방법 염색질 규제 및 염색질 상태의 문제는 생체 내에서 유전자가 세포 운명 결정이 배아에서 어떻게 만들어 지는지 초기에 대한 우리의 이해의 열쇠입니다 영향을 미칩니다. 칩 서열 번호 – 글로벌 수준입니다 Xenopus의 배아 여기 설명에서 크로 마틴의 기능을 조사하기 가장 인기있는 방법.
The recruitment of chromatin regulators and the assignment of chromatin states to specific genomic loci are pivotal to cell fate decisions and tissue and organ formation during development. Determining the locations and levels of such chromatin features in vivo will provide valuable information about the spatio-temporal regulation of genomic elements, and will support aspirations to mimic embryonic tissue development in vitro. The most commonly used method for genome-wide and high-resolution profiling is chromatin immunoprecipitation followed by next-generation sequencing (ChIP-Seq). This protocol outlines how yolk-rich embryos such as those of the frog Xenopus can be processed for ChIP-Seq experiments, and it offers simple command lines for post-sequencing analysis. Because of the high efficiency with which the protocol extracts nuclei from formaldehyde-fixed tissue, the method allows easy upscaling to obtain enough ChIP material for genome-wide profiling. Our protocol has been used successfully to map various DNA-binding proteins such as transcription factors, signaling mediators, components of the transcription machinery, chromatin modifiers and post-translational histone modifications, and for this to be done at various stages of embryogenesis. Lastly, this protocol should be widely applicable to other model and non-model organisms as more and more genome assemblies become available.
The first attempts to characterize protein-DNA interactions in vivo were reported about 30 years ago in an effort to understand RNA polymerase-mediated gene transcription in bacteria and in the fruit fly1,2. Since then, the use of immunoprecipitation to enrich distinct chromatin features (ChIP) has been widely adopted to capture binding events and chromatin states with high efficiency3. Subsequently, with the emergence of powerful microarray technologies, this method led to the characterization of genome-wide chromatin landscapes4. More recently, chromatin profiling has become even more comprehensive and high-resolution, because millions of co-immunoprecipitated DNA templates can now be sequenced in parallel and mapped to the genome (ChIP-Seq)5. As increasing numbers of genome assemblies are available, ChIP-Seq is an attractive approach to learn more about the genome regulation that underlies biological processes.
Here we provide a protocol to perform ChIP-Seq on yolk-rich embryos such as those of the frog Xenopus. Drafts of the genomes of both widely used Xenopus species—X. tropicalis and X. laevis—have now been released by the International Xenopus Genome Consortium6. The embryos of Xenopus species share many desirable features that facilitate and allow the interpretation of genome-wide chromatin studies, including the production of large numbers of high-quality embryos, the large size of the embryos themselves, and their external development. In addition, the embryos are amenable to classic and novel manipulations like cell lineage tracing, whole-mount in situ hybridisation, RNA overexpression, and TALEN/CRISPR-mediated knockout technology.
The following protocol builds on the work of Lee et al., Blythe et al. and Gentsch et al.7-9. Briefly, Xenopus embryos are formaldehyde-fixed at the developmental stage of interest to covalently bind (cross-link) proteins to their associated genomic DNA. After nuclear extraction, cross-linked chromatin is fragmented to focus subsequent sequencing on specific genomic binding or modification sites, and to minimize the contributions of flanking DNA sequences. Subsequently, the chromatin fragments are immunoprecipitated with a ChIP-grade antibody to enrich those containing the protein of interest. The co-immunoprecipitated DNA is stripped from the protein and purified before creating an indexed (paired-end) library for next-generation sequencing (NGS). At the end, simple command lines are offered for the post-sequencing analysis of ChIP-Seq data.
