Summary

Capture and Release av Levedyktige Sirkulasjonstumorceller fra Blood

Published: October 28, 2016
doi:

Summary

En protokoll for å utnytte en poly (N -iso-propylacrylamide) (PIPAAm) belagt mikrofilter for effektiv fangst og thermoresponsive utgivelsen av levedyktige sirkulerende tumorceller (CTC) er presentert. Denne metoden gjør fangst av CTC fra pasientenes blod og påfølgende frigjøring av levedyktig CTC for nedstrøms off-chip kultur, analyser og karakterisering.

Abstract

Vi viser en metode for størrelse basert fangst av levedyktige sirkulerende tumorceller (CTC) fra helt blod, sammen med utgivelsen av disse cellene fra brikken for genetisk analyse og / eller kultur. Strategien sysselsetter bruk av en roman Parylene C membran slot pore mikrofilter for å fange CTC og et belegg av poly (N -iso-propylacrylamide) (PIPAAm) for thermoresponsive levedyktig utgivelsen av den fangede CTC. Fangst av levende celler er aktivert ved å utnytte konstruksjonen av en spalte poregeometri med bestemte dimensjoner for å redusere skjærspenning typisk assosiert med filtreringsprosessen. Mens mikrofilter viser en høy fangsteffektivitet, er utgivelsen av disse cellene ikke-triviell. Vanligvis er bare en liten prosentandel av celler som frigjøres når teknikker slik som omvendt strøm eller celle skraping blir brukt. Den sterke adhesjon av disse epiteliale kreftceller til Parylene C membranen er knyttet til ikke-spesifikk elektrostatisk interaksjon. For å motvirke ther effekt, benyttet vi bruk av PIPAAm belegg og utnyttet sine termiske responsgrenseflateegenskaper for å frigjøre cellene fra filteret. Blod blir først filtrert ved romtemperatur. Under 32 ° C, er PIPAAm hydrofil. Deretter blir filteret plasseres enten i dyrkningsmedier eller en buffer holdt ved 37 ° C, noe som resulterer i PIPAAm snu hydrofobe, og deretter frigjøring av elektrostatisk bundne celler.

Introduction

Metastatisk sykdom er ansvarlig for de fleste kreftdødsfall. Utvikling prognostisk og følges diagnostisk biomarkør for metastasering er viktig i kreft ledelse og behandling. Sirkulerende tumorceller (CTC) spiller en sentral rolle i tumorspredning og metastasering. Videre er lett tilgjengelig som en "flytende biopsi 'biomarkør, CTC i kreftpasienters har perifert blod vært økende som en" arnested "for kreft biomarkør forskning. CTC har blitt godt validert som en prognostisk biomarkør i ulike kreft innstillinger, inkludert bryst, prostata og tykktarmskreft 1-3. Imidlertid har nylige fremskritt i CTC felt indikerte at bare bestemmelse av disse sjeldne cellene har begrenset klinisk nytte, slik som vist i intervensjons kliniske forsøk 4. Dermed er det et voksende behov for teknologi som gjør det mulig for molekylær og funksjonell karakterisering av CTC. Foreløpig bare få teknologier eksisterer som tillater for ikke-antigen partisk, levedyktig fangst og frigjøring av CTC, slik robust nedstrøms molekylær og funksjonell analyse 5,6. Flertallet av disse microfabricated enhetene er koblet til microfluidic plattformer og dermed ha en begrensende faktor i mengden blod som som kan behandles, som spenner 2-4 ml 7-10. CTC er sjeldne hendelser i et enkelt rør for blodprøvetaking (7,5 ml), og derfor ytterligere å redusere mengden av blod som kan behandles, i stor grad hindrer muligheten til å fange og å isolere disse cellene av interesse.

