Summary

Photopatterning proteiner och celler i vattenmiljö Använda TiO<sub> 2</sub> Fotokatalys

Published: October 26, 2015
doi:

Summary

We describe a protocol for modifying cell affinity of a scaffold surface in aqueous environment. The method takes advantage of titanium dioxide photocatalysis to decompose organic film in the photo-irradiated region. We show that it can be used to create microdomains of scaffolding proteins, both ex situ and in situ.

Abstract

Organiska föroreningar som adsorberats på ytan av titandioxid (TiOj 2) kan sönderdelas genom fotokatalys under ultraviolett (UV) ljus. Här beskriver vi ett nytt protokoll som använder TiOj 2 fotokatalys för att lokalt förändra cellaffinitet av substratytan. För detta experiment en tunn TiO 2 filmen var sputter-belagd på ett täckglas, och TiO 2 yta ändrades sedan med en organosilan monoskikt härlett från octadecyltrichlorosilane (OTS), vilket inhiberar celladhesion. Provet nedsänktes i ett cellodlingsmedium, och fokuserade UV-ljus bestrålades till en oktagonal regionen. När en neuronal cellinje PC12-celler ströks ut på provet, celler vidhäftade endast på UV-bestrålade området. Vi visar vidare att denna ytmodifiering kan också utföras in situ, dvs även när celler växer på substratet. Korrekt modifiering av ytan krävs en extracellulär matris protein kollagen för att vara närvarande i mediet vid tiden för UV-bestrålning. Tekniken som presenteras här kan potentiellt användas i mönstrings flera celltyper för att konstruera coculture system eller godtyckligt manipulera celler under odling.

Introduction

Halvledarlitografi processer och dess derivat – såsom fotolitografi 1,2, elektronstrålelitografi 3-6, och mikrokontakt utskrift 7-10 – har nu blivit en etablerad verktyg i cellbiologi att växa levande celler i en definierad position och geometri. Mönstringen metod förlitar sig på användningen av mikrofabricerade substrat, som består av mikro ön cell permissiv beläggning i en icke-permissiv bakgrund. Sådana substrat fungerar som en mall för att mönstra cellerna. Dessa tekniker har gett oss de nya metoderna för att modifiera celler och deras funktion vid en enkel- och multi-cellulär nivå, för att extrahera de inneboende egenskaperna hos celler, och för att öka genomströmningen av cellbaserade läkemedelsscreening 11.

Graden frihets i cell mönstring skulle i hög grad öka om att mallmönster geometri skulle kunna ändras på plats, det vill säga, medan celler odlas på Surface. De konventionella metoderna för mönsterbildning kan inte tillämpas direkt här, eftersom de behandlar samplen i atmosfär eller i vakuum. Därför olika nya ytmodifieringstekniker har föreslagits, som bygger, till exempel på fotoreaktiva föreningar 12,13 eller laserablation 5,14, bara för att nämna några. De föreslagna metoderna har varit snyggt granskats av Robertus et al. 15, och mer nyligen av et al. Choi 16 och Nakanishi 17.

Här i den här artikeln beskriver vi en ny protokoll in situ ytmodifieringen, som drar fördel av fotokatalytiska nedbrytning av organiska molekyler på en titandioxid (TiO 2) yta 18,19. I denna metod används en TiO 2 film införd mellan glassubstratet och den organiska filmen som samverkar cellerna, och den organiska filmen sönderdelas in situ genom lokalt bestrålning ultraviolett (UV)ljus till ett område av intresse (λ <388 nm). Vi visar att det nya protokollet kan användas för att skapa micropatterns av extracellulära matrixproteiner och levande celler både ex situ och in situ. TiO 2 är biokompatibla, kemiskt stabil och optiskt transparent, funktioner som gör det vänliga att införa i cellkulturförsök. Detta protokoll ger en materialvetenskap baserat alternativ för att modifiera cellkultur ställningar i cellkultur miljö.

