Summary
我々は、ハイスループットシーケンシングを利用したタンパク質の包括的な単一部位飽和突然変異誘発ライブラリの機能評価のためのプロトコルを提示します。重要なことに、このアプローチは、ライブラリー構築および配列決定を多重化するために直交するプライマー対を使用しています。アンピシリンの臨床的に関連する用量で選択されたTEM-1βラクタマーゼを使用して、代表的な結果を提供しています。
Introduction
突然変異誘発は、長い生物学的システムとそれらの進化の特性を研究するために実験室で使用されており、強化された又は新規の機能を有する変異タンパク質または生物を生成します。初期のアプローチは、生物においてランダム突然変異を生成する方法に頼っているが、組換えDNA技術の出現は、部位特異的にDNAに選択の変更、 すなわち 、部位特異的突然変異誘発1,2を導入する研究者を可能にしました。現在の技術は、典型的には、ポリメラーゼ連鎖反応（PCR）に変異原性オリゴヌクレオチドを用いて、所与の遺伝子3,4の突然変異の少数（ 例えば 、点突然変異）を作成し、評価するのが比較的容易です。時目標アプローチは、すべての可能なシングルサイト（または上位）の変異、例えば、作成及び評価、ただしはるかに困難です。
多くはMの多数を評価しようとする初期の研究から学習してきたが遺伝子におけるutationsは、使用される技術は、独立して、ナンセンスサプレッサー株を5-7を使用して、各変異の評価を必要とする例えば、しばしば面倒だった、または起因サンガーシーケンシング8の低いシーケンシング深さへの定量的な能力に制限されていました。これらの研究で使用される技術は、主にハイスループットシークエンシング技術9-12を利用する方法に取って代わられています。これらの多数の突然変異を含むライブラリーを作成伴う概念的に単純なアプローチ、機能のための画面や選択にライブラリを施し、その後、ディープシークエンシング（ すなわち 、> 10 6シーケンシング読み取りのオーダー）の前に得られたライブラリーと選択後。このようにして、多数の突然変異の表現型または適応度の効果は、各変異体の集団頻度の変化として表され、同時に、より定量的に評価することができます。
我々は以前あほを導入しましたタンパク質中のすべての可能な単一のアミノ酸変異のライブラリーを評価するためのル・アプローチ（ すなわち 、全タンパク質飽和突然変異誘発ライブラリ。）、より長いシーケンシング読み取り長11,13よりも長さの遺伝子に適用：まず、各アミノ酸位置がランダム化されます部位指向性変異原性PCRによる。このプロセスの間に、遺伝子は、配列決定プラットフォームに収容全長と連続する位置からなるグループに分割されます。各グループの突然変異誘発PCR産物はその後組み合わされ、各グループは、独立して選択し、ハイスループット配列決定に供されます。シーケンスおよび配列の読み取り長の変異の位置との対応関係を維持することによって、このアプローチは、最大化、配列決定の深さの利点を有する：1は、単に基（ 例えば 、標準的な散弾銃によってに分割することなく、短いウィンドウでこのようなライブラリーを配列決定することができながら、配列決定アプローチ）は、ほとんどの野生型および従ってMなり得る読み取りシークエンシングのスループットのajorityは（ 例えば、100個のアミノ酸（300 bp）の窓に配列決定さ500アミノ酸のタンパク質の全タンパク質飽和突然変異誘発ライブラリーのために、読み込みの最低80％は野生型配列となります）無駄にしました。
ここでは、プロトコルは、（ 図1に概説）上記のアプローチを用いて、全タンパク質の飽和突然変異誘発ライブラリーの機能的な評価のためのハイスループットシークエンシングを利用する提示されています。重要なことは、我々は、スクリーニングまたは選択に同時に受ける彼らは1ライブラリに多重化することを可能にする、各シーケンスグループを、バーコード、ライブラリクローニング処理に直交するプライマーの使用法を紹介し、その後深いシーケンシングのために逆多重化。系列グループは、独立選択に供されていないので、これは、作業負荷を軽減し、各変異は選択の同じレベルを経験することを保証します。 TEM-1βラクタマーゼ、高レベルの耐性を付与する酵素βラクタム抗生物質（ 例えば 、アンピシリン）細菌では、モデル系14〜16として使用されます。プロトコルは、 大腸菌におけるTEM-1の全タンパク質の飽和突然変異誘発ライブラリーの評価のために記載されていますアンピシリンの臨床用量（50μg/ mlの）17,18のおおよその血清レベルでの選択の下で大腸菌 。
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Protocol
注意：プロトコルの概要については、 図1を参照してください。プロトコルのいくつかの手順および試薬は、（「注意」で示す）安全対策が必要です。使用前に製品安全データシートを参照してください。他に示されない限り、すべてのプロトコルの工程は室温で行われます。
1.培養培地とプレートを準備します
- 準備と滅菌1Lの精製水をオートクレーブで100mlの超最適ブロス（SOB; 表1）、1 Lルリア-ベルターニ培地（LB; 表2）と1LのLB寒天（ 表3）。別々に準備し、各1 L、LBを含む3つの培養フラスコを滅菌
注：プロトコルを通して、「水」は、精製水、滅菌オートクレーブを指します。 SOB、LBおよびLB寒天はオートクレーブ滅菌ソリューションを参照してください。 - 70％エタノール10mlに0.12グラムのテトラサイクリン塩酸塩を溶解することにより、テトの12 mg / mlでストックを準備します。 0.2μmのフィルターとストアを使用して滅菌4℃で光から保護。
- クールLB寒天を50℃にした後、テトの株式（12 / mlのテトの最終濃度）の1ミリリットルを追加します。ペトリ皿の中に注ぎ、光から保護し、室温で冷却します。光から保護して4℃で保存します。
全遺伝子飽和突然変異誘発ライブラリーの2建設
注：プライマーを、 PCRを、制限消化およびライゲーションを完了しました。および精製されたDNAサンプルを、-20℃で保存することができます。
- 突然変異誘発プライマーを設計します
- すべての可能なアミノ酸に各アミノ酸位置を変異誘発するには、次のガイドラインと、各アミノ酸位置のために（センス/フォワードおよびアンチセンス/リバース）の相補的変異誘発プライマー対を設計します。
- アミノ酸に対応するコドン（Nは4つ全てのヌクレオチド塩基の混合物であり、Sはシトシンの混合物（C）とグアニン（G）である）プリムおよび中央NNSによって変異誘発される置き換えてくださいえー、それぞれの側に約15個のヌクレオチドによって隣接。
- 5 'および3' CまたはGで終端し、融解温度（T m）は約70℃で3であることを終了することを確認してください。これらのガイドラインに従ってNNS突然変異誘発プライマーを設計するために、計算スクリプトNNS_PrimerDesign.mを（補足コードファイルを参照してください）を使用します。
- 商業的供給源からのプライマーを注文します。使いやすさのために、それらは、96ウェルプレートフォーマットセンス変異誘発プライマーおよび別のアンチセンスプライマーを含有するプレートの一組で、50μMまで水で予め希釈で合成しました。