Vi har utviklet to typer Parylene C membran mikrofilter enheter for fangst av CTC som utnytter størrelsesforskjeller mellom større tumorceller og de mindre normale blodceller 11,12. Vi har tidligere rapportert på den runde pore opplistingen filter og sammenlignet den med et FDA-godkjent plattform, hvor mikro ble vist å være overlegen i CTC fangsteffektivitetfor kreftpasient blodprøver 13,14. Imidlertid er en begrensning av runden filteret er nødvendigheten av å bruke en formaldehydbaserte fikseringsmiddel før filtrering. Denne prosessen bevarer cellene morfologi samtidig som de kan motstå den skjærspenning og trykk under filtreringsprosessen. Mens opplisting og molekylære studier kan utføres på brikken 13, svekker fiksativ evnen til å utføre funksjonell karakterisering. For å møte denne begrensningen, har vi utviklet et spor pore filter som fornekter nødvendigheten av å fikse cellene før filtrering (figur 1). Spalten poregeometri (6 um bredde x 40 um lengde spille porer) gjør det mulig for tumorceller til å bli fanget mens bare delvis okkludering av en pore, og således fremdeles tillater fri passasje for andre blodceller og lindre økningen i trykk som ville føre til celleskade og eventuell sprengning 15,16 sporet pore patronen består av 2 akryl stykker som smørbrødslissen pore-filter mellom den øverste og nederste stykke med polydimetylsiloksan (PDMS) som virker som en pakning for å tilveiebringe en lekkasjesikker tetning 14,15 (figur 1).

Mens fange effektiviteten av sporet pore-filter er høy, (tabell 1), det oppfangede CTC bundet til Parylene C membranen av sterke ikke-spesifikke elektrostatiske interaksjoner i stedet for ekstracellulær matriks (ECM) mediert adhesjon 15. Metoder som omvendt strøm eller bruk av celle skrapere mislykkes i å effektivt frigjøre cellene fra filteret, eller resultere i celleskade og celledød. Vi utforsket en ukonvensjonell bruk av PIPAAm å formulere en utgivelse strategi 15. PIPAAm er en polymer som gjennomgår en reversibel lavere kritisk oppløsningstemperatur (LCST) faseomvandling ved en løsningstemperatur på 32 ° C 17. Tradisjonelt har denne egenskapen PIPAAm blitt mye utforsket for tissue engineering applikasjoner. Typisk celler erdyrket på PIPAAm belagte overflater ved 37 ° C når PIPAAm er hydrofobe. Cellene kan deretter tas av som en plate når dyrkningstemperaturen er forskjøvet til under 32 ° C, hvor den PIPAAm belagte overflaten blir hydrert 17,18. Vi å utnytte dette termiske egenskapen ved å utføre filtreringen ved romtemperatur (under 32 ° C), og deretter muliggjøre celle frigivelse ved å plassere filteret i kulturmedier holdt ved 37 ° C. Ved denne temperatur blir det PIPAAm hydrofob polymerlaget, for derved å frigjøre det elektrostatisk bundne celler 15 (figur 1).

Selv om temperaturen responsive metode samt andre metoder har blitt iverksatt for å oppnå levedyktig CTC-fangst og slipp 19-21, en nøkkel potensielle ulempen deles av disse teknologiene er rapportert, er at de alle ansette en antigen-avhengig prinsipp for CTC-fangst. Antigen basert CTC-fangst, som vist previously, kan føre til partisk CTC analyse 11,14. For eksempel, mange affinitet-baserte teknologier ansette antistoff som binder EpCAM for CTC-fangst. Imidlertid CTC er blitt vist å uttrykke forskjellige nivåer av EpCAM, som fører til utelatelse av EpCAM lav og EpCAM negativ CTC av disse teknologiene. Dessuten kan det oppstå begrensninger når CTC fra ikke-epitelial opprinnelse er av interesse, slik som CTC i melanom og sarkom innstillinger. Dermed vil en teknologi som gjør det mulig for levedyktig CTC-fangst og slipp uten potensiell skjevhet introdusert av antigen basert fangst er svært ønskelig.

Viktigere er mikro fangst enheten rent størrelse basert og utgivelsen strategi er agnostiker til tilstedeværelsen av visse overflatemarkører. Vi mener at ansettelse av PIPAAm belagt mikrofilter vil bidra til å utvide vår forståelse av metastatisk prosess, gjennom å gi muligheten til å effektivt fange og slipp CTC for nedstrøms analyser. Dette kan potentially avsløre nye molekyler som nye målrettet systemisk behandling kan være rettet, samt gi en biomarkør som kan overvåkes enkelt og hjelpemiddel i kreftpasient ledelse.

