Summary
Клетки , растущие в трехмерной (3-D) среды представляют собой значительное улучшение по сравнению с выращиванием клеток в 2-D средах (например, колбах или блюда). Здесь мы опишем развитие многоклеточного 3-D модели органотипического слизистой оболочки кишечника человека, культивируемых в условиях микрогравитации, представленной вращающейся стенки сосуда (RWV) биореакторах.
Abstract
Поскольку клетки растут в трехмерной (3-D) среде имеют потенциал для преодоления многих пробелов культивирования клеток в 2-D средах (например., Колбах или блюда). На самом деле, широко признается, что клетки, выращенные в колбах или блюда, как правило, де-дифференцироваться и теряют специализированные особенности тканей, из которых они были получены. В настоящее время существует в основном два типа систем культивирования 3-D, где клетки высевают в каркасах, имитирующие нативную внеклеточного матрикса (ECM): (а) статические модели и модели (б) с использованием биореакторов. Первый прорыв был статические модели 3-D. 3-D модели, использующие биореакторы, такие как вращающейся стенки-сосуда (RWV) биореакторы являются более недавнее развитие. Первоначальная концепция RWV биореакторов была разработана в Космическом центре имени Джонсона НАСА в начале 1990-х годов и, как полагают, чтобы преодолеть ограничения статических моделей, таких как развитие гипоксических, некротических ядер. В RWV биореакторов может обойти тысявляется проблемой, обеспечивая гидродинамику, которые позволяют эффективно диффузию питательных веществ и кислорода. Эти биореакторы состоят из вращающей базы , которая служит для поддержки и вращения двух различных форматов культуры судов , которые отличаются по типу источника аэрации: (1) Slow Turning Боковые Сосуды (STLVs) с коаксиальным оксигенаторе в центре, или (2 ) Коэффициент сосудов высокого Aspect (HARVs) с оксигенации при помощи плоского, силиконового каучука газообмена мембраны. Эти суда позволяют эффективную передачу газа, избегая образования пузырьков и последующее турбулентность. Эти условия приводят к ламинарного потока и минимальным усилием сдвига, что модели пониженной гравитации (микрогравитации) внутри сосуда для культивирования. Здесь мы описываем развитие многоклеточного 3-D модели органотипического слизистой оболочки кишечника человека, состоящей из кишечной эпителиальной клеточной линии и первичных человеческих лимфоцитов, эндотелиальных клеток и фибробластов, культивируемых в условиях микрогравитации, предоставленной RWV биореакторе. </ Р>
Introduction
Первый прорыв в построении модели 3-D сообщалось в начале 1980 - х , когда ученые начали исследовать различные типы эшафоте (например., Ламинин, коллаген типа I, коллаген IV, и фибронектин) и коктейли факторов роста для улучшения от клетки к клетке и ECM взаимодействий "статических" 3-D модели 1-7. С тех пор, основная проблема с этими моделями были ограничения в передаче питательных веществ и кислорода внутри среды и тканевых конструкций 8. В отличие от клеток в окружающую среду в естественных условиях , которая получает постоянный поток питательных веществ и кислорода из окружающих сетей кровеносных сосудов, статическая природа этих моделей препятствует эффективному распределению их к клеткам. Например, клеточные агрегаты , образующиеся в статических моделях в пробирке , которые превышают размером в несколько миллиметров неизбежно будет развиваться гипоксические, некротические ядра 9. В RWV биореакторов может обойти эту проблемуобеспечивая гидродинамику , которые позволяют эффективно диффузию питательных веществ и кислорода 10-12. Тем не менее, на сегодняшний день работы с использованием RWV биореакторов были ограничены включением одного или двух типов клеток 13-17. К тому же, вместо пространственной ориентации, подобной нативных тканей, эти клетки образуются клеточные агрегаты. Основной причиной этих ограничений является отсутствие лески, способного включать клетки комплексно. Леса , используемые в RWV биореакторах на сегодняшний день состоят, с некоторыми исключениями 16-18, в основном из синтетических микросфер, трубчатых цилиндров или небольших листов 13-15,19-23. Эти жесткие материалы, состав и гибкость не может манипулировать, и к которым клетки прикрепляются к их поверхности. Таким образом, маловероятно , что эти модели будут обеспечивать систему , в которой , чтобы оценить, в интегрированной форме, различные клеточные компоненты , такие как стромальные клетки (например., Фибробласты, иммунные и эндотелиальные клетки) , что should быть рассредоточены в эшафот, чтобы точно имитировать ткани человека.
Здесь мы описываем развитие многоклеточного 3-D модели органотипического слизистой оболочки кишечника человека , состоящей из кишечной эпителиальной клеточной линии и первичных человеческих лимфоцитов, эндотелиальных клеток и фибробластов 24. Эти клетки культивировали в условиях микрогравитации, отданных RWV биореакторе 13,25-30. В нашем 3-D модели, ЕСМ обладает многими различными свойствами, такими как осмотическое давление , подобной культуральной среды (например., Незначительные диффузионные удерживающие устройства во время культивирования) и способностью включать клетки и другие соответствующие белки внеклеточного матрикса, а также как соответствующая жесткость для использования в биореакторах 24. Биологические системы очень сложны, и в течение последних нескольких лет наблюдается сдвиг в фокусе исследований через слизистую оболочку в направлении изучения клеточных взаимодействий с их окружением, а не изучать их в isolatioп. В частности, важность межклеточных взаимодействий в оказании влияния на выживание кишечника и дифференцировки клеток хорошо документирован 31-34. В частности, связь между эпителиальными клетками и их нишей оказывает глубокое влияние на расширение эпителиальных клеток и дифференцировки 35. В самом деле, широко признается, что не только от клетки к клетке, но и клетка-ECM взаимодействия имеют решающее значение для поддержания и дифференцировки эпителиальных клеток в моделях 3-D культуры. Предыдущие исследования показали , что кишка ECM белки , такие как коллаген I 24,36,37, ламинин 38 и фибронектин 39 играют важную роль в оказании влияния на эпителиальные клетки кишечника приобрести пространственную ориентацию , подобную нативной слизистую оболочку. Таким образом, разработка новых технологий, как наш 3-D модели 24, которая может имитировать требуется фенотипическое разнообразие кишечника , если исследователи намерены воссоздать сложную клеточную и структурную архитектуруи функции кишечника микросреды. Эти модели представляют собой важный инструмент в разработке и оценке новых препаратов и оральных вакцин-кандидатов.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Заявление по этике: Все образцы крови были собраны у добровольцев , которые участвовали в номер протокола HP-00040025-1. Университет штата Мэриленд Совета по рассмотрению Institutional одобрил этот протокол и санкционировал сбор образцов крови от здоровых добровольцев для исследований, включенных в этой рукописи. Целью данного исследования было объяснено добровольцев, и все добровольцы дали информированное, подписанное согласие до взятия крови.