- 水をピペット盆地を記入し、3 96ウェルプレート上で263ウェルに95μLを転送するためにマルチチャンネルピペットを使用しています。水を含有するプレートの同族ウェルにセンス変異誘発プライマーを含む96ウェルプレートからの5μlのを転送するためにマルチチャンネルピペットを使用して、2.5μMにプライマー20倍に希釈します。
- 繰り返すアンチセンス変異誘発プライマーを希釈するためのプロトコルのステップ2.1.3。
- すべての可能なアミノ酸に各アミノ酸位置を変異誘発するには、次のガイドラインと、各アミノ酸位置のために（センス/フォワードおよびアンチセンス/リバース）の相補的変異誘発プライマー対を設計します。
- 二段階PCR部位特異的突然変異誘発によって各アミノ酸位置のNNSサブライブラリーの合成
- 第一ラウンドの変異原性のPCRを行います。各突然変異誘発プライマーは、鋳型とプライマーとしてpBR322_AvrIIプラスミドを用いて、25μlのPCR反応を準備AatII_FまたはAvrII_R（; 526 PCRの合計プライマーAvrII_Rと対にセンス変異誘発プライマー、およびプライマーAatII_Fと対にアンチセンス変異誘発プライマー）。 AatII_FとAvrII_Rシーケンスのための材料の表を参照してください。
- 15mLのコニカルチューブに、表4からの試薬 を添加することによって、PCR「マスターミックス」を調製します。ピペット盆地に転送します。 3 96ウェルPCRプレート上で263ウェルに15μLを転送するためにマルチチャンネルピペットを使用してください。私は同族のウェルに希釈されたセンス変異誘発プライマーを含む96ウェルプレートから10μLを転送するためにマルチチャンネルピペットを使用して、nはPCRプレート。
- 96ウェルプレートシールで各PCRプレートをカバーしています。 2分間200×gで遠心分離します。
- サーモサイクラーにPCRプレートを移し、次のプログラムを実行します。30秒98°Cを。 20サイクル：10秒、98℃、20秒間55℃、1分間72°C; 2分間72°C; 4℃で保持します。
- 希釈されたアンチセンス変異誘発プライマーを含む96ウェルプレートのために2.2.1.3 - 繰返しプロトコルは2.2.1.1ステップ。
- 第二ラウンドの変異原性のPCRを行います。各アミノ酸位置については、プライマーAatII_FとAvrII_Rを用いて25μlのPCR反応液を調製し、混合し、鋳型（263 PCRの合計）として、第一ラウンドの突然変異誘発PCR産物を希釈しました。
- 水をピペット盆地を記入し、3 96ウェルプレート上で263ウェルに198μLを転送するためにマルチチャンネルピペットを使用しています。
- にマルチチャンネルピペットを用いて、各アミノ酸位置の突然変異誘発PCR産物を100倍結合し、希薄水を含むプレートの同族ウェルにセンス変異誘発プライマーから得られたPCR産物を含む96ウェルPCRプレートから最初の転送1μlの。そして、アンチセンス変異誘発プライマーから得られたPCR産物のための転送を繰り返します。
- 15mLのコニカルチューブに、表5からの試薬 を添加することによって、PCR「マスターミックス」を調製します。ピペット盆地に転送します。 3 96ウェルPCRプレート上で263ウェルに24μLを転送するためにマルチチャンネルピペットを使用してください。混合を含む96ウェルプレートの1μLを転送するためにマルチチャンネルピペットを使用して、PCRプレート中で同系のウェルに第一ラウンドを突然変異誘発PCR産物を希釈しました。
- 96ウェルプレートシールで各PCRプレートをカバーしています。 2分間、約200×gで遠心分離します。転送プレートはサーモサイクラーとプロトコルステップ2.2.1.3と同じプログラムを実行します。
- ゲル電気泳動によって、第2ラウンドの変異原性PCRの結果を分析します。すべての製品は、製品を汚染する正しいサイズおよび不在であることを確認してください。
- ピペット流域に2倍ゲルローディング色素の2ミリリットルを追加し、3、96ウェルプレート上で263ウェルに6μLを転送するためにマルチチャンネルピペットを使用しています。色素を含む96ウェルプレートの同族ウェルに2回目の変異原性PCR産物を含む96ウェルPCRプレートから6μLを転送するためにマルチチャンネルピペットを使用してください。
- 0.2 / mlのエチジウムブロマイド（注意）を用いて1.5％アガロースゲルを準備します。
- 各行の最初と最後のレーンでのロードDNAラダー。そして、プロトコルのステップ2.2.3.1からのサンプルを10μlをロードするためにマルチチャンネルピペットを使用しています。
- UVトランスイルミネーター上で40分間および画像用の100Vでゲルを実行します。
- すべてのサンプルが分析されるまで、2.2.3.4 - を繰り返しプロトコルは2.2.3.2手順。
- 正確のdsDNA定量試薬を使用して、各NNSサブライブラリーPCR産物の濃度を測定します。
- 移転ピペット流域に約15ミリリットルのEB緩衝液。 3 96ウェル黒壁、透明底アッセイプレート上で263ウェルに49μLを転送するためにマルチチャンネルピペットを使用してください。
- 96ウェルアッセイプレートの同族ウェルにそれぞれ第二段階PCR産物（プロトコルステップ2.2.2）の1μLを転送するためにマルチチャンネルピペットを使用してください。
- 300μlのEB緩衝液中で2 ngの/μlにラムダファージDNAを希釈することにより、DNA濃度の標準曲線を作成した後、（11濃度の合計）1002年倍希釈液を作ります。何のサンプルが含まれていない前のステップからの96ウェルアッセイプレートの1の行の最初の11列への転送を50μl;第十二列にEB緩衝液（試薬ブランク）の50μlを添加します。
- 試薬75μlのを追加することによって、二本鎖DNAの定量試薬を調製後、EB緩衝液の15ミリリットルを追加し、15ミリリットルコニカルチューブに（ 材料の表を参照してください）。チューブを転倒混和した後、ピペット盆地に転送します。光から試薬を保護します。
- アッセイプレートの各ウェルに準備したdsDNA定量試薬50μlのを転送するためにマルチチャンネルピペットを使用してください。アップダウンをピペットで混ぜます。光から保護し、室温で5分間、プレートをインキュベートします。
- マイクロプレートリーダーと標準フルオレセイン波長（; 0.1秒励起485 nmで、発光520 nm）を用いて、各サンプルの蛍光を測定します。
- すべてのサンプルから試薬ブランクの蛍光値を引きます。ラムダファージサンプルの蛍光測定値から標準曲線を生成します。それぞれの蛍光測定値と標準曲線を用いて、各試料の濃度を計算します。
- 第一ラウンドの変異原性のPCRを行います。各突然変異誘発プライマーは、鋳型とプライマーとしてpBR322_AvrIIプラスミドを用いて、25μlのPCR反応を準備AatII_FまたはAvrII_R（; 526 PCRの合計プライマーAvrII_Rと対にセンス変異誘発プライマー、およびプライマーAatII_Fと対にアンチセンス変異誘発プライマー）。 AatII_FとAvrII_Rシーケンスのための材料の表を参照してください。
- 選択ベクターへのNNSのサブライブラリーのクローニング
- 5 NNSのサブライブラリーのグループに各NNSのサブライブラリーのPCR産物の100 ngのを混ぜます。メーカーの説明書に従って、DNA精製キットを用いて、サンプルをクリーンアップしてからのdsを使用して濃度を測定DNAの定量試薬。
