Summary
Dieses Manuskript beschreibt einen multispektralen optischen Sensor, der wirksam eine Beschädigung zu Beginn der Saison Baumwolle künstlich infiziert mit unterschiedlichen Dichten der beiden Spinnmilbe Populationen nachgewiesen.
Introduction
Zweifleckige Spinnmilbe, Tetranychus urticae (Koch) ein polyphagen und weltoffen Schädlings vieler Feld und Gartenbaupflanzen 1, 2. Es lebt in Gurtbänder in Kolonien auf der Bodenfläche der Anlage 3, 4. Es hat sich von einem Ende der Saison zu einem frühen Saison Schädling in der Mitte der Süden der Vereinigten Staaten im letzten Jahrzehnt 5 entwickelt. TSSM war der 5. schädlichsten Schädlings aus Baumwolle und verursachte einen geschätzten Verlust von 57.441 Ballen Baumwolle und 0,167% Verringerung der Ausbeute in den Vereinigten Staaten im Jahr 2011 6, 7. Seine kurze Lebensdauer, hohe Fruchtbarkeit und haploidspezifischen diploide Geschlechtsbestimmung kombiniert mit der Fähigkeit Xenobiotika zu verdauen und zu entgiften haben die Entwicklung von Resistenz gegen Pestizide 8 verstärkt. Derzeit bleibt Akarizide als only zuverlässiger Steuerungsmechanismus zur Unterdrückung von T. urticae. Daher Feld Entomologen bewerten ständig aktuell verfügbaren und neu Akarizide für die Wirksamkeit entwickelt.
Die Schätzung der Schäden, die durch die Spinnmilben in der Regel durch Ritzen den Schadens auf einer subjektiven Skala durchgeführt wegen der Schwierigkeit in Hand die Milben zu zählen. Einige binomischen Probenahme durchgeführt, bei denen nur der Anteil der befallenen Blätter erzielt wurde eher als die Anzahl der Spinnmilben pro Blatt 9. Eine Blatt Rötung Indexskala, die von Punktierung und Rötung der extensiven Rötung der Vegetation variierte, wurde bei der Schätzung des Schadens als Kriterium verwendet. Die räumlichen Verteilungsmuster von T. urticae auf Baumwolle förmig zu einem verklumpten Verteilungsmuster 9. Milben sind auf Baumwolle Laub von spärlich verteilt stark geclustert und bleiben so unter Feldbedingungen. Ein solches Verteilungsmuster coupled mit seiner geringen Größe, Mobilität und produktivsten Reproduktion macht Auszählung von TSSM schwierig. Zuverlässige alternative Techniken sind für die Beurteilung der Milbe Dichte erforderlich, um quantitativ Wirksamkeit von Akariziden gegen TSSM zu bewerten.
Das Ziel dieser Studie war es, Baumwollpflanzen beschädigt durch unterschiedliche Dichten von TSSM getrennt durch einen optischen Multispektralsensorvorrichtung verwenden. Unsere Absicht war es, festzustellen, ob der Boden-basierte optische Sensor könnte gesunde Baumwollpflanzen aus, die durch die Spinnmilben beschädigt klassifizieren und trennen.
Protocol
1. Stellen Sie TSSM Kolonien auf Pinto-Bohnen
- Pflanze Pinto - Bohnen, Phaseolus vulgaris L., in Kunststoffschalen (56 x 28 x 5 cm 3) , die Topferde im Gewächshaus , wie in Abbildung 1 dargestellt.
- Beschriften das Tabletts mit Markierungs sticks nach Behandlung und Replikation.
- Eingestellt und Gewächshaustemperatur auf 90 ° C und 70% relative Luftfeuchtigkeit beibehalten.
- Wachsen Bohnen auf 1-2 dreiblättrigen Blatt - Stadium 10 , wie in Abbildung 2 dargestellt.
- Sammeln Spinnmilben aus Baumwollpflanzen auf natürliche Weise mit Milben befallen von befallenen Blätter zu entfernen.
- Platz Spinnmilbe befallen Baumwolle Blätter auf Wachtelbohnen so oft wie nötig, bis alle Pflanzen in den Böden mit zahlreichen TSSMs befallen sind.
