Summary

Imaging Glioma Initiation<em> In Vivo</em> Gjennom en polert og Forsterket Thin-skull Cranial Window

Published: November 20, 2012
doi:

Summary

Ved å kombinere en polert og forsterket tynn-skull (porter) cranial vinduet og glioblastoma (GBM) celle injeksjon, kan vi observere glioma initiering og vekst fra injiserte GBM celler i hjernen til en levende mus i lengderetningen.

Abstract

Glioma er en av de mest dødelige former for menneskelig kreft. Den mest effektive glioma terapi til dato-kirurgi etterfulgt av strålebehandling-gir pasientene beskjedne fordeler, som de fleste pasienter ikke overleve mer enn fem år etter diagnose på grunn av glioma tilbakefall 1,2. Oppdagelsen av kreft stamceller i menneskelige hjernesvulster holder løftet for å ha en enorm innvirkning på utviklingen av nye terapeutiske strategier for glioma 3. Kreftstamceller defineres ved sin evne både til selv fornye og å skille, og er tenkt å være de eneste celler i en svulst som har kapasitet til å initiere nye svulster 4. Glioma tilbakefall etter strålebehandling antas å oppstå fra motstand av glioma stamceller (GSCS) til terapi 5-10. In vivo, er GSCS vist seg å ligge i en perivaskulær nisje som er viktig for å opprettholde sine stamcelle-lignende egenskaper 11-14 . Sentralt i den organisasjonensjon av GSC nisje er vaskulære endotelceller 12. Eksisterende bevis tyder på at GSCS og deres samspill med vaskulære endotelceller er viktig for tumor utvikling, og identifisere GSCS og deres samspill med endotelceller som viktige terapeutiske mål for glioma. Tilstedeværelsen av GSCS bestemmes eksperimentelt ved deres evne til å initiere nye svulster ved orthotopic transplantasjon 15. Dette er vanligvis oppnås ved å injisere et bestemt antall GBM celler isolert fra humane svulster i hjernen på alvorlig immun-mangelfull mus, eller av mus GBM celler i hjernen på congenic vert mus. Analyser for tumorvekst blir deretter utføres etter tilstrekkelig tid til å tillate GSCS blant injiserte GBM cellene til å gi opphav til nye svulster-typisk flere uker eller måneder. Derfor trenger eksisterende analysene ikke tillate undersøkelse av viktige patologisk prosess startfasen fra enkle GSCS in vivo. Derfor viktig insights i de spesifikke roller GSCS og deres samspill med vaskulære endotelceller i de tidlige stadier av startfasen mangler. Slike innsikter er avgjørende for å utvikle nye terapeutiske strategier for gliom, og vil ha store konsekvenser for å hindre glioma tilbakefall hos pasienter. Her vi har tilpasset Portene cranial vindu prosedyre 16 og in vivo to-foton mikroskopi å tillate visualisering av startfasen fra injisert GBM celler i hjernen av en levende mus. Vår teknikk vil bane vei for fremtidige arbeidet med å belyse de viktigste signaliserer mekanismer mellom GSCS og vaskulære endotelceller under glioma innvielse.

Protocol

1. Protokoll Anesthetize musen med ketamin og xylazin i en dose på 0,1 mg ketamin og 0,01 mg av xylazin per 1 g kroppsvekt. Karprofen (0.005 mg per 1 g kroppsvekt) benyttes til analgesi og administreres preoperativt. Alle kirurgiske verktøy, inkludert dental borkronen, er dampsteriliseres i en autoklav. Hvis batch operasjoner skal utføres, må spissene på kirurgiske instrumenter steriliseres med et glass bead sterilizer (Fine Science Verktøy FST 250) før hver påfølgende operasjon. …

Discussion

Nøkkelen til en vellykket porter cranial vindu er tynning og polering. Mens den første tynning kan utføres raskt, bør man sørge for å sikre homogen tynning av skallen over et stort område. Vi vanligvis bruke et tynt lag av saltvann til skallen, og deretter tynn skallen ett pass gangen, slik at saltoppløsningen fordamper kort etter microdrill har passert over skallen gang. Dette gir oss muligheten til å sakte men homogent ytterligere tynn skallen. En stødig hånd under mikroskopet er også viktig. Når skull-ty…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet er støttet av Jackson Laboratory Cancer Center Pilot Grant og The Maine Cancer Foundation.