注：各グループは、TEM-1配列（NNSサブライブラリーグループ1に沿って離間約53個の連続したアミノ酸位置で構成されている - 5は、位置26で構成されている - 78、79から132まで、133から183まで、184から236、および237から290まで、それぞれ、番号付け）アンブラーら 19に従って。 - 各NNSサブライブラリグループのクローニングベクターを作成します。
- テンプレート（pBR322_OP1と対になってAatII_OP1_R、など）AatII_OP5_R、およびプラスミドpBR322_OP1-5 -プライマーAvrII_FとAatII_OP1_Rを使用して、 表6によると5を100μlのPCRを準備します。
- サーマルサイクラーと次のプログラムを実行するために転送：30秒98°Cを。 25サイクル：10秒、98℃、20秒間55℃、1.5分間72°C; 2分間72°C; 4℃で保持します。 AatII_RとAvrII_Fのシーケンスのための材料のできる Tを参照してください。
- 0.2 / mlのエチジウムブロマイド（注意）1％アガロースゲルを準備します。
- 各PCRサンプルに6倍ゲルローディング色素の20μLを加えます。 DNAラダーとゲルの最初のレーンをロードします。サンプル間でも、少なくとも1をスキップして、各サンプルのボリューム全体をロードします。
- 50分間、100Vでゲルを実行します。
- 長波長紫外線照射器（注意）を用いてゲルを可視化します。 〜3500塩基対でのPCR産物を含む物品税スライス。個別のマイクロチューブに移します。ゲル切片を-20℃で保存することができます。
- 製造業者の説明書に従って、ゲル抽出キットとのdsDNA定量試薬を使用して測定濃度を用いてサンプルを精製します。
- NNSのサブライブラリーグループ（プロトコルステップ2.3.1）およびクローニングベクター（プロトコルステップ2.3.2）の両方について、設定制限ができる T 7に記載のAatIIおよびAvrIIでの酵素で消化する。37℃で1時間インキュベートします。メーカーの指示に従って、DNA精製キットを用いて、サンプルをクリーンアップした後、二本鎖DNA quantitaを使用して濃度を測定ション試薬。
- 同族の制限消化クローニングベクター（などpBR322_OP1、とNNSのサブライブラリーグループ1）と各制限消化NNSのサブライブラリーグループについては、 表8を次の連結反応を設定します。室温で1時間インキュベートします。製造元の指示に従ってDNA精製キットを用いて反応をクリーンアップします。水20μlのDNAを溶出。
- ライブラリ-効率的な大腸菌に精製された連結反応の全体を変換しますエレクトロポレーションによって細胞を大腸菌 。
- 雪解けエレクトロE.その後、 大腸菌細胞と氷上で細胞および精製されたライゲーション反応を配置します。
- 転送10μlを各精製されたライゲーション反応に細胞を解凍し、次いでエレクトロポレーションキュベットに移します。 1.8 kVのでエレクトロポ。
- 1ミリリットルSOBに再懸濁することにより細胞を回収。 37℃で1時間インキュベートします。
- 990μlのLBの各回復文化の10μlのを再懸濁し、 LB寒天プレートCに100μLを広めますontaining 12 / mlのテト。プレートを37℃でO / N（〜16時間）インキュベートします。
- 各回復培養には、50ミリリットルのLBと50μlのTetリ株式で250ミリリットルの培養フラスコを準備します。回復文化の残り〜1ミリリットルをフラスコへ移します。 （〜200 rpm）で激しく振盪しながら37℃でO / N（〜16時間）インキュベートします。
- 各プレート上のコロニーの数を数えます。成功した形質転換体の数を計算
ここで、 
コロニーの数は、 
回復培養容量（千μl）をし、 
回復培養物の容量は、（1μl）をめっきします。
注：成功した形質転換体の数があるべき経験則として、すべての突然変異の完全なカバレッジを確保するために≥1予想される変異の数を超える00倍。各NNSのサブライブラリーは〜53ポジションを持っているので、突然変異の予想される数は、32個のコドン/位置≈1.7×10 3×53箇所です。ライブラリーサイズは≥100倍（≥1.7×10 5）を得、各プレート上≥170コロニーがあるはずです。 - 製造業者の説明書に従って、プラスミド精製キットを用いて培養物からプラスミドDNAを単離し、その後のdsDNA定量試薬を用いて濃度を測定します。一緒に各プラスミド100ngのを混ぜます。これは、最終的な全タンパク質飽和突然変異誘発ライブラリーを作成します。
- 5 NNSのサブライブラリーのグループに各NNSのサブライブラリーのPCR産物の100 ngのを混ぜます。メーカーの説明書に従って、DNA精製キットを用いて、サンプルをクリーンアップしてからのdsを使用して濃度を測定DNAの定量試薬。
ここで、 
コロニーの数は、 
回復培養容量（千μl）をし、 
回復培養物の容量は、（1μl）をめっきします。 抗生物質耐性のためのTEM-1の全タンパク質飽和突然変異誘発ライブラリの3セレクション
- 事前選択培地の調製。
- 水の中の0.5ng /μlにプロトコルのステップ2.3.7からのプラスミドを希釈し、マイクロチューブに20μlのを転送します。変換を実行し、再covery、めっきおよびO / N成長以前に999μlのLBにSOB回復文化の転送1μlを除いて、プロトコルのステップ2.3.5で説明したように
- コロニーの数を数えます。すべての変異の完全なカバレッジを確保するために≥106成功した形質転換体（10 6≈32コドン/ポジション×100×263の位置）を示す≥100コロニー、そこにあるべきです。
- 50ミリリットルO / N培養の濃度を測定します。
- 分光光度計のキュベットに1ミリリットルLBを追加することにより、LBブランクを準備します。分光光度計でOD600を測定します。
- 900μlのLBの中に100μLを再懸濁することにより、O / N培養10倍に希釈OD600を測定します。ブランクのOD600の読みを減算し、O / N培養のOD600を与えるために10を掛けます。
- 37℃で約30分間、プロトコルのステップ1.1から3培養フラスコを事前に温めます。 OD600 = 0.1にO / N培養物を希釈し、1フラスコ（最終OD600 = 0.001）に1ミリリットルを追加します。 T彼は、「事前選択の文化」です。
- 激しく振盪（200rpm）しながら37℃での「事前選択文化」をインキュベートします。定期的にOD600 = 0.1（〜2.5時間）まで（文化10倍に希釈する必要はありません）プロトコルのステップ3.1.3のようにOD600を測定することにより、成長を監視します。
- 2 50mlコニカルチューブに事前選択培地の100ミリリットルを転送します。 4℃で6分間、4000×gで遠心分離します。上清の大部分を除去し、単一の15コニカルチューブにまとめます。遠心分離を繰り返し、すべての上清を除去します。 -20℃で保管してください。
- アンピシリン耐性の選択。
- 事前選択文化がインキュベートされているが、10ミリリットルの水に0.5グラムのアンピシリンナトリウムを溶解させることにより、水中のアンプを50mg / mlのストックを用意。 4℃で0.2μmのフィルターとストアを使用して滅菌します。
