (2003).
- Deng, W., Rosenberg, P. A., Volpe, J. J. Calcium-permeable AMPA/kainate receptors mediate toxicity and preconditioning by oxygen-glucose deprivation in oligodendrocyte precursors. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 100, 6801-6801 (2003).
- Karadottir, R., Cavelier, P., Bergersen, L. H. NMDA receptors are expressed in oligodendrocytes and activated in ischaemia. Nature. 438, 1162-1162 (2005).
- Pleasure, D., Soulika, A., Singh, S. K. Inflammation in white matter: clinical and pathophysiological aspects. Mental retardation and developmental disabilities research reviews. 12, 141-141 (2006).
- Gregori, N., Proschel, C., Noble, M. The tripotential glial-restricted precursor (GRP) cell and glial development in the spinal cord: generation of bipotential oligodendrocyte-type-2 astrocyte progenitor cells and dorsal-ventral differences in GRP cell function. J. Neurosci. 22, 248-248 (2002).
- Rao, M. S., Noble, M., Mayer-Proschel, M. A tripotential glial precursor cell is present in the developing spinal cord. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 95, 3996-3996 (1998).
- Raff, M. C., Miller, R. H., Noble, M. A glial progenitor cell that develops in vitro into an astrocyte or an oligodendrocyte depending on culture medium. Nature. 303, 390-390 (1983).
- Strathmann, F. G., Wang, X., Mayer-Proschel, M. Identification of two novel glial-restricted cell populations in the embryonic telencephalon arising from unique origins. BMC developmental biology. 7, 33-33 (2007).
- Nunes, M. C., Roy, N. S., Keyoung, H. M. Identification and isolation of multipotential neural progenitor cells from the subcortical white matter of the adult human brain. Nature. 9, 439-439 (2003).
- Roy, N. S., Wang, S., Harrison-Restelli, C. Identification, isolation, and promoter-defined separation of mitotic oligodendrocyte progenitor cells from the adult human subcortical white matter. J. Neurosci. 19, 9986-9986 (1999).
- Chen, Y., Balasubramaniyan, V., Peng, J. Isolation and culture of rat and mouse oligodendrocyte precursor cells. Nature protocols. 2, 1044-1044 (2007).
