Summary
We hebben gewijzigd de conventionele gist twee-hybride screening, een effectief middel bij het identificeren van genetische eiwit interactie. Deze wijziging verkort aanzienlijk het proces, vermindert de werkdruk, en het belangrijkst, vermindert het aantal false positives. Daarnaast is deze aanpak is reproduceerbaar en betrouwbaar.
Abstract
Progranuline (PGRN), ook wel bekend als granulin epithelin precursor (GEP), is een 593-amino-acid autocriene groeifactor. PGRN is bekend dat het een cruciale rol te spelen in een verscheidenheid van fysiologische en ziekte-processen, waaronder vroege embryogenese, wondgenezing 1, ontsteking 2, 3 en 4 afweer. PGRN functioneert ook als een neurotrofe factor 5, en mutaties in het gen resulteert in PGRN gedeeltelijk verlies van de PGRN eiwit veroorzaken frontotemporale dementie 6, 7. Onze recente studies hebben geleid tot de isolatie van PGRN als een belangrijke regulator van het kraakbeen ontwikkeling en degradatie 8-11. Hoewel PGRN, ontdekte bijna twee decennia geleden, speelt cruciale rol in verschillende fysiologische en pathologische omstandigheden, inspanningen om de acties van PGRN te benutten en te begrijpen betrokken mechanismen zijn aanzienlijk gehinderd door ons onvermogen om de binding receptor (s) te identificeren. Om dit probleem op, ontwikkelden we een modigespecificeerd gist twee-hybride (MY2H) aanpak, gebaseerd op de meest gebruikte GAL4 op basis van twee-hybride systeem. Vergeleken met de conventionele gist two-hybrid screen, MY2H verkort drastisch het scherm en vermindert het aantal vals positieve klonen. Daarnaast is deze aanpak is reproduceerbaar en betrouwbaar, en we hebben met succes toegepast dit systeem in het isoleren van de bindende eiwitten van verschillende aas, waaronder ion-kanaal 12, extracellulaire matrix eiwit 10, 13, en de groei factor 14. In dit artikel beschrijven we deze MY2H experimentele procedure in detail met behulp van PGRN als een voorbeeld dat tot de identificatie van TNFR2 geleid als de eerste bekende PGRN-geassocieerde receptor 14, 15.
Protocol
1. Achtergrond informatie
De gist twee-hybride systeem is een krachtige genetische techniek die wordt gebruikt om eiwit-eiwit interacties 16, 17 te ontdekken. Verschillende soorten van twee-hybride systemen, zoals LexA-gebaseerde systemen, het Sos Recruitment System en bacterie-of zoogdiercellen op basis van twee-hybriden, zijn commerciële beschikbaar zijn, dit artikel richt zich specifiek op de wijzigingen van de meest gebruikte GAL4 op basis van gist twee-hybride systeem. In het kort, is de methode gebaseerd op de eigenschappen van de gist GAL4 eiwit dat bestaat uit scheidbare domeinen die verantwoordelijk is voor DNA-binding en transcriptionele activering. Het aas eiwit wordt uitgedrukt als een fusie met de GAL4 DNA-bindende domein (DNA-BD), terwijl de prooi eiwitten worden uitgedrukt als fusies aan het GAL4 activatie domein (AD). Interactie tussen aas en prooi fusie-eiwitten leidt tot de transcriptionele activeringen van GAL4-bindende sites die reporter genen die geïntegreerd zijn in de gist genome. Het principe van Y2H wordt geïllustreerd in Fig. 1 en de experimentele procedure is samengevat in Fig. 2.
2. Benodigde materialen en oplossingen
- YPD groeimedium (een mix van pepton, gistextract, en dextrose in een optimale verhouding voor het kweken van de meeste stammen Saccharomyces cerevisiae).