- 他の2つのフラスコに、12μgの/ mlおよび事前選択培養例えば股関節の体積の最終濃度までのTetを追加最終OD600 = 0.001トン。 1フラスコに、50μg/ mlの最終濃度のために、1ミリリットルアンプを追加する - これが「選択文化」です。
- 激しく振盪（200rpm）しながら37℃で培養をインキュベートします。 OD600 = 0.1（〜2.5時間）まで全くアンピシリンが前の手順で追加しなかったために培養物の増殖を、監視します。このとき、また、選択培地のOD600を測定します。
- 0.1に選択培地のOD600を分割し、100ミリリットルを掛け。 4℃で6分間、4000×gで50ミリリットルコニカルチューブと遠心分離機にこのボリューム（〜400ml）に転送します。上清の大部分を除去し、単一の15コニカルチューブにまとめます。遠心分離を繰り返し、すべての上清を除去します。
- 製造業者の説明書に従って、事前選択（プロトコルステップ3.1.6）と選択（プロトコルステップ3.2.4）培養細胞ペレットからプラスミドDNAを単離し、その後のdsDNA定量試薬を用いて濃度を測定します。
- ハイスループットシークエンシングのための試料の調製
- 直交するプライマーを用いて逆多重化NNSのサブライブラリーのグループに25μlのPCRのを準備します
- 表9に記載の PCRマスターミックスを調製します。 10 PCRチューブに23μlずつ移します。
- 10から6をチューブに5および選択培養物から - 1チューブをPCRするために事前選択培養からの0.5ng /μlの精製されたプラスミドDNAの1μLを加えます。
- それぞれの逆直交プライマーOP1_RとOP5_F - - OP5_R一緒に50μMのフォワード直交プライマーOP1_F50μlのを混ぜます。同じ順序で、PCRチューブへの転送1μlの1から5および6 - OP5_FとOP1_R - - OP5_R OP1_Fのシーケンスのための材料の 10を参照してください表 。
- サーモサイクラーにPCRチューブを転送します。次のプログラムを実行します。30秒98°Cを。 20サイクル：10秒、55°、98°C; 20秒間℃、1.5分間72°C; 2分間72°C; 4℃で保持します。
- NNSサブライブラリーのグループのそれぞれを分離するために25μLのPCRを準備
- PCRチューブを分離するために各1μLを移し、水99μLを追加することにより、プロトコルのステップ4.1.1.4から10のPCRを100倍希釈します。ミックスは、その後、99μlのをピペットで廃棄します。
- それぞれのリバースプライマーGroup1_RとGroup5_F - - Group5_R一緒に50μMのフォワードプライマーGroup1_F50μlのを混ぜます。同じ順序でPCRチューブに、転送1μlの1から5と6 - 10 Group1_Fのシーケンスのための材料の表参照- Group5_FとGroup1_R - Group5_R。
- 各PCRチューブに23μlのを転送、 表9に記載の PCRマスターミックスを調製します。サーモサイクラーにPCRチューブを移します。プロトコルステップ2.2.1.3と同じプログラムを実行します。
- 索引作成配列を付加する最終25μlのPCRのを行います
- ディリュートPCRチューブを分離するために各1μLを移し、水99μLを追加することにより、プロトコルのステップ4.1.2.3から10のPCRを100倍。ミックスは、その後、99μlのをピペットで廃棄します。
- 各PCRチューブに23μlのを転送、 表9に記載の PCRマスターミックスを調製します。
- それぞれ505_F - NNSのサブライブラリーグループ1-5から発信テンプレートとチューブの場合、チューブあたり0.5μlのフォワードプライマー501_Fを転送します。事前選択し、選択培養物から得られたテンプレートを使用してチューブの場合、チューブ当たり0.5μlのは、それぞれ、プライマー701_Rと702_Rを逆に転送します。 505_F、および701_Rと702_R - 501_Fのシーケンスのための材料の表を参照してください。
- サーモサイクラーにPCRチューブを移し、ステップ2.2.1.3からプログラムを実行します。
- サンプルを混合し、精製
- 製造業者の指示に従ってのdsDNA定量試薬を用いて濃度を測定します。各PCR産物intの100 ngのを混ぜますOA単一のマイクロチューブ。
- 0.2 / mlのエチジウムブロマイド（注意）で2％アガロースゲルを準備します。
- 混合PCR産物サンプルに6倍ゲルローディング色素を追加します。 DNAラダーとゲルの最初のレーンをロードします。サンプルのボリューム全体をロードします。
- 50分間、100Vでゲルを実行します。長波長紫外線照射器（注意）を用いてゲルを可視化します。 〜360塩基対でのPCR産物を含む物品税スライス。チューブを微量遠心する転送します。ゲル切片を-20℃で保存することができます。
- 製造業者の説明書に従って、ゲル抽出キットを用いてサンプルを精製したdsDNA定量試薬を用いて濃度を測定します。これは、ハイスループット配列決定のための最終的なサンプルです。
- ハイスループットシークエンシング・プラットフォーム上の配列（このプロトコルで使用されるプラットフォームのための材料の表を参照してください）。
- nm単位での試料の濃度を計算します
試料の濃度はngの/μl中で、 
サンプルDNA（〜360塩基対）の配列の長さです。 EB緩衝液で4 nMのにサンプルを希釈します。 - サンプルを変性し、ハイブリダイゼーション緩衝液中で午後9時に希釈するために、製造元の指示に従ってください。
- 試薬カートリッジにロードしたサンプルの600μLを。製造元の指示し、画面の指示以下のシーケンス。
- nm単位での試料の濃度を計算します
- 直交するプライマーを用いて逆多重化NNSのサブライブラリーのグループに25μlのPCRのを準備します
- 配列決定データの解析
- フラッシュ（ショートの高速長さ調整読み取り）20をダウンロードし 、配列決定から得られfastq.gzファイルとともにフォルダに配置します。
- ペアエンドに対応するfastq.gzファイルを結合するために使用するフラッシュ（フォワードおよびリバースは、事前選択し、選択培養に各NNSのサブライブラリーグループに対して読み込み）インデックスのペアごとに読み込みます。
- 読み込みの各ペアに参加した後、事前選択または選択培養液からの結果を別のフォルダにout.extendedFrags.fastq出力ファイルを配置します。それは（ すなわち 、1.fastq、2.fastqなど）に対応するNNSのサブライブラリーグループに応じout.extendedFrags.fastq出力ファイルの名前を変更します。
- 各NNSのサブライブラリーグループのために、野生型のため、各単一のアミノ酸変異のカウント、およびカウントを計算するために、各フォルダから計算スクリプトNNS_DataAnalyzer.m（補足コードファイルを参照してください）を実行します。
- フィットネス効果を計算
各変異の選択で得られたカウント数の比率のベース10対数（など
）（事前選択対
野生型と比較して）条件： 
。
試料の濃度はngの/μl中で、 
サンプルDNA（〜360塩基対）の配列の長さです。 EB緩衝液で4 nMのにサンプルを希釈します。 
