Summary

Analys av genuttryck Förändringar i Rat Hippocampus Efter Deep Brain Stimulation av Anterior Thalamic Nucleus

Published: March 08, 2015
doi:

Summary

The mechanism underlying the therapeutic effects of Deep Brain Stimulation (DBS) surgery needs investigation. The methods presented in this manuscript describe an experimental approach to examine the cellular events triggered by DBS by analyzing the gene expression profile of candidate genes that can facilitate neurogenesis post DBS surgery.

Abstract

Djup hjärnstimulering (DBS) kirurgi, med inriktning olika regioner i hjärnan som de basala ganglierna, thalamus och subtalamiska regioner, är en effektiv behandling för flera rörelsestörningar som inte har lyckats svara på medicinering. Senaste framstegen inom området för DBS kirurgi har börjat utvidga tillämpningen av denna kirurgisk teknik till andra villkor så olika som sjuklig fetma, depression och tvångssyndrom. Trots dessa expanderande indikationer, är lite känt om de underliggande fysiologiska mekanismer som underlättar de gynnsamma effekterna av DBS kirurgi. Ett sätt på denna fråga är att utföra genuttrycksanalys i nervceller som tar emot den elektriska stimuleringen. Tidigare studier har visat att neurogenes i råtta gyrus dentatus framkallas i DBS inriktning av den främre kärnan i thalamus 1. DBS kirurgi med inriktning på ATN används i stor utsträckning för behandling refraktär epilepsi. Det är därför av mycket interest för oss att utforska de transkription förändringar som induceras av elektriskt stimulera ATN. I detta manuskript, beskriver vi våra metoder för stereotaktiskt guidad DBS kirurgi med inriktning på ATN hos vuxna Wistar råttor. Vi diskuterar också de efterföljande stegen för vävnads dissektion, RNA isolering, cDNA förberedelse och kvantitativ RT-PCR för att mäta genuttryck förändringar. Denna metod skulle kunna tillämpas och ändras för att stimulera de basala ganglierna och andra regioner i hjärnan som vanligen kliniskt inriktade. Den genuttryck studie beskrivs här förutsätter en kandidat målgen tillvägagångssätt för att upptäcka molekylära spelare som kan styra mekanismen för DBS.

Introduction

Historien bakom utvecklingen av Deep Brain Stimulation som en neurokirurgisk teknik går tillbaka till 1870-talet då möjligheten att elektriskt stimulera hjärnan kretsar undersöktes 2. Användningen av kronisk högfrekvent stimulering som behandling för neuronala sjukdomar startade under 1960-talet 3. Senare under 1990-talet med tillkomsten av kronisk implantation DBS elektroder 4-6, antalet neuronala sjukdomar som behandlades av DBS fortsatt att öka. Deep Brain Stimulation användes först i USA som en behandling av essentiell tremor 6. Idag operationen används i stor utsträckning för att behandla neuronala sjukdomar som för närvarande untreatable genom farmakologisk intervention. DBS används idag för att behandla rörelserubbningar vid Parkinsons sjukdom och dystoni 7-9. Alzheimerstyp demens, Huntingtons sjukdom, epilepsi, smärta och neuropsykiatriska sjukdomar såsom depression, OCD, Tourettes7; s syndrom och missbruk är några av de villkor mottagliga för behandling av DBS 10-12. Medan DBS operation FDA godkänt för behandling av Parkinsons sjukdom, dystoni och essentiell tremor, användning av DBS för att behandla andra villkor som nämns ovan är i olika stadier av lab och kliniska studier som erbjuder mycket löfte till patienter 13,14.

Kliniskt är DBS operation utförs i två steg. Den första etappen innebär kirurgiskt positionera DBS elektroder vid riktad anatomiska läge med hjälp av en kombination av radiologisk positionering, CT, MR samt mikroelektrod avläsningar för ökad precision. Det andra steget involverar att implantera en pulsgenerator i patientens övre bröstet och installera förlängningen leder från hårbotten till pulsgeneratorn. Baserat på den neurologiskt tillstånd har flera programmeringssystem för pulsgeneratorn standardiserats och kommer att användas för att leverera den önskade spänningen. Den slutliga volTage nås stegvis så att få bästa kliniska svaret med minimal spänning 15. Men i våra studier, till skillnad från de kroniska DBS implantat används kliniskt, för enkelhetens skull har vi tillgripit studera en engångs högfrekvent stimulering (1 timme) i våra djurmodeller.

