Abstract
Gli anticorpi anti-neuraminidasi (NA), la seconda più abbondante proteina di superficie sul virus dell'influenza, contribuiscono verso la protezione contro l'influenza. I metodi tradizionali per misurare NA inibizione (NI) titoli anticorpali non sono pratici per gli esami sierologici di routine. Questo protocollo descrive il dosaggio enzimatico lectina (ELLA), un metodo alternativo pratico per misurare i titoli NI che viene eseguita in 96 pozzetti rivestiti con un ampio substrato glicoproteina, fetuina. unirà NA acidi terminali sialico da Fetuina, esponendo lo zucchero penultima, galattosio. Arachidi agglutinina (PNA) è una lectina con specificità per galattosio e quindi la portata della desialylation può essere quantificato utilizzando un coniugato perossidasi di rafano-PNA, seguita da aggiunta di un substrato cromogenico perossidasi. La densità ottica che viene misurato è proporzionale all'attività NA. Per misurare NI titoli anticorpali, diluizioni seriali di sieri vengono incubate a 37 ° CO / N su piastre Fetuina rivestite con un importo fisso of NA. Il reciproco della diluizione più alta del siero che si traduce in ≥50% inibizione dell'attività NA è designato come il titolo anticorpale NI. Il ELLA fornisce un formato pratico per la valutazione di routine delle risposte anticorpali umani a seguito di infezione influenzale o la vaccinazione.
Introduction
Neuraminidasi (NA) è una glicoproteina espressa sulla superficie di virioni dell'influenza. L'attività enzimatica è essenziale per il rilascio di particelle virali neoformate da cellule infette 1,2. Gli anticorpi che inibiscono l'attività NA riducono titoli di virus e sintomi della malattia in modelli animali 3 e correlazione con la resistenza contro la malattia negli esseri umani 4. Un aumento di inibizione NA (NI) titoli a seguito della vaccinazione può quindi servire un indicatore di efficacia del vaccino, tuttavia molti studi di immunogenicità passato influenza non hanno incluso questo punto finale, perché il test tradizionale per misurare NI titoli anticorpali è impraticabile per gli esami sierologici di routine.
Il metodo tradizionale per misurare titoli NI è basato sulla quantificazione della quantità di acido sialico che viene scisso dalla glicoconiugati da NA 1. Questo metodo, spesso indicato come metodo tiobarbiturico acid (TBA), utilizza sostanze chimiche pericolose per convertire ac sialicoid per un cromoforo che può essere quantificata mediante spettrometria. Il test non è adatto per verificare un gran numero di campioni in quanto vengono utilizzati tubi di vetro individuali, rendendo il dosaggio ingombrante. La miniaturizzazione del test di un 96 pozzetti fornisce un formato più pratico 5, tuttavia questo test richiede ancora l'uso di sostanze chimiche tossiche e quindi non è ideale.
Un test alternativo per misurare NI titoli anticorpali è stato sviluppato da Lambre et al. 6. Questo test quantifica attività enzimatica misurando la quantità di zucchero penultimo glicoproteine, galattosio, che diventa esposto quando l'acido sialico è rilasciato da NA. Poiché arachidi agglutinina (PNA) si lega specificamente al galattosio, una perossidasi di rafano-PNA (HRPO) coniugato può essere usata per ottenere un colorimetrico visualizzazione. La densità ottica che viene misurato è quindi proporzionale all'attività NA nel campione. titoli NI sono misurate determinando la più alta diluizionedi siero che inibisce almeno il 50% dell'attività NA. Questo test lectina enzimatico (ELLA) viene effettuata in piastre da 96 pozzetti rivestiti con fetuina, una proteina del siero altamente glicosilata, come substrato per la NA.
Una considerazione importante per i saggi che misurano titoli NI, è la fonte di NA. Questo perché sieri di soggetti vaccinati o infetti contengono anticorpi contro emoagglutinina (HA), così come gli anticorpi per NA. Gli anticorpi che si legano a HA possono interferire con l'attività NA e quindi, per evitare l'inibizione non specifica da anticorpi HA-specifici, purificato NA o virus intero contenente un HA antigenicamente-mismatched deve essere utilizzato nel saggio. Questi virus possono essere generati da riassortimento classica o dalla genetica inversa; l'obiettivo è quello di salvare un virus che contiene HA di un sottotipo che non è legato al ceppo di destinazione, e NA del virus che viene studiato. Il test descritto in questo articolo utilizza i virus dell'influenza A, che vengono generati dal revERSE genetica per contenere HA del sottotipo H6 e mirato NA dal virus dell'influenza A, sottotipo H1N1 e H3N2 5.