Примечание: смотри таблицу 1 для получения среднего дополнения. В таблице 2 при подготовке 3-D культуральной среды.
1. Подготовка судов культуры
- Отвинтить крышку заливной порта мл-сосуда 50 и залить 50 мл стерильной культуральной среды (например., RPMI). Выполните все процедуры в стерильных условиях в ламинарном шкафу.
- Замените крышку и вытрите пролитое среду на любой поверхности с 70% этанола.
- Дайте судну incubели в течение по крайней мере 15 мин до O / N при комнатной температуре.
- Используйте порт заливки, чтобы отбрасывать культуральной среды и добавляют 30 мл 3-D культуральной среды.
- Протрите пролитое среду на любой поверхности с 70% этанола.
2. Получение клеток
- Человеческой эпителиальной линии клеток (НСТ-8) 24,40.
- Культура клеток в среде RPMI с добавлением 100 ед / мл пенициллина, 100 мкг / мл стрептомицина, 50 мкг / мл гентамицина, 2 мМ L-глутамина, 1 мМ пирувата натрия, 10 мМ HEPES-буфера и 10% инактивированной нагреванием фетальной бычьей сыворотки (ФБС ) (приложение 1). При 70% сплошности, расщепленные клетки в соотношении 1: 5.
- Ободочной кишки человека фибробласты (CCD-18Co клетки) 24,41.
- Культура клеток в среде базального Орла , обогащенной добавки 1 В сплошности, расщепленные клетки в соотношении 1: 3..
- Человек пупочной вены (HUVEC) клетки
- Культура клеток эндотелиальной базальной среды (EBM) среде , обогащенной 100 мкг / мл гепарина, 3 мкг / мл эндотелиальной Supplement клеточного роста (ECGS), и дополнения 1 при 70% сплошности, расщепленных клеток в соотношении 1: 2 . .
- Изолировать мононуклеарных клеток периферической крови (РВМС) из крови путем центрифугирования в градиенте плотности с использованием стандартных методик 43.
- Если коротко, то с помощью 10 мл пипетки, осторожно добавляют 30 мл разбавленной крови (1: 1 в крови: забуференный фосфатом физиологический раствор (ЗФР)) в 50 мл-коническую пробирку, содержащую 10 мл плотности центрифугирование сред. После стадии центрифугирования, лимфоциты и моноциты будет находиться в "белом" слое между плотностью центрифугирования сред и плазменных слоев.
- Возьмите белый слой с помощью пипетки передачи. Избегайте загрязнения гранулоцитов путем ограничения сбора плотности центрифугирования сред. После промывки 43, UРВМС себе как есть или криоконсервации в жидком N 2.
Примечание: Важно подчеркнуть, что РВМС в основном состоит из лимфоцитов и моноцитов, с небольшой долей дендритных клеток и других типов клеток.
3. Получение коллагеном внедренных клеток
- Определить количество вставок необходимости, исходя из числа экспериментальных условий, которые необходимо установить вверх-. Поместите необходимое количество вставок в лунки 6-луночного планшета.
- Приготовьте суспензию HUVEC и фибробластов:
- Промыть колб дважды в PBS и открепления клеток с помощью трипсина, 0,25% (1x) с 0,05% трипсин-тетранатриевый этилендиаминтетраацетат (трипсин-ЭДТА). Добавьте достаточное количество раствора трипсина, чтобы покрыть полноту площади поверхности клеточной культуры. Отрыв обычно происходит в течение 5 до 15 мин
- собиратьотдельные клетки в 50 мл-пробирку, содержащую 30 мл среды Игла в модификации Игла (DMEM) -30% ЭТС среды.
- Центрифуга трубки при 500g в течение 10 мин.
- Ресуспендируют клеток в 30 мл DMEM-30% FBS среды.
- Подсчитать общее количество жизнеспособных клеток путем разбавления 20 мкл ресуспендировали клеток с 20 мкл трипанового синего красителя. Загрузите гемоцитометра со смесью клеток. Приемлемые МНПК будет белым ясно; нежизнеспособными РВМС приобретет краситель и станет синим.
- Ресуспендируют каждый тип клеток в среде DMEM-30% FBS среде при концентрации 5 - 8 х 10 7 кл мл - 1.
