Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Medicine

Cerrahi Örnekler kaynaktan İnsan pankreas adacıklarının Lazer Diseksiyon için Geliştirilmiş Protokolü

doi: 10.3791/50231 Published: January 6, 2013

Summary

Lazer mikrodisseksiyon parankiminde dakika miktarlarda seçili hücrelerin iyileşme sağlayan bir tekniktir. Burada Transkriptomik çalışmaları için kullanılacak cerrahi yöntemlerle alınan insan pankreas adacık elde etmek için bir protokol açıklar. Tüm protokol böylece toplama kolaylaştırılması insan beta hücrelerinin içsel otofloresansı, geliştirir.

Abstract

Lazer mikrodisseksiyon (LMD) parankim 1,2 dakika miktarlarda seçili hücrelerin ve dokuların iyileşme sağlayan bir tekniktir. Disseke hücreleri gibi Transkriptomik veya proteomik çalışmalar, DNA değerlendirmesi veya kromozom analizi 2,3 gibi soruşturmaların, çeşitli için kullanılabilir. LMD ait özellikle zor bir uygulama RNA 4 değişkenlik nedeniyle, hücreler örneğin pankreas gibi RNaz, yönünden zengin olan dokulardan gelen parçalanmış zaman özellikle belirgin olabilir, transcriptome analizdir. Hedef hücrelerin hızlı belirlenmesi ve toplanmasını sağlayan bir mikrodisseksiyon protokol doku işleme süresini kısaltmak için ve, sonuç olarak, RNA koruma sağlamak amacıyla, bu durumda önemlidir.

Burada Transkriptomik çalışmalar 5 için kullanılmak üzere cerrahi örneklerden insan pankreatik beta hücreleri elde etmek için bir protokol açıklar. 0.5-1 hakkında c pankreas Küçük parçalarm 3 kesit kadar hemen 2-metilbutane soğutulmuş dondurulmuş Tissue-Tek Ekim Bileşik gömülü rezeke pankreas numunelerin sağlıklı görünen marjları, kesilmiş ve -80 ° C'de depolanan edildi. 10 mikron kalınlığında, kırk seri bölümleri 1-2 dk kriyostat içinde kurutulur ve -80 saklanan cam slaytlar, ° C için ayrı ayrı transfer, -20 ° C ayar altında kriyostat üzerine kesildi

Hemen lazer mikrodiseksiyon işlem öncesi, bölümleri buz% 100 iki bir dakikalık inkübasyonlar tarafından, buz giderilen taze 30 sn için% 70 etanol hazırlanan buz DEPC-işlenmiş su 5-6 dips ile yıkandı ve susuz edildi Etanol 4 dk için ksilen (doku kurutma için kullanılan) takip etmektedir; doku bölümleri 3-5 dakika süreyle daha sonra o zaman hava kurutuldu. Önemli olarak, bütün adımları, ksilen içinde kuluçka dışında, buz gibi soğuk reaktifler kullanılarak yapıldı - daha önce açıklanan protokol 6 fazla bir değişiklik. Utbuz reaktiflerin yonu beta hücrelerinin içsel otofloresans belirgin bir artışa yol açmıştır, ve bunların karşılaşılmaktadır. Mikrodisseksiyon için, dört bölümden her zaman susuz: iki nem ve ağartma gelen doku korumak için, bir folyo sarılı 50 ml tüp içine yerleştirildi, geriye kalan iki hemen microdissected edildi. Bu prosedür (AutoLPC) modu catapulting Otomatik Lazer Basınç kullanan bir PALM MicroBeam enstrüman (Zeiss) kullanılarak yapıldı. 40-60 dk daha artık gerekli dört cryosections gelen beta hücre / adacık diseksiyon tamamlanması. Hücreler bir AdhesiveCap içine toplanmış ve 10 ul lizis tamponu ile lizlendi. Transkriptomik analiz için her biri tek bir RNA örnek 10 hücre microdissected örnekleri, Pico Saf RNA izolasyon kiti (Arcturus) kullanarak, RNA ekstre bir araya getirilmesiyle elde edilmiştir. Bu protokol böylece hızlı ve doğru bir şekilde tanınmasını ve c kolaylaştırılması, insan beta hücrelerinin içsel otofloresans artırırollection. Bu prosedürü daha da iyileştirilmesi tip 2 diyabet ile ilişkili değişiklikler daha iyi anlamasını mümkün etkileri olan, fenotipik farklı beta hücrelerinin diseksiyonu sağlayabilir.

