Abstract
Wir präsentieren ein Verfahren mit hoher Präzision Zink Isotopenverhältnisse in der Maus Organe messen. Zink wird von 5 stabile Isotope (64 Zn, 66 Zn, 67 Zn, 68 Zn und 70 Zn), die natürlicherweise zwischen Mausorgane fraktioniert werden zusammengesetzt. Wir zeigen zunächst, wie die verschiedenen Organe, um die Zn-Atome frei zu lösen; Dieser Schritt wird durch eine Mischung von HNO 3 und H 2 O 2 umgesetzt. Reinigen wir dann die Zinkatome von allen anderen Elementen, insbesondere von isobare Interferenzen (beispielsweise Ni), durch Anionenaustausch-Chromatographie in einer verdünnten HBr / HNO 3 -Medium. Diese ersten beiden Schritte in einem Reinlabor mit hochreinen Chemikalien durchgeführt. Schließlich werden die Isotopenverhältnisse durch die Verwendung eines Multikollektor-induktiv gekoppeltes Plasma-Massenspektrometer, mit einer niedrigen Auflösung gemessen. Die Proben werden mit einer Spritzkammer und der isotopischen Fraktionierung-Massenspektrometers induzierte correc spritztted durch Vergleich des Verhältnisses der Proben an das Seitenverhältnis eines herkömmlichen (Standardbelichtungstechnik). Das vollständige typische Vorgehensweise erzeugt ein Isotopenverhältnis mit einer 50 ppm (2 sd) Reproduzierbarkeit.
Introduction
Die Messung hoher Genauigkeit (besser als 100 ppm / atomare Masseneinheit) Zink stabilen Isotopenzusammensetzung erst seit etwa 15 Jahren durch die Entwicklung von Multi-Kollektor-Plasmaquelle Massenspektrometer möglich und wurde seitdem hauptsächlich in Erde angewendet und Planetenwissenschaften. Die Anwendungen auf dem Gebiet der Medizin, sind neu und haben ein starkes Potential als Biomarker für Krankheiten, die den Metabolismus von Zink (zB Alzheimer-Krankheit) zu ändern. Dieses Papier berichtet über eine Methode, um mit hoher Präzision in verschiedenen Organen der Maus messen die natürlichen stabilen Isotopen-Verhältnisse von Zink. Das gleiche würde für menschlichen Proben. Das Verfahren besteht in der Auflösung der Organe, die chemische Reinigung von Zink aus dem Rest der Atome, und die Analyse der Isotopenverhältnis auf einem Massenspektrometer.
Die Qualität der Zn Isotopenmessungen ist abhängig von der Qualität der chemischen Reinigung (Reinheit von Zn, niedrigen leere Datei herunterladenared auf die Menge an Zn in der Probe vorhanden, hohe chemische Ausbeute des Verfahrens) und die Steuerung der Instrumental Bias. Die hohe Reinheit des Endproduktes Zn Fraktion benötigt wird, um sowohl isobare Interferenzen und nicht isobare Interferenzen, die eine Matrix Effekt entfernen. Isobar Nuklide erstellen direkten Eingriffe (zB 64 Ni). Non-isobare Interferenzen erzeugen die sogenannten "Matrixeffekt" und verändern die analytische Genauigkeit der Messungen durch Ändern des Zustands der Ionisation gegenüber dem reinen Zink Standards, nach dem die Proben 1 verglichen. Eine niedrige Leer (<10 ng) zeigt an, daß es keine Verunreinigung der Proben durch externe Zn das würde den gemessenen Biasisotopenzusammensetzung. Zn Isotope während Ionenaustauschchromatographie 2 fraktioniert werden, die Sammlung aller Zn-Atome sichergestellt, dass keine isotopischen Fraktionierung auftritt, was bedeutet, daß der chemische Vorgang ein erfülltes Ertrag haben. Schließlich wird die Korrektur der instrument Isotopenfraktionierung während der Massenspektrometrie Messung über die "Standard-Belichtungsreihe" Methode.