Abbildung 1: Pflanzen Pintobohnen in PlastikTabletts. Pintobohnen - Samen wurden in Kunststoffschalen (56 x 28 x 5 cm 3) in dem Gewächshaus gepflanzt und wurden täglich gewässert. Bitte klicken Sie hier , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.
Abbildung 2: Pintobohnen mit dreiblättrigen Blättern. Das erste echte Blatt, das gebildet wird, nachdem die Keimblätter aus dem Boden hervorgehen, ist das einfache oder unifoliate Blatt. Nachfolgende Blätter sind die dreiblättrigen mit denticulate Spitzen verlässt. Bitte klicken Sie hier , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.
2. Transfer TSSM auf Baumwollpflanzen
- Wachsen Non- Bt (nicht gentechnisch verändert) Baumwollpflanzen auf 4-5 Blattstadium in Kunststoffschalen (56 x 28 x 5 cm) im Gewächshaus , wie in Schritt 1.3 und in Figur 3 gezeigt spezifiziert.
- Übertragen Spinnmilbe Kolonien von Pinto-Bohnen auf junge Baumwollpflanzen bei 4-5 Blattstadium.
- Übertragen 3 Massen von Spinnmilben für leicht befallene Pflanzen. Hinweis: Bei sehr hohen Befalls, Spinnmilben bilden Massen oder Bolls 11 und sind auf Blattspitzen gefunden hängen , wie in Abbildung 4 zu sehen.
- Legen Sie eine Pfanne unter Wachtelbohnenblattspitze enthält TSSM Massen.
- Schneiden Sie Wachtelbohnenblattspitzen mit einer Schere, so dass TSSM Massen in die Pfanne fallen , wie in den 5 und 6 gezeigt.
- Drehen pan Kopf über Baumwollpflanzen und tap TSSM Massen auf Baumwollpflanzen in Kunststoffschalen gezüchtet , wie in 7 gezeigt. Hinweis: Jede Schale enthielt ~ 100 Baumwollpflanzen.
- Randomly verteilt 3 Massen von TSSM auf Baumwollpflanzen.
- Übertragen 20 Massen für michdially Pflanzen befallen.
- Legen Sie eine Pfanne unter Wachtelbohnenblattspitze enthält TSSM Massen.
- Schneiden Sie Schecke Bohnenblattspitzen mit einer Schere, so dass sie in die Pfanne fallen.
- Sammeln Sie 20 Massen in der Pfanne.
- Drehen Sie den Kopf Pfanne über Baumwollpflanzen und ausklopfen TSSM Massen auf ~ 100 Baumwollpflanzen im Gewächshaus aufgewachsen.
- Übertragen 40 Massen für stark befallene Pflanzen.
- Legen Sie eine Pfanne unter Wachtelbohnenblattspitze enthält TSSM Massen.
- Schneiden Sie Schecke Bohnenblattspitzen mit einer Schere, so dass sie in die Pfanne fallen.
- Sammeln Sie 40 Massen in der Pfanne.
- Drehen Sie den Kopf Pfanne über Baumwollpflanzen Abklopfen TSSM Massen auf ~ 100 Baumwollpflanzen und verteilt sie nach dem Zufall.
- Übertragen 3 Massen von Spinnmilben für leicht befallene Pflanzen. Hinweis: Bei sehr hohen Befalls, Spinnmilben bilden Massen oder Bolls 11 und sind auf Blattspitzen gefunden hängen , wie in Abbildung 4 zu sehen.
Abbildung 3. Baumwollpflanzen mit 4-5 Blattstadium. the Kotyledonen treten aus dem Boden als blattartige Strukturen auf der Sämling Schaft einander entgegengesetzt ausgerichtet sind. Die Apikalmeristems tritt durch den Keimblättern und die ersten echten Blätter bilden. Bitte klicken Sie hier , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.
Abbildung 4. TSSM Massen auf einem dreiblättrigen Bohnenblatt hängen. TSSM lebt in Kolonien und wenn Populationen mit hoher Dichte zu erreichen, bilden sie Massen oder boll artigen Strukturen und sammeln sich an den Blattspitzen für Zerstreuung. Bitte klicken Sie hier , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.