- Подготовка клеток, содержащих коллаген гели
Примечание: Каждое судно потребует подготовки ~ 5 мл клеточной содержащих коллагеновый гель.- В 50 мл-коническую трубку готовят смесь коллагена путем добавления 1 х DMEM средств массовой информации, дополненной 50 мкг / мл гентамицина, 2 мМ L-глутамина и 10% термически inactivatEd ФБС плюс 3 мг / мл бычьего коллагена I, 10 мкг / мл ламинин, 40 мкг / мл коллагена IV, 10 мкг мл фибронектина, 2 мкг / мл гепарин протеогликанов / сульфат и 15 мМ NaOH (для достижения физиологического рН).
- Закройте пробирку и взболтайте несколько раз до тех пор, пока смесь не будет полностью гомогенизируют. Избегайте образования пузырьков.
ВАЖНО: Держите смесь на лед, чтобы предотвратить гелеобразования.- Критический шаг: Если смесь развивается кислый вид (желтоватый цвет), добавьте несколько капель стерильного 1 N NaOH для нейтрализации смеси.
- Добавить концентрированный HUVEC и фибробластами при плотности 1,0 - 1,2 и 1,5 - 2,0 × 10 6 клеток / мл, соответственно , к обогащенной смеси коллагена (описанного выше). Закройте пробирки и взболтайте несколько раз, пока смесь не будет полностью гомогенизируют. Избегайте образования пузырьков. ВАЖНО: Держите смесь на лед, чтобы предотвратить гелеобразования.
- Добавить 4 - 5 мл клеточной содержащих коллагенгель для каждой вставки, предварительно загружаются в 6 луночного планшета, и позволили gelify в капот практически без движения в течение 1 часа.
- Через 1 ч передать 6-луночный планшет с 37 ° C, 5% CO 2 инкубаторе в течение 1 - 2 дополнительных часов.
- Вернуть 6-луночного планшета к капоту, и с помощью стерильного пинцета и скальпель асептических отсечение мембрану из вставки отсоединение клеток, содержащих гель из мембраны. Обрежьте отдельностоящий гель на небольшие квадраты (~ 5 х 5 мм).
- Добавьте небольшие клетки, содержащие квадраты в 50-мл HARV с использованием порта заполнения.
- Приготовьте суспензию HCT 8-эпителиальных клеток:
- Вымойте колбы дважды в PBS и открепления клеток с помощью трипсина, 0,25% (1x) с обработкой трипсин-ЭДТА. Добавьте достаточное количество раствора трипсина, чтобы покрыть полноту площади поверхности клеточной культуры. Отрыв обычно происходит в течение от 10 до 15 мин.
- Собирают обособленные клетки в 30 мл DMEM-30% FBS среды.
- ЦентробежнаяУГЭ DMEM-30% FBS среду, содержащую трубку при 500g в течение 10 мин.
- Ресуспендируют клеток в 30 мл DMEM-30% FBS среды.
- Подсчитать общее количество жизнеспособных клеток, как описано в 3.2.5.
- Ресуспендируют НСТ-8 эпителиальных клеток в среде DMEM-30% FBS среде при концентрации 10 7 клеток мл - 1.
- Добавить 1 мл концентрированного НСТ-8 эпителиальных клеток в 50-мл HARV с использованием порта заливки.
- Используя порт заливки, добавить дополнительную питательную среду 3-D до тех пор, пока судно почти полностью заполнен (~ 20 мл).
- Замените крышку и протрите губы заполняющего порта с 70% -ным этанолом.
- Поместите шприц в каждом шприцевой порту RWV: место в 5 мл-шприц, содержащий 3 - 4 мл 3-D культуральной среды в одном порту и 5 мл шприц пустой в другом порту.
- Удалите все видимые пузырьки, потянув в пустой шприц в то время как примерно такой же объем среды вводят через другой порт шприца.
- Поместите весиSELS в биореакторе, включите питание и установите скорость приблизительно от 13 до 14 оборотов в минуту.
Примечание: критический шаг: Частота вращения может потребоваться скорректировать несколько раз во время эксперимента , чтобы поддерживать клетки орбитальные внутри сосуда, тем самым избегая контакта со стенками сосуда. - Культуры клеток при 37 ° С, 5% СО 2 в условиях микрогравитации, предоставляемые RWV биореактора.
- Изменение культуральной среды через каждые 3 - 4 дня, заменяя примерно 30 мл свежего 3-D культуральной среды.
- После 4 -х дней (± 1 день), удалить сосуды из биореактора и добавить лимфоциты / моноциты к судам (2 х 10 7 / сосуд).
- Поместите сосуды обратно в биореакторе при 37 ° С в атмосфере 5% СО 2 в течение еще 5 дней (± 1 день).
- После дополнительных 5 дней (9 -й день культуры), добавляют лимфоциты / моноциты к судам (2 х 10 7 / сосуд) и по- прежнему культур до 12 дополнительных дней. Изменение культуральной среды через каждые 3 - 4 дня, заменяя примерно 30 мл свежего 3-D культуральной среды.
4. Заготовка 3-D Культуры для гистологии
- С помощью пипетки урожая каждый маленький фрагмент гель, который теперь называется "строить" в шесть-луночного планшета, содержащую 10 мл 10% -ного буфера формалина. Оставьте в течение 3 ч при комнатной температуре или в течение 12 - 16 ч при температуре 4 ° С.
- Приготовьте обработки тканей и встраивание кассеты путем маркировки и добавление двух кусков пены биопсии прокладок в каждой кассете.
- Погружают кассеты в 10% формалине буфера.
- С помощью пинцета поместите с фиксированной конструкции между двумя подушках из пеноматериала.
- Погружают кассеты в 10% формалине буфера.