Daher sind die Hauptschwierigkeiten zu erhalten präzise Messungen sind die Steuerung der externen Kontamination (dh niedrige blank), wodurch eine vollständige Ausbeute chemische Reinigung, die sauber von anderen Atomen oder Molekülen ist, und die Korrektur der instrument Isotopenfraktionierung auf dem Massenspektrometer. In diesem Papier werden wir unsere analytischen Protokolls beschreiben Zn aus dem Maus-Organen sowie die massenspektrometrische Messung zu trennen.
Die Extraktion unter Verwendung einer geringen Menge an verdünnten Säuren (HBr / HNO 3 Medien) auf Mikro-Säulen (0,5 & mgr; l und 0,1 & mgr; l) des Anionenaustauscherharzes durchgeführt. Es hat einen vollen Ertrag und die Messungen eine externe Reproduzierbarkeit besser als 50 ppm auf der 66 Zn / 64 Zn-Verhältnis. Ein weiterer Vorteil der Method ist, dass es sehr schnell ist. Das Verfahren ist daher sehr gut an den medizinischen Wissenschaften angepasst, wobei man braucht, um eine große Anzahl von Proben verglichen, um geowissenschaftlichen gegebenen wurden die analytischen Methoden entwickelt analysieren.
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Protocol
HINWEIS: Verfahren, die Tiere wurden von der Institutional Animal Care und Verwenden Committee (IACUC) an der Université Paris Diderot genehmigt.
1. Vorbereitung der Materialien
- Unter Kochen destillieren 1 L der Säuren (HNO 3, HBr), um sie von Unreinheit zu reinigen.
- Reinigen Sie die Becher und Spitzenadapter in einem heißen (~ 100 ° C) konzentrierte HNO 3 Säurebad für mindestens zwei Tage.
- Waschen Sie die Pipettenspitzen in einer kalten 3 N HNO 3 Bad für mehrere Tage und spülen einzeln dreimal mit entionisiertem Wasser.
2. Probenvorbereitung
- Betäuben die Mäuse durch intraperitoneale Injektion von Ketamin und Xylazin. Beurteilen Anästhesie durch den Zehen Prise Methode.
- Das Blut durch eine kardiale Punktion in Gegenwart von Heparin in 1,5-ml-Röhrchen.
- Trennen des Plasmas von Blutzellen durch Zentrifugation (10 min, 1.500 x g) und übertragen das Plasma auf Polypropylen cryogenic Fläschchen mit Polypropylen-Tipps.
- Entfernen Sie das restliche Blut von Organen, die durch Schneiden der Lebervene und Einspritzen von DPBS durch das Herz. Beurteilen Tod der Maus durch zervikale Dislokation.
- Ernte der Organe mit sterilen Instrumenten erreicht, befreien sie von umgebenden Fett wenn überhaupt, und Schnapp frieren sie in Polypropylen Kryoröhrchen.
3. Chemische Reinigung
- Zunächst lösen die Proben in einer Mischung von ~ 1 ml konzentrierter (30%) H 2 O 2 und ~ 1 ml konzentrierter (etwa 15 M) HNO 3. Haben alle diese Schritte innerhalb einer Abzugshaube.
- Legen Sie das ganze Organ von Interesse in einen 15 ml Teflonbecher. Fügen Sie dann die H 2 O 2 / HNO 3 in das Becherglas 5. Halten Sie das Becherglas offen für ein paar Minuten, um Spritzer auf die Reaktion der Oxidation des organischen Materials und die Freisetzung von CO 2 zu vermeiden.
- Schließlich legte das Becherglas auf einer Heizplatte bei about 100 ° C für ein paar Stunden oder bis die Lösung völlig klar.
- Öffnen der Becher und trocknen der Lösung auf einer heißen Platte bei etwa 100 ° C.