I risultati generati da Ella e saggi TBA miniaturizzati mostrano questi metodi sono paragonabili, con simile specificità e sensibilità sottotipo 7. ELLA non richiede l'uso di sostanze chimiche pericolose e quindi è il metodo preferito per misurare titoli NI. E 'facile da eseguire, con pochi passi (Figura 1): campioni vengono diluiti e trasferiti ad una piastra rivestita Fetuina cui virus (la fonte di NA) è aggiunto. La piastra viene incubata O / N e lavato prima di aggiungere PNA-HRPO. Dopo una incubazione di 2 ore, la piastra viene lavata e viene aggiunto substrato della perossidasi; la reazione colorimetrica si arresta e infine la densità ottica è misurata e il reciproco della diluizione del campione che ha provocato almeno il 50% di inibizione dell'attività NA è riportata come end-point titolo 50%. Uno studio intra-laboratorio per valutare reproducibility del ELLA, ha dimostrato che la variabilità piastra-to-plate è minima e l'operatore a operatore di ripetibilità portato a differenze più di 2 volte del titolo 7. Un successivo studio inter-laboratorio di ELLA variabilità ha mostrato che il test ha una buona riproducibilità quando eseguite in laboratori diversi e che l'inclusione di uno standard in grado di ridurre ulteriormente la variabilità nei risultati 8. Il ELLA è adatto per misurare NI titoli anticorpali in pannelli di siero di studi vaccino influenzale preclinici e clinici 7 e può essere utilizzato anche per valutare le differenze antigeniche tra le AN di virus influenzali 9.
Protocol
Tutti i virus reassortant dal vivo con i componenti aviarie devono essere maneggiati con livello di biosicurezza 2 (BSL2) pratiche -Enhanced in un laboratorio approvato per l'uso da parte del Dipartimento dell'Agricoltura degli Stati Uniti (USDA) e il comitato di biosicurezza istituzionale.
1. Preparazione dei reagenti e materiale di partenza
Nota: fare riferimento alla tabella materiali per ottenere la fonte di tutti i reagenti.
- Piastre Fetuina rivestite
- Preparare tampone di rivestimento mescolando 10 ml 10x tampone di rivestimento con 90 ml di H 2 O. deionizzata
- Preparare una soluzione stock di Fetuina a 25 mg / ml in tampone di rivestimento 1x e conservare in 500 microlitri aliquote a -20 ° C.
- Preparare una soluzione di lavoro di fetuina (25 mg / ml) immediatamente prima di lastre di verniciatura diluendo la soluzione madre 1.000 volte in 1x tampone di rivestimento.
- Utilizzare una pipetta multicanale per erogare 100 ml di soluzione di lavoro di fetuina in all pozzetti di una piastra a 96 pozzetti che ha alta capacità di legame con le proteine.
- Coprire ogni piatto con un sigillante piatto poi impilare le piastre in gruppi di 10 e avvolgerli in carta stagnola.
- Posizionare le piastre in frigorifero (2-8 ° C) per almeno 18 ore prima di eseguire un test.
Nota: Le piastre possono essere rivestite in anticipo e memorizzati con la soluzione di rivestimento a 2-8 ° C per 2 mesi.
- diluenti
- Per preparare il diluente per fare dei virus e dei campioni diluizioni (2- (N -morpholino) di acido etansolfonico (MES), pH 6,5, 20 mM CaCl 2, 1% di albumina sierica bovina (BSA) e lo 0,5% Tween 20), mescolare 94,2 ml 1X MES, pH 6,5 con 2 ml di CaCl 2 (10 mg / ml), 3,3 ml di 30% di BSA e 0,5 ml di Tween 20.
- Per preparare il diluente per PNA-HRPO (MES, pH 6,5 con 20 mM CaCl 2 e 1% BSA), miscela 94.7 ml 1x MES, pH 6,5 con 2 ml di CaCl 2 (10 mg / ml) e 3,3 ml di 30% BSA .
- Neuraminidasi (NA)
Nota: H6Nx reass virusortants (questi hanno HA di H6 sottotipo e la NA di interesse), sono generati seguenti metodi pubblicati 5,10. Richiedi fiale di virus reassortant inattivato da un collaboratore se non sono disponibili in-house. Quando si utilizza il virus inattivato, confermare che la preparazione è adatto per l'uso in ELLA attraverso la dimostrazione che il processo di inattivazione non ha avuto un impatto significativo sull'attività NA.- Culture uno stock di virus H6Nx in uova di gallina embrionate 11 e memorizzare 0,5 ml aliquote di liquido allantoico ordinata a -80 ° C.
- Utilizzare una nuova aliquota di virus per ogni test. Non congelare e scongelare le aliquote.
