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Bioengineering

改进方法对血脑屏障的人体细胞为主,接触模型的制备

Published: November 12, 2013 doi: 10.3791/50934

Summary

成立血脑屏障(BBB)人体模型的受益研究与BBB级故障相关的大脑条件。我们在这里描述的改进的技术,用于制备接触BBB模型,它允许在多孔膜的相对侧上的人星形胶质细胞和脑血管内皮细胞的共培养的。

Abstract

血 - 脑屏障(BBB)包括不可渗透的,但适应性脑毛细血管紧紧控制大脑环境。血脑屏障的破坏已经隐含在许多脑病变的病因,这就需要对人类的发展在体外 BBB模型,以协助临床相关研究。之间迄今所描述的众多BBB模型,静态(无流量),与血脑屏障模型,其中星形胶质细胞和脑血管内皮细胞(的BEC)的共培养在多孔膜的相对侧上,成为一种简单但真实的系统来模拟BBB与高通量筛选能力。然而这种模式的产生提出了一些技术上的挑战。在这里,我们描述了一个协议,用于制备一种利用一种新型的初级人类的BEC和永生化星形胶质细胞的组合接触人体血脑屏障模型。具体来说,我们为细节上的倒插入细胞播种一种创新的方法以及指定插入背板T染色技术和体现我们如何使用我们的模型为BBB-的相关研究。

Introduction

血脑屏障是末梢血液循环和中枢神经系统中,关键的是负责大脑止血的维护之间的专用接口。它包括不同的脑微血管内皮细胞(的BEC)这是由几个细胞和非细胞成分(见下文)在功能上的影响,以形成一个紧凑的和动态的网关到大脑。在生理条件下是BBB限制血细胞,血浆成分和有害物质,所有潜在的神经毒性的通道,进入大脑。平行地,血脑屏障选择性交换密钥离子和营养物(葡萄糖和氨基酸)和代谢废物的大脑和循环之间精确地保持大脑环境1,2。近年来它是日益明显的是,血脑屏障的破坏发生在各种慢性脑病变,如神经变性或炎症有关的疾病( 阿尔茨海默氏病和含多处Ë硬化,分 ​​别)3,以及在像缺血性中风急性4条件。

脑内皮细胞(的BEC)的独特属性血脑屏障通过脑环境5在很大程度上引起,特别是由星形胶质细胞6,7。有越来越多的了解,其它细胞类型,例如周细胞8,神经元和神经胶质细胞的1,3,以及基底膜9,支持的BEC和一起形成一个功能单元被称为“神经血管单元”(NVU),它同时夫妻神经元代谢需要它们的供应毛细血管10。

血脑屏障在病理情况下参与的基础无数次尝试开发体外 BBB模型,以协助BBB相关的研究11,12。这些模型的目标是模仿尽可能接近体内血脑屏障的特性根据NVU原理。 体外 13,人14大鼠15,鼠标器16,和猪17,18起点),在多孔膜上培养连同支持星形胶质细胞(广泛由德利等人,200511审阅)。

星形胶质细胞可在非接触条件下生长的组织培养孔的底部,通过用的BEC通过可溶性因子16的培养基还从通信的BEC(栽培在膜的上表面)分离。在更先进的模型的更好类似于血脑屏障的体内的解剖结构,星形胶质细胞被保持在接触的条件和直接邻近的BEC 13,15,17( 图1)在膜的另一侧进行培养。这种配置使建筑物能源效益守则和星形胶质细胞之间的身体接触,成立时星形胶质细胞项目通过多孔膜的工序。重要的是,对于发生的真实接触的孔隙应≥1μm的直径,由于星形细胞的最终尺不能穿过较小的孔径( 0.4微米)14,15。值得注意的是,接触BBB系统中演示了一些研究要优于他们对他们的跨内皮细胞电阻(TEER)和各种示踪剂13,17,18的内皮通透性值非接触的同行。媒体流的另外一个维度在一些体外 BBB模型剪力适用于内皮细胞为脑血管12,19的接近模拟最近添 ​​加。