En del av vår grupps forskning fokuserar på att undersöka användningen av DBS operation för behandlingsresistent epilepsi. Stereotaktiska kirurgiska tillvägagångssätt med högfrekvent stimulering har undersökts av många andra som ett effektivt alternativ för att behandla medicinskt refraktär epilepsi som utgör ca 30% av alla fall av epilepsi 10,16,17. Cerebellär stimulering inriktning kortikala ytan samt de djupa cerebellära kärnorna har använts tidigare som mål att behandla epilepsi 10,18,19. Dessutom har hippocampus stimulering också prövats men med blandade resultat 20,21. Några av de andra undersöktaDBS mål för epilepsi inkluderar hjärnbarken, thalamus, nucleus subthalamicus och vagusnerven 8. Men följande resultat från flera studier under de senaste åren, har den främre talamisk kärnan (ATN) fram som den vanligaste DBS mål för behandling av epilepsi 10,22. Utifrån kunskap om neuroanatomiska kretsar och fynd från djurmodeller, har flera studier fokuserat på den terapeutiska effekten av djup hjärnstimulering av ATN vid behandling av epilepsi 23-26. ATN är en del av det limbiska kretsen och är belägen i den region av hjärnan som påverkar anfallsfrekvens. Studier av Hamani et al., Har testat effekten av ATN-DBS i en pilokarpin inducerade epilepsi modell och fann att bilaterala ATN stimulering långvarig latenser för pilokarpin-inducerad kramper och status epilepticus 24. Vidare högfrekvent stimulering av ATN fann att minska anfallsfrekvensen i en pentylentetrazol (PTZ) modell av epilepsy 25,27-29. Lee et al., Har rapporterat en genomsnittlig minskning av anfallsfrekvensen med cirka 75% vid kronisk djup hjärnstimulering av ATN vid behandling eldfast partiell epilepsi 30.

En ny klinisk studie på behandlingsresistent epilepsi har visat lovande resultat efter DBS operation riktar den främre talamisk kärnan (ATN) 22. En multicenter randomiserad klinisk studie med 110 patienter som genomgick bilateral DBS av ATN för behandling refraktär epilepsi (SANTE rättegång) indikerade en nedgång i anfallsfrekvensen med cirka 40% 31. Resultaten från denna studie antydde också på en fördröjd optimal antiepileptiska effekt observerades vid 2-3 månader efter operationen. Ytterligare studier av Toda et al., Som bekräftas med dessa fynd där de visade neurogenes händer vid ett senare tillfälle inlägg DBS (dag 3-5) i djurmodeller 1. Dessutom Encinas et al., Har rapporterat hippocampus neurogenesis i vuxen mus gyrus dentatus efter högfrekvent stimulering av ATN 32. Tidigare studier 33-35 har rapporterat sjunkande hippocampus neurogenes i vissa epileptiska fall såsom kronisk tinningloben epilepsi och en förening med inlärnings underskott, försämrat minne och spontana återkommande motoriska anfall. Dessutom fanns det en minskning av neurala stamcells progenitor faktorer såsom FGF2 och IGF-1 i den kroniskt epileptiska hippocampus i djurmodeller 33. Med tanke på detta, interventionell strategier såsom DBS som visar en ökning av neurogenes i gyrus dentatus är spännande vägar för forskning. Dessa upptäckter har uppmuntrat oss att utforska ytterligare djupt in i mekanismen underliggande neurogenes efter DBS behandling för epilepsi. Vi har riktat ATN både ensidigt (data inte rapporterats) samt bilateralt (i representativa resultat) och sett förhöjda neurotrofin (BDNF) uttryck i rått gyrus dentatus. Vår cktuellt hypotes är att BDNF uttryck initierar en genexpression kaskad som kulminerar i neurogenes som översätter till det antiepileptiska effekten av DBS kirurgi. I detta papper presenterar vi våra metoder för DBS kirurgi med inriktning på ATN hos råttor följt av genuttrycksanalys som en attraktiv metod för att studera mekanismen bakom fördelarna med DBS.