- I campioni di siero e Controlli
- Calore inattivare tutti i sieri (campioni di prova ad esempio, sieri pre e post-vaccinazione, così come i comandi, ad esempio, campioni con nota NI titolo) in un bagno di acqua a 56 ° C per 45-60 min. Conservare i sieri da -20 a -70 ° C prima o dopo il trattamento termico. Se la SAMPles devono essere testati più volte, fare diverse aliquote prima del congelamento in modo che il campione non è più volte congelati e scongelati.
- Utilizzare il ELLA per misurare i titoli NI di sieri umani che sono disponibili in quantità sufficiente (> 5 ml) per identificare almeno uno con basso titolo e un altro con un alto titolo. Conservare aliquote di 100 microlitri come ≤-20 ° C in modo che lo stesso campione può essere utilizzato come controllo in molti saggi per monitorare le prestazioni del dosaggio.
- Peanut Agglutinina (PNA) -Horseradish perossidasi (HRPO)
- Preparare il diluente PNA-HRPO (MES, pH 6,5 con CaCl 2 e 1% BSA).
- Preparare una soluzione stock PNA-HRPO sciogliendo 1 mg di PNA-HRPO in 1 ml di diluente. Conservare 20-200 aliquote microlitri a -20 ° C.
- Prima di utilizzare un nuovo lotto PNA-HRPO, test 1: 500, 1: 750, 1: 1.000 e 1: 2000 diluizioni di questo reagente per identificare la quantità che determina OD massima con il controllo positivo (solo virus) e uno sfondo ( nessun virus) tcappello è <10% del segnale positivo.
- Fare diluizioni virus quadruplicato come descritto nel paragrafo 2.1.
- Trasferire le diluizioni ad una piastra Fetuina rivestita come descritto nella sezione 2.2 e incubare la piastra a 37 ° C.
- Lavare la piastra 16-18 hr tardi e aggiungere 1: 500, 1: 750, 1: 1.000 e 1: 2.000 diluizioni di PNA-HRPO (100 microlitri / pozzetto) per duplicare le righe della piastra.
- Completare il test come descritto nei punti 2.3.4 a 2.3.9.
- Esamina i dati per selezionare la diluizione che ha provocato un segnale massimo che è> 10 volte precedenti.
- Immediatamente prima dell'uso, preparare la diluizione ottimale del PNA-HRPO identificate in 1.5.3.
- Preparare un grande volume di tampone di lavaggio (0,01 M tampone fosfato salino (PBS), pH 7,4, 0,05% Tween 20 (PBS-T)). Conservare a temperatura ambiente.
- Preparare il substrato perossidasi (o-Fenilendiammina dicloridrato (OPD)): Nota: substrati perossidasi alternative come 3,3 ', 5,5'-tetrametilbenzidina (TMB), può essere utilizzato
- Preparare tampone fosfato-citrato sciogliendo 1 capsula in 100 ml dH 2 O del giorno di dosaggio.
- Sciogliere 1 OPD compresse (10 mg) in 20 ml di tampone fosfato-citrato immediatamente prima dell'uso.
- Preparare la soluzione di arresto (1 NH 2 SO 4): aggiungere 27,2 ml di 98% H 2 SO 4-973 ml dH 2 O. Mescolare e poi conservare a temperatura ambiente.
2. Determinazione dell'importo di NA da utilizzare in ELLA
- Preparare diluizioni virus in un 96-pozzetti
- Dispensare 120 microlitri del campione diluente (punto 1.2) in colonne 1-11 della piastra di diluizione.
- Per la colonna 1, aggiungere un ulteriore 96 ml diluente campioni.
- Scongelare e poi vortice la fiala di virus prima di aggiungere 24 ml nei pozzetti duplicati nella colonna 1. Questo dà una diluizione 1:10 di virus.
- Effettuare diluizioni seriali 2-fold di virus nel diluente campioni, trasferendo120 ml da un bene per i prossimi utilizzando puntali puliti per ogni diluizione.
- Trasferimento diluizioni Virus ad una piastra Fetuina rivestite
- Lavare le Fetuina rivestite piastra 3 volte con PBS-T (sezione 1.6) e poi cancellare ogni piatto sul tovagliolo di carta assorbente per eliminare qualsiasi tampone di lavaggio in eccesso.
- Aggiungere 50 ml di diluente per campioni (punto 1.2.1) per ciascun bene nelle colonne da 1 a 11 della piastra Fetuina rivestita.
- Aggiungere 100 ml di diluente campioni di colonna 12 (questi pozzi sono il controllo negativo).
- Trasferimento 50 ml di virus diluito da colonne 1-11 della piastra di diluizione ai corrispondenti pozzetti della piastra Fetuina rivestita.
- Coprire la piastra con un sigillante piatto e poi metterlo in un incubatore umidificato a 37 ° C.
- Prendere nota del momento in cui verranno eseguiti passaggi rimanenti (16-18 ore più tardi).