- Minimale SD Bases (Minimal synthetische gedefinieerd (SD) basen zijn onder meer een yeast nitrogen base, ammoniumsulfaat, en een koolstofbron, dextrose. Dropout (DO) supplementen kunnen worden toegevoegd aan de Minimal SD-Base een synthetisch, gedefinieerd medium zonder de opgegeven te maken nutriënten).
- Leu /-Trp Dropout (DO) aan te vullen (met daarin alle essentiële aminozuren, behalve voor leucine en tryptofaan)
- -His/-Leu/-Trp/-Ura Dropout (DO) Supplement (bevat alle essentiële aminozuren, behalve voor leucine, tryptofaan, histidine en uracil)
- Luria-bouillon (LB) (Trypton 10 g / L, gistextract 5 g / L, NaCl 5 g / L)
- X-Gal (5-broom-4-chloor-3-indolyl-β-D-galactopyranoside) oplossing: bereid als een 20 mg / ml voorraad oplossing in N, N-dimethylformamide
- 10X TE (100 mM Tris-HCl (pH 7,5), 10 mM EDTA, geautoclaveerd)
- Gesoniceerde Haring of zalmsperma DNA, gekookt (10 mg / ml)
- 10X LiAc (1 M lithium-acetaat, geautoclaveerd)
- 50% PEG-3350-oplossing, filter-gesteriliseerd
- 3-Amino-1, 2, 4-triazool (3AT)
- Kanamycine
- Ampicilline
- ElectroMax DH5a cellen
- Z buffer: 16,1 g Na2HPO4 7H2O (of 8,52 g watervrij), 5,5 g NaH2PO4 H2O (of 4,8 ganhydrous), 0,75 g KCl, 0,246 g MgSO4 7H2O (of 0,12 g watervrij), opgelost in 1 L geautoclaveerd, gedestilleerd water en aangepast aan pH 7,0.
3. Bait generatie (pDBLeu-PGRN)
Een cDNA-fragment dat codeert voor PGRN ontbreekt het signaal peptide (aa21-588) werd directioneel gekloneerd in de Sal I-Not I sites van de pDBLeu vector (de ProQuest twee-hybride systeem, Invitrogen),het houden van dezelfde vertaling te lezen frame als de GAL4 DNA-bindende domein aan pDBLeu-PGRN te genereren.
- Versterken het cDNA-fragment van PGRN hierboven beschreven door middel van PCR met behulp van oligonucleotide primers ontworpen om restrictieplaatsen (Sal ik op de 5'-uiteinde en niet ik aan het 3 'uiteinde) om in-frame fusie toe bevatten.
- Gel zuiveren het PCR-product, te verteren met een restrictie-endonucleasen Sal I en Not I.
Bereid de DB vector pDBLeu door dubbele restrictievertering met dezelfde restrictie-endonucleasen. - Afbinden de beperking PGRN fragment in de gelineariseerde pDBLeu vector en zetten in DH5a met de selectie voor LB + kanamycine bij 25 ug / ml.
- Controleer of de correctie van het construct door DNA-sequencing.
4. Kleinschalige transformatie van aas plasmide
- Inoculeer 5 ml van YPD met een kolonie van Mav203 (Invitrogen) toe, schud 's nachts bij 30 ° C.
- Verdun de nacht cultuur op in 50 ml YPD. Grow een toe te voegennele 2-4 uur.
- Pellet de cellen bij 3000 rpm gedurende 5 min bij RT. Resuspendeer de pellet in 40 ml van geautoclaveerd, gedestilleerd water.
- Re-pellet de cellen. Resuspendeer in 2 ml oplossing I, incubeer bij RT 10 minuten.
Oplossing I: 0,5 ml 10xLiAc, 0,5 ml 10xTE, 4 ml H 2 O - Doseer het DNA van buizen: 2-3 pi pDBLeu-PGRN (0.25μg/μl) en 10 ul van gedenatureerd, geschoren zalmsperma DNA (10μg/μl). Voeg 100μl gistcellen, goed mengen.