Protocol

OBS: Etik Uttalande: Alla procedurer diskuteras i detta manuskript är i överensstämmelse med NIH riktlinjer för Animal Research (Guide för skötsel och användning av försöksdjur) och är godkända av Harvard Medical School IACUC kommittén. 1. Förhands kirurgisk Förberedelse Se till att alla kirurgiska instrument är steriliserade antingen autoklave eller rengöra med antiseptisk lösning och / eller etanol som behövs. Om möjligt, använd sterila engångs utrustning s?…

Representative Results

Figurerna 1A och 1B visar det relativa uttrycket av BDNF och GABRD relativt styr genen β-aktin. BDNF, är en neurotrofin ofta förknippas med nervskyddande effekter i många neuronala sjukdomar 38-41. Det är därför intressant att analysera uttrycksprofilen av BDNF som svar på stimulering av ATN vilket ger terapeutiska fördelar för patienter med epilepsi. I Figur 1A som visar genuttryck profil BDNF över de angivna tidspunkter posta DBS stimulering, BDN…

Discussion

Efter landmärket arbete av Benabid et al. I att använda djup hjärnstimulering för behandling av Parkinsons sjukdom och essentiell tremor har DBS kirurgisk teknik undersökts med stort intresse under det senaste decenniet för att behandla många neurologiska sjukdomar 6,10,43. DBS studier är inriktade på olika neuro anatomiska regioner i hjärnan kretsar för närvarande utförs av många grupper att ta upp viktiga neuronala sjukdomar och är i olika stadier av kliniska prövningar. Stimulering…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We are grateful for the support of the NREF foundation.

Materials

Deep Brain Stimulation Surgery
Reagent/Equipment Vendor Name Catalog No.  Comments
Stereotactic frame Kopf Instruments Model 900
Drill  Dremmel 7700, 7.2 V
Scalpel BD 372610
Ketamine Patterson Veterinary 07-803-6637 Schedule III Controlled Substance, procurement, use and storage according to institutional rules
Xylazine Patterson Veterinary 07-808-1947
Buprenorphine Patterson Veterinary 07-850-2280 Schedule III Controlled Substance, procurement, use and storage according to institutional rules
Surgical staples ConMed Corporation 8035
Sutures (3-0)  Harvard Apparatus 72-3333
Syringe (1 ml, 29 1/2 G) BD 329464 Sterile, use for Anesthesia administration intraperitoneally
Syringe (3 ml, 25 G) BD 309570 Sterile, use for Analgesia administration subcutaneously
Needles BD 305761 Sterile, use for clearing broken bone pieces from the burr holes
Ethanol Fisher Scientific S25309B Use for general sterilization 
Eye Lubricant Fisher Scientific 19-898-350
Stimulator Medtronic Model 3628
DBS electrodes Rhodes Medical Instruments, CA SNEX100x-100mm Electrodes are platinum, concentric and bipolar
Betadine (Povidone-Iodine)  PDI S23125 Single use swabsticks, use for sterilizing the scalp before making incision 
 Brain Dissection and Hippocampal tissue isolation
Reagent/Equipment Vendor Name Catalog No.  Comments
Acrylic Rodent Brain Matrix Electron Microscopy Sciences 175-300 www.emsdiasum.com
Razor Blade V W R 55411-050
Guillotine Scissors Clauss 18039 For decapitation, make sure these scissors are maintained in clean and working condition
Scissors Codman Classic 34-4098 Use for removing the brain from the skull
Forceps Electron Microscopy Sciences 72957-06 Use for removing the brain from the skull and for handling during dissection
Phosphate Buffered Saline  Boston Bioproducts BM-220
 RNA Extraction and cDNA Preparation
Reagent/Equipment Vendor Name Catalog No.  Comments
Tri Reagent Sigma T9424 Always use in a fume hood and wear protective goggles while handling; avoid contact with skin
Syringe (3 ml, 25 G) BD 309570 Use for tissue homogenization
Chloroform Fisher Scientific BP1145-1 Always use in a fume hood and wear protective goggles while handling; avoid contact with skin
Isopropanol Fisher Scientific A416-1
Glycogen Thermo Scientific R0561
Dnase I Kit Ambion AM1906
Superscript First Strand Synthesis Kit Invitrogen 11904-018
Tabletop Microcentrifuge Eppendorf 5415D
 Quantitative PCR               
Reagent/Equipment Vendor Name Catalog No.  Comments
SYBR Green PCR Kit Qiagen 204143
Custom Oligos Invitrogen 10668051
PCR Plates (96 wells) Denville Scientific C18080-10
Optical Adhesive Sheets Thermo Scientific AB1170
Nuclease free Water Thermo Scientific SH30538-02
Real Time PCR Machine Applied Biosystems 7500