- Completa la Determinazione NA
- Quando l'incubazione è completa (16-18 ore), trasferire ilpiatto al banco e rimuovere la pellicola sigillante.
- Lavare la piastra 6 volte con PBS-T (sezione 1.7) e poi invertito e pacca sulla carta assorbente per garantire tutto il liquido è stato rimosso dai pozzetti.
- Aggiungere 100 ml / pozzetto soluzione PNA-HRPO (alla diluizione determinato 1.5.3) a tutti i pozzetti e incubare la piastra per 2 ore a temperatura ambiente.
- Meno di 15 minuti prima dell'incubazione alla fine, preparare la soluzione OPD come descritto nella sezione 1.7.
- Lavare le piastre di prova per 3 volte per rimuovere il PNA-HRPO e asciugare prima di aggiungere 100 ml di substrato OPD in ogni pozzetto.
- Incubare la piastra per esattamente 10 minuti a temperatura ambiente.
- Arrestare la reazione aggiungendo 100 ml / pozzetto di acido solforico 1N.
- Utilizzare un lettore di piastre per misurare la densità ottica (OD) a 490 nm per 0,1 sec.
- Salvare ed esportare tutti i file di dati.
- Selezionare la diluizione Virus che verrà utilizzato per gli esami sierologici
- Disegnare un grafico che traccia OD 490nm (cioè, nella regione lineare della curva).
- Selezionare la diluizione virus che dà circa il 90% del segnale massimo ed è all'interno del range lineare. Verificare che la densità ottica a diluizione selezionato è almeno 10 volte maggiore del segnale di fondo. Utilizzare la diluizione virus selezionato per tutte le analisi che impiegano questo particolare virus magazzino.
Nota: In alternativa, misurare l'attività NA del virus e utilizzare ~ 15-20 μU NA attività / ml nel ELLA.
3. Enzyme-linked lectina Assay
Nota: Figura 2 shoWS l'installazione delle piastre di diluizione e dosaggio.
- Fare diluizioni del campione
- Posizionare i campioni inattivati al calore sul ghiaccio.
Nota: 8 sieri diluibile in ciascuna piastra. - Per un set up utilizzando diluizioni a partire da 01:10 tutta la piastra, aggiungere 120 ml di diluente del campione a tutti i pozzetti nelle colonne 3-11.
- Per colonna 2, aggiungere 216 ml di diluente del campione e 24 ml di ogni campione. Mescolare il campione nel pozzetto pipettando su e giù 3 volte e poi trasferire 120 microlitri nella colonna successiva.
- Dopo aver cambiato le punte delle pipette, mescolare il contenuto del pozzo pipettando su e giù e poi trasferire 120 ml alla colonna successiva.
- Ripetere il punto 3.1.4 fino a quando il campione è stato trasferito alla colonna 11 e le restanti 120 ml scartato.
- Posizionare i campioni inattivati al calore sul ghiaccio.
- Aggiungere Campioni e Virus alla Piastra Fetuina rivestite
- Scongelare una fiala di virus, vortice e risospendere il virus nel diluente (punto 1.2) alla diluizione che è stato selezionato al passaggio 2.4.2. Preparare almeno 5 ml di virus per ogni piastra test. Mantenere il virus diluito in ghiaccio fino le piastre vengono lavate e campioni di siero sono stati aggiunti alla piastra.
- Decidere il numero di lastre Fetuina rivestite che sono necessarie per il saggio (applicata in via generale 4 sieri per piastra). Lavare le Fetuina rivestite piastra 3 volte con PBS-T e poi capovolgere ogni piatto e asciugare su carta assorbente per eliminare l'eccesso di tampone di lavaggio.
- Utilizzare una pipetta multicanale per trasferire 50 ml di ogni controllo siero o diluizione del campione dalla piastra di diluizione in pozzetti duplicati nelle colonne 2-11.
- Aggiungere 50 ml di virus diluito a tutti i pozzetti tranne per il controllo negativo (colonna 12).
- Aggiungere 50 ml di diluente per campioni di pozzi nella colonna 1 e aggiungere 100 ml di diluente per campioni di colonna 12.
- Coprire i pozzetti con un sigillante piatto e poi mescolare picchiettando delicatamente i lati del piatto o posizionare su un agitatore a velocità moderata per 10 sec.
- Porre la piastra in una Humidifincubatore IED a 37 ° C per 16-18 ore.
- Aggiungere PNA-HRPO e completare il test come descritto nella sezione 2.3
Analisi 4. I dati
- Determinare la validità dei risultati del test
- Verificare che i valori di fondo (senza virus) sono meno del 10% del controllo positivo (virus e senza siero).
- Verificare che i titoli del controllo corsa sieri a diversi dosaggi utilizzando le stesse condizioni si trovano a 2 volte del titolo mediana.