- Voeg 700μl oplossing II, meng goed. Incubeer bij 30 ° C gedurende 30 minuten. Oplossing II: 0,2 ml 10xLiAc, 0,2 ml 10xTE, 1,6 ml 50% PEG3350.
- Heat shock bij 42 ° C gedurende 15 minuten.
- Pellet gedurende 2 minuten. Verwijder het supernatant. Resuspendeer de pellet in 200 ul geautoclaveerd, gedestilleerd water.
- Het bord van de ophanging op SD-Leu platen met seriële verdunningen. Incubeer de plaat bij 30 ° C gedurende 2-3 dagen.
5. Bait validatie
Voordat u jast two-hybrid screen, test pDBLeu-PGRN voor zelfwerkzaamheid en bepalen de basale expressie niveaus van de HIS3 reportergen. Deze test bepaalt of aas transcriptie te activeren, en of de zelf-activatie kan worden geneutraliseerd door inhibitoren. 3-Amino-1, 2, 4-triazool (3-AT) is een competitieve remmer van de HIS3-gen product en kan gebruikt worden om het minimumniveau van HIS3 expressie die nodig zijn voor groei op de histidine-deficiënte media titreren.
- Transformeer de pDBLeu-PGRN in gist Mav203 stam, het bord van de transformatie op SD-Leu platen, en incubeer 48-72 uur bij 30 ° C.
- Patch kolonies van elke transformatie met behulp van geautoclaveerd tandenstokers op SD-Leu-Zijn platen met 3-AT bij concentraties van 10 mm, 25 mm, 50 mm, 75 mm, en 100 mm. 3-AT is een competitieve remmer van het enzym HIS3 en enige aas dat zelf-activatie vertonen in staat zal zijn om te groeien in de aanwezigheid van de 3-AT.
- Aas stammen die groeien op platen containing 100 mm 3-AT zijn niet geschikt voor gebruik in de twee-hybride scherm. Voor aas dat gebruikt kan worden, gebruik maken van de laagste drie-AT concentratie dat de celgroei remt. In veel gevallen is 25 mM 3-AT wordt gebruikt voor de screening.
6. cDNA-bibliotheek screening
De pDBLeu-PGRN plasmide wordt geïntroduceerd in MaV203 met behulp van een kleinschalig transformatie zoals hierboven beschreven. Het introduceren van pPC86-bibliotheek (Invitrogen) in MaV203 (pDBLeu-PGRN), de hieronder beschreven procedure meestal geeft ~ 4 x 10 4 kolonies met 0,5 ug van plasmide-DNA-bibliotheek. Daarom zal 2,5 x 10 6 gist-transformanten nodig ~ 30,0 microgram pPC86-cDNA bibliotheek plasmide DNA, 25 transformaties, en vijftig 10-cm platen (SD-Leu-Trp-His-Ura +3 AT).
- Bereid het juiste aantal van 10-cm SD-Leu-Trp-His-Ura +3 AT platen (50 voor de procedure hieronder). Ook voorbereiden op ten minste vier 10-cm SD-Leu-Trp platen voor het schatten van het aantal transformanten.
- Transformeer de bibliotheek inde MaV203 met pDBLeu-PGRN volgens de hieronder beschreven procedure.
- Te schorten verschillende geïsoleerde kolonies van MaV203 (pDBLeu-PGRN) in ~ 100μl geautoclaveerd, gedestilleerd water en verdeel ze op een 10-cm SD-Leu plaat. Herhaal de procedure voor een tweede SD-Leu plaat. Incubeer beide platen voor 18-24 uur bij 30 ° C.
- Schraap en volledig de cellen te schorten in 10 ml autoclaaf, gedestilleerd water. Voeg een voldoende hoeveelheid van de celsuspensie tot 500 ml vloeistof YPD medium in een kolf een OD 600 van ~ 0,1 te geven.
- Controleer of de OD is ~ 0.1 na de inenting.
- Schudden bij 30 ° C totdat de OD 600 bereikt ~ 0.4.