一个技术障碍产生接触BBB模型时,克服星形胶质细胞是克服重力在多孔膜的腔外表面的播种。上一页协议13,20,其中星形胶质细胞被简单地播种在媒体上的顶部下降verted插入,只允许短的播种时间( 10分钟,13或2小时20)被发现在我们的手中是不够正常细胞附着。使用这种基本的方法,较长的星形胶质细胞实习期间需要不断的监测插件被频繁打开培养箱的(导致温度,pH值和湿度的波动),也容易出现不均匀的细胞种植由于通过小孔漏的媒体,尤其是如果毛孔大于1μm就业。

在这里,我们描述了一个通用协议,用于制备接触血脑屏障模型。我们的程序包括用于在反相插入,即解决了上面提到的限制细胞接种另一种方法。该方法允许星形胶质细胞的原状附着到腔外表面的膜,在平衡培养箱,对于延长的时间周期。作为一个结果,星形细胞的均匀播种实现这增加屏障质量并最大限度地减少刀片之间的基底透气性的变化。

由于使用人类细胞是人类有关的研究21重要的是,我们另外在这篇文章中展示出一种新颖的首要人权的BEC相结合的具体运用和永生化人星形胶质细胞的建立接触人体血脑屏障模型的高通量筛选能力。由于观察细胞在多孔膜是很困难的,我们也详细的染色技术,可协助合流的决心和细胞形态的多孔膜。最后,我们举例说明如何我们人类血脑屏障模型可以被用来研究组织型纤溶酶原激活剂(T-PA)的影响 - 一个血块破坏酶可作为急性缺血性中风的唯一的治疗选择 - 对血脑屏障。

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Protocol

1。细胞培养(3-7天之前至BBB大会)

1.1。小学的人脑微血管内皮细胞(建筑物能源效益守则)

建筑物能源效益守则分别购得。细胞通过正常人类脑皮质组织的分散酶分解所产生并提供冻结在通道3(<12个群体倍增)。

  1. 基质 :大衣组织培养器皿“附件因子”按照制造商的说明。
  2. 电池保养 :保持在含血清的完全培养基的BEC。对于实验,文化的BEC完全无血清培养基。维持细胞在湿润的5%CO 2,21%O 2的培养箱中在37℃下
    注意 :作为一个替代专门的试剂,0.1%(重量/体积)明胶溶液可以作为包衣试剂而DMEM/F-12补充有15mM的HEPES,10%(V / V)胎牛血清(FCS), 2mM的L-谷氨酰胺,50微克/毫升庆大霉素,20微克/毫升肝素和20μg/ ml的内皮细胞生长添加物,可用于BEC维修。
  3. 子培养进行试验 :分流汇合的BEC在1:3至1:6的比例,根据期望的时间为下一次使用(3-7天)。改变维持培养基每3天。使用的BEC多达15代。

1.2。 SVG胎儿星形胶质细胞细胞系

SVG人胎星形胶质细胞22最初来源于人胎脑转化与复制缺陷型猿猴病毒40的原代培养。

  1. 维护 :文化SVG细胞在含Earle的补充有20%(V / V)FCS(用于维持其亲代原代细胞22相同血清百分比),2mM的L-谷氨酰胺,50单位/ ml青霉素和平衡盐溶液中的最小必需培养基50微克/毫升链霉素。维持细胞在湿润的5%CO 2,21%O 2
  2. 子培养进行试验 :分流汇合SVGs以1:5至1:10的比例,根据期望的时间为下一次使用(3-7天)。除去胰蛋白酶的是不是由于血清的培养基中的高含量必需的。改变培养基每3天。使用SVGs多达20次传代。

2。大会在人类体外血脑屏障模型和共培养(第0天)