우리의 프로토콜은하고 아프리카 발톱 개구리의 배아에서 게놈 전체 염색질 프로파일을 분석하는 방법에 대해 설명합니다. 그것은 실리에 풍부한 게놈 사이트를 나타내는 읽기의 수백만을 처리하는 생체 내에서 내인성 유전자 좌에 가교 단백질에서 모든 단계를 다루고 있습니다. 게놈 초안의 증가 번호를 사용할 수 있기 때문에,이 프로토콜은 다른 모델과 비 모델 생물에 적용해야합니다. 이전의 연구 8,31,33,34에서 떨어져이 프로토콜을 설정하는 가장 중요한 실험 부분은, 가교 핵을 추출 후 고정 절차입니다. 그것은 효율적인 염색질 용해 화 및 전단 쉽게 업 스케일링을 용이하게한다. 함께 도서관 준비의 개선 된 효율성이 프로토콜은 반에서 관심있는 염색질 관련 항원을 발현하는 이백만 세포에 높은 복잡성 칩-SEQ 도서관의 건축을 할 수 있습니다. 칩 qPCR의 실험의 경우, 이들 세포의 몇 만 정상적으로 충분아마도 여섯 별개의 게놈 유전자 좌에서 DNA 농축을 확인합니다. 이러한 숫자는 보수적이지만, 단백질 발현 수준, 항체의 품질에 따라 효율, 에피토프의 접근성을 가교 달라질 수있다. 가이드로, 단일 Xenopus의 배아 중반 포배 단계 (Nieuwkoop 및 페이버 (29) 후 8.5)에서 약 4,000 세포를 포함, 후반 낭배 단계 (12)에서 40,000 세포와 초기 tailbud 단계 (20)에서 10 만 셀.
효율적인 면역에 대한 정확한 고정 시간은 칩 qPCR에 (10 항)에 의해 경험적으로 결정해야합니다. 실험이 X를 포함하는 경우 일반적으로 더 이상 고정 시간이 필요합니다 배아, 초기 발달 단계, 약한 (또는 간접) DNA 결합 특성을 laevis의. 그러나, 염색질 전단 효율성이 떨어질대로, 40 분보다 긴 아프리카 발톱 개구리 배아를 고정, 또는 표시 (섹션 3)보다 더 많은 배아를 처리하지 않는 것이 좋습니다. 그것은 중요하지매우 어려운 노른자 풍부한 배아에서 핵 추출을 할 수 포름 알데히드를 담금질이 일반적인 단계로 고정 후 어떤 글리신를 사용합니다. 현재, 그 이유는 알려져 있지 않다. 또한 포름 알데히드 부가 물 상기 글리신 아미노 기 또는 아르기닌 잔기 35 N 말단과 반응하여 생각할 수있다.
항체는 칩 실험의 핵심입니다 충분한 컨트롤 (Landt 등. (36) 가이드 라인을 참조) 관심의 항원에 대한 특이성을 보여주기 위해 수행 될 필요가있다. 더 칩 등급 항체가없는 경우이 단백질이 차지하는 결합 부위 내인성 수 37, 에피토프 태그 융합 단백질 대응 소개 합법적 대안이 될 수있다. 이 경우, uninjected 배아는 음성 대조군보다는 비특이적 혈 칩으로 사용하는 것이 최선이다. 관심의 단백질이 enri의 가난한 복구의 결과로 낮은 수준에서 표현되는 경우,이 전략은 적용 할 수있다CHED DNA.
왜냐하면 사용중인 DNA의 소량 칩-SEQ 라이브러리 제조용으로서,이 세정 공정 수를 줄이고 최소한 DNA의 손실을 유지하는 반응을 조합하는 방법을 선택하는 것을 권장한다. 어댑터와 프라이머 (특정 재료 / 장비의 표 참조) 멀티 플렉스 시퀀싱 및 NGS 플랫폼과 호환 될 수 있도록해야합니다. (긴 단일 가닥 무기를 포함) Y-어댑터를 사용하는 경우, 그것은 크기 선택 DNA 삽입하기 전에 PCR의 3-5 라운드 사전 증폭 라이브러리에 중요하다 (예., 100 내지 300 bp) 겔 전기 영동에 의해. 단일 가닥 말단 DNA 단편이 균질하게 이동. 시험은 PCR 사이클의 총 수를 결정하도록 권장 입력 DNA (예를 들면, 0.1, 0.5, 1, 2, 5, 10, 20 NG)의 다양한 양으로 실행 (이하 또는 18 사이클 같음) 크기를 만드는 데 필요한 100-200 NG의 – 선정 된 라이브러리입니다. PCR 사이클의 수를 줄이면 redu의 시퀀싱을 렌더링ndant은 덜 읽습니다. 고상 가역적 고정화 비즈 효율적으로 관심있는 DNA를 복구하고 안정적으로 결찰 및 PCR 반응이없는 임의의 어댑터 및 이량 체를 제거하는 시약을 정리 좋다.
