Summary

En protokol til at inficere<em> Caenorhabditis elegans</em> Med<em> Salmonella typhimurium</em

Published: June 26, 2014
doi:

Summary

C. elegans har vist sig som en ny genetisk model til at studere vært-patogen interaktioner. Her beskriver vi en protokol til at inficere C. elegans med Salmonella typhimurium kombineret med den dobbelt-strenget RNAi interferens teknik til at undersøge, hvilken rolle værtsgener i forsvaret mod Salmonella infektion.

Abstract

I det sidste årti, C. elegans er opstået som et invertebrat organisme for at studere samspillet mellem værter og patogener, herunder værtens forsvar mod gram-negativ bakterie Salmonella typhimurium. Salmonella etablerer vedvarende infektion i tarmen C. elegans og resulterer i tidlig død af inficerede dyr. Der er identificeret en række immunitetsstandarder mekanismer i C. elegans at forsvare sig mod Salmonella-infektioner. Autophagy en evolutionært bevaret lysosomale nedbrydningsvej, har vist sig at begrænse Salmonella replikation i C. elegans og pattedyr. Her er en protokol beskrevet at inficere C. elegans med Salmonella typhimurium, hvor ormene udsættes for Salmonella i en begrænset tid, svarende til salmonellainfektion hos mennesker. Salmonella infektion betydeligt forkorter levetiden for C. elegans </ Em>. Brug af afgørende autofagi genet BEC-1 som et eksempel, kombinerede vi denne infektion metode med C. elegans RNAi fodring tilgang og viste denne protokol kan bruges til at undersøge funktionen af C. elegans værtsgener i forsvaret mod Salmonella infektion. Da C. elegans hele genomet RNAi biblioteker er tilgængelige, protokollen gør det muligt at foretage omfattende screene for C. elegans gener, der beskytter mod salmonella og andre tarmpatogener hjælp genom-dækkende RNAi biblioteker.

Introduction

Den fritlevende jord rundorm Caenorhabditis elegans er en enkel og genetisk medgørlig model organisme bruges til at studere mange biologiske spørgsmål. C. elegans findes overvejende som selvstændige befrugtende hermafroditter. Hanner spontant dannes af ikke-disjunktion af X-kromosomet under gametogenese 1,2. Ved tilstedeværelse af rigelig mad, C. elegans løbende at udvikle gennem fire larvestadier til voksen. Temperatur også indflydelse C. elegans udvikling; hurtigere udvikling er observeret ved højere temperaturer. I laboratoriet C. elegans er dyrkes ved en standard temperatur på 20 ° C på agarplader med seedede bakterie Escherichia coli (stamme OP50) som fødevarer 1,2.

I det sidste årti, C. elegans har vist sig som en hvirvelløse organisme for at studere vært-patogen interaktioner 3-5. I naturen C. elegans spiser bakterier sin nutrient kilde 1,2. Dens normale bakterielle laboratorium mad, OP50, let kan erstattes med andre patogener til at undersøge samspillet mellem C. elegans og helst valgt patogen. Under disse betingelser, tarmen er det primære sted for infektionen. Faktisk har vist en bred vifte af bakterielle patogener, letalt inficere C. elegans 3-5.

Gram-negative bakterie Salmonella er en gastrointestinal patogen, der forårsager menneskelig fødevarebåren sygdom på verdensplan 6,7. C. elegans er en god model vært for Salmonella typhimurium, da denne bakterie replikater og udviser vedvarende tarminfektioner 8-10. C. elegans er blevet anvendt til at identificere både hidtil ukendt og tidligere kendt Salmonella virulensfaktorer 11. Interessant C. elegans immunsystemet succes begrænser Salmonella replikation. Det er blevet rapporteret tidligere at inhibition af autophagy gener gør øget Salmonella replikation i C. elegans, hvilket resulterer i tidlig død af inficerede orme 10. Macroautophagy (herefter kaldet autophagy) er en dynamisk proces, der involverer omlægning af subcellulære membraner til at udskille cytoplasma og organeller til levering til lysosomet for nedbrydningen 12. Autophagy er blevet rapporteret at begrænse Salmonella replikation i C. elegans og pattedyr 10,13.