各変異の
）（事前選択対
野生型と比較して）条件： 
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Representative Results
直交プライミング部位（pBR322_OP1 - pBR322_OP5）を含む5変更されたpBR322プラスミドのためのプラスミドマップを図2Aに示されています。直交プライマーが特異的であるかどうかをテストするには、PCRは全て5 pBR322_OP1-5プラスミドと一緒に、またはすべてのプラスミドマイナス直交プライマーペアに一致するプラスミドで、個別に直交するプライマーの各ペアを用いて行きました。マッチングプラスミドが含まれていたときに、正しい生成物のみが得られた、任意の大きさのない製品は、その非存在下（ 図2B）で得られませんでした。
代表的な実験は、このテキスト（ 図1）に記載のプロトコルに従って実施しました。処理を次の（プロトコルセクション4.2）、6.2×10 6は、事前選択条件から読み取って、6.3×10 6は、50μg/ mlのアンピシリン選択conditiからの読み込み上で得ました。それぞれについて得られた数は、事前選択状態から酸変異特性対数正規分布（ 図3A）13 を表示するアミノ酸。変異の98.9％で（58全くカウントを持っていない）のために事前選択培養物の配列決定から少なくとも1つのカウント、および100を超える数91.2％が（465未満100カウントであった）が得られた。 図3Bは、相対的なフィットネス効果を示します（）TEM-1の各位置での各変異について、分布は、 図3Cに示されています。 50μg/ mlのアンピシリンでの選択の下では、ほとんどの突然変異は、中性またはほぼ中性のフィットネス効果（≈0、 図3Bの白画素と図3Cの大きなピークに対応する）を有しています。この濃度での変異のごく一部は（ 図3Bおよび図3Cで左の尾部に青色の画素に対応し、<< 0）フィットネスに実質的な影響を持っています。 EXP ectedly、これらは、高度に保存された活性部位残基（S70、K73、S130、D131、N132、K234、およびG236）13,14内の変異が含まれます。対照的に、いくつかの変異がかなりTEM-1の上に適合性を増加させる（>> 0、 図3Bの赤色画素に対応する）、TEM-1（アンピシリン加水分解に非常に効率的であるので、予想されるように
≈10 7 M -1 s -1で）14。
図1.アンピシリン選択下でのTEM-1βラクタマーゼのための全タンパク質飽和突然変異誘発プロトコルの概要。プロトコールに記載されているようにアクションが太字で示されています。番号付きプロトコルステップは、本文を参照するために、左に示されています。K ">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。
図2.直交プライミングサイトプラスミドベクターの検証。直交プライミング部位を含む5変更されたpBR322プラスミドのための（A）プラスミドマップ（pBR322_OP1 - pBR322_OP5）。直交プライミング部位の位置と方向が示されています。いくつかの制限部位の位置が標識されます。 （全体TEM-1遺伝子およびプロモーターを含んでいる）TEM-1全タンパク質飽和突然変異誘発ライブラリはをAatIIおよびAvrIIで制限部位の間にクローン化されています。略語：TETテトラサイクリン耐性遺伝子、複製起点ORI（B）直交プライマー（OP1-OP5）の各対が、または全てのプラスミドマイナスそれぞれのプラスミドで全て5 pBR322_OP1-5プラスミド（+）を含有するPCRで試験しました（。 ˗）。臭化エチジウムが示されています染色されたアガロースゲル（w / vの1％）電気泳動によって分離した各PCR反応は、サイズがロード。予想されるサイズの製品は、1628塩基対です。最初のレーンはDNAラダーで、関連する規格のサイズが示されている。 この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。
TEM-1βラクタマーゼ全タンパク質の飽和実験の図3.結果。 （A）ヒストグラムは、事前選択条件からライブラリーのハイスループット配列決定から得られたアミノ酸変異のカウントの分布を示します。簡単にするために、ゼロカウント（53変異）との突然変異は、1のカウントを有するものとして示されている。アンピシリン50μg/ mlで選択中のTEM-1のすべての単一のアミノ酸変異の（B）フィットネス効果。データが示されています相対的なフィットネス効果を含むマトリックスは、（）青を表す有害な影響で比色描かれ、野生型に正の効果と白の無フィットネス効果の相対的な赤。何カウントが事前選択培養から得られなかったれる変異は、黒色に着色されています。行が一次配列に沿った位置を表しており、列は20個のアミノ酸のいずれかに変異を示すか、終止コドン（一文字コードで示さを、*終止コドンです）; TEM-1の二次構造は、右側に示されている活性部位内の左およびいくつかの高度に保存されたモチーフで示されている。（C）ヒストグラムは、相対的なフィットネス効果の分布を示します。事前選択文化を配列決定から得られた> 100カウントとのそれらの突然変異の結果が示されている。 この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。
| 試薬 | 質量またはボリューム | コメント |
| Typtone | 2グラム | |
| 酵母エキス | 0.5グラム | |
| 塩化ナトリウム | 0.06グラム | |
| 塩化カリウム | 0.02グラム | |
| 硫酸マグネシウム | 0.24グラム | |
| 精製水 | 100ミリリットル |
表1.スーパー最適ブロス（SOB）。100ミリリットルSOB（プロトコルステップ1.1）を調製する際に使用される試薬名と数量。
| 試薬 | 質量または巻梅 | コメント |
| Typtone | 10グラム | |
| 酵母エキス | 5グラム | |
| 塩化ナトリウム | 10グラム | |
| 精製水 | 1 L |
表2ルリア-ベルターニブロス（LB）。1 L LB（プロトコルステップ1.1）の製造に使用される試薬名と数量。
| 試薬 | 質量またはボリューム | コメント |
| Typtone | 10グラム | |
| 酵母エキス | 5グラム | |
| 塩化ナトリウム | 10グラム | |
| 寒天 | 15グラム | |
| 精製水 | 1 L |
LB寒天（プロトコルステップ1.1）の製造に使用される表3 LB寒天。試薬名と数量。
| 試薬 | ボリューム | コメント |
| 5×PCR緩衝液 | 1450μlの | |
| PCR添加剤 | 1450μlの | |
| 2 mMののdNTP | 725μlの | 2mMの各ヌクレオチド |
| 50μMAatII_FまたはAvrII_Rプライマー | 145μlの | |
| 1 ngの/μlのpBR322_AvrIIプラスミド | 145μlの | |
| 2単位/μlのDNAポリメラーゼ | 72.5μlの | |
| 水 | 363μlの |
表4.ファーストラウンドの変異誘発PCRマスターミックス。第一ラウンド変異原性PCR（プロトコルステップ2.2.1）用のマスターミックスを調製するための試薬 名と数量。総量290 25μLの反応のために十分です。