Protocol

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

1. İnsan Pankreas Doku Dondurucu

  1. Yağ dokusu, kan damarları, sinirler ve neşterin ve cımbız ile non-parankimal doku çıkarın ve parçaları (~ 0,5-1 cm'lik küpler) içine pankreatik doku kesti.
  2. Bir Cryomold merkezinde tek pankreas dokusu parça yerleştirin ve soğuk Tissue-Tek Ekim bileşiği ile tamamen kapsamaktadır. Kimin altında sıvı azot içinde önceden soğutulmuş 2-metilbutane ve ek dondurma ile kaplı bir kavanoza Cryomold koyun. -80 ° C'de dondurulmuş numune depolamak

2. Dondurulmuş Bölümler hazırlanması

  1. RNA denatürasyon önlemek için tüm adımları boyunca eldiven giyin.
  2. Dışarda soğuk% 100 etanol ve RNaz ile kriyostat bıçak, Numune tutucu ve fırça temizleyin. Kriyostat içindeki dondurulmuş doku yerleştirin.
  3. Doku, bıçak ve fırça -20 ° C'ye ulaşıncaya kadar bekleyin Beklerken kriyostat odası içinde SuperFrost Plus slaytlar ve pre-serin bunları etiketleyindoku -20 ° C'ye ulaşması için
  4. Numune tutucu üzerindeki Tissue-Tek Ekim Bileşik sürün ve üstüne dondurulmuş doku yerleştirin.
  5. Tissue-Tek Ekim Bileşik dondurulur kez cryoblock Döşeme ve bir jilet ile Tissue-Tek Ekim Bileşik herhangi bir aşırı kaldırın.
  6. Pankreatik doku bloğundan 40 ardışık 10 mikron dilim toplam kesin. Ayrıca biz mikrodiseksiyon sürecinde dilimleri içinde adacıklar belirlenmesini kolaylaştıracak pankreatik kısmın genel çizimler için kaydedilmek üzere ilk ve orta dilim kesmek tavsiye.
  7. Bıçak bıçak bölümüne uyacaktır sadece bölgeyi ısıtmak için parmağınızı (bir eldiven ile kaplı) ile slayt arka dokunarak SuperFrost Plus slayt merkezine bölümleri aktarın.
  8. -20 Kriyostat içindeki bölümlerde 1-2 dk ° C, kuru buz üzerinde yerleştirilen bir slayt kutunun içine koyun sonra kurulayın. Bölümlerini depolamak-80 ° C
  9. Gerekirse, kağıt havlu ve soğuk% 100 etanol ile bıçak temizleyin.

3. Dondurulmuş Bölümler Dehidrasyon

  1. Reaktifler hazırlayın: 30 ml taze hazırlanmış% 70 etanol, 30 ml DEPC işlenmiş su, 2x30 ml% 100 etanol ve 50 ml Cellstar borular (Şahinleri) içine 30 ml ksilen dökmek, soğuk ve buz üzerinde tüm reaktifler (ksilen hariç) tutmak.
  2. % 100 etanol ve RNaseZAP ile kaputun altında çalışma alanı temizleyin.
  3. Şöyle Süreç iki cryosections: buz DEPC-işlenmiş su 5-6 hızlı dips ile yıkayın, 30 saniye boyunca buz gibi soğuk% 70 etanol içinde düzeltmek, ksilen 4 dakika inkübe edilir, buz% 100 etanol içinde 1 dakika boyunca iki kez kurutmak oda sıcaklığında (25 ° C), ve 3-5 dakika boyunca kuru hava at. Cryosections başka bir çift ile bu adımı yineleyin.
  4. Işık ve nemden korumak için alüminyum folyo ile sarılmış bir 50 ml Cellstar tüp içine sırt sırta iki kurutulmuş cryosections yerleştirin.
<p class = "jove_title"> 4. PALM MicroBeam, Zeiss ile Beta-hücreleri Lazer Diseksiyon