评论在体外接触血脑屏障模型的人是根据发布的协议13,23编制,修改。

2.1。刀片的涂层

  1. 把组织培养插入物(直径6.5毫米与聚酯的多孔膜,3微米孔径)在所提供的24孔板的孔中。刀片的外套腔面 隔夜在湿润的37℃培养箱与大鼠Ⅰ型胶原(20微克/厘米2; 50微升的132微克/毫升胶原蛋白I在0.02%乙酸的Milli-Q水(MQH 2 O))。 (无论是从近腔和腔侧)与MQH 2 O洗一次插入物以除去残余的酸。
    注:脑毛细血管基底膜不包含I型胶原,但主要是层粘连蛋白,Ⅳ型胶原亚型,nidogens和硫酸乙酰肝素蛋白多糖9。出于这个原因,一些研究人员利用涂层剂,如Ⅳ型胶原,纤连蛋白13,或基质胶(BD公司)16一个更真实的BBB级建模。

2.2。在底部(近腔)膜表面播种SVGs

  1. 反转插入,轻轻地适应周围的多孔膜一小段弹性硅胶管的边缘(“外管”;〜10mm长8毫米的直径,1.6 mm管壁),创建本质上是一种新的,远高于近腔面( 图2A)。
  2. 插入东东的底部DS被密封,以避免介质的泄漏。首先,准备由硅管(称为“内部管道”;〜8mm长,3.2毫米的直径,1.6毫米壁; 图2B)的插头( 图2A图2B),在其一端带有一个塑料密封锥面密封(〜3mm的长;制备切割的0.2毫升聚合酶链反应(PCR)管的底部; 2B)。此锥体不仅密封该内部管道腔,也扩大了它的边缘紧密配合到插入。接着,用无菌镊子,将硅酮插头插入腔腔并将其推进,直到它到达向上到约1-2毫米的膜( 图2A)。
  3. 接着,播种4×10 4个细胞的SVG在200μl的SVG维持培养基(SECTION 1.2.2以上)直接进入硅氧烷以及上面的腔外表面的膜( 图2A)。允许SVGs附着在培养箱中在至少4个小时。
    注意:为了保持无菌输送组装的插入在2 6孔板(1板倒置在其他; 图2C)之间,以在手术过程中尽量减少暴露在未过滤的空气。硅胶管塞和洗涤的乙醇和高压灭菌后使用。
    注意:使用插头(第2.2.2节)只适用于刀片,膜孔径大于1μm。与膜孔直径≤1微米很少泄漏,需要外部硅胶管(2.2.1节),只有配件。此外,一些比其他胶原蛋白涂层剂I(见附注2.1节)可能会阻止泄漏甚至到3微米的小孔。凭经验确定这一点。
  4. 为了监视你的星形胶质细胞的粘附状态,在种子成平行的星形胶质细胞的细胞悬浮液的一个标准的96孔相同的体积。该井具有相同的表面面积为6.5 mm插入(0.33 平方厘米),并且允许细胞的相差显微镜易于可视化比插入膜。当你观察在控制星形胶质细胞有足够的坚持96孔,星形胶质细胞已充分也坚持到插入膜。
  5. 当星形胶质细胞已充分地附着在控制96孔,转让插入组件到组织培养罩(见上文附注),并轻轻地取下外部硅胶管和插头。返回插入到正常( 竖直)方向到含有800微升/孔的BEC维持液(上述第1.1.2节)所提供的水井。

2.3。播种建筑物能源效益守则进入管腔室上方的星形胶质细胞

种2×10 4的BEC在200μl到胶原包被的腔表面和返回的樱雪RTS进入孵化器。

2.4。共培养

实验前,共培养了SVG / BEC种子镶在BEC介质3天没有媒体的变化。

3。实验与人体血脑屏障模型(3天)