- Bereid vers:
- 110 ml 1X TE / LiAc door het combineren van 11 ml 10x TE, 11 ml 10x LiAc, en 88 ml geautoclaveerd water.
- 16 ml PEG / LiAc door het combineren van 1,6 ml 10X TE, 1,6 ml 10x LiAc, en 12,8 ml 50% PEG-3350.
- Pellet de cellen bij 3000g gedurende 5 minuten bij kamertemperatuur.
- Gooi tHij supernatants en voorzichtig resuspendeer de pellet door en neer te pipetteren in 100 ml autoclaaf, gedestilleerd water op kamertemperatuur.
- Centrifugeer bij 3000 g gedurende 5 minuten bij kamertemperatuur.
- Verwijder het supernatant van de cellen en gecentrifugeerd resuspendeer de cel pellet in 50 ml 1X TE / LiAc oplossing.
- Centrifugeer bij 3000 g gedurende 5 minuten bij kamertemperatuur.
- Verwijder de supernatants en resuspendeer de pellet in een uiteindelijk volume van 2,5 ml 1X TE / LiAc oplossing.
- Uit te voeren 25 transformaties. Combineer 2,5 ml cellen, 125 ul (10μg/μl) gedenatureerd, geschoren zalmsperma DNA, en 30 ug cDNA-bibliotheek. Meng voorzichtig door en neer te pipetteren. Voeg 15 ml PEG / LiAc-oplossing toe en meng voorzichtig. Aliquot in 25 geautoclaveerd 1,5 ml microcentrifugebuizen van 700 ui per stuk.
- Incubeer gedurende 30 minuten in een 30 ° C waterbad.
- Heat shock gedurende 15 minuten in een 42 ° C waterbad.
- Centrifugeer bij 6.000 g gedurende 1 minuut bij kamertemperatuur. Verwijder voorzichtig de supernatant. Voorzichtig hersuspenderen elke pellet in 400 ul geautoclaveerd, gedestilleerd water door en neer te pipetteren.
- Het bord van de 200 ul transformatie mengsel van elke transformatie naar een 10-cm SD-Leu-Trp-His-Ura +3 AT (3AT concentratie: 25 mm) platen met behulp van een spread bar, dus 25 geautoclaveerd 1,5 ml microcentrifugebuizen kunnen 50 platen te maken (SD-Leu-Trp-His-Ura +3 AT).
- Incubeer de platen gedurende 5-10 dagen bij 30 ° C.
- Worden uitgeplaat op SD-Leu-Trp plaat, om de transformatie-efficiëntie van de reactie, seriële verdunningen van een reactie (1:400 en 1:4000 01:40) te schatten. Na incubatie gedurende 3 dagen bij 30 ° C, het aantal kolonies wordt geteld en het totaal aantal berekende transformanten.
7. X-gal-test
- Overdracht kolonies te YPD plaat; incubeer bij 30 ° C gedurende de nacht.
- Plaats afgeronde Nitrocellulose membraan op de YPD plaat, zorg ervoor dat er geen luchtbellen tussen het membraan en de YPD plaat. Na 1-2 min, make ervoor dat alle kolonies worden overgebracht naar membranen (nitrocellulose papier).
- Plaats het membraan kolonie kant naar boven in de boot gemaakt van aluminiumfolie papier.
- Leg het membraan in vloeibare stikstof, wacht twintig seconden, en dompel in vloeibare stikstof voor een paar minuten.
- Neem membraan te ontdooien.
- Ondertussen mix van de volgende reagens:
1,5 ml Z buffer
20μl X-gal (20 mg / ml) - Drop Z buffer / X-gal in een petrischaaltje, plaats Whatman papier op de top van dat.
- Plaats voorzichtig nitrocellulose papier op de top van Whatman papier.
- Incubeer bij 37 ° tot de blauwe kolonies verschijnen.