Abbildung 5. Schneiden Wachtelbohnenspitzen Blatt eine TSSM Masse mit einer Schere enthält. Dreiblättrige Bohnenblattspitzen TSSM Massen enthalten, wurden für befallBaumwollPflanzen mit einer Schere entfernt. Bitte klicken Sie hier , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.
Abbildung 6. TSSM Massen auf Bohnenblattspitzen in der Pfanne gegeben. Wenn eine ausreichende Anzahl von dreiblättrigen Bohnenblattspitzen mit TSSM in den Testpflanzen gefunden wurden, wurden sie in der Pfanne entfernt und. Diese Proben wurden verwendet, Behandlungskategorien verseuchen: leichte, mittlere und schwere, die 3 aufgenommen, 20 und 40 Massen von TSSM, respectively. Bitte klicken Sie hier , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.
Abbildung 7. Drehen pan Kopf. Die Pfannen dreiblättrigen Bohnenblattspitzen mit TSSM enthielten, wurden den Kopf auf Baumwolle Baldachin drehte die Testpflanzen befallen. Bitte klicken Sie hier , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.
3. Scannen TSSM geplag Baumwollpflanzen mit dem Multispektral des optischen Sensors
- Horizontal Halterung den optischen Sensors auf den Gewächshausrahmen etwa 7 Fuß über dem Boden , wie in Abbildung 8 gezeigt. Den Abstand zwischen dem Scanner und dem Pflanzendach bei 36" . Verwenden Ebene einer Schreinerei, um sicherzustellen, dass der Sensor in horizontaler Ebene ist.
- Legen Sie nicht befallene Böden von Baumwollpflanzen auf einem fahrbaren Rollwagen.
- Aktivieren Sie den Sensorschalter und drücken Sie langsam die cart unter dem Sensor , bis das Fach vollständig den Sensorkopf verläuft , wie in 8 gezeigt. Schalten Sie Schalter. Ziehen Sie den Warenkorb gelegt.
- Wiederholen Sie Schritt 3.3 dreimal für insgesamt 3 Wiederholungen.
- Wiederholen Sie diesen Vorgang für alle Fächer aus Baumwolle.
- Wiederholen Scannen an Tag 1, Tag 5, Tag 6, Tag 7, Tag 9, Tag 10, Tag 12, Tag 13 und Tag 14 nach der Behandlung (DAT). Das Abtasten der NDVI (Normalized Difference Vegetation Index) Wert 12 vorgesehen. Übertragen Sie die NDVI-Werte und speichern auf einem Pocket PC, die dann auf einen Computer im Textformat heruntergeladen werden.
HINWEIS: NDVI = (NIR - RED) / (NIR + rot), wo rot und NIR sind die spektralen Reflexionswerte (0-255) im roten und nahen Infrarot-Spektren bei 660 und 770: NDVI wurde aus der folgenden Gleichung berechnet nm.
Abbildung 8. A multispectral optischer Sensor verwendet, um quantitativ die Gesundheit von Baumwollpflanzen mit unterschiedlichen Dichteniveaus von TSSM befallenen zu messen. Die mit Rädern versehenen Rollwagen mit den Testpflanzen wurden langsam unter dem Sensorkopf durchlaufen spektrale Reflexionswerte zu erhalten. a ist der Sensorkopf; b ist Pocket - PC; c Batteriefach und Eingangs- / Ausgangsanschlüsse; d sind RS-232 serielle Datenkabel und e die craft paper einheitlichen Hintergrund zu liefern. Bitte klicken Sie hier , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.
4. Daten Analyses
- Besorgen Sie sich die maximalen NDVI Werte des Proc Means Verfahren unter Verwendung von 13. Berechnen Sie die prozentuale Verringerung der NDVI-Werte für jeden Tag der Beobachtung unter Verwendung von Tag 0 als Referenzwert. Analysieren Sie die Daten, die die wiederholten Messungen PROC GLM Prozedur mit <sup class = "xref"> 13.
HINWEIS: Die Mittel wurden unter Verwendung des Mehrbereichstest bei P = 0,05 Duncan getrennt. Bedeutet, mit den gleichen Kleinbuchstaben unterschieden sich nicht signifikant. - Führt graphische Darstellungen der Daten 14 , wie in 9 gezeigt.