Protocol

Etikk Uttalelse: For å beskytte rettighetene til mennesker, ble blodprøver innhentet etter et informert samtykke i henhold til protokoller godkjent av University of Miami institusjonell gjennomgang styrene etter IRB 20150020. MERK: Blood som skal filtreres for CTC-fangst skal samles i en EDTA rør for å hindre koagulasjon. 1. Coating Pollen med Poly (N-iso-propylacrylamide) (PIPAAm) Vei opp PIPAAm for å fremstille en 10% vekt / volum løsning i butanol. Bland ved hjelp av en vortex inntil l…

Representative Results

Ved hjelp av friske givere 'blod (oppnådd under en protokoll godkjent av University of Miami IRB 20150020 etter et informert samtykke) tilsatt kultiverte kreftceller, den thermoresponsive teknikk for frigjøring av levedyktige sirkulerende tumorceller (CTC), oppnådde fangst, utslipp og gjenfinning effektivitet på 94% ± 9%, 82% ± 5% og 77% henholdsvis ± 5% (tabell 1) 15. Til sammenligning, utsetting og innhenting effektivitet av ubelagte filter var si…

Discussion

Prosessen med å fange levedyktig CTC fra fullblod og slippe dem ut av mikrofilteret er relativt enkel; imidlertid noen kritiske punkter er verdt å nevne. Det er viktig, som med alle cellekultur som en steril tilstand opprettholdes gjennom hele prosessen. Det første trinnet av å belegge filteret med PIPAAm er kritisk, som grunnlag for teknikken for å frigjøre cellene fra filteret er basert på å utnytte PIPAAm største temperaturfølsomme grenseflateegenskaper. For å sikre at filteret er blitt belagt effektivt, m…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We thank all the patients who have donated blood samples to support this work. We thank Drs. Guiseppe Giaconne, Ritesh Parajuli, and Marc E. Lippman for their assistance in clinical sample acquirement, and Drs. Carmen Gomez, Ralf Landgraf, Stephan Züchner, Toumy Guettouche, Diana Lopez for their insightful discussions. Zheng Ao thanks partial support and assistance from the Sheila and David Fuente Graduate Program in Cancer Biology, Sylvester Comprehensive Cancer Center.

Materials

Slot Filter Circulogix Inc. MSF-01 Different size filters available based for filtration for CTC from blood or urine (www.circulogixinc.com)
poly(N-iso-propylacrylamide) (PIPAAm)  Ploysciences Inc. 21458 Non-Hazardous. Store at room temp.
1-Butanol Sigma Aldrich B7906 Use in well ventilated area
Plastic Microscope Slides Cole-Parmer 48510-30 Any plastic slides or alternatively any sort of square (Metal, Acrylic etc.) can be used if it will be bale to hold the 8mmx8mm filter square
Spin Coater Specialty Coating Systems SCS G3 Spin Coater Instrument
Polyimide Tape Uline S-7595 Polyimide is the generic name for Kapton Tape which can be purchased form multiple vendors (Amazon, Kaptontape.com)
HBSS- Hank's Balanced Salt Solution Gibco 14025-092
1XPBS Gibco 10010-023
McCoy's Gibco 16600-082 Warm in 37 ⁰C water bath before use. McCoys was used for SKBr3 cells, if you use different cell lines or patient blood, please use media that would be optimal for that particular case
Falcon Petri dishes 35×10 mm VWR 25373-041
Microfilter Cassette Circulogix Inc. FC-01 Custom catridges are avilable based on filtration for CTC from blood or urine 
Syringe 20mL BD Scientific 302830
Syringe Pump KD scientific  78-0100V Any syringe pump capable of holding a 25mL syringe may be used
Cellstar 50mL Centrifuge tube VWR 82050-322
Greiner Bio One 6 well plate VWR 89131-688 Any brand can be used, as long as the surface is compatiable for cell adesion and not repellant
SKBR3 Cells ATCC HTB-30
Live Dead Assay Life Technologies L3224 Any assay that can provide a reasonable analysis to evaluate live cells will work
Cell Culture Incubator VWR 98000-368 Any incubator that can be used for cell culture will suffice