- Sobald die Probe trocken ist, fügen Sie 1 ml 1,5 N HBr zu den Proben; schließen Sie das Becherglas und lassen Sie es auf einer heißen Platte lösen sich bei 100 ° C zwei Stunden.
- In der Zwischenzeit die 500 ul Spalten vorzubereiten.
- Fügen Sie 500 ul der AG1X8 200-400 Mesh-Harz auf die Säule und legte es auf die Säule Rack mit einem Papierkorb-Becher darunter. Waschen des Harzes mit Wechselstrom: 5 ml von 18,2 M & Omega; cm ⋅ Wasser, 5 ml 0,5 N HNO 3, 5 ml Wasser, 5 ml 0,5 N HNO 3, und dann mit 5 ml Wasser versetzt. Zustand des Harzes mit 5 ml 1,5 N HBr.
- Entfernen Sie die Bechergläser aus dem Kochplatte und setzen Sie sie in einem Ultraschallbad für etwa 30 min, und dann lassen Sie die Becher abkühlen auf RT.
- Sobald der Becher wird abgekühlt und das Harz wird gewaschen, öffnen Sie das Becherglas. Setzen Sie die Spitze Adapter bis ter spritze, fügen Sie eine Pipettenspitze; Pipette die 1 ml Probe und laden Sie es auf dem Harz (sehr langsam, um nicht, um das Harz zu bewegen).
- Nachdem die gesamte Flüssigkeit durch die Säule passiert, 5 ml 1,5 N HBr.
- Sobald die 5 ml 1,5 N HBr durch die Säule, ersetzen Sie den Papierkorb-Becher mit einem sauberen 15 ml-Becher.
- 5 ml von 0,5 N HNO 3 mit 2,5 ml auf einmal. In diesem Stadium der Zn von dem Harz eluiert.
- Nachdem 5 ml HNO 3 durch die Säule passiert, nimmt das Becherglas und legen Sie sie auf einer heißen Platte bei 100 ° C bis getrocknet.
- Entfernen Sie die Spalte aus der Säulenhalter; trash das Harz (verwenden Sie eine neue Harz für jede Probe).
- Sobald die Probe trocken ist, wiederholen Sie das Protokoll mit dem gleichen Volumen von Säuren auf einer kleineren Kolonne (100 ul) und legen Sie sie auf einer heißen Platte bis getrocknet. Die Probe ist nun für die Massenspektrometrie.
4. Massenspektrometrie Measurement
- Analysieren Sie den Zn Isotopen composition auf einer Mehrkollektor-induktiv gekoppeltes Plasma-Massenspektrometer (MC-ICP-MS).
- Verwenden Sie die Maschinenparameter in Tabelle 1 zusammengefasst.
- Positionieren Sie die Faraday-Cups auf Masse (m / z) von 62 Ni, 63 Cu, Zn 64, 65 Cu, 66 Zn, 67 Zn und 68 Zn zu sammeln.
- Bereiten Sie eine Lösung, die 500 ppb Zn in 0,1 M HNO 3 für die Isotopenanalyse.
- Analysieren Sie die 500 ppb-Lösung von Zn mit Hilfe eines Spritzkammer in Verbindung mit einer 100 & mgr; l / min Teflon Vernebler. Für jede Probe sind 30 Scans (1 Block von 30 Zyklen), in denen die Integrationszeit jeder Abtastzeile ist 8,389 sec.
- Korrigieren Sie den Hintergrund durch Subtraktion der auf Spitze Null-Intensitäten aus einem Rohling-Lösung (0,1 M HNO 3 Lösung zur Wiederauflösung der Proben).