- Verificare che le misure di densità ottica di pozzetti di controllo sono coerenti (≤20% diversi) e che le misurazioni OD di pozzetti del campione duplicato sono coerenti (≤10% diverso).
- Determinare la causa principale dei risultati non validi e ripetere il test se i criteri di cui al 4.1.1, 4.1.2 o 4.1.3, non sono soddisfatte. Considerare i fattori presentati nella tabella 1 quando si cerca di risolvere i problemi.
- Assegnare un end-point Titer 50%
- Per ogni piatto saggio, subtract sfondo media (nessun antigene aggiunti ai pozzetti) da tutte le letture.
- Calcolare la percentuale di inibizione ad ogni diluizione di siero con la formula: 100 x (virus OD solo controllo - campione di prova OD) / virus OD solo il controllo.
- Identificare la diluizione più elevata che ha provocato almeno il 50% di inibizione del segnale massimo.
- Relazione il reciproco di questa diluizione come end-point titolo 50%.
Nota: Se il 50% di inibizione non è stato raggiunto in qualsiasi diluizione, il titolo è inferiore alla prima diluizione testata, ad esempio, <10 quando 1:10 è la prima diluizione testata.
- Calcolare la concentrazione inibitoria del 50% (IC 50)
- Utilizzare quattro regressioni logistiche parametro per determinare la IC50 titolo come segue: sottrarre il fondo media da tutte le letture e poi trasferire i risultati di un programma che esegue l'analisi di regressione.
- Utilizzare regressione non lineare, con la massima impostataal virus controllano e il minimo impostato a zero, per determinare la diluizione che corrisponde esattamente il 50% di inibizione.
- Segnala il reciproco di questa diluizione come IC50 titolo.
Representative Results
Il saggio presentato in questo manoscritto è illustrato schematicamente in Figura 1. La Figura 2 mostra il layout di piastra da 96 pozzetti, e indica che diluizioni seriali dei campioni di siero sono preparati in una piastra di diluizione prima di trasferirli alla piastra Fetuina rivestita. Un parametro critico del test è la quantità di neuraminidasi che viene utilizzato nel saggio; questo è determinato attraverso la titolazione del virus reassortant. Esempi di H6N1 e H6N2 titolazioni virali sono mostrati in figura 3. In 1:10, 1:20 e 1:40 diluizioni H6N1, la densità ottica era simile, indicando che le condizioni erano tali che una lettura massima è stata ottenuta. Ad una diluizione 1:80, la lettura-out era circa il 90% del massimo e quindi questa diluizione del virus è stato utilizzato in saggi successivi. Esempi di titolazioni siero sono mostrati in Figura 4. La figura mostra un campione di siero umano che era titrati contro H6N1 e virus H6N2. Ciascun punto dati mostra la percentuale di inibizione di attività NA che è stato raggiunto da diluizioni seriali di siero; la prima diluizione del siero nel test H6N1 era 1:80; la prima diluizione del siero nel dosaggio H6N2 era 5. Poiché la diluizione più elevata che provoca ≥50% di inibizione è il titolo anticorpale NI, il titolo del siero mostrato in questo esempio è 640 contro la NA NC / 99 (N1) e 160 contro il NA di WI / 05 (N2).
. Figura 1. Uno schema del protocollo ELLA (A) Determinazione della diluizione di antigene (virus) da utilizzare nel test (fase 2 del protocollo): diluizioni di virus sono aggiunti ad una piastra rivestita fetuina e l'attività NA misurata dal quantificare i residui di galattosio terminale attraverso il legame di PNA-HRPO come descritto al punto 2.3 del protocollo; (B g>) Determinazione dei titoli anticorpali NI siero (punto 3 del protocollo). I campioni vengono diluiti e quindi trasferiti ad una piastra Fetuina rivestita in cui viene aggiunto virus. La piastra è incubata O / N prima di aggiungere PNA-HRPO e completando i passi necessari per generare una reazione di colore. Infine, la reazione del colore viene bloccato e la densità ottica è misurata. Il reciproco della diluizione del campione che si traduce in almeno il 50% di inibizione dell'attività di NA viene segnalato come end-point titolo del 50%. Si prega di cliccare qui per vedere una versione più grande di questa figura.
Figura 2. Diagramma che mostra la piastra ELLA impostato. Diluizioni seriali dei campioni di siero sono realizzati in una piastra di diluizione e quindi trasferiti ad una piastra Fetuina rivestita. 3fig2large.jpg "target =" _ blank "> Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.