Protocol

1. Beredning av TiO 2-belagda täckglas Antal täck med hjälp av en diamant ritsnål. Detta bidrar inte bara till att hålla koll på varje täck men också att se till att rätt sida av provet är vänd uppåt. Rengör täckglas, först under rinnande DDH 2 O, sedan genom att nedsänka dem i Piranha-lösning (H 2 SO 4: H2O 2 = 4: 1). Efter 10 minuter, skölj täck ordentligt, 8 gånger i DDH 2 O. Torka täck under N2-flöde. <…

Representative Results

Figur 2A visar en tvärsnittsvy svepelektronmikroskopi (SEM) bild av beläggningskällorna avsatta TiO 2-film. Från observation, var tjockleken hos filmen beräknas vara cirka 150 nm. Märkbar här är planhet av den avsatta TiO 2 film. Ytterligare analys av atomkraftsmikroskopi (AFM) avslöjade att root-mean-square (rms) ytans jämnhet var 0,2 nm (Figur 2B). När TiO 2 yta är modifierad med OTS och nedsänktes därefter i …

Discussion

I vårt nuvarande protokollet, var TiO 2 film bildad av RF-magnetronförstoftning. Vi föredrar denna metod för avsättning eftersom det ger oss möjlighet att reproducerbart framställa ett fotokatalytiskt TiO 2 film med en sub-nm råhet. Även sputtering processer är välkända för materialforskare och elektronikingenjörer, kan det inte vara helt tillgänglig för biologer. I så fall skulle spinnbelades TiO 2-film vara ett alternativt val 23. I denna metod, är TiO <sub…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Authors thank Mr. Kotaro Okubo for the kind assistance with SEM imaging. This work was supported by the Japan Society for the Promotion of Science Grant-in-Aid for Basic Research (B) (20310069), Grant-in-Aid for Research Activity Start-up (25880021), and by research grants from the Kurata Memorial Hitachi Science and Technology Foundation and the Nippon Sheet Glass Foundation for Materials Science and Engineering.

Materials

Glass coverslip Warner Instruments CS-15R15 15 mm, #1.5 thickness
Diamond scriber Ogura Jewel Industry D-Point Pen
RF sputtering system ANELVA SPC350
TiO2 sputtering target Kojundo Chemical Lab Titanium (IV) oxide, target Purity, 99.9%
Plasma reactor Yamato PR301
n-octadecyltrichlorosilane
(OTS)
Aldrich 104817
Toluene Wako 204-01866
Tissue-culture dish (35 mm) Greiner 627160
Tissue-culture dish (60 mm) BD Falcon 353002
Type-IV collagen Nitta Gelatin Cellmatrix Type IV
D-PBS Gibco 14190-144
Dulbecco's modified Eagle's medium (DMEM) Gibco 11885-084
Fetal bovine serum Gibco 12483-020 Heat-inactivate and pass through a 0.22 mm filter before use
Horse serum Gibco 26050-088 Pass through a 0.22 mm filter before use
Penicillin-streptomycin (100x) Nacalai tesque 26253-84
7S nerve growth factor (NGF) Alomone Labs N-130
Bovine serum albumin (BSA) Sigma A2153
EDTA Dojindo N001 Stock solution in 0.5 M
TiO2 nanoparticle Tayca TKD-701