8. Retransformation assay
Prey fusie-eiwitten (AD-Y) geïsoleerd uit de bibliotheek van screening moet behouden de interactie met aas fusie-eiwit (DB-X) om het rapport genen induceren, en de retransformation van prooi klonen en aas construct in gist kan verder uit te bannen false positives en faciliteren toe te voegennele analyse.
- Plasmide DNA te isoleren uit giststammen mogelijk met interagerende proteïnen.
- Transformeren DNA in E. coli DH5a-cellen, het bord van de transformaties op LB +100 ug / ml ampicilline platen om selectief te isoleren van de pPC86-cDNA bibliotheek, en 's nachts bij 37 ° C. incubeer
- Kies een aantal kolonies van de plaat te zetten in LB +100 ug / ml ampicilline bouillon.
- Bereid Miniprep DNA en onderzoeken door dubbele restrictie-analyse met Sal I en Not I.
- Co-transformatie de prooi plasmide en aas plasmide in MaV203, het bord van de transformatie mengsels op SC-Leu-Trp platen, en incubeer gedurende 2-3 dagen bij 30 ° C.
- Kies drie verschillende kolonies van de SC-Leu-Trp plaat, uitvoeren van X-gal Assay.
9. Sequencing en bioinformatica-analyse
Volgorde het plasmide DNA dat werd geïsoleerd uit waarschijnlijk echte positieve klonen, vergelijk deze sequenties met die in de GenBank het gebruik van de BLAST-programma, en identificeer die twee-hybride klonen die corresponderen met bekende genen. Sequencing gegevens bleek dat twee van de 12 positieven hierboven verkregen werden celoppervlak TNFR2 (TNFRSF1B/CD120b; toetreding # NM_130426). Daarnaast werd de interactie tussen de PGRN en TNFR geverifieerd met behulp van diverse eiwit-eiwit interacties assays, zoals in vitro vaste-fase bindingstest, Co-immunoprecipitatie, Surface Plasmon Resonance-analyse, en Flow cytometrie assay 14.
10. Representatieve resultaten
Het stroomschema van de screening is geschetst in Fig. 3. Typisch 50-100 positieve kloon kandidaten zijn te verkrijgen op deze stap. We in eerste instantie 54 positieve kloon kandidaten geïsoleerd onder de 2,5 miljoen transformanten gescreend met de PGRN aas. Positieve kloon kandidaten werden vervolgens gecontroleerd door het uitvoeren van X-gal-test. Typisch, zijn ongeveer 50% vals positieve klonen verwijderd via X-gal-test. We kregen 23 een positieve kloon candid Ates bij deze stap voor de PGRN aas (afb. 4). Retransformation van de prooi klonen en aas te bouwen in gist verder uit te bannen false positives en klonen die nog steeds het activeren van de reporter genen waarschijnlijk de ware positieven te vertegenwoordigen. Typisch, zal ongeveer 50% positieve kloon kandidaten worden verwijderd. We hebben eindelijk geïsoleerd 12 positieve klonen die interageren met PGRN in gist.
Figuur 1. Principe van de gist twee-hybride systeem
Figuur 2. Pipeline van het identificeren van eiwit binding partners met behulp van gist twee-hybride systeem
Figuur 3. Stroomdiagram van de screening gist twee-hybride bibliotheek.rge.jpg "target =" _blank "> Klik hier om een full-sized versie van deze foto te bekijken.