References

  1. Toda, H., Hamani, C., Fawcett, A. P., Hutchison, W. D., Lozano, A. M. The regulation of adult rodent hippocampal neurogenesis by deep brain stimulation. Journal of. 108, 132-138 (2008).
  2. Perlmutter, J. S., Mink, J. W. Deep brain stimulation. Annual review of neuroscience. 29, 229-257 (2006).
  3. Bergstrom, M. R., Johansson, G. G., Laitinen, L. V., Sipponen, P. Electrical stimulation of the thalamic and subthalamic area in cerebral palsy. Acta physiologica Scandinavica. 67, 208-213 (1966).
  4. Benabid, A. L., et al. Chronic electrical stimulation of the ventralis intermedius nucleus of the thalamus as a treatment of movement disorders. Journal of neurosurgery. 84, 203-214 (1996).
  5. Benabid, A. L., et al. Long-term electrical inhibition of deep brain targets in movement disorders. Movement disorders : official journal of the Movement Disorder Society. 13, 119-125 (1998).
  6. Benabid, A. L., et al. Long-term suppression of tremor by chronic stimulation of the ventral intermediate thalamic nucleus. Lancet. 337, 403-406 (1991).
  7. Tierney, T. S., Lozano, A. M. Surgical treatment for secondary dystonia. Movement disorders : official journal of the Movement Disorder Society. 27, 1598-1605 (2012).
  8. Tierney, T. S., Sankar, T., Lozano, A. M. Some recent trends and further promising directions in functional neurosurgery. Acta neurochirurgica. Supplement. 117, 87-92 (2013).
  9. Tierney, T. S., Sankar, T., Lozano, A. M. Deep brain stimulation emerging indications. Progress in brain research. 194, 83-95 (2011).
  10. Sankar, T., Tierney, T. S., Hamani, C. Novel applications of deep brain stimulation. Surgical neurology international. 3, S26-S33 (2012).
  11. Tierney, T. S., Vasudeva, V. S., Weir, S., Hayes, M. T. Neuromodulation for neurodegenerative conditions. Frontiers in bioscience. 5, 490-499 (2013).
  12. Mayberg, H. S., et al. Deep brain stimulation for treatment-resistant depression. Neuron. 45, 651-660 (2005).
  13. Lyons, M. K. Deep brain stimulation: current and future clinical applications. Mayo Clinic proceedings. 86, 662-672 (2011).
  14. Lansek, R., Morris, M. E. Ch. 4. Rehabilitation in movement disorders. , 36-43 (2013).
  15. Goodwin, R., Tierney, T., Lenz, F., Anderson, W., Fried, I., Rutishauser, U., Cerf, M., Kreiman, G. Ch. 15. Single Neuron Studies of the Human Brain: Probing Cognition. 15, 275-293 (2014).
  16. Hauser, W. A. Epidemiology of epilepsy in children. Neurosurgery clinics of North America. 6, 419-429 (1995).
  17. Hauser, W. A. Recent developments in the epidemiology of epilepsy. Acta neurologica Scandinavica. Supplementum. 162, 17-21 (1995).
  18. Davis, R., Emmonds, S. E. Cerebellar stimulation for seizure control: 17-year study. Stereotactic and functional neurosurgery. 58, 200-208 (1992).
  19. Levy, L. F., Auchterlonie, W. C. Chronic cerebellar stimulation in the treatment of epilepsy. Epilepsia. 20, 235-245 (1979).
  20. Velasco, A. L., et al. Electrical stimulation of the hippocampal epileptic foci for seizure control: a double-blind, long-term follow-up study. Epilepsia. 48, 1895-1903 (2007).
  21. Tellez-Zenteno, J. F., McLachlan, R. S., Parrent, A., Kubu, C. S., Wiebe, S. Hippocampal electrical stimulation in mesial temporal lobe epilepsy. Neurology. 66, 1490-1494 (2006).
  22. Kerrigan, J. F., et al. Electrical stimulation of the anterior nucleus of the thalamus for the treatment of intractable epilepsy. Epilepsia. 45, 346-354 (2004).