References

  1. Hughes, M. A., Brennan, P. M., Bunting, A. S., Shipston, M. J., Murray, A. F. Cell Patterning on Photolithographically Defined Parylene-C: SiO2 Substrates. J. Vis. Exp. (85), e50929 (2014).
  2. Kleinfeld, D., Kahler, K. H., Hockberger, P. E. Controlled Outgrowth of Dissociated Neurons on Patterned Substrates. J. Neurosci. 8, 4098-4120 (1988).
  3. Pensen, D., Heinz, W. F., Werbin, J. L., Hoh, J. H., Haviland, D. B. Electron Beam Patterning of Fibronectin Nanodots that Support Focal Adhesion Formation. Soft Matter. 3, 1280-1284 (2007).
  4. Tanii, T., et al. Application of Organosilane Monolayer Template to Quantitative Evaluation of Cancer Cell Adhesive Ability. Jpn. J. Appl. Phys. 50, 06GL01 (2011).
  5. Yamamoto, H., et al. In-Situ Guidance of Individual Neuronal Processes by Wet Femtosecond Laser Processing of Self-Assembled Monolayers. Appl. Phys. Lett. 99, 163701-1610 (2011).
  6. Yamamoto, H., et al. Differential Neurite Outgrowth is Required for Axon Specification by Cultured Hippocampal Neurons. J. Neurochem. 123, 904-910 (2012).
  7. Shen, K., Qi, J., Kam, L. C. Microcontact Printing of Proteins for Cell Biology. J. Vis. Exp. (22), e1065 (2008).
  8. Johnson, D. M., LaFranzo, N. A., Maurer, J. A. Creating Two-Dimensional Patterned Substrates for Protein and Cell Confinement. J. Vis. Exp. (55), e3164 (2011).
  9. Singhvi, R., et al. Engineering Cell Shape and Function. Science. 264, 696-698 (1126).
  10. Chen, C. S., Mrksich, M., Huang, S., Whitesides, G. M., Ingber, D. E. Geometric Control of Cell Life and Death. Science. 276, 1425-1428 (1997).
  11. Degot, S., et al. Improved Visualization and Quantitative Analysis of Drug Effects using Micropatterned Cells. J. Vis. Exp. (46), e2514 (2010).
  12. Nakanishi, J., et al. Photoactivation of a Substrate for Cell Adhesion under Standard Fluorescence Microscopes. J. Am. Chem. Soc. 126, 16314-16315 (2004).
  13. Kim, M., et al. Addressable Micropatterning of Multiple Proteins and Cells by Microscope Projection Photolithography Based on a Protein Friendly Photoresist. Langmuir. 26, 12112-12118 (2010).
  14. Deka, G., Okano, K., Kao, F. -. J. Dynamic Photopatterning of Cells In Situ by Q-Switched Neodymium-Doped Yttrium Ortho-Vanadate. Laser. J. Biomed. Opt. 19, 011012 (2014).
  15. Robertus, J., Browne, W. R., Feringa, B. L. Dynamic Control over Cell Adhesive Properties using Molecular-Based Surface Engineering Strategies. Chem. Soc. Rev. 39, 354-378 (2010).
  16. Choi, I., Yeo, W. -. S. Self-Assembled Monolayers with Dynamicity Stemming from (Bio)chemical Conversions: From Construction to Application. ChemPhysChem. 14, 55-69 (2013).
  17. Nakanishi, J. Switchable Substrates for Analyzing and Engineering Cellular Functions. Chem. Asian J. 9, 406-417 (2014).
  18. Yamamoto, H., et al. In Situ Modification of Cell-Culture Scaffolds by Photocatalytic Decomposition of Organosilane Monolayers. Biofabrication. 6, 035021 (2014).
  19. Sekine, K., Yamamoto, H., Kono, S., Ikeda, T., Kuroda, A., Tanii, T. Surface Modification of Cell Scaffold in Aqueous Solution using TiO2 Photocatalysis and Linker Protein L2 for Patterning Primary Neurons. e-J. Surf. Sci. Nanotech. 13, 213-218 (2015).
  20. Arima, Y., Iwata, H. Effects of Surface Functional Groups on Protein Adsorption and Subsequent Cell Adhesion using Self-Assembled Monolayers. J. Mater. Chem. 17, 4079-4087 (2007).
  21. Fujishima, A., Zhang, X., Tryk, D. A. TiO2 Photocatalysis and Related Surface Phenomena. Surf. Sci. Rep. 63, 515-582 (2008).
  22. Sigal, G. B., Mrksich, M., Whitesides, G. M. Effect of Surface Wettability on the Adsorption of Proteins and Detergents. J. Am. Chem. Soc. 120, 3464-3473 (1998).
  23. Zhang, X., et al. A Transparent and Photo-Patternable Superhydrophobic Film. Chem. Commun. 2007, 4949-4951 (1039).
  24. Kaech, S., Banker, G. Culturing Hippocampal Neurons. Nat. Protoc. 1, 2406-2415 (2006).

Play Video

Cite This Article
Yamamoto, H., Demura, T., Sekine, K., Kono, S., Niwano, M., Hirano-Iwata, A., Tanii, T. Photopatterning Proteins and Cells in Aqueous Environment Using TiO2 Photocatalysis. J. Vis. Exp. (104), e53045, doi:10.3791/53045 (2015).

View Video