Abbildung 9. prozentuale Verringerung oder Änderung in NDVI relativ zu Tagen nach der Behandlung. grafisch zu veranschaulichen die funktionale Beziehung zwischen dem prozentualen Änderung in NDVI relativ zu Tagen des Abtastens (DAT) wurde JMP-Software verwendet. Bitte klicken Sie hier , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.
Representative Results
Der Sensor sendet rotes und infrarotes Licht, und dieses Licht wird wiederum zurück aus dem Pflanzendach reflektiert. Das reflektierte Licht dient als eine quantitative Messung der sichtbaren und nahen Infrarotbändern des elektromagnetischen Spektrums und wird numerisch als NDVI (Normalized Difference Vegetation Index) Lesen aufgezeichnet. Die NDVI-Werte variieren von 0 bis 0,99. Je höher die NDVI Lesen der gesünderen das Pflanzendach. Gesunde Vegetation absorbiert sichtbares Licht und reflektiert das Licht im nahen Infrarot und ungesunde Vegetation reflektiert mehr sichtbares Licht und weniger Licht im nahen Infrarot. NDVI dient als ein Surrogat zu photosynthetischen Aktivität und diese spektrale Eigenschaft ist hochgradig korrelierten aktive Strahlung 15, 16, 17, 18 bis photosynthetisch . Sehr niedrige Werte von NDVI (0,1 und unten) entspricht barren Bereichen Gesteins- oderSand, während moderate Werte (0,2 bis 0,3) repräsentieren Strauch- und Grünland und hohe Werte (0,6 bis 0,8) zeigt, gemäßigte und tropische Vegetation. Die Reflexionsmessungen wurden unter Tageslichtbeleuchtung in dem roten und nahen infraroten Bereich des Spektrums erhalten.
NDVI wurde aus der folgenden Gleichung berechnet: NDVI = (NIR - RED) / (NIR + rot), wo rot und NIR sind die spektralen Reflexionswerte (0-255) in den roten und nahen Infrarot-Spektren bei 660 und 770 nm, beziehungsweise. Der Sensor erfasst Reflexionswerte alle 100 msec. Das maximale NDVI Ablesungen aus einem Array von NDVI Werten jedes Mal von dem Sensor aufgenommen ausgesondert wurde in den Analysen verwendete Hintergrundreflexion zu minimieren und konsequent wiederholbare Zahlenwerte zu liefern.
Die Varianzanalyse der Daten ergab, dass erhebliche Unterschiede in der prozentualen Verringerung der NDVI zwischen leicht beobachtet wurden, m(P <0,0001; df = 3, 32 F = 436,4) edially und stark Baumwollpflanzen im Vergleich zur unbehandelten Kontrolle befallen. Die NDVI Werte, die die Vitalität der Pflanzen zwischen den Tagen der Beobachtung signifikant variiert während der Testperiode beschrieben (F = 1398,2; p <0,0001; df = 8, 256). Außerdem wurde die prozentuale Verringerung der NDVI Werte invers zu den Behandlungen während der Beobachtungsperiode (DAT) korreliert ist, aber eher selten von diesem Muster abweicht und signifikant mit DAT der Interaktion (F = 201,5, p <0,0001; df = 24, 256) . Die MANOVA Prüfkriterien für keine DAT-Effekt war signifikant als auch (Wilks λ = 0,00913; F = 339,0; p <0,0001; df = 8, 25). In ähnlicher Weise wurde die Wechselwirkung zwischen DAT und Behandlung signifikant (Wilks λ = 0,00101; F = 29,8, p <0,0001; df = 24, 73).
9 zeigt in Pflanzenwüchsigkeit prozentuale Änderung , wie durch NDVI Werte im Beobachtungszeitraum nachgewiesen. Eine positive procent in NDVI Wert zeigt gesunde wachsende Pflanzen, während ein negativer Wert anzeigt , dass die Vitalität der Pflanze verringert ist , seit der erste Messung ( das heißt Tag 0) durchgeführt wurde. Die nicht-infizierte Kontrollpflanzen zeigten vegetatives Wachstum im gesamten Verlauf der Studie erhöht, während die TSSM befallenen Pflanzen Abbau zeigten in den Bereichen Gesundheit im Laufe der Zeit. Die mittlere Trennung der gezeigten Behandlungen in Tabelle 1 zeigt , dass keine definierbare Differenz in Prozent Reduktion der NDVI zwischen den Behandlungsgruppen (leicht, mittel und schwer) und der Kontrolle wurde bis zum 5. Tag beobachtet , wenn Befall Klassen signifikant von der Kontrolle abweicht und blieben überwiegend so danach . Diese Daten zeigen, dass der optische Sensor wirksam statt der arbeitsintensive manuelle Probenahme verwendet werden, die Wirksamkeit der Behandlung gegen Akariziden auf Baumwolle zu beurteilen.