  1. 通过分别与600μL和100μL无血清的BEC介质,取代近腔和管腔媒体刺激体外血脑屏障先洗细胞。
  2. 再次吸出管腔介质,并替换为100μl的无血清培养基中以刺激剂。
    注意:如果近腔室的刺激是必要的(从星形胶质细胞车厢激活体外 BBB),吸近腔中,替换600微升无血清培养基与刺激剂。
  3. 测试各实验组的一式三份(因此,如果进行管腔的刺激,这需要3×100微升,我们建议稀释重剂到它们的最终浓度在350微升无血清培养基中的每个组,以减少井之间移液误差)。
  4. (对于后者我们用异硫氰酸荧光素(FITC)偶联的白蛋白)和/或TEER 13,16,25的测定如先前所述进行标准的细胞旁和/或标记的示踪剂16,24的跨细胞通透性测定。

考虑到在基线渗透性波动的实验之间,分析,以不含细胞的涂层刀片(其用作用于最大导磁率的参考),并利用公式载体治疗组的变化相对导磁率:导磁率(最大值的%)=(媒介物组的平均渗透率值)×100 - 车辆组)/(透过性的插入件坯件的值的平均渗透率值 - 试验刀片的渗透率值。

4。多孔膜细胞可视化

NT“> 注释 :未染色的细胞上插入膜是难以相衬或微分干涉对比(DIC)显微镜观察,因为膜是相当不透明的干扰光传输为了解决这个问题,我们开发了细胞的各种染色程序上。插入件,从而大大提高细胞的外观上的膜,通常,染色膜的插入而仍然附着在插入,在该孔中。该膜应该只在用于安装目的的染色过程结束时被删除。

4.1。苏木素染色

  1. 固定刀片用冰冷的4%(重量/体积)的多聚甲醛(PFA)在磷酸盐缓冲盐水(PBS; 130 mM氯化钠,10毫米的Na 2 HPO 4,10mM的的NaH 2 PO 4,pH 7.2)中20分钟。在PBS洗一次。
  2. 淹没在插入2分钟,0.1%Mayer氏苏木素液。
  3. 轻轻地用自来水冲洗刀片(浸没的插件ERT在一个烧杯中含有自来水轻轻吹打多余的水出来)。插入转移到斯科特的自来水溶液(2 g / L的碳酸氢钠3,20 g / L的硫酸镁4)〜20秒,直到所需的蓝色发展。用自来水(4.1.3节)洗一遍插入。一个可选的伊红染色可以在这里介绍通过浸渍在插入10秒后自来水冲洗1%曙红溶液。
  4. 空气干燥插入膜。使用手术刀(割开膜边缘)去除膜和将其安装在明场成像的载玻片
    注:拆卸和安装膜前用100%乙醇随后二甲苯如果二-N-butylphthalateinxylene(DPX)安装介质是利用清洗刀片。

4.2。扫描电子显微镜(SEM)

  1. 固定刀片用冰冷的4%(重量/体积)的PFA的PBS 20分钟。在PBS中洗涤3次。
  2. 后固定在膜中的1%30分钟(w / v的在MQH 2 O),四氧化锇
  3. 于水(4.1.3节)洗净刀片和脱水在不断升级的乙醇梯度(50%,70%,90%,每次5分钟,然后用3倍100%乙醇为每间隔10分钟)。
  4. 治疗脱水刀片与六甲基二硅氮烷(HMDS)的混合物:乙醇(1:2,然后5分钟,2:1)。
  5. 治疗插入物具有100%的HMDS 5分钟,干燥的条件下空气干燥和存储。
  6. 使用手术刀(割开膜边缘)取下膜。用扫描电子显微镜检查膜。

4.3。免疫荧光

  1. 固定刀片用冰冷的4%(重量/体积)的PFA的PBS中20分钟,洗一次,在Tris-缓冲盐水(TBS;的50mM的Tris-HCl pH值为7.6,154 mM氯化钠,0.22微米过滤的)。
  2. 如先前所述26上的插入膜进行细胞的免疫染色。
  3. 使用手术刀(割开膜边缘)取下膜将其安装在AG姑娘幻灯片荧光封固剂。通过荧光显微镜检查膜。