  1. RNaseZAP ile mikroskop temizleyin ve RoboMover yılında Yapıştırıcı Cap monte.
  2. Filtre seti 09 (uyartım: 450-490 nm, emisyon> 515nm), AutoLPC modu,% 50 lazer enerjisi,% 65 lazer odak,% 100 lazer hız, AutoLPC çekim arasında 5 mm mesafe, 6 mikron mesafe aşağıdaki ayarları belirleyin -10100: hattına Çalışma yüksekliği.
  3. Aşamasında içine bir slayt yerleştirin.
  4. Mikroskopik (5x veya 10x objektif) altında autofluorescent beta hücreleri bulun.
  5. 40x lense geçiş, "Freehand" seçim aracı ile beta hücreleri seçin ve lazer kullanarak bunları microdissect.
  6. Tek AdhesiveCap içine dört susuz cryosections dokusu yakalayın.
    1 Yorum: Bir susuz cryosection ve beta hücreleri incelemek için zaman neden olacaktır doku bölümleri rehidrasyon önlemek için 10-20 dakikadan uzun olmamalıdırBozulması RNA.
    2 Yorum: kapısına kadar sahne taşıdıktan sonra görsel inceleme ile başarılı mikrodisseksiyon işlemi doğrulayın.

5. Microdissected Beta Hücre Zenginleştirilmiş Doku parçalanması

  1. RoboMover dan AdhesiveCap çıkarın.
  2. AdhesiveCap bir kapak ve 42 de ters inkübe ° C 30 dakika boyunca içine Pipet 10 ul ekstraksiyon tamponu (XB, PicoPure RNA İzolasyonu Takımı, Arcturus).
  3. 10,000 xg'de aşağı spin ve kuru buz üzerinde lizat koydu. RNA ekstraksiyonu yapılır kadar -80 ° C'de saklayın.
  4. Tekrar 3. adımları yineleyin.) 5.) Diğer tüm bölümler.

6. RNA Ekstraksiyon

  1. Tüm on 10 ul lizatları birleştirin
  2. % 70 Etanol (DNaz Tedavi dahil) 1:1 oranında Ekstraksiyon Tamponu (XB) kullanarak, PicoPure RNA İzolasyonu Takımı, Arcturus protokole göre oda sıcaklığında çalışarak RNA izolasyonu ile devam edin.

7. RNA Analizi

  1. Bir Agilent 2100 Bioanalyser (picoChip'in) kullanarak kalite ve miktar analizi için 1 ul RNA kullanın. Kantitatif değerlendirme çip üzerinde paralel olarak yüklü bir RNA için referans standart olarak yapılır.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Şekil 1 'de gösterildiği gibi, modifiye dehidrasyon protokol daha önce yayınlanmış protokol 6'ya göre beta hücrelerinin otofloresans bir iyileşmeye yol açmıştır. Açıklanan protokol uygulama, 39 cerrahi pankreas örneklerin her biri 31'544'704 mikron 3 doku / pankreas numunenin bir ortalaması (- 81'522'153 um 3 8'742'390 aralığı) için seri cryosections 40 oluşturmak için kullanılan Tablo 1 de gösterilmiştir. Bu, 150 mikron çapında, 35,000 ya da β-hücrelerinin yaklaşık 18 pankreas adacıklarının hacmini temsil etmektedir. 38 farklı Adacıklar / pankreas numune için ortalama (aralık: 19-80 adacıkları) çıkan doku, her biri tipik olarak iki veya daha fazla birbirini takip eden bölümlerde gözlenmiştir. Farklı örnekler arasında adacıklar verimi büyük değişkenlik tespit içinde doku kaynağı, pankreas başına ya da kuyruk ya yanı sıra, operatörlerin ilerleyen iyileştirilmesi heterojen yansıtırHer bölümün inceleme adamış 10 dk süre içinde adacıklar iyon.