Figura 3. Esempi di H6N1 e H6N2 titolazioni virus. Diluizioni seriali di H6N1 BR / 07 (NA di A / Brisbane / 59/2007 (H1N1) mostrato in simboli blu) e H6N2 UR / 07 (NA di A / Uruguay / 716 / 2007 (H3N2) mostrato in simboli rossi) sono state incubate per 18 ore in piastre fetuina rivestite e la reattività con PNA-HRPO determinato come descritto. Media OD 490nm di 2 pozzi è tracciata contro il reciproco della diluizione virus. La diluizione di H6N1 selezionato per l'uso nel ELLA era 1:80 e della diluizione H6N2 selezionato era 01:40 perché queste diluizioni portato a circa il 90% della densità ottica massima e sono rimasti nel range lineare.3large.jpg "target =" _ blank "> Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.
Figura 4. La titolazione del siero contro NA di N1 (simboli rossi) e N2 (simboli blu) sottotipi. NA titoli di inibizione sono stati misurati contro i virus H6N1 reassortant NC / 99 (contiene il NA di A / Nuova Caledonia / 20/1999 (H1N1) ) e H6N2 WI / 05 (contiene il NA di A / Wisconsin / 67/2005 (H3N2)). inibizione dell'enzima per cento per diluizioni seriali del siero viene mostrata con la linea orizzontale tratteggiata che indica il 50% di inibizione. L'inibizione titoli NA contro l'AN di A / Nuova Caledonia / 20/1999 (H1N1) (NC / 99) e A / Wisconsin / 67/2005 (H3N2) (WI / 05) erano 2 9.3 (640) e 2 7.3 ( 160), rispettivamente. cliccate qui per visualizzare un grande version di questa figura.
| Problema | Cause possibili) | Soluzione |
| Segnale debole o assente plateau raggiunto nel titolazione del virus | i) l'attività enzimatica bassa NA ii) del virus Stock non conservato in condizioni ottimali | i) confermano che il diluente ha pH che è ottimale per l'attività NA; se il pH è ottimale, preparare un nuovo virus magazzino o concentrato virus ii) ricrescere e un'aliquota magazzino; fiale snap-freeze in ghiaccio asciutto prima di riporlo a -80 ° C |
| colore debole o assente in pozzetti di controllo delle cellule positive | i) la diluizione Virus assegnato in modo non corretto ii) Vial-to-vial variabilità in aliquote congelate dei virus iii) PNA- HRPO denaturato o diluito troppo iv) OPD preparati in modo non corretto | io); titolazione del virus Ripetere ii) Titolare diverse fiale dello stesso lotto per garantire che non vi è alcuna variabilità. Se significativa variabilità, preparare aliquote freschi iii) la diluizione usare virus ottimale retitrate PNA- HRPO iv) Ripetere con la preparazione fresca di OPD |
| Debole o assente inibizione da parte di sieri di controllo positivo | i) Troppo virus impiegato per test ii) Siero deteriorata | i) la titolazione Ripetere virus ii) Ottenere nuove condizioni di conservazione antisieri Controlla |
| L'inibizione da sieri di controllo negativo | i) inadeguato trattamento termico del siero ii) Troppo poco virus impiegato per test | i) Ripetere calore inattivazione del siero ii) la titolazione Ripetere virus |
| alta sfondo | i) possibile contaminazione di piastre ii) la concentrazione PNA- HRPO troppo alta / troppo bassa | i) Ripetere con piastre rivestite di fresco ii) Titolare PNA-HRPO per identificare corretta diluizione da utilizzare |
| Virus titolazione mostra apparente inibizione dell'attività NA a basse diluizioni | i) liquido allantoico può contenere substrato per NA | ii) uso di virus che è stato in granuli attraverso un cuscino di saccarosio |
Tabella 1. l'analisi delle cause di test che non soddisfano i criteri di prestazione. Questa tabella fornisce le possibili cause e soluzioni per i problemi che possono verificarsi durante l'esecuzione del ELLA.
Discussion
Il saggio lectina enzimatico è un metodo pratico per misurare NI titoli anticorpali nel siero. Sebbene ELLA stato descritto da Lambre et al., Nel 1990, la sua accettazione come un test sierologico standard è stato più recente, con numerosi laboratori che effettuano test per misurare NI titoli anticorpali di campioni clinici 12-16. Alcune modifiche possono essere apportate passi protocollo senza un grande impatto ai titoli NI che vengono misurati. Ad esempio, PBS può essere utilizzato come diluente, tuttavia, è molto utile per confrontare le curve virus titolazione nel buffer consigliata (MES, pH 6,5) e PBS prima che una decisione è presa, come alcuni sottotipi di NA hanno significativamente ridotta attività enzimatica a pH> 7,0. Quando il pH ottimale non viene utilizzato, il segnale massimo di virus può essere ridotta, con conseguente utilizzo di una quantità eccessiva di antigene (ad esempio, virus) nel saggio; in queste condizioni, il campione potrebbe avere sensibilità ridotta.
alcuni noinibizione specifica-n si osserva quando i sieri non trattata sono testati nel ELLA. Questo viene rimosso mediante trattamento termico (56 ° C per 45 min), indicando la presenza di termolabili beta-inibitori. Altri inibitori non specifici (α e γ-classe) di influenza HA sono stati descritti, in particolare in relazione alle H3N2 emoagglutinazione virus e infettività. Infatti, l'inibizione non specifico si osserva anche in ELLA quando H3N2 sono utilizzati come fonte di NA; questa inibizione viene rimosso mediante trattamento dei campioni di siero con una piccola quantità di sialidasi 9.