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Representative Results

为了建立一个人,接触BBB模型,我们不得不培养于多孔膜SVGs和的BEC具有3微米的孔隙大小,显示允许的星形胶质细胞的最终英尺通道,用于与内皮细胞14,15,27,28接触。完整的接触模型的示意图如图1(左图)。通过接触系统呈现的主要技术挑战是需要的种子的星形胶质细胞对抗重力在膜腔外表面。我们已通过主要产生一个可移动的硅氧烷以及在近腔膜表面的顶部上,同时防止介质泄漏带有附加硅氧烷插头插入腔腔体( 图2)成功地完成这一任务。该方法允许SVGs的一个最佳的,不间断的播种期间(至少4小时),这反过来又成为牢固地附着到具有最小的细胞损失的多孔表​​面。事实上,3天播种后,双方SVGs和建筑物能源效益守则的应用耳融合和覆盖膜均匀,因为从苏木染插入图像判断(见4.1节, 图3A,左图)。此外,这两种类型的细胞保持在多孔膜的细胞特异性标志物(胶质纤维酸性蛋白在SVGs 22弥漫染色模式和血管性血友病因子在Wiebel-Palade小体和细胞质泡在建筑物能源效益守则的表达; 图3A,右图)通过免疫荧光法(第4.3节)观察。此外,从扫描电镜成像(4.2节),很明显,SVGs和能源效益守则有能力直接在膜孔( 图3A,中板,箭头),这种现象人为地有助于在体外血脑屏障的物理屏障作用越来越大接触机型1 3,28。在功能上,在SVGs的存在下荧光白蛋白28即兴的内皮通透性值(PE)16,24VED〜4倍相对于单独的BEC(P <0.01,N = 4),从0.574±0.199×10 -3至0.126±0.028×10 -3厘米/分钟没有或星形胶质细胞(SVGs),分别为。这些白蛋白PE结果具有可比性使用鼠标的BEC与大鼠C6胶质瘤细胞29另一项研究。我们播种协议被成功地应用于还新鲜分离的原代小鼠的BEC和生长在1微米的小孔鼠标主星形胶质细胞。在这种小鼠接触模型,我们得到一个合理的物理屏障的亲水性小示踪剂荧光素钠(PE = 0.83±0.22×10 -3厘米/分钟; N = 3)。因此,我们的播种方法可以延长预备来自其他物种的BBB级车型。

一个接触血脑屏障模型的最基本的功能是星形胶质细胞通过膜孔突出其最终英尺到物理接触的内皮细胞的能力。一些研究利用扫描电子显微镜来鉴定TIFY星形胶质细胞从近腔膜表面(如星形胶质细胞是种子)传递到内腔表面处理,原则上证明了星形胶质细胞和EC之间的接触是合理14,15,27。下面的这些研究,我们通过SEM近腔表面播种SVGs成像后管腔膜。 如图3B所示 ,星形细胞(SVG)端脚可以观察到通过3微米的孔进入腔室,确认接触可以SVGs和的BEC接种在该尺寸的孔之间可能存在。总的来说,我们的播种方法简单,高效,并取得了一个真实的接触血脑屏障模型。