| Infestation Kategorie | 1 | 5 | 6 | 7 | 9 | 10 | 12 | 13 | 14 |
| Steuern | 1,18 ± 0,33 A | 2,70 ± maximal 0,40 Ra | 4,0 ± 0.36A | 3,94 ± 0.37a | 3,68 ± 0.53a | 2,57 ± 0.42a | 2,96 ± 0.47a | 3,48 ± 0.38a | 3,08 ± 0,22A |
| Licht | -0,13 ± 0.13b | -0,71 ± 0.29b | -0,65 ± 0.28b | -2,02 ± 0.47b | -5,68 ± 0.72b | -11,17 ± 0.94b | -15,73 ± 1.76b | -19,54 ± 1.68b | -24,9 ± 1.90b |
| Mittel | -1,83 ± 0.42c | -7,06 ± 0.63c | -9,61 ± 0.53c | -10,39 ± 0.57c | -17,06 ± 0,80c | -26,92 ± 0.72c | -33,84 ± 0.96c | -37,05 ± 1.14c | -41,74 ± 0.73c |
| schwer | -0,97 ± 0.58bc | -11,76 ± 0.29d | -13,83 ± 0.86d | -15,20 ± 0.63d | -25,0 ± 1.0d | -34,63 ± 0.54d | -39,07 ± 0.94d | -42,68 ± 0.62d | -46,71 ± 0,63 |
Tabelle 1: Prozentuale Reduzierung des Max NDVI nach Baumwollpflanzen wurden mit unterschiedlicher Anzahl von Clustern befallen oder Massen von TSSM. Baumwollpflanzen in Kunststoffschalen im Gewächshaus kultiviert wurden mit drei Arten von Spinnmilben befallen Dichte. Kategorie Licht erhielt 3 Massen oder Cluster von TSSM pro Fach, Kategorie Mittel erhielten 20 Massen pro Fach und Kategorie Schwer erhielten 40 Massen pro Fach. Die Mittelwerte wurden von der Kontrolle nach Duncans Mult abgetrenntiple Bereich Test (p = 0,05). Mittel, mit dem gleichen Kleinbuchstaben gefolgt waren nicht signifikant unterschiedlich bei dem 5% -Niveau der Wahrscheinlichkeit.
Discussion
Herkömmlicherweise wird auf dem Gebiet durchgeführt Insektizid Wirksamkeitstests umfassen mehrere Behandlungen der Chemikalie mit unterschiedlichen Geschwindigkeiten appliziert und im Vergleich zu einer unbehandelten Kontrolle. Akarizide mit unterschiedlichen Toxizitätsprofilen gegen instar und adulte Stadien von TSSM werden bewertet, um zu bestimmen, ob die von ihnen verursachten Schäden, die durch die chemische Behandlung reduziert werden. TSSM Proben werden gesammelt und in das Labor gebracht, wo sie unter dem Mikroskop untersucht werden, und die unterschiedlichen Stadien der TSSM werden gezählt und aufgezeichnet. Es ist von entscheidender Bedeutung, eine ausreichende Proben der Wirtspflanze zu nehmen, den Schaden bei jeder Behandlung zu bestimmen und sie mit statistisch akzeptable Genauigkeit zu unterscheiden. Die Anzahl der Proben, die die Behandlungen voneinander zu unterscheiden sind, sind abhängig von dem Verteilungsprofil des Organismus. Highly fleckige Verteilung des TSSM führt zu einer beträchtlichen Menge an Variation zwischen den Probenbereichen und viele Anlagen müssen in beprobenUm die Reproduzierbarkeit der Bevölkerungsschätzungen zu gewährleisten. Allerdings Budgets, Personal, Zeit und statistische Genauigkeit sind wichtige Faktoren, die bei den Stichprobenverfahren treffen. Es obliegt dem Forscher die zur Verfügung stehenden Ressourcen zuzuteilen optimal Abtastung mit den geringsten Kosten zu führen, aber bei den meisten Präzision.