수, 유형 및 길이의 측면에서 약 20-30000000 단일 엔드 36 bp의 충분한 깊이와 전체 Xenopus의 게놈을 커버하는 대부분의 칩 서열 번호 실험에 충분하다의 읽기, 읽기의. 가장 널리 NGS 기계는 이러한 기준을 충족 일상적으로 할 수있다. 그러나, 판독의 광범위한 분포가 예상되는 경우의 판독 샤프한 피크보다 오히려, 히스톤 변형 관찰로, 수를 늘리는 것이 유리할 수있다. 다수의 칩 – 서열 번호 실험을 위해, 4-5 다르게 인덱싱 라이브러리 풀링 할 수 있고, 고성능 NGS 기계를 사용하여 하나 이상의 유동 세포 차선 서열화. 때때로 mappability w을 증가 판독 길이 및 서열 DNA 템플릿의 양단 (페어링 엔드)를 연장하는 것이 바람직하다반복적 인 게놈 영역 내에서 염색질 암탉 분석입니다.
이 프로토콜은 전사 인자 시그널링 매개체 번역 후 변형으로 히스톤 염색질 다양한 기능에 성공적으로 적용되었다. 그들이 개발하고 염색질 프로파일을 해석하기 어렵게 될 그러나, 배아 세포 이질성의 증가 학위를 취득. 유망 단계는 세포 유형 특정 핵 (38, 39)를 추출하여 조직 특별히 프로필 염색질 풍경에 애기 장대와 초파리되었습니다. 우리의 프로토콜은 다른 배아 조직 특이 칩 서열 번호에 대한 방법을 포장 할 수있는 핵 추출 단계를 포함한다.
The authors have nothing to disclose.
We thank Chris Benner for implementing the X. tropicalis genome (xenTro2, xenTro2r) into HOMER and the Gilchrist lab for discussions on post-sequencing analysis. I.P. assisted the GO term analysis. G.E.G and J.C.S. were supported by the Wellcome Trust and are now supported by the Medical Research Council (program number U117597140).
1/16 inch tapered microtip | Qsonica | 4417 | This microtip is compatible with Sonicator 3000 from Misonix and Q500/700 from Qsonica. |
8 ml glass sample vial with cap | Wheaton | 224884 | 8 ml clear glass sample vials for aqueous samples with 15-425 size phenolic rubber-lined screw caps. |
Adaptor | IDT or Sigma | NA | TruSeq universal adaptor,
AATGATACGGCGACCACCGAG ATCTACACTCTTTCCCTACAC GACGCTCTTCCGATC*T. TruSeq indexed adaptor, P-GATCGGAAGAGCACACGTC TGAACTCCAGTCAC ‐NNNNNN‐ ATCTCGTATGCCGTCT TCTGCTT*G. *, phosphorothioate bondphosphate group at 5' end. NNNNNN, index (see TruSeq ChIP Sample Preparation Guide for DNA sequence). Order adaptors HPLC purified. Adaptors can be prepared by combining equimolar amounts (each 100 µM) of the universal and the indexed adaptor and cooling them down slowly from 95 °C to room temperature. Use 1.5 pmol per ng of input DNA. Store at -20 °C. |
b2g4pipe (software) | Blast2GO | non-commercial | http://www.blast2go.com/data/blast2go/b2g4pipe_v2.5.zip |
BLAST+ (software) | Camacho et al. | non-commercial | http://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi?PAGE_TYPE=BlastDocs&DOC_TYPE=Download |
Bowtie (software) | Langmead et al. | non-commercial | http://bowtie-bio.sourceforge.net/index.shtml |
cisFinder (software) | Sharov et al. | non-commercial | http://lgsun.grc.nia.nih.gov/CisFinder/ |
Chip for capillary electrophoresis | Agilent Technologies | 5067-1504 | Load this chip with 1 µl DNA for library quality control. Store at 4 °C. |
Chip-based capillary electrophoresis system | Agilent Technologies | G2940CA | The Agilent 2100 BioAnalyzer is used to check the quality of ChIP-Seq libraries. Keep reagents at 4 °C. |
ChIP-Seq library preparation kit (KAPA Hyper Prep Kit) | Kapa Biosystems | KK8504 | Kit contains KAPA end repair and A-tailing enzyme mix, end Repair and A-tailing buffer, DNA ligase, ligation buffer, KAPA HiFi HotStart ReadyMix (2X), and KAPA library amplification primer mix (10X) (see also PCR primers). Adaptors are not included. Store at -20 °C. |
ChIP-Seq library preparation kit (alternative, ThruPLEX-FD Prep Kit) | Rubicon Genomics | R40048 | Kit uses their own stem-loop adaptors and primers. This kit eliminates intermediate purification steps and is as sensitive as the KAPA Hyper Prep Kit. Store at -20 °C. |