- Kontrolle und korrekte möglich 64 Ni isobare Interferenzen durch Messung der Intensität der 62 Ni Höhepunkt.Angenommen, der 64 Ni / 62 Ni-Verhältnis ist natürlich (0,2548), korrigieren Sie diesen Wert aus der instrumentellen Massen bias, und entfernen Sie die 64 Ni auf die Masse 64, wie:
64 Zn Real = 64 Zn gemessen - 64 Ni = 64 Zn gemessen - (64 Ni / 62 Ni) Natur x 62 Ni gemessen. - Korrigieren Sie die instrumental Massen Bias von Belichtungsreihen jede der Proben mit 500 ppb Standardlösung des JMC Lyon Zn-Standard (oder einem anderen verfügbaren Standard wie IRMM-3702). Führen die Standardreihe durch Dividieren der 66 Zn / Zn 64 Verhältnis von der Probe durch den Mittelwert der 66 Zn / 64 Zn-Verhältnis der beiden Standards vor und nach der Probe minus 1 und multipliziert mit 1000 (siehe Gleichung 1). Typische externen Präzision auf der JMC Lyon Zn-Standard ist 0,05 permil / amu (2 Standardabweichung, 2 sd).
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Representative Results
In 1,5 N HBr, die Hauptzinkspezies (ZnBr3-) bildet sehr starke Komplexe mit dem Anionenaustauscherharz, während die meisten anderen Elemente nicht mit dem Harz in Wechselwirkung treten. Zink wird dann durch Ändern des Mediums verdünnt HNO 3, die Änderung der Speziation von Zn zu Zn 2+, die von dem Harz 6,7 freigesetzt wird, zurückgewonnen.
Isotopenverhältnisse sind typischerweise als Teile pro 1.000 Abweichungen relativ zu einem Standard ausgedrückt:
mit x = 66 oder 68. Als Referenzmaterial ist der Zn "Lyon" Standard JMC 3-0749 L 1. Die "Lyon" Standard ist die am weitesten verbreitete Referenzmaterial zu Zn Isotopendaten zu normalisieren. Alle gemeldeten Isotopen Ergebnisse sind daher relativ. Mit Hilfe dieser Referenz die Isotopenzusammensetzung der Erde foder δ 66 Zn ist 0,28 ± 0,05 8. Da die JMC-Lyon-Standard ist nicht leicht erhältlich, in Abwesenheit von dieser Norm die Alternative ist, um die Standard-IRMM-3702 als Referenz während der Messungen verwenden und konvertieren die Ergebnisse mit Referenz 9 wie: 66 Zn JMC-Lyon = 66 Zn IRMM-3702 0,29. Die typische blank ist <10 ng.
Mit diesem Verfahren erhalten Typische Ergebnisse sind in der Abbildung 1 dargestellt, als Drei-Isotop Grundstück (δ 68 Zn vs δ 66 Zn) für verschiedene Mausorgane. Tabelle 2 und 3 Bericht Ergebnisse der replizierte Experimente eines typischen terrestrischen Rock (ein Hawaii Basalt) und der Maus-Erythrozyten.
Abbildung 1. δ 68 Zn vs δ 66 Znfür verschiedene Maus Organe. Die typische Fehlerbalken 0,07 permil für δ 66 Zn und 0,15 für δ 68 Zn ist auf der Abbildung dargestellt. Daten aus Referenz 15.
| MC-ICP-MS-Einstellungen | Neptun |
| HF-Leistung (W) | 1.300 |
| Beschleunigungsspannung (V) | 10.000 |
| Gasdurchflussraten | |
| Ar Kühlflüssigkeit (l / min) | 18 |
| Ar Hilfs (l / min) | 1 |
| Ar-Probe (l / min) | 1-1,2 |
| Lösung Aufnahmerate (molution | 100 |
| Analyseparameter | |
| Anzahl der Blöcke | 1 |
| Anzahl der Messungen pro Block | 30 |
| Integrationszeit (en) | 8,389 |
| Typische Zn-Konzentration der Proben und Standard (ppb) | 500 |
| Typische Übertragungseffizienz V / ppm | 25 |
Tabelle 1: MC-ICP-MS-Einstellungen für die Zn-Isotopenmessungen am Institut de Physique du Globe de Paris.