Per quanto riguarda altri test sierologici, controlli negativi e positivi devono essere inclusi in ogni test di fornire un mezzo per valutare le prestazioni del dosaggio. Quando il test non ha soddisfatto i criteri di accettazione, il motivo dovrebbe essere identificato. Tabella 1 fornisce un elenco di potenziali punti nel test che possono essere affrontate per risolvere i problemi.
Il prov protocollo ELLAided in questo rapporto utilizza il virus reassortant che contengono HA proveniente da un virus aviario, come fonte di NA. Questo presenta una limitazione di eseguire il test, perché il permesso è richiesto per lavorare con bassi virus aviari patogeni. H6Nx virus reassortant possono essere condivisi tra i laboratori dopo che sono stati inattivati. Pertanto il saggio può essere condotto attraverso collaborazioni volta laboratorio generare virus reassortant ha dimostrato che l'inattivazione è completa e la preparazione ha conservato la propria attività NA. Il vincolo di utilizzare H6Nx virus reassortant può essere superato utilizzando fonti non infettive di NA. Ad esempio, alcuni laboratori hanno utilizzato purificata ricombinante NA 17, mentre altri hanno usato particelle virus-simili (VLP) 15. Tuttavia, né ricombinante NA né VLP sono facilmente disponibili e pertanto si continuano ad usare virus influenzali con una HA aviaria antigenicamente-non corrispondenti.
Il tradizionaleMetodo per misurare NI titoli anticorpali non è pratico per diversi motivi; di maggiore preoccupazione sono le sostanze chimiche nocive che sono necessari per produrre una reazione di colore. Inoltre, sono necessari grandi volumi di campione e il test è ingombrante da eseguire. Al contrario, il ELLA è facile da eseguire ed è in un formato che consente la titolazione di un numero ragionevole di campioni. I dati provenienti da studi che ha esaminato ELLA variabilità mostrano che i risultati del test i rendimenti riproducibili 7,8. Il ELLA ha di conseguenza reso la misurazione di routine di titoli anticorpali NI possibili, e si prevede che sarà usato più frequentemente dai laboratori che conducono studi sierologici.
Ci sono diversi passaggi critici che devono essere considerati quando si esegue il ELLA. Innanzitutto, inibitori non specifici di attività NA devono essere rimossi. Questi inibitori sono generalmente termolabili e vengono distrutti dal trattamento termico a 56 ° C per 45 min. Il trattamento termico è sufficiente rimuovere non specific inibitori di campioni quando H6 virus reassortant sono utilizzati come fonte di NA, tuttavia, quando H3N2 sono utilizzati nella ELLA, fattori di siero che si legano a emoagglutinina interferiscono anche con la ELLA e devono essere rimossi per trattamento con una piccola quantità di sialidasi prima del trattamento termico 9. In secondo luogo, una quantità eccessiva di antigene, cioè, virus H6Nx reassortant, non deve essere utilizzato come questo riduce la sensibilità del test. titolazione attenta del virus è quindi un passo essenziale; la quantità di antigene usato in ciascun saggio deve fornire un segnale che è ben al di sopra del fondo, e deve essere compresa nell'intervallo lineare della curva di titolazione, cioè, il segnale (densità ottica) deve essere proporzionale alla diluizione virus.