- Продолжить со стандартными процедурами для встраивания, секционирования и окрашивания 44.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Ранее мы разработали многоклеточного 3-D модели органотипической слизистой оболочки кишечника человека состоит из кишечной эпителиальной клеточной линии и первичных человеческих лимфоцитов, эндотелиальных клеток и фибробластов , культивируемых в условиях микрогравитации 24 (рисунок 1). Фибробласты и эндотелиальные клетки были встроены в коллагена I матрице , обогащенной дополнительным кишка базальной мембраной белков 45 (то есть., Ламинин, коллаген IV, фибронектина и гепаринсульфат протеогликановых) и добавляют к RWV биореакторы. Через 10 - 15 дней, гистологический анализ окрашивания показал наличие ворсинок-подобных структур в конструкциях. Примерно 60 - 80% этих эпителиальных клеток были организованы в виде монослоя поляризованных клеток с их ядер , расположенных в базисной позиции вблизи ECM, который является одной из главных особенностей хорошо дифференцированных клеток (рисунок 2).
лор "ВОК: Keep-together.within-странице =" 1 ">Рисунок 1: Схема конструкции 3-D модели. Четыре шага необходимо построить систему 3-D. Во-первых, чтобы получить требуемое количество ячеек для создания модели 3-D, человеческий кишечный линию эпителиальных клеток энтероцитов (HCT-8) и первичные эндотелиальные клетки человека и фибробласты выращивали в 2-D сливающихся монослоев. Во- вторых, блок управления двигателем состоит из коллагена-я матрица , обогащенная дополнительным кишка базальной мембраны белков (то есть., Ламинин, коллаген IV, фибронектин и гепарин сульфат протеогликанов) получают. В-третьих, фибробласты и эндотелиальные клетки встраиваются в смеси коллаген-I и добавляют к RWV биореакторы с последующим добавлением НСТ-8 эпителиальных клеток. В-четвертых, первичные лимфоциты к культуре добавляют в дни 4 и 9 (± 1 день)."> Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.
Рисунок 2: Сравнение между нормальными человеческими кишечником и Органотипической моделей. Гематоксилином и эозином клеток, культивируемых в модели микрогравитации 3-D: ткани окрашивали фиолетовый и подмости пятнами розового цвета. Клетки из модели 3-D культивировали в течение 14 ( "A" и "B") и 20 дней (с). Через двадцать дней после посева, общее число клеток сохраняются, и клетки были хорошо дифференцированные, демонстрирующая ворсин подобные функции. Изображения отображаются на 100х ( "A" и "B") и 40X ( "с") увеличения. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.
наименование товара | Уп. Размер | Восстановление | Рабочая концентрация | Место хранения |
Фактор роста фибробластов-Basic (bFGF) | 25 мг | Для подготовки 25 мкг / мл маточного раствора; добавить 25 мкг FGF в 1 мл стерильной среды (RPMI плюс 1% FCS), вихрем растворяться, добавляют 100 мкл / аликвоты | 5 нг / мл | порошок -20 ° С, рабочие аликвоты -20 ° C, во избежание повторного замораживания / оттаивания |
Фактор стволовых клеток (SCF) | 10 мг | Для приготовления 10 мкг / мл маточного раствора; добавить 10 мкг SCF в 1 мл стерильной среды (RPMI плюс 1% FCS), вихрем растворяться, добавляют 250 мкл / аликвоты | 5 нг / мл | порошок -20 ° С, рабочие аликвоты -20 ° C, во избежание повторного замораживания / оттаивания |
Фактор роста гепатоцитов (HGF) | 5 мг | Для приготовления 5 мкг / мл маточного раствора; добавьте 5 мкг HGF в 1 мл стерильной среды (RPMI плюс 1% FCS), вихрем растворяться, добавляют 200 мкл / аликвоты | 2 нг / мл | порошок -20 ° С, рабочие аликвоты -20 ° C, во избежание повторного замораживания / оттаивания |
эндотелина 3 | 50 мг | Для приготовления 50 мкг / мл маточного раствора; добавьте 50 мкг эндотелина в 1 мл стерильной среды (RPMI плюс 1% FCS), вихрем растворяться, добавляют 100 мкл / аликвоты | 10 нг / мл | порошок -20 ° С, рабочие аликвоты -20 ° C, во избежание повторного замораживания / оттаивания |
Laminin | 1 мг | Разморозить медленно при 2 - 8 ° С, вихрем и добавить 100 мкл / аликвоты | 10 мг / мл | жидкости -20 ° С, работая аликвоты -20 ° С, во избежание повторения FreЭз / оттаивание |
Фактор роста эндотелия сосудов (VEGF) | 10 мг | Для приготовления 5 мкг / мл маточного раствора; добавить 10 мкг VEGF в 2 мл стерильной воды, вихрем, чтобы растворить, добавить 100 мкл / аликвоты | 1 нг / мл | порошок -20 ° С, рабочие аликвоты -20 ° C, во избежание повторного замораживания / оттаивания |
Ингибирующий лейкоз фактор (LIF) | 50 мг | Для подготовки 20 мкг / мл маточного раствора; добавьте 50 мкг LIF в 2,5 мл стерильной воды, вихрем, чтобы растворить, добавить 100 мкл / аликвоты | 4 нг / мл | порошок -20 ° С, рабочие аликвоты -20 ° C, во избежание повторного замораживания / оттаивания |