Cluster3 (software) | de Hoon et al. | non-commercial | http://bonsai.hgc.jp/~mdehoon/software/cluster |
FastQC (software) | Simon Andrews | non-commercial | http://www.bioinformatics.babraham.ac.uk/projects/fastqc |
Fluorometer | life technologies | Q32866 | Qubit 2.0 Fluorometer |
Fluorometer reagents | life technologies | Q32851 | The kit provides concentrated assay reagent, dilution buffer, and pre-diluted DNA standards for the Qubit fluorometer. Store DNA standards at 4 °C, buffer and dye at room temperature. |
Formaldehyde | Sigma | F8775-4X25ML | Formaldehyde solution, for molecular biology, 36.5-38% in H2O, stabilised with 10-15% methanol. Store at room temperature. CAUTION: Formaldehyde is corrosive and highly toxic. |
Gel (E-Gel EX agarose , 2%) | life technologies | G4010 | Pre-cast gel with 11 wells, openable format. Leave one lane between ladder and library empty to avoid cross-contamination. Store gels at room temperature. |
Gel electrophoresis system | life technologies | G6465 | E-Gel iBase and E-Gel Safe Imager combo kit for size-selecting ChIP-Seq libraries. |
Gel extraction kit | Qiagen | 28706 | Store all reagents at room temperature. Use 500 µl of QG buffer per 100 mg of 2% agarose gel slice to extract DNA. Use MinElute columns (from MinElute PCR purification kit) to elute DNA twice. |
HOMER (software) | Chris Benner | non-commercial | http://homer.salk.edu/homer/index.html |
Hybridization oven | Techne | FHB1D | Hybridizer HB-1D |
IGV (software) | Robinson et al. | non-commercial | http://www.broadinstitute.org/igv/home |
Illumina CASAVA-1.8 quality filter (software) | Assaf Gordon | non-commercial | http://cancan.cshl.edu/labmembers/gordon/fastq_illumina_filter |
Java TreeView (software) | Alok Saldanha | non-commercial | http://jtreeview.sourceforge.net |
Laboratory jack | Edu-Lab | CH0642 | This jack is used to elevate sample in sound enclosure for sonication. |
Ladder, 100 bp | New England BioLabs | N3231 | Keep 1x solution at room temperature. Store stock at -20 °C. |
Ladder, 1 kb | New England BioLabs | N3232 | Keep 1x solution at room temperature. Store stock at -20 °C. |
Low-retention 1.5-ml microcentrifuge tubes | life technologies | AM12450 | nonstick, RNase-free microfuge tubes, 1.5 ml |
MACS2 (software) | Tao Liu | non-commercial | https://github.com/taoliu/MACS |
Magnetic beads | life technologies | 11201D | These Dynabeads are superparamagnetic beads with affinity purified polyclonal sheep anti-mouse IgG covalently bound to the bead surface. Store at 4 °C. |
Magnetic beads | life technologies | 11203D | These Dynabeads are superparamagnetic beads with affinity purified polyclonal sheep anti-rabbit IgG covalently bound to the bead surface. Store at 4 °C. |
Magnetic beads | life technologies | 10001D | These Dynabeads are superparamagnetic beads with recombinant protein A covalently bound to the bead surface. Store at 4 °C. |
Magnetic beads | life technologies | 10003D | These Dynabeads are superparamagnetic beads with recombinant protein G covalently bound to the bead surface. Store at 4 °C. |
Magnetic rack | life technologies | 12321D | DynaMag-2 magnet |
MEME | Bailey et al. | non-commercial | http://meme.nbcr.net/meme/ |