我们利用我们的人接触BBB模型,探讨的t-PA,溶栓剂的作用,对血脑屏障。许多文章都认为的t-PA可能能够诱导开放的血脑屏障其静脉给药过程中对急性缺血性卒中30-33的治疗。此t-PA和血脑屏障之间的相互作用可能有助于与t-PA诱导溶栓4,34,35相关的出血并发症,因而对目前的研究工作的主题。我们的体外研究证实了t-PA确实增加了完整的血脑屏障通透性以浓度( 图4A)和时间依赖的方式( 图4B),这两个药理学相关的范围36,37内的人。此外,SVG星形胶质细胞的戏剧性的形态学变化可以在多孔膜进行曝光后至t-PA( 图4C),这表明星形细胞反应的t-PA背后的t-PA诱导的血脑屏障开放进行观察。随后的调查发现了t-PA通过激活纤溶酶原的刺激星形胶质细胞 - 其天然底物 - 进入强效广谱蛋白酶纤溶酶。此外,t-PA和纤维蛋白溶酶被发现激活Rho激酶(ROCK)中星形胶质细胞的信号,并封锁 THE ROCK通路的抑制的t-PA诱导的血脑屏障开放28。这是利用BBB模型如何导致鉴定新的生物过程和治疗的机会,一个很好的例子。

图1
图1。 体外血脑屏障模型的插入型配置。静态体外血脑屏障模型示意图(无流量)。在基本模型的脑内皮细胞(ECs;橙色)是单独培养在多孔膜(黄色)。在更先进的方法内皮细胞共培养与星形胶质细胞(绿色)。星形胶质细胞可以生长或在非接触条件下,对​​井孔(右)的底部,或在多孔膜中的接触条件下(左)的腔外表面。NK“>点击这里查看大图。

图2
图2。对于近腔膜面播种星形胶质细胞的改进方法制备的接触血脑屏障模型(A)插入反转,一小段硅胶管(“外管”)是围绕其周边聚集和硅胶塞装入腔腔。该组件在腔外表面的顶部创建一个良好,防止媒体从通过毛孔渗出。细胞可以接种在井中,并使其附着静置的时间(右)(B)的硅氧烷插头从另一块硅胶管(“内部管道”)的,在一端具有密封锥体密封制备长时间哪插入其空腔(C)一旦接种,在组装的刀片两个6孔板之间传输的(一个板倒比其他),以尽量减少污染的风险。 点击这里查看大图

图3
图3。 。脑内皮细胞(的BEC)和3微米的多孔膜A)苏木精(左图),扫描电子显微镜(SEM 星形胶质细胞可视化 ;中图)和SVGs的免疫荧光图像(右图)(在腔外表面,40000每6.5毫米插入,上图)及能源效益守则(20,000元6.5毫米的胶原蛋白插入我涂,管腔面,底部面板)生长在3天3微米的多孔膜(无共培养)。这两种类型的细胞这段时间FRA内达到汇合我和维持其细胞特异性标志物(胶质纤维酸性蛋白(GFAP)的SVG和血管性血友病因子(vWF)在Wiebel-Palade小体的建筑物能源效益守则,右图)在膜上。箭头在扫描电镜面板进一步表明这两种类型的细胞直接种植在和遮盖毛孔的能力,而箭头代表细胞核。在SEM图像标尺代表25微米(顶部)或20微米(底部)。在免疫荧光图像比例尺表示40μm的(B)的SVG端脚穿过3微米的孔进入所述腔(BEC)SVGs(单独),在近腔膜表面的表面3d接种后的SEM图像。这些图像用于验证在我们人类血脑屏障模型SVGs和能源效益守则之间的真正联系的发展潜力。标尺代表的右侧面板左侧板和12微米6微米。 点击这里查看大图