аденин | 25 г | Для приготовления 0,18 М маточного раствора; добавить 121,5 мг ог adedine в 50 мл 0,05 М HCl (250 мкл 37,1% HCl в 50 мл воды)), чтобы растворить вихрь, фильтр стерилизуют идобавляют 1 мл / аликвоту | 1,8 х 10 -3 М | порошок 4 ° С, рабочие аликвоты -20 ° С, во избежание повторного замораживания / оттаивания |
инсулином | 50 мг | Для приготовления 5 мг / мл маточного раствора; добавляют 50 мг инсулина в 10 мл 0,005 М HCl (5 мкл 37,1% HCl в 10 мл воды)), вихрем растворяться, фильтра стерилизовать и добавляют 0,5 мл / аликвоты | 5 мг / мл | порошок -20 ° С, рабочие аликвоты -20 ° C, во избежание повторного замораживания / оттаивания |
T3 | 100 мг | Для приготовления 2 х 10 -8 М маточного раствора; добавьте 3,4 мг Т3 в 25 мл 1 М NaOH, разбавленных 0,1 мл этого раствора в 9,9 мл PBS, разбавленные снова 0,1 мл этого раствора в 9,9 мл PBS, вихря для растворения, фильтр стерилизуют и добавляют 0,5 мл / аликвоты | 2 х 10 -11 М | порошок -20 ° С, рабочие аликвоты -20 <SUP> о С, во избежание повторного замораживания / оттаивания |
холерный энтеротоксин | 5 мг | Для приготовления 10 -7 М маточного раствора; добавляют 5 мг холерного токсина в 5 мл стерильной DDH 2 O (хранить при температуре -20 ° С); развести 50 мкл этого раствора в 5 мл DDH 2 O, вихрем гомогенизировать, фильтр стерилизуют и добавляют 0,5 мл / аликвоты | 10 -10 М | порошок 4 - 8 ° С, рабочие аликвоты -20 ° С, во избежание повторного замораживания / оттаивания |
фибронектина | 1 мг | Для приготовления 1 мг / мл маточного раствора; добавляют 1 мг фибронектина в 1 мл стерильной воды distiled. Разрешить 30 мин. для материала , чтобы перейти в раствор. не агитирую или закружить. Добавьте 100 мкл / аликвоты | 10 мг / мл | порошок 4 - 8 ° С, рабочие аликвоты -20 ° С, во избежание повторного замораживания / оттаивания |
апо-трансферрина | 100 мг | Для приготовления 5 мг / мл маточного раствора (1,000x); добавляют 100 мг трансферрина в 20 мл PBS Хорошо перемешать, фильтр стерилизуют и добавляют 0,5 мл / аликвоты5 мг / мл | порошок -20 ° С, рабочие аликвоты -20 ° C, во избежание повторного замораживания / оттаивания | |
гепарин | 50 KU | Для приготовления 50 мг / мл маточного раствора (1,000x); добавляют 50 мг гепарина в 1 мл воды водоворот растворяться, фильтр стерилизуют и добавляют 1 мл / аликвоты | 0,1 мг / мл | порошок -20 ° С, рабочие аликвоты -20 ° C, во избежание повторного замораживания / оттаивания |
Гепаран- протеогликана сульфата | 1 мг | Для приготовления 0,1 мг / мл маточного раствора; добавляют 1 мг гепарансульфата в 10 мл стерильной воды для растворения вихрем, и добавить 0,2 мл / аликвоты | 2 мг / мл | порошок -20 ° С, рабочие аликвоты -20 ° C, избегатьповторное замораживание / оттаивание |
Коллаген IV | 5 мг | Для приготовления 2 мг / мл маточного solutin: добавить 2 мг коллагена V в 2,5 мл стерильного 0,25% -ной уксусной кислоты. Разрешить 1 - 2 ч для материала в раствор Вихревой для лучшего dillution.. Добавить 400 мкл / аликвоты | 80 мг / мл | порошок -20 ° С, рабочие аликвоты -20 ° C, во избежание повторного замораживания / оттаивания |
Таблица 1: Определяется средний Дополнение Подготовка.
F-12 среду , дополненную | |||
реактив | Основной раствор | Окончательное решение | Количество |
Фетальной телячьей сыворотки | 10% | 50 мл | |
пируват натрия | 100 мМ | 1 мМ | 5 мл |
L-Глютамин | 200 мМ | 2 мМ | 5 мл |
Hepes | 1 М | 10 мМ | 5 мл |
Гентамицин | 50 мг / мл | 50 мкг / мл | 500 мкл |
Пенициллин / стрептомицин | 10000 ед / мл / 10 мг / мл | 100 ед / мл / 100 мкг / мл | 5 мл |
инсулином | 5 мг / мл | 5 мкг / мл | 500 мкл |
T3 | 2 х 10 - 8 М | 2 х 10 -11 М | 500 мкл |
аденин | 1,8 х 10 - 1 M | 1,8 х 10 - 3 М | 5 мл |
Transferrin | 5 мкг / мл | 500 мкл | |
гепарин | 50 мг / мл | 0,1 мг / мл | 1 мл |
ECGS | 3 мг / мл | 3 мкг / мл | 5 мл |
bFGF | 25 мкг / мл | 5 нг / мл | 100 мкл |
SCF | 10 мкг / мл | 5 нг / мл | 250 мкл |
HGF | 5 мкг / мл | 2 нг / мл | 200 мкл |
эндотелина 3 | 50 мкг / мл | 10 нг / мл | 200 мкл |
LIF | 20 мкг / мл | 4 нг / мл | 100 мкл |
VEGF | 5 мкг / мл | 1 нг / мл | 100 мкл |
Choleran токсин | 10 -7 М | 10 -10 М | 500 мкл </ TD> |
Примечание: Количество цитированной выше для приготовления 500 мл 3-D культуральной среды. Медиа должны храниться при температуре 4 ° С в течение не более 2-х недель |
Таблица 2: Получение 3-D медиакультуре.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
В этой рукописи мы опишем развитие биоинженерного модели слизистой оболочки кишечника человека , состоящего из типов клеток , включая кратные первичных человеческих лимфоцитов, фибробластов и эндотелиальных клеток, а также эпителиальным клеткам кишечника линии 24. В этом 3-D модели, клетки культивируют в коллагеновой богатых внеклеточного матрикса в условиях микрогравитации 24.