| 試薬 | ボリューム | コメント |
| 5×PCR緩衝液 | 1450μlの | |
| PCR添加剤 | 1450μlの | |
| 2 mMののdNTP | 725μlの | 2mMの各ヌクレオチド |
| 50μMAatII_Fプライマー | 145μlの | |
| 50μMAvrII_Rプライマー | 145μlの | |
| 2単位/μlのDNAポリメラーゼ | 72.5μlの | |
| 水 | 2973μlの |
表5.第二ラウンドの変異誘発PCRマスターミックス。第二 ラウンドの変異原性PCR（プロトコルステップ2.2.2）用のマスターミックスを調製するための試薬 名と数量。総量29025μlの反応のために十分です。
| 試薬 | ボリューム | コメント |
| 5×PCR緩衝液 | 20μlの | |
| PCR添加剤 | 20μlの | |
| 2 mMののdNTP | 10μlの | 2mMの各ヌクレオチド |
| 50μMAvrII_Fプライマー | 2μlの | |
| 50μMのAatII_OP1_R - AatII_OP5_Rプライマー | 2μlの | それぞれのプラスミドと対に反応当たり1プライマー、 |
| 1 ngの/μlのpBR322_OP1-5プラスミド | 2μlの | 反応あたり1つのプラスミド |
| 2単位/μlのDNAポリメラーゼ | 1μlの | |
| 水 | 43μlの |
表6.クローニングベクターPCR。クローニングベクター（プロトコルステップ2.3.2）を作るために、PCRを製造するための試薬 名と数量。
| 試薬 | ボリューム | コメント |
| 10X制限酵素緩衝液 | 5μlの | |
| 4単位/μlのAvrIIで | 2.5μlの | |
| 20単位/μlのをAatII | 0.5μlの | |
| 制限消化のDNA | 500 ngのためのボリューム | |
| 水 | 50μlの全体積 |
表7.制限事項ダイジェスト。試薬名と数量をクローニングベクターとNNSのサブライブラリーグループ（プロトコルステップ2.3.3）の制限消化のために。
| 試薬 | ボリューム | コメント |
| 10×T4 DNAリガーゼ緩衝液 | 5μlの | |
| 精製された制限消化NNSサブライブラリグループのDNA | 48 ngのためのボリューム | |
| 精製された制限消化クローニングベクターDNA | 52 ngのためのボリューム | |
| 400単位/μlのT4 DNAリガーゼ | 1μlの | |
| 水 | 20μlの全体積 |
3ベクター：1で制限消化NNSのサブライブラリーの基とクローニングベクターのライゲーション表8.ライゲーション試薬名と数量。モル比（プロトコルステップ2.3.4）を挿入します。
| 試薬 | ボリューム | コメント |
| 5×PCR緩衝液 | 55μlの | |
| PCR添加剤 | 55μlの | |
| 2 mMののdNTP | 27.5μlの | 2mMの各ヌクレオチド |
| 2単位/μlのDNAポリメラーゼ | 2.75μlの | |
| 水 | 113μlの |
ハイスループットシーケンシングのためのサンプルを準備するための表9. PCR試薬。NNSのサブライブラリーのグループを分離する、直交プライマー（4.1.1）での逆多重化のために使用されるPCRマスターミックスを調製するための試薬 名と数量（プロトコルステップ4.1.2）そして、インデックスシーケンス（プロトコルステップ4.1.3）を追加。総量は、11 25μlの反応のために十分です。
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Discussion
ここで、プロトコルは、ハイスループットシークエンシング技術を使用して、全タンパク質の飽和突然変異誘発ライブラリーの機能的評価を行うために記載されています。この方法の重要な局面は、クローニングプロセスの間に直交プライマーの使用です。簡潔には、各アミノ酸位置は、突然変異誘発PCRによってランダム化され、そして合わせた配列の長さ、ハイスループットシークエンシングによって収容された位置のグループに一緒に混合しました。これらの基は、直交プライミング部位の対を含むプラスミドベクターにクローン化し一緒に混合し、選択にかけ、その後、直交プライマーを用いて逆多重化し、続いて深い配列決定されます。変異はシーケンシング読み取り長制限内に閉じ込められているので、このアプローチは有用な多くの長いシーケンシング読み取り長よりもサイズの遺伝子についての突然変異を含む読み取り最大化します。また、この技術は、全体mutatioの同時または「一回分」選択を可能にします最終ライブラリー、ワークロードだけでなく、突然変異は選択の異なるレベルを経験する可能性を減少させます。プロトコル主に懸念組織で実際には、重要なステップ：クローニングプロセス（プロトコルステップ2.3）中に1つが正しい直交プライミング部位ベクターにグループおよびそのその後のクローニングに変異原性PCR産物の正確な混合を確実にしなければなりません。配列決定のための試料調製（プロトコルステップ4.1）の間に、正しい直交プライマー、ならびにプライマーはNNSのサブライブラリーグループのそれぞれを分離し、インデックス化配列を付加する、使用する必要があります。
プロトコル3つの主なステップ - ライブラリー構築、選択及び配列決定は、 - いくつかの態様で変更することができます。ライブラリー構築中に1つは、例えば、エラープローンPCRにより、または別のヌクレオチドの小さな部分にドープすることによって合成されたオリゴヌクレオチドを用いた遺伝子を構築することにより、様々な技術を用いて変異を導入することができ21です。一つは（ すなわち、NNSサブライブラリー・グループ）、または代替遺伝子型の背景にタンパク質のセグメント内に二重または高次の変異が含まれるように22のライブラリーを構築することができます。重要なことには、ライブラリー構築の段階に対するすべての変更は、しかしながら、配列における突然変異の位置とシーケンシング読み取り長との対応関係が維持される基準を満たすべきです。この基準は、したがって、タンパク質全体の複数の変異の包括的な研究に向けたプロトコルの適用を除外しています。別のβラクタムタイプ（またはそれらの組み合わせ）および濃度、外部応力条件（ 例えば 、温度、栄養レベル。）、ホストタイプ（細菌の例えば、異なる種類）、または：プロトコルの第2の部分への変更は、代替の選択条件が含まれます異なるサンプリング時間（数時間から数日）。たとえば、以前の研究では、我々はすべての単一アミノ酸変異のフィットネス効果を調べましたアンピシリンの異なる濃度下でのTEM-1であり、第三世代セファロスポリンセフォタキシム13の下。プロトコルの第三の工程に関しては、我々は現在、（材料の表を参照）、ここで使用されるシーケンシングプラットフォームの選択から逸脱することはお勧めしません。シークエンシングは、長さが他のプラットフォームで、現在長い確かにある読みながら、数が得られる読み込み、現在、はるかに低いです。一般に、変異の効果を決定することができるの精度が得られた読み取りの数（プロトコルステップ4.2.5での式を参照）に比例します。