Entomologen anstelle des Zählens TSSM Stufen punkten visuell den Schaden, basierend auf einer Skala von keinem Schaden in unterschiedlichem Maß an Schaden. Zum Beispiel schlugen einige Forscher binomische Probenahme, wo nur der Anteil der befallenen Blätter erzielt wurde eher als die Anzahl der Spinnmilben pro Blatt 9, 19. Andere geschätzten Schaden von TSSM auf Baumwolle basierend auf einer Blatt Rötung Indexskala, die von Punktierung und Rötung zu umfangreicher Rötung Vegetation Baldachin 19 variierte. Diese Methoden sind willkürlich, anekdotische und voreingenommen durch die individuelle Wahrnehmung des Ausmaßes des Schadens.Eine robustere und quantitative Bewertung der durch TSSM Schäden erforderlich, um die Behandlungen mit statistischer Genauigkeit zu bewerten und zu trennen.
Der erdgebundenen multispektraler optische Sensor erscheint ein verbessertes Probennahmewerkzeug zu sein, quantitativ die Schädigung durch TSSM zugefügt zu bestimmen und die Behandlungen genauer als das visuelle Schadensbewertungssystem von vielen Forschern angenommen zu trennen. Jedoch haben Forscher berichtet , dass die datenintensive Hyperspektraldaten zahlreiche spektrale Signaturen vorgesehen crop Spannungen und Vordach Eigenschaften im Vergleich zu multispektraler Fernerkundungsdaten , die weniger intensiv sind mit zwei Wellenlängen 20, 21 zu identifizieren und zu erfassen. Verwendung einen hyperspektralen Spektrometers, gefunden Reisig und Godfrey , dass der NIR - Reflexionswellenlänge ≈850 nm als informatives Spektrum bei der Unterscheidung von Arthropoden befallenen aus Baumwolle 22 nicht befallener. In dieser Studie haben wir, dass die multispektralen Reflexionswerte (NIR Wert ist ≈770 nm) gezeigt, mit nur zwei Spektralbänder der Lage waren, Baumwollpflanzen befallen mit unterschiedlichen Dichten von TSSM zu identifizieren und zu charakterisieren. Außerdem haben wir bereits früher berichtet, dass der multispektralen optische Sensor nicht nur effektiv getrennt Baumwollpflanzen befallen mit sehr unterschiedlicher Dichte Kategorien von TSSM, zeigten aber auch, dass Spiromesifen wirksamer war als Abamectin bei der Kontrolle TSSM in der frühen Saison Baumwolle im Gewächshaus bei einer Hälfte Rate der niedrigsten Rate Etikett 23.