| Proben | δ 66 Zn | 2SE | δ 68 Zn | 2SE | n / A |
| replizieren 1 | 0.34 | 0,01 | 0.68 | 0,04 | 4 |
| replizieren 2 | 0.34 | 0,01 | 0.68 | 0,01 | 3 |
| replizieren 3 | 0.34 | 0,02 | 0.67 | 0,02 | 4 |
| replizieren 4 | 0.36 | 0,06 | 0.7 | 0,09 | 4 |
| replizieren 5 | 0.31 | 0,02 | 0.65 | 0,06 | 4 |
| replizieren 6 | 0.33 | 0,01 | 0.68 | 0,02 | 3 |
| replizieren 7 | 0.32 | 0,06 | 0.63 | 0.1 | 6 |
| Durchschnitt | 0.33 | 0,03 | 0.67 | 0,05 | 7 |
| 2SD | 0,04 | 0,05 | |||
| a n = Anzahl der Wiederholungsmessung durch MC-ICP-MS |
Tabelle 2: Zn Isotopenzusammensetzung von der Hawaii Basalt K179-1R1-170.9 jede Wiederholung stellt eine vollständige chemische Reinigung und den Mittelwert von mehreren unabhängigen Massenspektrometer Messungen.. Daten aus Referenz 8.
| Maus-Nummer | δ 66 Zn | δ 68 Zn |
| 11 | 0.82 | 1.6 |
| 12 | 0.79 | 1.55 |
| 13 | 0.84 | 1.65 |
| 14 | 0.87 | 1.72 |
| Durchschnitt | 0.83 | 1.63 |
| 2SD | 0,07 | 0,15 |
Tabelle 3: Zn Isotopenzusammensetzung von Knochen von Mäusen jede Wiederholung stellt eine vollständige chemische Reinigung.. Daten aus Referenz 15.
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Discussion
Die Reproduzierbarkeit der Messungen wird durch repliziert Analysen der gleichen Proben während verschiedenen analytischen Sitzungen durchgeführt bewertet. Zum Beispiel 6 haben wir die gleichen terrestrischen rock 7 Mal wiederholt, und wir erhalten die Ergebnisse in der Tabelle 2 angegeben.
Wie aus der Theorie der Isotopenfraktionierung 10 erwartet und nach einem Sonnensystems Material bisher gemessen (zB Meteoriten 11-13, pflanzen 3-5, Tiefseesedimenten 14. Tiere 15-17), lesen die Ergebnisse einer Massen abhängig Recht (siehe Abbildung 1). δ 68 Zn ist etwa doppelt δ 66 Zn (Figur 1), weil die Massendifferenz zwischen 68 und 64 Zn Zn ist zweimal die Differenz zwischen 66 und 64 Zn Zn. Dies zeigt, dass unsere Messungen frei von isobaren Interferenzen (das wäre die Daten aus dem Autoder linear) und dass Zink Isotope fraktioniert aus dem gleichen Isotopen Pool.
Für Maus Organe hat die begrenzte Menge an Zn in jedem Organ uns von der Durchführung viele Wiederholungen eines einzelnen Organs 15 verhindert. Wir können jedoch einen höheren Grenzwert für die Reproduzierbarkeit Schätzung durch Vergleichen von Daten für das gleiche Gewebe für verschiedene Mäusen desselben Alters und gleichen Stamm (zum Beispiel für die Knochen von 16 Wochen alten Mäusen, Tabelle 3). Diese Reproduzierbarkeit ist größer (0,04 vs 0,07 für die δ 66 Zn) als das, was von Basaltfelsen, was nicht verwunderlich ist, da es die Heterogenität der Proben als auch die Isotopen Variabilität zwischen den verschiedenen Mäusen enthält geschätzt. Es ist daher eine Überschätzung der Reproduzierbarkeit, und wir glauben, daß die Genauigkeit für jedes einzelne Organ wäre ähnlich zu dem, was wir hatte Basalte bestimmt wird. Wir können davon ausgehen, Reproduzierbarkeit besser als 0,10 für die ^8; 66 Zn (2 SD), die einen Präzisions-10-mal größer als die Variabilität zwischen bestimmten Organen (siehe Abbildung 1 und Referenz 15) berichteten darstellt.