Как было описано выше, основные особенности этой модели являются: (I) способность имитировать эпителиальной тканевой организации монослоя (II) индукция соответствующей полярности эпителиальных клеток, плотных соединений, десмосом и микроворсинок, (III) на длительный термин культура (до 20 дней) с высокой жизнеспособности первичных клеток (то есть., фибробластов и эндотелиальных клеток), (IV) выражение в подобные ткани маркеры дифференцировки , включая виллин, цитокератином, E-кадгерина и мюCIN, (v) возможность производить значительные количества цитокинов (например, IL-8) и щелочной фосфатазы при антигенной стимуляции, (VI) перенос питательных веществ , таких как глюкоза (то есть., экспрессия дисахаридов, и присутствие сахара транспортеров) и (VII) мульти-родословная дифференцировки эпителиальных клеток кишечника (то есть., абсорбирующим энтероците, Globet и M клеток) 24.
Важно подчеркнуть , что для достижения воспроизводимых результатов , используя нашу 3-D модель исследователь должен придерживаться хороших принципов клеточной культуры 46-48. Крайне важно, чтобы систематически контролировать клетки для жизнеспособности, загрязнения микоплазмы и изменения в поведении роста клеток. Если проблема определена, сначала убедитесь, что никакие несанкционированные изменения не были внесены в протокол. Если проблема не решена, перейти к новой партии различных компонентов среды (в том числе в сыворотке крови) и /или клетки. Ограничением нашего 3-D модели является использование онкогенного НСТ-8 эпителиальной клеточной линии. Тем не менее, важно учитывать, что присутствие НСТ-8 линии предлагает преимущество быть коммерчески доступным. Кроме того, эти эпителиальные клетки не выражают ни классической или неклассической человеческого лейкоцитарного антигена (HLA) -класс I молекулы 49,50. Таким образом, они позволяют культуру эпителиальных клеток с РВМС различной HLA класса I гаплотипа в отсутствие эпителиального клеточного РВМС аллореактивность. Кроме того, при сравнении этой системы с системами , такими как кишка стволовой клетки органоиды 51-53, эта модель предлагает множество преимуществ. Хотя кишка стволовых клеток органоиды содержат ценную информацию о клеточной биологии и кишечной дифференцировки 51-53, эта модель позволяет прямое верхушечный воздействие питательных веществ, наркотиков и патогенных микроорганизмов. Эта модель также обеспечивает легкий доступ к содержимому просветными такие антимикробные пептиды и цитокины. В противоположность этому, органоиды компактны ООНего с полостной поверхности, обращенной внутрь. Следовательно, существует ограниченное количество продукта , которое может быть введено в Органоид Просвет 54.
Мы полагаем , что многоклеточные 3-D модель Органотипической слизистой оболочки кишечника человека имеет широкие возможности в качестве инструмента для обнаружения как в здоровье и болезни, в том числе взаимодействие с патогенными микроорганизмами, незаконный оборот антигена и воспалительных и метаболических процессов 24. Наконец, из - за многоклеточного природы нашего 3-D модели, наша модель могла бы позволить амплитудно и потери исследований с использованием типов иммунных клеток, которые могут влиять на поведение клеток эпителиального в естественных условиях.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Materials
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Quad Rotator/Independent Rotating Wall Vessel (RWV) bioreactor | Synthecon | RCCs-4DQ | For up to 4 vessels. Models with more or less vessels are also available. |
Disposable 50 ml-vessel | Synthecon | D-405 | Box with 4 vessels |
HCT-8 epithelial cells | ATCC | CCL-244 | |
CCD-18Co Fibroblasts | ATCC | CRL-1459 | |
Human Umbilical Vein Endothelial Cells | ATCC | CRL-1730 | HUVEC |
Fibroblast Growth Factor-Basic | Sigma | F0291 | bFGF |
Stem Cell Factor | Sigma | S7901 | SCF |
Hepatocyte Growth Factor | Sigma | H1404 | HGF |
Endothelin 3 | Sigma | E9137 | |
Laminin | Sigma | L2020 | Isolated from mouse Engelbreth-Holm-Swarm tumor |
Vascular Endothelial Growth Factor | Sigma | V7259 | VEGF |
Leukemia Inhibitory Factor | Santa Cruz | sc-4377 | (LIF |
Adenine | Sigma | A2786 | |
Insulin | Sigma | I-6634 | |
3,3',5-triiodo-L-thyronine | Sigma | T-6397 | T3 |
Cholera Toxin | Sigma | C-8052 | |
Fibronectin | BD | 354008 | Isolated from human plasma |
apo-Transferrin | Sigma | T-1147 | |
Heparin | Sigma | H3149 | |
Heparan sulfate proteoglycan | Sigma | H4777 | Isolated from basement membrane of mouse Engelbreth-Holm-Swarm tumor |
Collagen IV | Sigma | C5533 | Isolated from human placenta |
Heat-inactivated fetal bovine serum | Invitrogen | 10437-028 | |
D-MEM, powder | Invitrogen | 12800-017 | |
10% formalin–PBS | Fisher Scientific | SF100-4 | |
Bovine type I collagen | Invitrogen | A1064401 | |
Trypsin-EDTA | Fisher Scientific | MT25-052-CI | |
Sodium pyruvate | Invitrogen | 11360-070 | |
Gentamicin | Invitrogen | 15750-060 | |
Penicillin/streptomincin | Invitrogen | 15140-122 | |
L-Glutamine | Invitrogen | 25030-081 | |
Hepes | Invitrogen | 15630-080 | |
Ham's F-12 | Invitrogen | 11765-054 | |
Basal Medium Eagle | Invitrogen | 21010-046 | BME |
RPMI-1640 | Invitrogen | 11875-093 | |
Endothelial Basal Medium | Lonza | CC-3156 | EBM-2 |
Endothelial cell growth supplement | Millipore | 02-102 | ECGS |
References
- Aumailley, M., Timpl, R. Attachment of cells to basement membrane collagen type IV. J Cell Biol. 103, 1569-1575 (1986).