Her microdissected ve lize dokusundan RNA üretici protokolüne göre, Uygulamalı Biyosistem Arcturus PicoPure Dondurulmuş RNA İzolasyonu Kit ile saflaştırılmış ve 11 ul yıkandı. Her bir numunenin Daha sonra 1 ul RNA Agilent 2100 Bioanalyser ile analiz edilmiştir. 5.8 ortalama RNA bütünlüğünü numarası (RIN) (aralık: 3,4-7,2) ile: - Biz ortalama 42 ng RNA / numunede (229 ng / numune 5 aralık) elde. Şekil 2 RNA analiz bir örnek gösterilmektedir. Hangi RIN değer tüm analiz RNA örnekleri başarıyla Transkriptomik çalışmalar için kullanılmıştır. Biz microdissected doku miktarı ve RNA verimi arasında doğrudan bir ilişki bulamadık. Cerrahlar tarafından hasat ve patolog tarafından incelenmesi ve yayımlanmasından sonra pankreas numunelerin donma arasındaki süreyi farklılıklar p sorumlu olabilir Kurtarılan RNA değişken kalite ve miktar için sanat. Dikkate alınması gereken diğer önemli faktörlerdir yüksek verimli RNA bütünlüğü daha düşük enerji ve aynı zamanda lazer odak ve LPC noktaları arasındaki mesafe ile, mikrodisseksiyon için uygulanan lazer enerjisi vardır. Küçük bir siyah nokta oluşturan slayt cam yüzey üzerinde lazer hafif bir "darbe", görülebilir zaman odak ideal ayarlanır. Elimizde iyi sonuçlar bölümleri arasında kalınlık farkları telafi etmek için adapte edilmiş olsa da% 50 bir lazer enerjisi,% 65 bir lazer odak, ve 5 um arasında LPC noktaları bir mesafe ile elde edilir. Ayrıca, RNA miktarı RoboMover çalışma yüksekliği tutarak optimize edilebilir, yakalama işlemi sırasında microdissected doku kaybını önlemek için mümkün olduğunca düşük yapışkanlı kap ve bölüm arasındaki mesafe yani. Bizim sette çalışma yüksekliğine kadar -10.100 keyfi PALM birimdir.

ll "> örnek <td> 30
adacıklar / numune sayısı toplanan doku hacmi / numune [um 3] RIN konsantrasyonu [ul ng /] Toplam RNA [ng]
DP002 34 24'947'696 5.2 1.149 10.34
DP003 30 41'141'488 5.5 1.677 15.09
DP005 23 27'024'264 3.5 8.259 66.07
DP006 25 45'900'848 3.4 7.399 59.19
DP007 23'936'048 6.5 0.595 4.76
DP008 22 68'248'432 6.2 1.559 14.03
DP010 34 33'156'752 5.6 1.750 19.25
DP011 29 31'339'152 6 1.365 15.02
DP012 34 57'594'360 6.3 3.025 33.28
DP017 35 28'212'256 6 1.292 14.21
DP030 35 48'007'530 5.6 2.180 23.98
DP013 36 34'371'045 6.9 1.350 14.85
DP014 35 21'360'060 7.2 1.270 13.97
DP015 33 20'923'488 4.1 4.000 44.00
DP019 40 35'431'704 7 1.670 18.37
DP025 19 15'329'844 6.6 0.496 5.46
DP034 19 81'522'153 6.4 4.260 46.86
DP039 32 19'074'410 6.5 1.270 13.97
DP040 44 31'565'630 5.4 2.300 25.30
DP042 52 40'333'840 7 2.510 27.61
DP021 65 33'996'260 6.3 2.830 31.13
DP023 19 19'513'310 5.6 8.250 90.75
DP024 32 24'125'140 6.3 20.780 228.58
DP038 23 18'306'040 6.6 11.700 128.70
DP045 35 36'345'620 6.3 1.100 12.10
DP033 42 26'078'550 6.5 15.380 169.18
DP022 49 33'535'460 6.8 7.590 83.49
DP041 56 34'899'830 5.7 3.350 36.85
DP049 38 18'521'230 6.8 1.020 11.22
DP028 32 16'410'670 5.6 1.720 18.92
DP056 36 19'737'580 5.7 1.130 12.43
DP059 52 23'376'180 3.6 7.880 86.68
DP047 41 20'658'370 6.4 1.040 11.44
DP036 23 8'742'390 3.5 0.950 10.45
DP027 42 29'150'480 5.1 3.410 37.51
DP046 54 16'800'070 5.3 8.210 90.31
DP055 57 32'340'270 6.2 1.280 14.08
DP064 74 41'896'460 6.5 2.440 26.84
DP067 80 46'388'540 6.3 5.200 57.20
ortalama 38 31'544'704 5.8 3.965 42.14
adacıklar / numune sayısı toplanan doku hacmi / numune [um 3] RIN Toplam RNA [ng]
menzil 19-80 8'742'390 - 81'522'153 3,4-7,2 4,76-228,58
ortalama 38 31'544'704 5.8 42.14

Tablo 1. Microdissected doku miktarı ve çıkarılan RNA kalite ve miktar genel bakış. Örneklerin kronolojik listelenir. Toplanan doku hacmi aşağıdaki şekilde hesaplanır: cryosection kalınlığı (10 mikron) x microdissected alanı [mikron 2]. Her bir numunenin 1 ul RNA Agilent 2100 Bioanalyser picoChip'in üzerinde analiz edilmiştir.