Na3VO4 | New England BioLabs | P0758 | Sodium orthovanadate (100 mM) is a commonly used general inhibitor for protein phosphotyrosyl phosphatases. Store at -20 °C. |
NaF | New England BioLabs | P0759 | Sodium fluoride (500 mM) is commonly used as general inhibitor of phosphoseryl and phosphothreonyl phosphatases. Store at -20 °C. |
NGS machine | Illumina | SY-301-1301 | Genome Analyzer IIx |
NGS machine (high performance) | Illumina | SY-401-2501 | HiSeq |
Normal serum (antibody control) | Santa Cruz Biotechnology | sc-2028 | Use as control for goat polyclonal IgG antibodies in ChIP-qPCR experiments. Store at 4 °C. |
Normal serum (antibody control) | Santa Cruz Biotechnology | sc-2025 | Use as control for mouse polyclonal IgG antibodies in ChIP-qPCR experiments. Store at 4 °C. |
Normal serum (antibody control) | Santa Cruz Biotechnology | sc-2027 | Use as control for rabbit polyclonal IgG antibodies in ChIP-qPCR experiments. Store at 4 °C. |
Nucleic acid staining solution | iNtRON | 21141 | Use RedSafe nucleic acid staining solution at 1:50,000. Store at room temperature. |
Orange G | Sigma | O3756-25G | 1-Phenylazo-2-naphthol-6,8-disulfonic acid disodium salt. Store at 4 °C. |
PCR primers | e.g., IDT or Sigma | NA | Primers to enrich adaptor-ligated DNA fragments by PCR: AATGATACGGCGACCACCGA*G and CAAGCAGAAGACGGCATACGA*G, phosphorothioate bond. Primers designed by Ethan Ford. Combine primers at 5 µM each. Use 5 µl in a 50 µl PCR reaction. Store at -20 °C. |
MinElute PCR purification kit | Qiagen | 28006 | for purification of ChIP-qPCR and shearing test samples. Store MinElute spin columns at 4 °C, all other buffers and collection tubes at room temperature. |
Phenol:chloroform:isoamyl alcohol (25:24:1, pH 7.9) | life technologies | AM9730 | Phenol:Chloroform:IAA (25:24:1) is premixed and supplied at pH 6.6. Use provided Tris alkaline buffer to raise pH to 7.9. Store at 4 °C. CAUTION: phenol:chloroform:isoamyl alcohol is corrosive, highly toxic and combustible. |
Primer3 (software) | Steve Rozen & Helen Skaletsky | non-commercial | http://biotools.umassmed.edu/bioapps/primer3_www.cgi |
Protease inhibitor tablets | Roche | 11836170001 | cOmplete, Mini, EDTA-free. Use 1 tablet per 10 ml. Store at 4 °C. |
Protease inhibitor tablets | Roche | 11873580001 | cOmplete, EDTA-free. Use 1 tablet per 50 ml. Store at 4 °C. |
Proteinase K | life technologies | AM2548 | proteinase K solution (20 µg/µl). Store at -20 °C. |
RNase A | life technologies | 12091-039 | RNase A (20 µg/µl). Store at room temperature. |
Rotator | Stuart | SB3 | Rotator SB3 |
SAMtools (software) | Li et al. | non-commercial | http://samtools.sourceforge.neta |
Solid phase reversible immobilisation beads | Beckman Coulter | A63882 | The Agencourt AMPure XP beads are used to minimise adaptor dimer contamination in ChIP-Seq libraries. Store at 4 °C. |
Sonicator 3000 | Misonix/Qsonica | NA | Newer models are now available. Q125, Q500 or Q700 are all suitable for shearing crosslinked chromatin. |
Sound enclosure | Misonix/Qsonica | NA | optional: follow the manufacturer's recommendation to obtain the correct sound enclosure. |
Thermomixer | eppendorf | 22670000 | Thermomixer for 24 x 1.5 mL tubes. Precise temperature control from 4 °C above room temperature to 99 °C. |