Messung des stabilen Isotopenzusammensetzung von Zn in der Zukunft als ein diagnostisches Werkzeug für Krankheiten, die das Zn Rest des Körpers zu modifizieren verwendet werden. Zum Beispiel können die zinkreiche Plaques mit der Alzheimer Krankheit assoziiert ändern die Zinkkonzentration im Serum und da das Gehirn und das Serum unterschiedliche Isotopenzusammensetzung 15 Zn Isotope könnten zur frühen Stadium der Krankheit festzustellen.
Die meisten alternativen Methoden, um den Zn Isotopenzusammensetzung von MC-ICP-MS-Messung beinhalten chemische Reinigung in konzentrierter HCl Medien auf größeren Spalten als die, die hier verwendeten 1-4. Unsere Methode basiert auf Mikro-Säulen und verdünnte Säuren hat eine niedrige Leerproben und erzeugt Daten, die zwei mal genauer (50 ppm vs 100 ppm 2 sd) sind. In additIonen Unsere Methode ist sehr schnell (aufgrund der kleinen Größe der Spalten und die kleine Menge an Säure, verwendet wird) und ist sehr gut geeignet, um große Mengen von Proben analysiert (wie sie üblicherweise in der klinischen Studien nötig). Die Einfachheit des Verfahrens wäre gut geeignet, um in einem automatischen chemischen Reinigungssystem, das die Messung einer großen Anzahl von Proben erlauben würde, verwendet werden.
Eine Einschränkung dieses Ansatzes ist, dass nur große Massenproben können analysiert werden (das Verfahren verwendet ~ 1 ug Zn). Die Reduzierung der Größe der Proben ist von entscheidender Bedeutung, wenn es um wertvolle klinische Proben. Dieses Verfahren ist auch auf Großmessungen beschränkt, während für einige Anwendungen in situ Analysen benötigt werden. Zukünftige Verbesserungen an der Technik sollte in Bezug auf die Verbesserung der in situ Isotopenmessungen durch Kombinieren einer Laserablation-System mit dem Plasma-Massenspektrometer (LA-MC-ICP-MS) ist. Dies würde die Messungen der räumlich kleinen Proben ohne p zu ermöglichenrior chemische Reinigung (die um die Proben zu kontaminieren neigt). Zusätzlich wird in situ Messungen die Messung der Isotopenzusammensetzung Zn am lebenden Gewebe zu ermöglichen. Nach unserer Kenntnis gibt es nur eine Versuch, Zinkisotopenverhältnisse unter Verwendung einer derartigen Technik, 18 zu messen, und das Verfahren ist noch nicht genau genug, jedoch Messungen von hochpräzisen Isotopenverhältnis von LA-MC-ICP-MS für Fe geschehen 19 und B 20 und Raffination der Technik mit modernen Lasern kann zu einem großen Durchbruch führen.
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Disclosures
Die Autoren haben nichts zu offenbaren.
Acknowledgments
FM erkennt Finanzierung von der ANR durch eine chaire d'Excellence IDEX Sorbonne Paris Cité, die INSU durch einen PNP-Zuschuss, der Institut Universitaire de France sowie die Labex UniverEarth Programm an der Sorbonne Paris Cité (ANR-10-LABX-0023 und ANR -11-IDEX-0005-02). Wir danken auch Mittel aus dem Europäischen Forschungsrat unter der Europäischen Gemeinschaft H2020 Rahmenprogramm / ERC Finanzhilfevereinbarung # 637503 (Pristine).
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Multi-collection inductively-coupled-plasma mass-spectromter | Thermo-Fisher | ||
| Anion-exchange resin AG1 X8 200-400 | Bio-Rad | 140-1443-MSDS | |
| Teflon beakers | Savillex | 200-015-12 | |
| In-house-made teflon colunms made with shrinkable teflon |
References
- Marechal, C. N., Telouk, P., Albarede, F. Precise analysis of copper and zinc isotopic compositions by plasma-source mass spectrometry. Chemical Geology. 156 (1), 251-273 (1999).