  23. Hamani, C., et al. Deep brain stimulation of the anterior nucleus of the thalamus: effects of electrical stimulation on pilocarpine-induced seizures and status epilepticus. Epilepsy research. 78, 117-123 (2008).
  24. Hamani, C., et al. Bilateral anterior thalamic nucleus lesions and high-frequency stimulation are protective against pilocarpine-induced seizures and status epilepticus. Neurosurgery. 54, 191-195 (2004).
  25. Mirski, M. A., Rossell, L. A., Terry, J. B., Fisher, R. S. Anticonvulsant effect of anterior thalamic high frequency electrical stimulation in the rat. Epilepsy research. 28, 89-100 (1997).
  26. Mirski, M. A., Ferrendelli, J. A. Interruption of the mammillothalamic tract prevents seizures in guinea pigs. Science. 226, 72-74 (1984).
  27. Mirski, M. A., Ferrendelli, J. A. Anterior thalamic mediation of generalized pentylenetetrazol seizures. Brain research. 399, 212-223 (1986).
  28. Mirski, M. A., Ferrendelli, J. A. Interruption of the connections of the mammillary bodies protects against generalized pentylenetetrazol seizures in guinea pigs. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 7, 662-670 (1987).
  29. Mirski, M. A., McKeon, A. C., Ferrendelli, J. A. Anterior thalamus and substantia nigra: two distinct structures mediating experimental generalized seizures. Brain research. 397, 377-380 (1986).
  30. Lee, K. J., Jang, K. S., Shon, Y. M. Chronic deep brain stimulation of subthalamic and anterior thalamic nuclei for controlling refractory partial epilepsy. Acta neurochirurgica. Supplement. 99, 87-91 (2006).
  31. Fisher, R., et al. Electrical stimulation of the anterior nucleus of thalamus for treatment of refractory epilepsy. Epilepsia. 51, 899-908 (2010).
  32. Encinas, J. M., Hamani, C., Lozano, A. M., Enikolopov, G. Neurogenic hippocampal targets of deep brain stimulation. The Journal of comparative neurology. 519, 6-20 (2011).
  33. Hattiangady, B., Rao, M. S., Shetty, A. K. Chronic temporal lobe epilepsy is associated with severely declined dentate neurogenesis in the adult hippocampus. Neurobiology of disease. 17, 473-490 (2004).
  34. Kuruba, R., Hattiangady, B., Shetty, A. K. Hippocampal neurogenesis and neural stem cells in temporal lobe epilepsy. Epilepsy & behavior : E&B. 14, 65-73 (2009).
  35. Hattiangady, B., Shetty, A. K. Implications of decreased hippocampal neurogenesis in chronic temporal lobe epilepsy. Epilepsia. 49, 26-41 (2008).
  36. Paxinos, G., Watson, C. . The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates. , (2007).
  37. Livak, K. J., Schmittgen, T. D. Analysis of Relative Gene Expression Data Using Real-Time Quantitative PCR and the 22DDCT Method. METHODS. 25, 402-408 (2001).
  38. Kells, A. P., et al. AAV-mediated gene delivery of BDNF or GDNF is neuroprotective in a model of Huntington disease. Molecular therapy : the journal of the American Society of Gene Therapy. 9, 682-688 (2004).
  39. Han, B. H., Holtzman, D. M. BDNF protects the neonatal brain from hypoxic-ischemic injury in vivo via the ERK pathway. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 20, 5775-5781 (2000).
  40. Hetman, M., Kanning, K., Cavanaugh, J. E., Xia, Z. Neuroprotection by brain-derived neurotrophic factor is mediated by extracellular signal-regulated kinase and phosphatidylinositol 3-kinase. The Journal of biological chemistry. 274, 22569-22580 (1999).
  41. Stadelmann, C., et al. BDNF and gp145trkB in multiple sclerosis brain lesions: neuroprotective interactions between immune and neuronal cells. Brain : a journal of neurology. 125, 75-85 (2002).