C. elegans genomet var det første flercellede eukaryote genom sekventeret; det er lydhør over for RNAi behandling 14-16. Desuden kan RNAi administreres effektivt ved at udsætte orme at indtage bakterier indeholdende dobbeltstrenget RNA af målgenet, kaldet RNAi fodring 16,17. Hele genomet RNAi fodring biblioteker er blevet genereret for genom-dækkende RNAi screening 16,18. Heri en salmonellainfektion protocol kobles med RNAi fodring at tillade test C. elegans gener af interesse for deres evne til at beskytte mod Salmonella infektion.

Protocol

1. XLD (Xylose lysin desoxycholat) agarplader XLD agar er et selektivt vækstmedium for Salmonella, der vises som sorte kolonier på XLD agarplader. Men hvis der ikke er nogen bekymring for forurening, en regelmæssig LB-plade kan være substitueret. Afvejes 5,5 g XLD agar og resuspender i 5 ml deioniseret vand. Bland grundigt, indtil al agar er våd. Tilføj 95 ml deioniseret vand, indtil alle klumper er væk, og mediet er helt resuspenderet. Kog medi…

Representative Results

Ved 20 ° C, den mediane levetid vildtype N2 orme er 17 dag (figur 2a og tabel 2). Salmonella infektion signifikant nedsætter medianen levetid N2 orme til 10,5 dage (p = 0,0002, log-rank test) (figur 2A ). Hvis en C. elegans genet spiller en vigtig rolle i forsvaret mod Salmonella infektion, forventes det, at dens hæmning vil give modtagelighed for salmonellainfektion. I virkeligheden, i forhold til …

Discussion

C. elegans er en simpel genetisk model organisme, der spiser bakterier som sin næringskilde. Således er det nemt at sætte sin normale bakterielle mad med en tarm patogen til at undersøge samspillet mellem C. elegans og det valgte patogen. Heri beskrives en protokol er beskrevet at kombinere salmonellainfektion og C. elegans RNAi fodring behandling for at undersøge, hvilken rolle værtsgener i forsvaret mod Salmonella infektion. Tidligere infektion protokoller eksponere <…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker Dr. Diane Baronas-Lowell for kritisk læsning af manuskriptet. Dette arbejde blev støttet af en FAU Charles E. Schmidt College of Science Seed Grant og en aldrende stipendium fra Ellison Medical Foundation til KJ

Materials

LB Broth Fisher BP9723-500
XLD agar EMD Chemicals 1.05287.0500
Bacto Agar Fisher DF0140-01-0
Peptone Fisher BP1420-500
Sodium Chloride Fisher S671-500
Calcium Chloride Fisher C69-500
Magnesium Sulfate Fisher M65-500
IPTG Gold Biotechnology 12481C50
Cholesterol Sigma C8667-25G
Ampicillin Fisher  BP1760-25
Salmonella typhimurium ATCC ATCC14028
Petri Dish 95 x 15mm Fisher FB0875714G
Petri Dish 60 x 15mm  Fisher 08-757-13A 
Falcon Serological pipet Fisher 13-668-2
Falcon Express Pipet-Aid Fisher 13-675-42
MaxQ6000 shaking incubator  Thermo Scientific SHKE6000-7
Incubator Percival I-36DL