Figuur 4. Beta-galactosidase test van positieve kloon kandidaten. A, Positieve klonen verkregen uit de bibliotheek van het scherm werden overgebracht naar YPD-plaat en geïncubeerd bij 30 ° C gedurende de nacht, B, Alle kolonies op YPD plaat werden overgebracht naar nitrocellulose membranen en beta-galactosidase test uitgevoerd.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Gist twee-hybride screening heeft zich bewezen als een effectief middel bij het identificeren van eiwit interacties 16, 17 worden. In vergelijking met andere benaderingen voor het identificeren van eiwit-bindende partners, zoals biochemische co-zuivering en eiwit chips, gist twee-hybride systeem is een gevoelige genetische benadering die kan worden gebruikt voor het screenen van zeer grote aantallen van de coderende sequenties in een relatief eenvoudig experiment, in Daarnaast detecteert de in vivo interactie en hoeft niet ingewikkeld eiwitzuivering. Natuurlijk gist twee-hybride systeem heeft beperkingen, bijvoorbeeld, de afwezigheid van de vereiste post-translationele modificaties, de onvoldoende vouwen en / of stabiliteit van een fusie-eiwit, en de gewijzigde subcellulaire locatie (eiwitten worden gebracht naar de kern en dit kan niet de echte fysiologische toestand). Bovendien kunnen de eiwitten die onechte activering van reportergenen, bijvoorbeeld zelf activatoren, vertonen niet direct worden gebruikt als aas voor het screenen van de prooi cDNA bibliotheken. Om dit nadeel te overwinnen, worden de individuele functionele domeinen in plaats van intacte eiwitten, meestal gebruikt als aas gevolgd door de validaties van de interacties met behulp van diverse benaderingen met intacte eiwitten. Zo hebben we met succes geïsoleerd ADAMTS-7 metalloproteïnase en groeifactor progranuline als de bindende partners van COMP het gebruik van de EGF-achtige domein van COMP als een aas 10, 13.
De conventionele screening procedure is tijdrovend, omdat de gist transformanten worden uitgeplaat op de eerste minus-drie platen (SD-Leu-Trp-His +3 AT) Zijn + klonen, die vervolgens worden overgedragen naar de tweede minus-drie platen (SD te selecteren -Leu-Trp-Ura +3 AT) voor Ura selectie. Daarnaast is de replicatie van duizenden positieve klonen moet speciaal gereedschap, en dit scherm proces resulteert vaak in een groot aantal valse positieven. We direct vergulde de gist transformanten op min-vier platen (SD-Leu-Trp-His-Ura +3 AT) in plaats van twee Minus-drie platen, omdat de echte interactie klonen moet in staat zijn om tegelijkertijd te activeren alle van de reporter constructen (dwz het produceren van histidine en uracil), geïntegreerd in het genoom van gist en moet overleven op minus-vier platen (SD-Leu-Trp-His- Ura +3 AT). Deze wijziging verkort sterk het proces (bijvoorbeeld de conventionele screening procedure duurt meestal 10-20 dagen, terwijl de gewijzigde scherm procedure hoeft slechts 5-10 dagen), vermindert de werkdruk, en, belangrijker nog, vermindert het aantal false positives. Daarnaast is deze aanpak is reproduceerbaar en betrouwbaar, en we hebben met succes toegepast deze gewijzigde systeem in het isoleren van de bindende eiwitten van verschillende aas, waaronder natrium kanaal 12 en extracellulaire matrix eiwit 10, 13. Recent identificeerden we PGRN als een nieuw ligand van TNF-receptoren het gebruik van deze aanpak 14, 15, biedt een solide basis voor toekomstige ontdekkingen met betrekking tot deze groeifactor.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Geen belangenconflicten verklaard.