Die multispektrale optische Sensor kann auf einem mobilen Forschungsplattform montiert werden und die Reflexionswerte aus den behandelten Flächen der Vegetations Vordächer ohne menschliche Subjektivität erhalten werden konnte. Akarizide Wirksamkeit Daten können somit ohne viel menschliche Arbeit erhalten werden. Die NDVI Daten können leicht auf den Computer geladen werden und unter Verwendung von kommerziellen statistischenSoftware. Ein GPS-Empfänger können auch auf die mobile Plattform montiert werden, um die GPS-Koordinaten zu sammeln, um eine Beschädigung der Karte des Feldes zu erzeugen. Verwendung von multispektralen Reflexionssignaturen aus dem Pflanzendach bietet der multispektralen optische Sensor ein schnelles und kostengünstiges Mittel zur Identifizierung und Quantifizierung von Pflanzenstress. Darüber hinaus kann ein viel größeres Gebiet des Feldes, in kürzerer Zeit mit einem höheren räumlichen Auflösung von Pflanzendach im Vergleich zu herkömmlichem Feld scouting abgedeckt werden. Es ist wichtig, dass die Schwellenschadenshöhe für TSSM auf Baumwolle zu erinnern, von Region zu Region in den Vereinigten Staaten sind variabel. Zum Beispiel wäre TSSM Schaden höher in einer trockenen Umgebung, wie in Kalifornien im Vergleich zur Midsouth Region , wo Regen und hohe Luftfeuchtigkeit häufig 24 vorherrschen. Daher wird Ausbeuteverlust aufgrund TSSM Schaden variabel sein und so ist die Beschädigungsschwelle. Allerdings Berichte aus Mississippi, Arkansas und Tennessee zeigen, dass der Schwellenwertfür TSSM auf Baumwolle erscheint , wenn 30 bis 50% der Pflanzen zu befallen ist und die Bevölkerung steigt aktiv 5. Weiterhin Feld angebauten Pflanzen, um mehrere Spannungen einschließlich Wasser Spannungen und Zuführen von Arthropoden Herbivores ausgesetzt sind, und die Interaktionen zwischen diesen Aktivitäten kann wesentlich die Produktivität der Anlage reduzieren und sind wahrscheinlich Beschädigungsschwelle beeinflussen. Die TSSM kann stomatäre Leitfähigkeit, Photosynthese und Transpiration in Baumwolle 25 reduzieren. Pflanzen im Gewächshaus kultiviert werden durch UV - Licht - Strahlung beeinflussen , und es beeinflusst signifikant stomatal Funktion, Photosynthese und Vordach Morphologie 26, 27 und könnte wahrscheinlich einen additiven Effekt auf dem Pflanzen Stress. Jedoch ist TSSM fähig Vermeidung von UV - Strahlung durch Sonnenstrahlung geschützten Zugang zum Lebensraum mit auf der unteren Oberfläche des Pflanzendaches 28, 29 </ sup>, 30, wo er sich befindet.
Die Höhe des optischen Sensors über dem Ziel Baldachin und die Orientierung des Sensors relativ zum Target sind wichtige Faktoren, die von dem multispektralen optischen Sensor 31 erhalten die Reflexionswerte signifikant beeinflusst. Zum Beispiel, wenn die mobile Forschungsplattform Reihenfrucht-Feld durchquert, wie beispielsweise bei Baumwolle Vordach offen ist, ist der Sensor wahrscheinlich unterschiedliche Ergebnisse erzeugen von der Orientierung des Sensors in Abhängigkeit entweder parallel oder senkrecht zu der Reihe. Es ist auch wahrscheinlich, dass der Boden und andere Hintergrundmaterialien stark die Sensormesswerte beeinflussen können, besonders, wenn der Sensor senkrecht zu der Reihe ausgerichtet ist. Um eine maximale Antwort von dem Sensor zu erhalten, sollte der Sensorkopf mit und direkt über den Reihen in-line ausgerichtet sein. Obwohl Orientieren wird der Lichtstrahl senkrecht zu den Reihen eher zurück zu holenErdreich Reflektanz kann dies annehmbar sein, jedoch, wenn Baumwolle Vordach mit üppiger Vegetation geschlossen ist. Darüber hinaus sollten die Betreiber Empfehlungen des Herstellers auf einem Betriebshöhenbereich von 81 bis 122 cm und Ausrichten des Sensorkopfes in-line mit dem Ziel folgen, um ein maximale Signalantwort zu erhalten. Es ist wichtig, den Sensor Batterie vor dem Gebrauch zu laden oder es soll bei der Fehlersuche zu vermeiden eingesteckt gehalten werden. Niedriger Batteriestand ist wahrscheinlich fehlerhafte Messwerte zu erzeugen.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| GreenSeeker | Trimble Ag. Division Westminster, CO |
Model 505 | Red NDVI sensor |
| Pinto beans | Producer's Co-op., Bryan, TX | Not applicable | Free choice item |
| Deltapine cotton seeds | Brazos Bottom Crop Care, Caldwell, TX77836 | Not applicable | 436 RR; NonBt & RoundUp Ready |
| Plastic trays | BWI, Schulenberg, TX | FG1020NL7 | 56 cm x 28 cm |
| Label sticks | Gempler's, Janesville, WI 53547 | Item # 151276 | Durable spike-style pot markers |
| 4-wheel Garden push cart | Farm Tek, Dyersville, IA 52040 | Item # 108676 | 61 cm x 122 cm |
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