Oltre alla sierologia di routine, il ELLA può essere utilizzato per valutare le differenze antigeniche tra AN di virus influenzali stagionali. Queste informazioni possono essere molto utile quando si seleziona i ceppi di virus per l'inclusione di uns candidati vaccini e faciliterà una maggiore comprensione delle pressioni immunitarie che provocano deriva antigenica di NA. Inoltre, l'analisi antigenica dei NAS da virus dell'influenza suina o aviaria può fornire informazioni critiche nel determinare la potenziale pandemia di ceppi emergenti.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Coating buffer | KPL | 50-84-01 | |
| fetuin | Sigma | F3385 | |
| 5x MES, pH 6.5 | KD-Medical | PBS-0134 | |
| CaCl2 | Sigma | C7902 | |
| 30% BSA | Sigma | A8327 | |
| Tween 20 | Sigma | P1379 | |
| Lectin PNA-HRPO | Sigma | L7759 | |
| PBS-T | Sigma | P3563-10PAK | |
| o-Phenylenediamine dihydrochloride | Sigma | P8287 | |
| Phosphate-citrate buffer | Sigma | P4922 | |
| Sulfuric acid | Sigma | 258105 | |
| 96-well Maxisorp plates | NUNC | 439454 | |
| 96-well round bottom well plates | NUNC | 267245 | |
| Plate sealers | Thermo Scientific | 14-245-192B | |
| Chicken eggs | Charles River Laboratories | 9 day old embryonated specific pathogen free (SPF) chicken eggs | |
| Multichannel pipette | Variety of suppliers e.g., Rainin, Eppendorf | 8 or 12 channel manual pipette 50-250 µl volume | |
| Pipette tips | Depends on pipettor brand | Depends on pipettor brand | |
| Plate reader, with 490 nm filter | Perkin Elmer | Victor V | |
| Water bath set to 37 °C | Variety of suppliers | Variety of models | |
| Water bath set to 56 °C | Variety of suppliers | Variety of models | |
| Refrigerator set to 4 °C | Variety of suppliers | Variety of models | |
| Incubator set to 37 °C | Variety of suppliers | Variety of models |
References
- Kilbourne, E. D., Laver, W. G., Schulman, J. L., Webster, R. G. Antiviral activity of antiserum specific for an influenza virus neuraminidase. J Virol. 2 (4), 281-288 (1968).
- Compans, R. W., Dimmock, N. J., Meier-Ewert, H. Effect of antibody to neuraminidase on the maturation and hemagglutinating activity of an influenza A2 virus. J Virol. 4 (4), 528-534 (1969).
- Schulman, J. L., Khakpour, M., Kilbourne, E. D. Protective effects of specific immunity to viral neuraminidase on influenza virus infection of mice. J Virol. 2 (8), 778-786 (1968).
- Murphy, B. R., Kasel, J. A., Chanock, R. M. Association of serum anti-neuraminidase antibody with resistance to influenza in man. N Engl J Med. 286 (25), 1329-1332 (1972).
- Sandbulte, M. R., Gao, J., Straight, T. M., Eichelberger, M. C. A miniaturized assay for influenza neuraminidase-inhibiting antibodies utilizing reverse genetics-derived antigens. Influenza Other Respi Viruses. 3 (5), 233-240 (2009).
- Lambre, C. R., Terzidis, H., Greffard, A., Webster, R. G. Measurement of anti-influenza neuraminidase antibody using a peroxidase-linked lectin and microtitre plates coated with natural substrates. J Immunol Methods. 135 (1-2), 49-57 (1990).
- Couzens, L., et al. An optimized enzyme-linked lectin assay to measure influenza A virus neuraminidase inhibition antibody titers in human sera. J Virol Methods. 210C, 7-14 (2014).
- Eichelberger, M. C., et al. Comparability of neuraminidase inhibition antibody titers measured by enzyme-linked lectin assay (ELLA) for the analysis of influenza vaccine immunogenicity. Vaccine. 34 (4), 458-465 (2016).
- Westgeest, K. B., et al. Optimization of an enzyme-linked lectin assay suitable for rapid antigenic characterization of the neuraminidase of human influenza A(H3N2) viruses. J Virol Methods. 217, 55-63 (2015).
- Hoffmann, E., Neumann, G., Kawaoka, Y., Hobom, G., Webster, R. G. A DNA transfection system for generation of influenza A virus from eight plasmids. Proc Natl Acad Sci U S A. 97 (11), 6108-6113 (2000).
- WHO. Manual of Animal Influenza Diagnosis and Surveillance. , (2002).
- Cate, T. R., et al. A high dosage influenza vaccine induced significantly more neuraminidase antibody than standard vaccine among elderly subjects. Vaccine. 28 (9), 2076-2079 (2010).
- Couch, R. B., et al. Antibody correlates and predictors of immunity to naturally occurring influenza in humans and the importance of antibody to the neuraminidase. J Infect Dis. 207 (6), 974-981 (2013).
- Fritz, R., et al. Neuraminidase-Inhibiting Antibody Response to H5N1 Virus Vaccination in Chronically Ill and Immunocompromised Patients. Open Forum Infect Dis. 1 (2), (2014).
- Fries, L. F., Smith, G. E., Glenn, G. M. A recombinant viruslike particle influenza A (H7N9) vaccine. N Engl J Med. 369 (26), 2564-2566 (2013).
- Monto, A. S., et al. Antibody to Influenza Virus Neuraminidase: An Independent Correlate of Protection. J Infect Dis. 212 (8), 1191-1199 (2015).
- Fritz, R., et al. A vero cell-derived whole-virus H5N1 vaccine effectively induces neuraminidase-inhibiting antibodies. J Infect Dis. 205 (1), 28-34 (2012).