- Buset, M., Winawer, S., Friedman, E. Defining conditions to promote the attachment of adult human colonic epithelial cells. In Vitro Cell Dev Biol. 23, 403-412 (1987).
- Fitzgerald, T. J., Repesh, L. A., Blanco, D. R., Miller, J. N. Attachment of Treponema pallidum to fibronectin, laminin, collagen IV, and collagen I, and blockage of attachment by immune rabbit IgG. Br J Vener Dis. 60, 357-363 (1984).
- Goetschy, J. F., Ulrich, G., Aunis, D., Ciesielski-Treska, J. Fibronectin and collagens modulate the proliferation and morphology of astroglial cells in culture. Int J Dev Neurosci. 5, 63-70 (1987).
- Paye, M., Lapiere, C. M. The lack of attachment of transformed embryonic lung epithelial cells to collagen I is corrected by fibronectin and FXIII. J Cell Sci. 86, 95-107 (1986).
- Pourreau-Schneider, N., et al. Estrogen response of MCF-7 cells grown on diverse substrates and in suspension culture: promotion of morphological heterogeneity, modulation of progestin receptor induction; cell-substrate interactions on collagen gels. J Steroid Biochem. 21, 763-771 (1984).
- Pratt, B. M., Harris, A. S., Morrow, J. S., Madri, J. A. Mechanisms of cytoskeletal regulation. Modulation of aortic endothelial cell spectrin by the extracellular matrix. Am J Pathol. 117, 349-354 (1984).
- Jessup, J. M., et al. Microgravity culture reduces apoptosis and increases the differentiation of a human colorectal carcinoma cell line. In vitro cellular & developmental biology - Animal. 36, 367-373 (2000).
- Sutherland, R. M., et al. Oxygenation and differentiation in multicellular spheroids of human colon carcinoma. Cancer Res. 46, 5320-5329 (1986).
- Unsworth, B. R., Lelkes, P. I. Growing tissues in microgravity. Nat Med. 4, 901-907 (1998).
- Zwezdaryk, K. J., Warner, J. A., Machado, H. L., Morris, C. A., Honerzu Bentrup, K. Rotating cell culture systems for human cell culture: human trophoblast cells as a model. Journal of visualized experiments : JoVE. , (2012).
- Radtke, A. L., Herbst-Kralovetz, M. M. Culturing and Applications of Rotating Wall Vessel Bioreactor Derived 3D Epithelial Cell Models. Journal of visualized experiments : JoVE. , (2012).
- Barrila, J., et al. Organotypic 3D cell culture models: using the rotating wall vessel to study host-pathogen interactions. Nat Rev Microbiol. 8, 791-801 (2010).
- Honer zu Bentrup, K., et al. Three-dimensional organotypic models of human colonic epithelium to study the early stages of enteric salmonellosis. Microbes and infection / Institut Pasteur. 8, 1813-1825 (2006).
- Nickerson, C. A., et al. Three-dimensional tissue assemblies: novel models for the study of Salmonella enterica serovar Typhimurium pathogenesis. Infect Immun. 69, 7106-7120 (2001).
- Alcantara Warren, C., et al. Detection of epithelial-cell injury, and quantification of infection, in the HCT-8 organoid model of cryptosporidiosis. J Infect Dis. 198, 143-149 (2008).
- Carvalho, H. M., Teel, L. D., Goping, G., O'Brien, A. D. A three-dimensional tissue culture model for the study of attach and efface lesion formation by enteropathogenic and enterohaemorrhagic Escherichia coli. Cell Microbiol. 7, 1771-1781 (2005).
- Lin, H. J., O'Shaughnessy, T. J., Kelly, J., Ma, W. Neural stem cell differentiation in a cell-collagen-bioreactor culture system. Brain Res. Dev Brain Res. 153, 163-173 (2004).
- He, L., et al. Increased proliferation and adhesion properties of human dental pulp stem cells in PLGA scaffolds via simulated microgravity. Intl Endo J. , (2015).
- Straub, T. M., et al. In vitro cell culture infectivity assay for human noroviruses. Emerg Infect Dis. 13, 396-403 (2007).
- Herbst-Kralovetz, M. M., et al. Lack of norovirus replication and histo-blood group antigen expression in 3-dimensional intestinal epithelial cells. Emerg Infect Dis. 19, 431-438 (2013).
- Goodwin, T. J., Schroeder, W. F., Wolf, D. A., Moyer, M. P. Rotating-wall vessel coculture of small intestine as a prelude to tissue modeling: aspects of simulated microgravity. Proc Soc Exp Biol Med. 202, 181-192 (1993).
- Goodwin, T. J., Jessup, J. M., Wolf, D. A. Morphologic differentiation of colon carcinoma cell lines HT-29 and HT-29KM in rotating-wall vessels. In Vitro Cell Dev Biol. 28, 47-60 (1992).
- Salerno-Goncalves, R., Fasano, A., Sztein, M. B. Engineering of a multicellular organotypic model of the human intestinal mucosa. Gastroenterology. 141, 18-20 (2011).
- Hammond, T. G., Hammond, J. M. Optimized suspension culture: the rotating-wall vessel. Am J Physiol Renal Physiol. 281, 12-25 (2001).
- Cherry, R. S., Papoutsakis, E. T. Physical mechanisms of cell damage in microcarrier cell culture bioreactors. Biotech and Bioeng. 32, 1001-1014 (1988).