References

  1. Riddle, D. L., Blumenthal, T., Meyer, B. J., Priess, J. R. . C. elegans II. , (1997).
  2. Brenner, S. The Genetics of Caenorhabditis elegans. Genetics. 77, 71-94 (1974).
  3. Aballay, A., Ausubel, F. M. Caenorhabditis elegans as a host for the study of host-pathogen interactions. Curr Opin Microbiol. 5, 97-101 (2002).
  4. Kurz, C. L., Ewbank, J. J. Caenorhabditis elegans: an emerging genetic model for the study of innate immunity. Nat Rev Genet. 4, 380-390 (2003).
  5. Mylonakis, E., Aballay, A. Worms and flies as genetically tractable animal models to study host-pathogen interactions. Infection and Immunity. 73, 3833-3841 (2005).
  6. Ford, M. W., et al. A descriptive study of human Salmonella serotype typhimurium infections reported in Ontario from 1990 to 1997. Can J Infect Dis. 14, 267-273 (2003).
  7. Voetsch, A. C., et al. FoodNet estimate of the burden of illness caused by nontyphoidal Salmonella infections in the United States. Clin Infect Dis. 38 Suppl 3, (2004).
  8. Aballay, A., Yorgey, P., Ausubel, F. M. Salmonella typhimurium proliferates and establishes a persistent infection in the intestine of Caenorhabditis elegans. Curr Biol. 10, 1539-1542 (2000).
  9. Alegado, R. A., Tan, M. W. Resistance to antimicrobial peptides contributes to persistence of Salmonella typhimurium in the C. elegans intestine. Cell Microbiol. 10, 1259-1273 (2008).
  10. Jia, K., et al. Autophagy genes protect against Salmonella typhimurium infection and mediate insulin signaling-regulated pathogen resistance. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 106, 14564-14569 (2009).
  11. Tenor, J. L., McCormick, B. A., Ausubel, F. M., Aballay, A. Caenorhabditis elegans-based screen identifies Salmonella virulence factors required for conserved host-pathogen interactions. Curr Biol. 14, 1018-1024 (2004).
  12. Levine, B., Klionsky, D. J. Development by self-digestion: molecular mechanisms and biological functions of autophagy. Developmental Cell. 6, 463-477 (2004).
  13. Birmingham, C. L., Smith, A. C., Bakowski, M. A., Yoshimori, T., Brumell, J. H. Autophagy controls Salmonella infection in response to damage to the Salmonella-containing vacuole. J Biol Chem. 281, 11374-11383 (2006).
  14. . The C. elegans Sequencing Consortium. Genome sequence of the nematode C. elegans: a platform for investigating biology. Science. 282, 2012-2018 (1998).
  15. Fire, A., et al. Potent and specific genetic interference by double-stranded RNA in Caenorhabditis elegans. Nature. 391, 806-811 (1998).
  16. Kamath, R. S., Martinez-Campos, M., Zipperlen, P., Fraser, A. G., Ahringer, J. Effectiveness of specific RNA-mediated interference through ingested double-stranded RNA in Caenorhabditis elegans. Genome Biol. 2, 1-10 (2001).
  17. Liang, J., Xiong, S., Savage-Dunn, C. Using RNA-mediated interference feeding strategy to screen for genes involved in body size regulation in the nematode C elegans. J. Vis. Exp. (72), (2013).
  18. Fraser, A. G., et al. Functional genomic analysis of C. elegans chromosome I by systematic RNA interference. Nature. 408, 325-330 (2000).
  19. Stiernagle, T. Maintenance of C. elegans. WormBook: the online review of C elegans biology. , 1-11 (2006).
  20. Aballay, A., Ausubel, F. M. Programmed cell death mediated by ced-3 and ced-4 protects Caenorhabditis elegans from Salmonella typhimurium-mediated killing. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 98, 2735-2739 (2001).
  21. Melendez, A., et al. Autophagy genes are essential for dauer development and lifespan extension in C. elegans. Science. 301, 1387-1391 (2003).
check_url/51703?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Zhang, J., Jia, K. A Protocol to Infect Caenorhabditis elegans with Salmonella typhimurium. J. Vis. Exp. (88), e51703, doi:10.3791/51703 (2014).

View Video