Materials

Name of reagent Company Catalogue number Comments (optional)
DMEM/F12(1:1) with Sodium Pyruvate Thermo Sci Hyclone SH3026101
B-27 Serum Free Supplement (50x) Invitrogen 17504-044
GlutaMax-1 Supplement Invitrogen 35050061
Penicillin-Streptomycin Solution Thermo Sci Hyclone SV30010
Accutase-Enzyme Cell Detachment Medium eBiosciences 00-4555-56
T25 flasks-vent cap green SARSTEDT 83.1810.502
70% alcohol JAX LAHS
10% povidone-iodine topical solution JAX LAHS
Ketamine HCl Butler Animal Health Supply NDC# 11695-0550-1
Xylazine Akorn, Inc. NADA# 139-236
Carprofen JAX LAHS
Ophthalmic ointment Dechra Veterinary Products 17033-211-38
0.5% Lidocaine HCl REGENT, Inc. NDC 0517-0625-25
Cyanoacrylate glue Henkel Corp. 46551
Sterile Swabs Fisher Scientific 23-400-114
Diamond paste Widget Supply BBE60
Tin oxide LORTONE, Inc. 591-038
Liner Bond 2V KURARAY Medical Inc. 1921-KA
Clearfil AP-X KURARAY Medical Inc. 1721-KA
Saline JAX LAHS
Cover glass Warner Instruments 64-0720
Hex Nut Small Parts, Inc. HNX-0090-C
Syringe Pump Syringepump.com NE-1000
Two-Photon imaging system Custom built (Any commercial system would work)

References

  1. Paulino, A. C., Teh, B. S. Treatment of brain tumors. N. Engl. J. Med. 352, 2350-2353 (2005).
  2. Stupp, R., et al. Radiotherapy plus concomitant and adjuvant temozolomide for glioblastoma. N. Engl. J. Med. 352, 987-996 (2005).
  3. Singh, S. K., et al. Identification of human brain tumour initiating cells. Nature. 432, 396-401 (2004).
  4. Hanahan, D., Weinberg, R. A. Hallmarks of cancer: the next generation. Cell. 144, 646-674 (2011).
  5. Cheng, L., Bao, S., Rich, J. N. Potential therapeutic implications of cancer stem cells in glioblastoma. Biochem. Pharmacol. 80, 654-665 (2010).
  6. Cheng, L., Ramesh, A. V., Flesken-Nikitin, A., Choi, J., Nikitin, A. Y. Mouse models for cancer stem cell research. Toxicol. Pathol. 38, 62-71 (2010).
  7. Dirks, P. B. Brain tumor stem cells: the cancer stem cell hypothesis writ large. Mol. Oncol. 4, 420-430 (2010).
  8. Ebben, J. D., et al. The cancer stem cell paradigm: a new understanding of tumor development and treatment. Expert Opin. Ther. Targets. 14, 621-632 (2010).
  9. Germano, I., Swiss, V., Casaccia, P. Primary brain tumors, neural stem cell, and brain tumor cancer cells: where is the link. Neuropharmacology. 58, 903-910 (2010).
  10. Park, D. M., Rich, J. N. Biology of glioma cancer stem cells. Mol. Cells. 28, 7-12 (2009).
  11. Bao, S., et al. Stem cell-like glioma cells promote tumor angiogenesis through vascular endothelial growth factor. Cancer Res. 66, 7843-7848 (2006).
  12. Calabrese, C., et al. A perivascular niche for brain tumor stem cells. Cancer Cell. 11, 69-82 (2007).
  13. Barami, K. Relationship of neural stem cells with their vascular niche: implications in the malignant progression of gliomas. J. Clin. Neurosci. 15, 1193-1197 (2008).
  14. Gilbertson, R. J., Rich, J. N. Making a tumour’s bed: glioblastoma stem cells and the vascular niche. Nat. Rev. Cancer. 7, 733-736 (2007).
  15. Cho, R. W., Clarke, M. F. Recent advances in cancer stem cells. Curr. Opin. Genet. Dev. 18, 48-53 (2008).
  16. Drew, P. J., et al. Chronic optical access through a polished and reinforced thinned skull. Nat. Methods. 7, 981-984 (2010).

Play Video

Cite This Article
Zhang, L., Lapierre, A., Roy, B., Lim, M., Zhu, J., Wang, W., Sampson, S. B., Yun, K., Lyons, B., Li, Y., Lin, D. Imaging Glioma Initiation In Vivo Through a Polished and Reinforced Thin-skull Cranial Window. J. Vis. Exp. (69), e4201, doi:10.3791/4201 (2012).

View Video