大きく単純化のために、プロトコルは、しかし、ここで説明する方法は、高スループットの選択またはスクリーニングアッセイの場所にあるため、他のシステムに拡張することができる、モデル系として、TEM-1βラクタマーゼを使用します。このようなアッセイを構築することが、多くの場合、非自明である：まず、一緒に遺伝子（突然変異）およびタンパク質の区画化のための戦略を確立する必要があります例えば、細胞内の、（マイクロ流体プラットフォームのように）液滴、またはファージディスプレイによる。第二に、そして最も重要なのは、タンパク質の機能と選択可能な表現型、またはフィットネス間の定量的な接続は、確立されなければなりません。代謝または抗生物質耐性に関与する酵素は、栄養ドロップアウトまたは抗生物質培地中で増殖する細胞の能力は、多くの場合、酵素活性の直接の関数です。複数の合成アプローチは、レポーター遺伝子（ 例えば 、蛍光タンパク質）、細菌または酵母11,23における発現を、タンパク質-タンパク質結合親和性を連結することによって、例えば、他のシステムで使用され、またはマイクロ流体システム24内の蛍光発生酵素基質を使用することができます。最後に、このようなアッセイは、全タンパク質の変異誘発ライブラリーのサイズに対処するために、スケーラブルでなければなりません。
要約すると、全タンパク質飽和突然変異誘発ライブラリの機能評価のためのハイスループットシーケンシングベースのアプローチは、DESCRですここibed。アプローチの中心は遺伝子に沿ってセグメント内の突然変異誘発ライブラリーの構築、および多重化および逆多重化ライブラリの各セグメントにタグを付ける直交プライマーバーコードの利用があります。我々は、このプロトコルが容易に適切な高スループットの選択またはスクリーニングが開発された他のタンパク質に適用することができることを期待しています。
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Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Typtone | Research Products Intl. Corp. | T60060-1000.0 | |
| Yeast extract | Research Products Intl. Corp. | Y20020-500.0 | |
| Sodium chloride | Fisher Scientific | BP358-212 | |
| Potassium chloride | Sigma-Aldrich | P9333-500G | |
| Magnesium sulfate | Sigma-Aldrich | M7506-500G | |
| Agar | Fisher Scientific | BP1423-500 | |
| Tetracycline hydrochloride | Sigma-Aldrich | T7660-5G | |
| Petri plates | Corning | 351029 | |
| MATLAB | Mathworks | http://www.mathworks.com/products/matlab/ | |
| Oligonucleotide primers | Integrated DNA Technologies | https://www.idtdna.com/pages/products/dna-rna/custom-dna-oligos | 25 nmol scale, standard desalting |
| pBR322_AvrII | available upon request | pBR322 plasmid modified to contain AvrII restriction site downstream of the TEM-1 gene | |
| pBR322_OP1 – pBR322_OP5 | available upon request | five modified pBR322 plasmids each containing a pair of orthogonal priming sites | |
| Q5 high-fidelity DNA polymerase | New England Biolabs | M0491L | includes 5x PCR buffer and PCR additive (GC enhancer) |
| 15 ml conical tube | Corning | 430025 | |
| Multichannel pipettes (Eppendorf ResearchPlus) | Eppendorf | ||
| PCR plate, 96 well | Fisher Scientific | 14230232 | |
| 96 well plate seal | Excel Scientific | F-96-100 | |
| Veriti 96-well thermal cycler | Applied Biosystems | 4375786 | |
| 6x gel loading dye | New England Biolabs | B7024S | |
| Agarose | Research Products Intl. Corp. | 20090-500.0 | |
| Ethidium bromide | Bio-Rad | 161-0433 | |
| UV transilluminator (FOTO/Analyst ImageTech) | Fotodyne Inc. | http://www.fotodyne.com/content/ImageTech_gel_documentation | |
| EB buffer | Qiagen | 19086 | |
| 96-well black-walled, clear bottom assay plates | Corning | 3651 | |
| Lambda phage DNA | New England Biolabs | N3011S | |
| PicoGreen dsDNA reagent | Invitrogen | P7581 | dsDNA quantitation reagent, used in protocol step 2.2.4 |
| Victor 3 V microplate reader | PerkinElmer | ||
| DNA purification kit | Zymo Research | D4003 | |
| Microcentrifuge tubes | Corning | 3621 | |
| Long-wavelength UV illuminator | Fisher Scientific | FBUVLS-80 | |
| Agarose gel DNA extraction buffer | Zymo Research | D4001-1-100 | |
| AatII | New England Biolabs | R0117S | |
| AvrII | New England Biolabs | R0174L | |
| T4 DNA ligase | New England Biolabs | M0202S | |
| EVB100 electrocompetent E. coli | Avidity | EVB100 | |