References

  1. Cristofanilli, M., Budd, G. T., et al. Circulating tumor cells, disease progression, and survival in metastatic breast cancer. N Engl J Med. 351 (8), 781-791 (2004).
  2. de Bono, J. S., Scher, H. I., et al. Circulating tumor cells predict survival benefit from treatment in metastatic castration-resistant prostate cancer. Clin Cancer Res. 14 (19), 6302-6309 (2008).
  3. Cohen, S. J., Punt, C. J. a., et al. Prognostic significance of circulating tumor cells in patients with metastatic colorectal cancer. Ann. Oncol. 20 (7), 1223-1229 (2009).
  4. Smerage, J. B., Barlow, W. E., et al. Circulating Tumor Cells and Response to Chemotherapy in Metastatic Breast Cancer: SWOG S0500. J. Clin. Oncol. 32 (31), 3483-3490 (2014).
  5. Mach, A. J., Kim, J. H., Arshi, A., Hur, S. C., Di Carlo, D. Automated cellular sample preparation using a Centrifuge-on-a-Chip. Lab chip. 11 (17), 2827-2834 (2011).
  6. Ozkumur, E., Shah, A. M., et al. Inertial Focusing for Tumor Antigen-Dependent and -Independent Sorting of Rare Circulating Tumor Cells. Sci. Transl. Med. 5 (179), 179 (2013).
  7. Nagrath, S., Sequist, L. V., et al. Isolation of rare circulating tumour cells in cancer patients by microchip technology. Nature. 450 (7173), 1235-1239 (2007).
  8. Hosokawa, M., Kenmotsu, H., et al. Size-Based Isolation of Circulating Tumor Cells in Lung Cancer Patients Using a Microcavity Array System. PLoS ONE. 8 (6), (2013).
  9. Bhagat, A. A. S., Hou, H. W., Li, L. D., Lim, C. T., Han, J. Pinched flow coupled shear-modulated inertial microfluidics for high-throughput rare blood cell separation. Lab on a chip. 11 (11), 1870-1878 (2011).
  10. Tan, S. J., Lakshmi, R. L., Chen, P., Lim, W. -. T., Yobas, L., Lim, C. T. Versatile label free biochip for the detection of circulating tumor cells from peripheral blood in cancer patients. Biosens. Bioelectron. 26 (4), 1701-1705 (2010).
  11. Vona, G., Sabile, A., et al. Isolation by size of epithelial tumor cells a new method for the immunomorphological and molecular characterization of circulatingtumor cells. Am. J. Pathol. 156 (1), 57-63 (2000).
  12. Marrinucci, D., Bethel, K., et al. Case study of the morphologic variation of circulating tumor cells. Human pathology. 38 (3), 514-519 (2007).
  13. Lin, H. K., Zheng, S., et al. Portable filter-based microdevice for detection and characterization of circulating tumor cells. Clin. Cancer Res. 16 (20), 5011-5018 (2010).
  14. Williams, A., Rawal, S., et al. Clinical translation of a novel microfilter technology Capture, characterization and culture of circulating tumor cells. PHT. , 220-223 (2013).
  15. Ao, Z., Parasido, E., et al. Thermoresponsive release of viable microfiltrated Circulating Tumor Cells (CTCs) for precision medicine applications. Lab Chip. 15, 4277-4282 (2015).
  16. Xu, T., Lu, B., Tai, Y. C., Goldkorn, A. A cancer detection platform which measures telomerase activity from live circulating tumor cells captured on a microfilter. Cancer Res. 70 (16), 6420-6426 (2010).
  17. Okano, T., Bae, Y. H., Jacobs, H., Kim, S. W. Thermally on-off switching polymers for drug permeation and release. J. Control. Release. 11 (1-3), 255-265 (1990).
  18. Yamada, N., Okano, T., Sakai, H., Karikusa, F., Sawasaki, Y., Sakurai, Y. Thermo-responsive polymeric surfaces; control of attachment and detachment of cultured cells. Die Makromol. Chemie, Rapid Commun. 11 (11), 571-576 (1990).
  19. Deng, Y., Zhang, Y., et al. An integrated microfluidic chip system for single-cell secretion profiling of rare circulating tumor cells. Sci. Rep. 4, 7499 (2014).
  20. Hou, S., Zhao, H., et al. Capture and stimulated release of circulating tumor cells on polymer-grafted silicon nanostructures. Adv. Mater. 25 (11), 1547-1551 (2013).
  21. Xiao, Y., Zhou, H., et al. Effective and selective cell retention and recovery from whole blood by electroactive thin films. ACS Appl. Mater. Interfaces. 6 (23), 20804-20811 (2014).
  22. Wallwiener, M., Hartkopf, A. D., et al. The impact of HER2 phenotype of circulating tumor cells in metastatic breast cancer: a retrospective study in 107 patients. BMC cancer. 15 (1), 403 (2015).

Play Video

Cite This Article
Rawal, S., Ao, Z., Agarwal, A. Capture and Release of Viable Circulating Tumor Cells from Blood. J. Vis. Exp. (116), e54435, doi:10.3791/54435 (2016).

View Video