Acknowledgments
Dit werk werd gefinancierd door NIH onderzoekssubsidies K01AR053210, R01AR061484 en een subsidie van National Psoriasis Foundation.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| ProQuest two-hybrid system | Invitrogen | 10835 | |
| YPD Growth Medium | Clontech Laboratories | 630409 | |
| YPD Agar Medium | Clontech Laboratories | 630410 | |
| Minimal SD agar Base | Clontech Laboratories | 630412 | |
| -Leu DO Supplement | Clontech Laboratories | 630414 | |
| -Leu/-Trp DO Supplement | Clontech Laboratories | 630417 | |
| -His/-Leu/-Trp/-Ura DO Supplement | Clontech Laboratories | 630425 | |
| 3-Amino-1,2,4-Triazole (3AT) | Sigma-Aldrich | A8056 | |
| Luria broth (LB) | Sigma-Aldrich | L3022 | |
| X-Gal | Invitrogen | 15520-034 | |
| Sonicated Salmon Sperm DNA | Stratagene, Agilent Technologies | 201190 | |
| Ampicillin | AMRESCO | 0339 | |
| Kanamycin Sulfate | Invitrogen | 11815-024 | |
| Subcloning Efficiency™ DH5α™ Competent Cells | Invitrogen | 18265-017 | |
| Trizma® base | Sigma-Aldrich | T6066 | |
| Lithium acetate | Sigma-Aldrich | L4158 | |
| Ethylenediaminetetraacetic acid | Sigma-Aldrich | ED | |
| Nitrocellulose Membrane | Bio-Rad | 162-0115 | |
| 10-cm petri dish | ITI Scientific | CT-903 | |
| Incubator (30 °C) | ATR (Ecotron) |
References
- He, Z. Progranulin is a mediator of the wound response. Nat. Med. 9, 225-229 (2003).
- Kessenbrock, K. Proteinase 3 and neutrophil elastase enhance inflammation in mice by inactivating antiinflammatory progranulin. J. Clin. Invest. 118, 2438-2447 (2008).
- Zhu, J. Conversion of proepithelin to epithelins: roles of SLPI and elastase in host defense and wound repair. Cell. 111, 867-878 (2002).
- Yin, F. Exaggerated inflammation, impaired host defense, and neuropathology in progranulin-deficient mice. J. Exp. Med. 207, 117-128 (2010).
- Van Damme, P. Progranulin functions as a neurotrophic factor to regulate neurite outgrowth and enhance neuronal survival. J. Cell. Biol. 181, 37-41 (2008).
- Baker, M. Mutations in progranulin cause tau-negative frontotemporal dementia linked to chromosome 17. Nature. 442, 916-919 (2006).
- Cruts, M. Null mutations in progranulin cause ubiquitin-positive frontotemporal dementia linked to chromosome 17q21. Nature. 442, 920-924 (2006).
- Guo, F. Granulin-epithelin precursor binds directly to ADAMTS-7 and ADAMTS-12 and inhibits their degradation of cartilage oligomeric matrix protein. Arthritis Rheum. 62, 2023-2036 (2010).
- Feng, J. Q. Granulin epithelin precursor: a bone morphogenic protein 2-inducible growth factor that activates Erk1/2 signaling and JunB transcription factor in chondrogenesis. FASEB. J. 24, 1879-1892 (2010).
- Xu, K. Cartilage oligomeric matrix protein associates with granulin-epithelin precursor (GEP) and potentiates GEP-stimulated chondrocyte proliferation. J. Biol. Chem. 282, 11347-11355 (2007).
- Liu, C. J. The role of ADAMTS-7 and ADAMTS-12 in the pathogenesis of arthritis. Nat. Clin. Pract. Rheumatol. 5, 38-45 (2009).
- Liu, C., Dib-Hajj, S. D., Waxman, S. G. Waxman, S.G. Fibroblast growth factor homologous factor 1B binds to the C terminus of the tetrodotoxin-resistant sodium channel rNav1.9a (NaN). J. Biol. Chem. 276, 18925-18933 (2001).
- Liu, C. J. ADAMTS-7: a metalloproteinase that directly binds to and degrades cartilage oligomeric matrix protein. FASEB. J. 20, 988-990 (2006).
- Tang, W. The Growth Factor Progranulin Binds to TNF Receptors and Is Therapeutic Against Inflammatory Arthritis in Mice. Science. 332, 478-484 (2011).
- Wu, H., Siegel, R. M.
- Hollenberg, S. M. Identification of a new family of tissue-specific basic helix-loop-helix proteins with a two-hybrid system. Mol. Cell. Biol. 15, 3813-3822 (1995).
- Vojtek, A. B., Hollenberg, S. M., Cooper, J. A. Mammalian Ras interacts directly with the serine/threonine kinase Raf. Cell. 74, 205-214 (1993).