"Şekil Şekil 1. Insan beta hücrelerinin İntrinsik otofloresans ya da oda sıcaklığında (A), ya da buz-soğuk (B) (eksitasyon 450 tutuldu reaktifleri ile pankreatik cryosections kurutulmasından sonra beta hücrelerinin Otofloresansı - 490 nm, emisyon> 515 nm;. 400 x büyütme). Pankreatik kanal, gemiler ve kollajen yeşil renkli görüntüler ise Beta hücreleri, sarı görünür. Ölçek çubuğu: 75 mikron.

Şekil 2,
Şekil 2. Standart bir RNA örnek (A) ile karşılaştırıldığında bu LMD protokolü (B) ile elde edilmiş bir insan adacık RNA numunesinin ekstre adacık RNA. Profili kalitesi ve miktarı. Her bir numunenin 1 ul RNA picoChip'in üzerine tatbik edildi ve quantit için analiz edildiAgilent 2100 Bioanalyser ile y ve kalite. (A): RIN (RNA bütünlüğünü numarası) 7.7 [rRNA Oranı (28S/18S): 1.3)], (B): RIN 7.2 [rRNA Oranı (28S/18S): 1.1)]. Adacık RNA konsantrasyonu 21'360'060 um 3 pankreas dokusundan 10.3 ng toplam miktarı, 1.3 ng / ul oldu. büyük bir rakam görmek için buraya tıklayın .

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Biz cerrahi pankreas örnek insan adacık lazer mikrodiseksiyon (LMD) için güvenilir bir yaklaşım açıklanmaktadır. Bir LMD mikroskop mevcuttur kaydıyla, bu işlem böylece hem non-diyabetik ve tip 2 diyabetik bireylerin insan adacık materyale erişimin artırılması, kısmi pancreatectomies gerçekleştirirken herhangi bir araştırma kurumunda uygulanması olabilir. Bu adacık izolasyonu için sunulan pancreata yetersizliğinden ötürü verilen özellikle önemlidir. Uygun olup açıdan kollajenaz sindirimi ile adacık izolasyon ile karşılaştırıldığında LMD doku eksplantasyonunun ve RNA ekstraksiyonu 7, beta hücrelerinin zenginleştirme 7, hem de sert mekanik ve enzimatik manipülasyon 8 önlenmesi için adacık işleme arasında azaltılmış zamanı, gen ekspresyon profilini değiştirebilecek 9,10,. Kısmen pancreatectomized hastalar durumunda, daha fazla metabolik ve klinik bilgilerin organ durumunda daha tipik olarak mevcutturdonörler. Diğer taraftan, alt RIN değerleri ile LMD verim daha az RNA tarafından adacık izolasyon kollajenaz sindirimi sonra gözlenenler ile karşılaştırılmıştır ve işlevsel çalışmalar için oturma adacıkları sağlamaz. Ayrıca, cerrahi yol pankreas hastalığı adacık ifade profilini etkileyebilir. Bu artıları ve eksileri dengeli bir değerlendirme kollajenaz sindirim tarafından yürütülen ve bu olanlar için çok merkezli Yenilikçi İlaç Girişimi devam olarak organ bağışçıları veya kısmen pancreatectomized hastalarda, gelen ya LMD adacık izolasyonu çok sayıda karşılaştırmalı çalışmalar aracılığıyla ulaşılabilir olacak ("Diyabet tedavi izlenmesi için tanısal biyobelirteçlerin geliştirilmesi beta hücre fonksiyonu ve kimlik" hedefi ile Diyabet (IMIDIA) http://www.imidia.org ).

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Çıkar çatışması ilan etti.