图1,左边的面板。

图4
图4。组织型纤溶酶原激活剂的BBB渗透性(的t-PA)介导的增加是由星形胶质细胞的形态学变化驱动的(A)增加的t-PA的浓度加入到该人的体外 BBB渗透性和的腔室中进行了评估:24小时后来通过通道荧光白蛋白进入近腔室中。的t-PA以浓度依赖的方式增加血脑屏障的渗透性。 N = 4-6各组,但的t-PA 10nM的,其中n = 2。 *** P <0.001相对于所有其他组通过ANOVA和纽曼-Keuls检验事后(B)的t-PA(1μM)加入到人体的腔室的一种方法体外血脑屏障通透性用于评估前8小时和24小时。如图所示,的t-PA介导的血脑屏障开放已经大幅度8小时后刺激(最大24小时的70.26%),但进一步增加,观察24小时。 N = 6,*** P <0.001,** P <0.01compared到零单因素方差分析与纽曼-Keuls检验事后。在(A)以及(B),酒吧/数据点表示平均值±SEM(C)苏木精染色SVGs(上图)或SVGs(底部小图)的扫描电子显微照片上的聚酯膜插入件的代表性的亮场图像(3微米孔径)后24小时治疗用载体或t-PA(1μM)。发音的t-PA诱导的形态学改变和的SVG单层完整性破坏,可以观察到,这表明星形细胞反应的t-PA的背后的t-PA对血脑屏障通透性的影响。图像是代表两个独立实验。在SEM图像比例尺表象发送61微米(左)或120微米(右)。 点击这里查看大图

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Discussion

医学研究脑病变遭受多大的平移难度。在急性缺血性中风的区域,例如,许多药物,在动物模型中表现出极大的承诺未能在诊所38,39。的原因,这些令人失望的结果是多种多样的,包括临床前测试系统的不忠的人中风的情况,并从动物研究21获得的结果夸大。一个策略,以提高临床前研究结果的预测价值临床阶段的额外开发基于人体细胞的体外模型,这些可以提供强有力的和符合成本效益的工具,用于筛选新的药物和机制,以便更好地专注于临床相关途径21。在这方面,我们详细介绍了这里在我们的实验室建立,利用一种新的人类永生天文组合人类接触BBB模型进行的过程核细胞(SVGs)和人的BEC初级考试中风有关的现象。

在静态条件下(无流量),与血脑屏障模型( 图1)类似最好在体内的解剖结构,并证明是优于在其阻隔性能13,17,18。重要的是,能源效益守则和星形胶质细胞之间的真正接触只发生在膜具有较大的孔径(≥1微米),其允许的星形胶质细胞末端的脚和随后的感应更严格的(低渗透性)BEC单层14,15,27通道。然而,在反相插入的星形胶质细胞具有较高的孔径播种 - 在一个接触血脑屏障模型的制备核心技术元素 - 提出了一种双重的技术挑战,因为除了有限的介质体积可被添加到该反相6.5毫米插入物(〜50微升),将膜也容易发生介质的泄漏,由于其较大的孔径。这些限制可以使ASTrocytic播种尴尬和矛盾。

我们的创新技术播种星形胶质细胞上倒插入与3微米的微孔提供了这个过程的简单而有效的解决方案。通过在腔外表面的顶部上建立一个可移动的,不可渗透的聚硅氧烷以及我们大大改善了星形胶质细胞“成功地粘附在多孔膜的能力。这使星形胶质细胞的均匀生长于腔外表面,并允许大量刀片,许多实验参数(例如,我们最近执行的对BBB 28五种不同的纤维蛋白溶酶原活化剂的效果的筛选)同时筛选的可重复性制备。因此,尽管它的简单,我们发现我们的方法,使用这种接触BBB模型,从而大幅度提高我们的研究的产量和质量。我们的星形胶质细胞播种方法的一个限制是对于插入,即怀有薄(10μ额外的人工处理的要求米厚)膜。过度或粗暴地处理,造成微撕裂而损坏膜。因此,使用柔软而有弹性的硅胶管是必要的,因为在组装/拆卸,必须用最小的力进行的。