| Electroporator (E. coli Pulser) | Bio-Rad | 1652102 | |
| Electroporation cuvettes | Bio-Rad | 165-2089 | |
| Spectrophotometer (Ultrospec 3100 pro) | Amersham Biosciences | 80211237 | |
| 50 ml conical tubes | Corning | 430828 | |
| Plasmid purification kit | Macherey-Nagel | 740588.25 | |
| 8 well PCR strip tubes | Axygen | 321-10-551 | |
| Qubit dsDNA HS assay kit | Invitrogen | Q32854 | dsDNA quantitation reagent |
| Qubit assay tubes | Invitrogen | Q32856 | |
| Qubit fluorometer | Invitrogen | Q32866 | |
| Ampicillin sodium salt | Akron Biotechnology | 50824296 | |
| MiSeq reagent kit v2 (500 cycles) | Illumina | MS-102-2003 | |
| MiSeq desktop sequencer | Illumina | http://www.illumina.com/systems/miseq.html | alternatively, one could sequence on Illumina HiSeq platform |
| FLASh software | John Hopkins University - open source | http://ccb.jhu.edu/software/FLASH/ | software to merge paired-end reads from next-generation sequencing data |
| AatII_F | GATAATAATGGTTTCTTAGACG TCAGGTGGC |
||
| AvrII_R | CTTCACCTAGGTCCTTTTAAAT TAAAAATGAAG |
||
| AvrII_F | CTTCATTTTTAATTTAAAAGGA CCTAGGTGAAG |
||
| AatII_OP1_R | ACCTGACGTCCGTATTTCAAC TGTCCGGTCTAAGAAACCATT ATTATCATGACATTAAC |
||
| AatII_OP2_R | ACCTGACGTCCGCTCACGGA GTGTACTAATTAAGAAACCATT ATTATCATGACATTAAC |
||
| AatII_OP3_R | ACCTGACGTCGTACGTCTGA ACTTGGGACTTAAGAAACCA TTATTATCATGACATTAAC |
||
| AatII_OP4_R | ACCTGACGTCCCGTTCTCGAT ACCAAGTGATAAGAAACCATT ATTATCATGACATTAAC |
||
| AatII_OP5_R | ACCTGACGTCGTCCGTCGGA GTAACAATCTTAAGAAACCAT TATTATCATGACATTAAC |
||
| OP1_F | GACCGGACAGTTGAAATACG | ||
| OP1_R | CGACGTACAGGACAATTTCC | ||
| OP2_F | ATTAGTACACTCCGTGAGCG | ||
| OP2_R | AGTATTAGGCGTCAAGGTCC | ||
| OP3_F | AGTCCCAAGTTCAGACGTAC | ||
| OP3_R | GAAAAGTCCCAATGAGTGCC | ||
| OP4_F | TCACTTGGTATCGAGAACGG | ||
| OP4_R | TATCACGGAAGGACTCAACG | ||
| OP5_F | AGATTGTTACTCCGACGGAC | ||
| OP5_R | TATAACAGGCTGCTGAGACC | ||
| Group1_F | ACACTCTTTCCCTACACGAC GCTCTTCCGATCTNNNNNGC ATTTTGCCTACCGGTTTTTGC |
||
| Group1_R | GTGACTGGAGTTCAGACGTG TGCTCTTCCGATCTNNNNNTC TTGCCCGGCGTCAAC |
||
| Group2_F | ACACTCTTTCCCTACACGAC GCTCTTCCGATCTNNNNNGA ACGTTTTCCAATGATGAGCAC |
||
| Group2_R | GTGACTGGAGTTCAGACGTG TGCTCTTCCGATCTNNNNNGT CCTCCGATCGTTGTCAGAAG |
||
| Group3_F | ACACTCTTTCCCTACACGAC GCTCTTCCGATCTNNNNNAG TAAGAGAATTATGCAGTGCTGCC |
||
| Group3_R | GTGACTGGAGTTCAGACGTG TGCTCTTCCGATCTNNNNNTC GCCAGTTAATAGTTTGCGC |
||
| Group4_F | ACACTCTTTCCCTACACGAC GCTCTTCCGATCTNNNNNCC AAACGACGAGCGTGACAC |
||
| Group4_R | GTGACTGGAGTTCAGACGTG TGCTCTTCCGATCTNNNNNGC AATGATACCGCGAGACCC |
||
| Group5_F | ACACTCTTTCCCTACACGAC GCTCTTCCGATCTNNNNNCG GCTGGCTGGTTTATTGC |
||
| Group5_R | GTGACTGGAGTTCAGACGTG TGCTCTTCCGATCTNNNNNTAT ATGAGTAAACTTGGTCTGACAG |
||
| 501_F | AATGATACGGCGACCACCGA GATCTACACTATAGCCTACAC TCTTTCCCTACACGAC |
||
| 502_F | AATGATACGGCGACCACCGA GATCTACACATAGAGGCACA CTCTTTCCCTACACGAC |
||
| 503_F | AATGATACGGCGACCACCGA GATCTACACCCTATCCTACAC TCTTTCCCTACACGAC |
||
| 504_F | AATGATACGGCGACCACCGA GATCTACACGGCTCTGAACA CTCTTTCCCTACACGAC |
||
| 505_F | AATGATACGGCGACCACCGA GATCTACACAGGCGAAGACA CTCTTTCCCTACACGAC |
||
| 701_R | CAAGCAGAAGACGGCATAC GAGATCGAGTAATGTGACTG GAGTTCAGACGTG |
||
| 702_R | CAAGCAGAAGACGGCATAC GAGATTCTCCGGAGTGACTG GAGTTCAGACGTG |
References
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