  42. Treiman, D. M. GABAergic mechanisms in epilepsy. Epilepsia. 42, 8-12 (2001).
  43. Benabid, A. L., Pollak, P., Louveau, A., Henry, S., de Rougemont, J. Combined (thalamotomy and stimulation) stereotactic surgery of the VIM thalamic nucleus for bilateral Parkinson disease. Applied neurophysiology. 50, 344-346 (1987).
  44. Laxton, A. W., et al. A phase I trial of deep brain stimulation of memory circuits in Alzheimer’s disease. Annals of. 68, 521-534 (2010).
  45. Tierney, T. S., Abd-El-Barr, M. M., Stanford, A. D., Foote, K. D., Okun, M. S. Deep brain stimulation and ablation for obsessive compulsive disorder: evolution of contemporary indications, targets and techniques. The International journal of neuroscience. 124, 394-402 (2014).
  46. Kennedy, S. H., et al. Deep brain stimulation for treatment-resistant depression: follow-up after 3 to 6 years. The American journal of psychiatry. 168, 502-510 (2011).
  47. Lozano, A. M., et al. Subcallosal cingulate gyrus deep brain stimulation for treatment-resistant depression. Biological psychiatry. 64, 461-467 (2008).
  48. Ackermans, L., et al. Double-blind clinical trial of thalamic stimulation in patients with Tourette syndrome. Brain : a journal of neurology. 134, 832-844 (2011).
  49. Houeto, J. L., et al. Tourette’s syndrome and deep brain stimulation. Journal of neurology, neurosurgery, and psychiatry. 76, 992-995 (2005).
  50. Maciunas, R. J., et al. Prospective randomized double-blind trial of bilateral thalamic deep brain stimulation in adults with Tourette syndrome. Journal of neurosurgery. 107, 1004-1014 (2007).
  51. Koning, P. P., Figee, M., van den Munckhof, P., Schuurman, P. R., Denys, D. Current status of deep brain stimulation for obsessive-compulsive disorder: a clinical review of different targets. Current psychiatry reports. 13, 274-282 (2011).
  52. Greenberg, B. D., et al. Deep brain stimulation of the ventral internal capsule/ventral striatum for obsessive-compulsive disorder: worldwide experience. Molecular psychiatry. 15, 64-79 (2010).
  53. Muller, U. J., et al. Successful treatment of chronic resistant alcoholism by deep brain stimulation of nucleus accumbens: first experience with three cases. Pharmacopsychiatry. 42, 288-291 (2009).
  54. Zhou, H., Xu, J., Jiang, J. Deep brain stimulation of nucleus accumbens on heroin-seeking behaviors: a case report. Biological psychiatry. 69, e41-e42 (2011).
  55. Porta, M., et al. Thalamic deep brain stimulation for treatment-refractory Tourette syndrome: two-year outcome. Neurology. 73, 1375-1380 (2009).
  56. Younce, J. R., Albaugh, D. L., Shih, Y. Y. Deep brain stimulation with simultaneous FMRI in rodents. Journal of visualized experiments : JoVE. , e51271 (2014).
  57. Park, P. J. ChIP-seq: advantages and challenges of a maturing technology. Nature reviews. Genetics. 10, 669-680 (2009).
  58. Valouev, A., et al. Genome-wide analysis of transcription factor binding sites based on ChIP-Seq data. Nature methods. 5, 829-834 (2008).
  59. Fiore, R., Siegel, G., Schratt, G. MicroRNA function in neuronal development, plasticity and disease. Biochimica et biophysica acta. 1779, 471-478 (2008).
  60. Hebert, S. S., De Strooper, B. Alterations of the microRNA network cause neurodegenerative disease. Trends in neurosciences. 32, 199-206 (2009).

Play Video

Cite This Article
Selvakumar, T., Alavian, K. N., Tierney, T. Analysis of Gene Expression Changes in the Rat Hippocampus After Deep Brain Stimulation of the Anterior Thalamic Nucleus. J. Vis. Exp. (97), e52457, doi:10.3791/52457 (2015).

View Video