就其整体的概念,根据前面所述的协议14,23原本用于原代人类细胞中建立了我们人类血脑屏障模型。尽管他们的优势为BBB级建模,在就业的主要人脑细胞的一个缺点是无法经常访问活人脑组织的正常生产的主要能源效益守则和星形胶质细胞和/或参与商业获得它们的成本。由于许多BBB模型成功地替代初级星形胶质细胞与星形胶质细胞永生化(例如用大鼠C6胶质瘤细胞29),这是合理的采用SVG星形胶质细胞22作为一种新的,丰富的和具有成本效益的选择人类血脑屏障模型。 SVGs来的能力积极的影响,原则验证其是否适合BBB研究BEC的屏障功能。与此相反,我们选择将主要建筑物能源效益守则在我们BBB模型体内 1,2,9在血脑屏障的关键作用。重要的是,主要的BEC的长期培养可导致去分化及其BBB-特异性表型的劣化。这的确可能是体现在我们的系统通过对白蛋白相当高内皮通透性值。出于这个原因,我们用我们的模型主要以相对方式28( 图4),考虑到其升高的基底透气性。如果在非常紧迫人类BEC单层所需的屏障功能可通过加入化学物质,如糖 ​​皮质激素氢化可的松17或环AMP磷酸二酯酶抑制剂13的进一步改善。永生化人的BEC,如hCMEC/D3细胞系40,也可以采用它们的能力,以便更好地维持钛GHT路口随着时间的推移。然而,BEC细胞系通常表现出减少阻隔品质比较低传代的BEC初级41,42和需要,因为其他的电位变化(细胞表面受体,即表达改变),要慎重考虑。

总的来说,我们在星形胶质细胞的细胞类型( SVGs的就业),并大幅改善星形胶质细胞播种协议的修改导致了一代重现性好,易于组装和真实的人接触血脑屏障模型。铭记它的局限性,该系统可以作为体外研究不仅对急性缺血性中风的有用工具,因为我们这里的例子28,但也涉及血脑屏障的调制其他几个脑病变。

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Disclosures

作者什么都没有透露。

Acknowledgments

这项研究是由赠款,以RLM从澳大利亚国家健康和医学研究委员会(赠款#606658)。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Attachment Factor Cell-Systems Corporation 4Z0-210
Brain microvascular endothelial cells (BECs), primary, human Cell-Systems Corporation ACBRI 376
Complete medium Cell-Systems Corporation 4Z0-500 Supplemented with CSC JetFuel
Complete serum-free medium Cell-Systems Corporation SF-4Z0-500 Supplemented with CSC RocketFue
DMEM/F-12 with 15 mM HEPES Life Technologies 11330-032
Endothelial cells growth supplement (from bovine origin) Sigma-Aldrich E2759-15MG
External silicone tubing Watson-Marlow 913.A080.016 Pumpsil brand, 8 mm internal diameter, 1.6 mm wall
Foetal calf serum Lonza 14-501F
Gentamycin sulfate Life Technologies 15750-060
Heparin sodium Pfizer 1,000 U/ml
Hexamethyldisilazane (HMDS) Sigma-Aldrich H4875
Human brain microvascular endothelial cells Cell-Systems Corporation ACBRI 376
Internal silicone tubing Watson-Marlow 913.A032.016 Pumpsil brand, 3.2 mm internal diameter, 1.6 mm wall
L-Glutamine Life Technologies 25030
Mayer’s hematoxylin solution Amber Scientific MH
Minimum essential medium with Earle’s balanced salt solution HyClone Laboratories SH30244.01
Penicillin/Streptomycin Life Technologies 15140
Rat collagen I Trevigen 3440-100-01 Cultrex brand
Tissue culture inserts Corning Life Sciences 3472 Transwell brand, 6.5 mm in diameter, with polyester porous membrane, 3 µm pore-size

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References

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生物工程,第81,血 - 脑屏障,模型,细胞培养,星形胶质细胞,脑血管内皮细胞,插入,膜
改进方法对血脑屏障的人体细胞为主,接触模型的制备
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Niego, B., Medcalf, R. L. ImprovedMore

Niego, B., Medcalf, R. L. Improved Method for the Preparation of a Human Cell-based, Contact Model of the Blood-Brain Barrier. J. Vis. Exp. (81), e50934, doi:10.3791/50934 (2013).

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