- Bergmann, S., Steinert, M. From Single Cells to Engineered and Explanted Tissues: New Perspectives in Bacterial Infection Biology. Int Rev Cell Mol Biol. 319, 1-44 (2015).
- Xu, B., et al. Simulated microgravity affects ciprofloxacin susceptibility and expression of acrAB-tolC genes in E. coli ATCC25922. Int J Clin Exp Pathol. 8, 7945-7952 (2015).
- Han, C., Jiang, C., Yu, C., Shen, H. Differentiation of transforming growth factor beta1-induced mesenchymal stem cells into nucleus pulposus-like cells under simulated microgravity conditions. Cell Mol Biol (Noisy-le-Grand, France). 61, 50-55 (2015).
- Wang, C., et al. Microgravity activates p38 MAPK-C/EBPbeta pathway to regulate the expression of arginase and inflammatory cytokines in macrophages. Inflamm Res. 64, 303-311 (2015).
- Iliev, I. D., et al. Human intestinal epithelial cells promote the differentiation of tolerogenic dendritic cells. Gut. 58, 1481-1489 (2009).
- Kerneis, S., Bogdanova, A., Kraehenbuhl, J. P., Pringault, E. Conversion by Peyer's patch lymphocytes of human enterocytes into M cells that transport bacteria. Science. 277, 949-952 (1997).
- Sato, T., et al. Paneth cells constitute the niche for Lgr5 stem cells in intestinal crypts. Nature. , (2010).
- Lei, N. Y., et al. Intestinal subepithelial myofibroblasts support the growth of intestinal epithelial stem cells. PLoS One. 9, e84651 (2014).
- Voog, J., Jones, D. L. Stem cells and the niche: a dynamic duo. Cell Stem Cell. 6, 103-115 (2010).
- Jabaji, Z., et al. Use of collagen gel as an alternative extracellular matrix for the in vitro and in vivo growth of murine small intestinal epithelium. Tissue Eng Part C Methods. 19, 961-969 (2013).
- Jabaji, Z., et al. Type I collagen as an extracellular matrix for the in vitro growth of human small intestinal epithelium. PLoS One. 9, e107814 (2014).
- Rodin, S., Antonsson, L., Hovatta, O., Tryggvason, K. Monolayer culturing and cloning of human pluripotent stem cells on laminin-521-based matrices under xeno-free and chemically defined conditions. Nat Protoc. 9, 2354-2368 (2014).
- Foulke-Abel, J., et al. Human enteroids as an ex-vivo model of host-pathogen interactions in the gastrointestinal tract. Exp Biol Med. 239, Maywood, N.J. 1124-1134 (2014).
- Tompkins, W. A., Watrach, A. M., Schmale, J. D., Schultz, R. M., Harris, J. A. Cultural and antigenic properties of newly established cell strains derived from adenocarcinomas of the human colon and rectum. J Natl Cancer Inst. 52, 1101-1110 (1974).
- Hinterleitner, T. A., Saada, J. I., Berschneider, H. M., Powell, D. W., Valentich, J. D. IL-1 stimulates intestinal myofibroblast COX gene expression and augments activation of Cl- secretion in T84 cells. Am J Physiol. 271, 1262-1268 (1996).
- Hoshi, H., McKeehan, W. L. Brain- and liver cell-derived factors are required for growth of human endothelial cells in serum-free culture. Proc Natl Acad Sci U S A. 81, 6413-6417 (1984).
- Salerno-Goncalves, R., Pasetti, M. F., Sztein, M. B. Characterization of CD8(+) Effector T Cell Responses in Volunteers Immunized with Salmonella enterica. Serovar Typhi Strain Ty21a Typhoid Vaccine. J Immunol. 169, 2196-2203 (2002).
- Poggioli, T., Sarathchandra, P., Rosenthal, N., Santini, M. P. Intramyocardial cell delivery: observations in murine hearts. J Vis Exp. , e51064 (2014).
- Eastburn, D. J., Mostov, K. E. Laying the foundation for epithelia: insights into polarized basement membrane deposition. EMBO Rep. 11, 329-330 (2010).
- Coecke, S., et al. Guidance on good cell culture practice. a report of the second ECVAM task force on good cell culture practice. Altern Lab Anim. 33, 261-287 (2005).
- Geraghty, R. J., et al. Guidelines for the use of cell lines in biomedical research. Br J Cancer. 111, 1021-1046 (2014).
- Hartung, T., et al. Good Cell Culture Practice. ECVAM Good Cell Culture Practice Task Force Report 1. Altern Lab Anim. 30, 407-414 (2002).
- Blanchet, O., et al. Altered binding of regulatory factors to HLA class I enhancer sequence in human tumor cell lines lacking class I antigen expression. Proc Natl Acad Sci U S A. 89, 3488-3492 (1992).
- Palmisano, G. L., et al. HLA-E surface expression is independent of the availability of HLA class I signal sequence-derived peptides in human tumor cell lines. Hum Immunol. 66, 1-12 (2005).
- Ootani, A., et al. Sustained in vitro intestinal epithelial culture within a Wnt-dependent stem cell niche. Nat Med. 15, 701-706 (2009).
- Sato, T., et al. Long-term expansion of epithelial organoids from human colon, adenoma, adenocarcinoma, and Barrett's epithelium. Gastroenterology. 141, 1762-1772 (2011).
- Sato, T., et al. Single Lgr5 stem cells build crypt-villus structures in vitro without a mesenchymal niche. Nature. 459, 262-265 (2009).
- Wilson, S. S., Tocchi, A., Holly, M. K., Parks, W. C., Smith, J. G. A small intestinal organoid model of non-invasive enteric pathogen-epithelial cell interactions. Mucosal Immunol. , (2014).