Acknowledgments

Biz bu projenin çeşitli aşamalarında yardım, tavsiye ve kritik girişi sağlanan bütün arkadaşlarımıza teşekkür etmek istiyorum. Bu video makalenin Üretim IMIDIA (fonlarla desteklenen http://www.imidia.org ), Eğitim ve Diyabet Araştırma Alman Merkezi (DZD için Araştırma (BMBF) için Alman Bakanlığı http://www.dzd -ev.de ) ve Teknoloji Dresden Üniversitesi Üniversite Hastanesi Carl Gustav Carus. Bu yayın için önde gelen iş hibe anlaşması n ° 155005 (IMIDIA), Avrupa Birliği Yedinci Çerçeve Programı (FP7/2007-2013) ve EFPIA verilen mali katkı oluşmaktadır hangi kaynaklar altında Yenilikçi İlaçlar Girişimi Ortak Taahhüt destek aldı şirketlerin ayni katkılar.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
2-Methylbutane (isopentane) ROTH 3927.1
AdhesiveCap (opaque, 500 μl) ZEISS 415190-9201-000
Cellstar Tubes (50 ml) greiner bio-one 210 261 with support skirt
Cellstar Tubes (50 ml) greiner bio-one 227.261
Diethyl pyrocarbonate (DEPC) SIGMA D 5758
Dry ice
Ethanol absolute VWR 20821.310
Liquid nitrogen
Paint brush
PALM MicroBeam ZEISS
Peel-a-Way embedding moulds (truncated), 12 x 12 mm ProSciTech RR12 Top internal 22x22 mm, depth 21 mm
Arcturus PicoPure Frozen RNA Isolation Kit Applied Biosystems KIT 0204
Plastic clamp
Razor
RNase-Free DNase Set Qiagen 79254
RNaseZAP SIGMA R 2020
Scalpel / surgical blade Techno Cut 2800111
SuperFrost Plus adhesion microscope slides Thermo Scientific J1800AMNZ 25x75x1.0 mm
Tissue-Tek O.C.T Compound Sakura 4583 or 0807000022
Tweezers BRAUN BD168R
Xylene VWR 28975.291

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Bonner, R. F., Emmert-Buck, M., et al. Laser capture microdissection: molecular analysis of tissue. Science. 278, 1481-1483 (1997).
  2. Suarez-Quian, C. A., Goldstein, S. R., et al. Laser capture microdissection of single cells from complex tissues. Biotechniques. 26, (2), 328-3235 (1999).
  3. Espina, V., Wulfkuhle, J. D., et al. Laser-capture microdissection. Nature Protocols. 1, 586-603 (2006).
  4. Mikulowska-Mennis, A., Taylor, T. B., et al. High-quality RNA from cells isolated by laser capture microdissection. Biotechniques. 33, (1), 176-179 (2002).
  5. Bötticher, G., Sturm, D., Ehehalt, F., Knoch, K. P., Kersting, S., Grützmann, R., et al. Isolation of Human Islets from Partially Pancreatectomized Patients. J. Vis. Exp. (53), e2962 (2011).
  6. Marselli, L., Sgroi, D. C., et al. Laser capture microdissection of human pancreatic beta-cells and RNA preparation for gene expression profiling. Methods in Molecular Biology. 560, 87-98 (2009).
  7. Marselli, L., Thorne, J., et al. Gene Expression of Purified {beta}-Cell Tissue Obtained from Human Pancreas with Laser Capture Microdissection. Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism. 93, 1046-1053 (2008).
  8. Bottino, R., Balamurugan, A. N., et al. Response of human islets to isolation stress and the effect of antioxidant treatment. Diabetes. 53, (10), 2559-2568 (2004).
  9. Abdelli, S., Ansite, J., et al. Intracellular stress signaling pathways activated during human islet preparation and following acute cytokine exposure. Diabetes. 53, (11), 2815-2823 (2004).
  10. Negi, S., Jetha, A., et al. Analysis of beta-cell gene expression reveals inflammatory signaling and evidence of dedifferentiation following human islet isolation and culture. PLoS One. 7, (1), e30415 (2012).
Cerrahi Örnekler kaynaktan İnsan pankreas adacıklarının Lazer Diseksiyon için Geliştirilmiş Protokolü
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Sturm, D., Marselli, L., Ehehalt, F., Richter, D., Distler, M., Kersting, S., Grützmann, R., Bokvist, K., Froguel, P., Liechti, R., Jörns, A., Meda, P., Baretton, G. B., Saeger, H. D., Schulte, A. M., Marchetti, P., Solimena, M. Improved Protocol For Laser Microdissection Of Human Pancreatic Islets From Surgical Specimens. J. Vis. Exp. (71), e50231, doi:10.3791/50231 (2013).More

Sturm, D., Marselli, L., Ehehalt, F., Richter, D., Distler, M., Kersting, S., Grützmann, R., Bokvist, K., Froguel, P., Liechti, R., Jörns, A., Meda, P., Baretton, G. B., Saeger, H. D., Schulte, A. M., Marchetti, P., Solimena, M. Improved Protocol For Laser Microdissection Of Human Pancreatic Islets From Surgical Specimens. J. Vis. Exp. (71), e50231, doi:10.3791/50231 (2013).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
simple hit counter