- Marechal, C. N., Albarede, F. Ion-exchange fractionation of copper and zinc isotopes. Geochim. Cosmochim. Acta. 66 (9), 1499-1509 (2001).
- Weiss, D. J., Mason, T. F. D., Zhao, F. J., Kirk, G. J. D., Coles, B. J. Isotopic discrimination of zinc in higher plants. New Phytologist. 165 (3), 703-710 (2005).
- Jouvin, D., Louvat, P., N, M. F. C. Zinc isotopic fractionation: why organic matters. Environ Sci Technol. 43 (15), 5747-5754 (2009).
- Moynier, F., et al. Isotopic fractionation and transport mechanisms of Zn in plants. Chemical Geology. 267 (3-4), 125-130 (2009).
- Moynier, F., Herzog, G., Albarede, F. Isotopic composition of zinc, copper, and iron in lunar samples. Geochim. Cosmochim. Acta. 70 (24), 6103-6117 (2006).
- Moynier, F., et al.
- Chen, H., Savage, P., Teng, F. Z., Helz, R., Moynier, F. Zinc isotope fractionation during magmatic differentiation and the isotopic composition of the bulk Earth. Earth Planet. Sci. Lett. 369-370, 34-42 (2013).
- Moeller, K., et al. Calibration of the new certified materials ERM-AE633 and ERM-AE6447 for copper and IRMM 3702 for zinc isotope amount ratio determination. Geostd. Geoan. Res. 36 (2), 177-199 (2012).
- Bigeleisen, J., Mayer, M. Calculation of equilibrium constants for isotopic exchange reactions. J. Chem. Phys. 15, 261-267 (1947).
- Luck, J. M., Ben Othman, D., Albarede, F. Zn and Cu isotopic variations in chondrites and iron meteorites: Early solar nebula reservoirs and parent-body processes. Geochim. Cosmochim. Acta. 69 (22), 5351-5363 (2005).
- Moynier, F., Dauphas, N., Podosek, F. A Search for 70Zn Anomalies in Meteorites. Astrophys. J. 700 (2), L92-L95 (2009).
- Paniello, R., Day, J., Moynier, F. Zn isotope evidence for the origin of the Moon. Nature. 490 (7420), 376-380 (2012).
- Pichat, S., Douchet, C., Albarede, F. Zinc isotope variations in deep-sea carbonates from the eastern equatorial Pacific over the last 175 ka. Earth and Planetary Science Letters. 210 (1-2), 167-178 (2003).
- Moynier, F., Fujii, T., Shaw, A., Le Borgne, M. Heterogeneous of natural Zn isotopes in mice. Metallomics. 5 (6), 693-699 (2013).
- Balter, V., et al. Bodily variability of zinc natural isotope abundance in sheep. Rapid Com. Mass. Spec. 24, 605-612 (2010).
- Balter, V., et al. Contrasting Cu, Fe, and Zn isotopic patterns in organs and body fluids of mice and sheep, with emphasis on cellular fractionation. Metallomics. 5 (11), 1470-1482 (2010).
- Urgast, D. S., et al. Zinc isotope ratio imaging of rat brain thin sections from stable isotope tracer by LA-MC-ICP-MS. Metallomics. 4, 1057-1063 (2012).
- Marin-Carbonne, J., Rollion-Bard, C., Luais, B. In-situ measurements of iron isotopes by SIMS: MC-ICP-MS intercalibration and application to a magnetite crystal from the Gunflint chert. Chem. Geol. 285 (1-4), 50-61 (2011).
- Fietzke, J., et al. Boron isotope ratio determination in carbonates via LA-MC-ICP-MS using soda-lime glass standards as reference material. J. Anal. Atom. Spec. 25, 1953-1957 (2010).
