Abstract
通过诱导适应性以及在血管内皮表型和基因表达的病理变化,从正常水平,并在血管生理学和病理生理学的血管流体剪切中发挥重要作用的型态偏差。特别是,周期性的,单向流动引起的剪应力的适应不良效果可以触发各种几个血管细胞类型,尤其是血管内皮细胞的影响。而现在来自不同解剖起源的内皮细胞已经培养的,深入的其对流体剪切反应受到阻碍剪切模型的相对复杂性分析( 例如,平行平板流动腔,锥板流速模型)。虽然这些都代表着优秀的方法,这种模式在技术上是复杂和缺点,包括相对漫长和复杂的设置时间,低表面积,泵和增压常常需要密封胶和密封垫要求受苦,创建对BOT的挑战^ h维护不育和无法运行多个实验。然而,如果流动和剪切的更高的吞吐量模型可用,对血管内皮的剪切响应更大的进步,在分子水平上尤其周期性剪切研究,可能会更迅速地先进。这里,我们描述了构造和使用剪切环:一种新颖的,简单到组装,和便宜的组织培养模型具有相对大的表面面积,可以轻松地允许在单向的,周期性的剪切应力在研究大量的实验重复的内皮细胞。
Introduction
流体剪切应力已经显示出调节内皮基因方案1 -通过顺式调节元件6的活化,组蛋白乙酰转移酶活7和剪切应力响应元件(SSRE)8 5。通过调节组织因子9和组织型纤溶酶原激活剂(tPA)10表达的剪切应力的影响对凝血内皮的贡献。剪应力也影响通过调节PDGF-B的合成和反应8血管生成11和血管重塑的控制权。内皮衍生的血管活性介质肾上腺髓质素,内皮素-1,尾加压素II和松弛素也被剪切机12调节。内皮型一氧化氮合成酶的生产和一氧化氮产生的转录都是剪切依赖性10。剪切还控制内皮的ICAM-1的表达13。流动引起的剪切应力,因此可以powerfuLLY影响种类繁多的内皮细胞反应。重要的是,血管脉动现在也出现在血管性痴呆14的正常血管老化和形式的病理生理学中发挥重要作用,甚至可能导致其它神经变性疾病,如多发性硬化15。
静脉和动脉内皮细胞固有地暴露于不同的血流动力学流动模式在体内 ,许多不同的内皮细胞的表型可以显示出16。取决于幅度和流量的周期性,对内皮细胞的作用可以包括炎性细胞活化和细胞凋亡,其可反映在基因或蛋白质表达17,18变化。研究内皮细胞对剪切现象,因此仍然被困难复杂, 在能够充分产生这样的剪切模式体外模型制作。
许多不同的experimental协议已被开发应用的流体剪切应力内皮细胞单层。一个最常用的系统是平行板流动室,它创建室19内均匀的层流- 21。蠕动泵通常连接到创建的周期性流,这可以概括通常在体内 22的许多地点找到的流动特性。另一种常见的建立使用'锥板“的模式,其中,流体剪切应力是由锥体23的旋转速度确定的。两个系统,和其他安排类似于它们,可能是很乏味的设置和需要,可以是相对昂贵并且不可访问的许多实验室的组件。
这些当前模型的另一个主要限制是,可以同时进行,每一个相对低的表面积复制研究的数量相对较少。这增加了时间和共这种方法的mplexity。因此,诱导单向和周期性剪切的理想模型可能之一,可以很容易地设置研究重复的较高的数值,每个具有相对较大的表面积。此外,上述模式需要一个相当复杂的设置,其可以是成本高昂的许多用户。可使用的基本材料实验室产生的流体剪切扰动模型可能有几个优点。
施加单向的,周期性的剪切应力的一种简单和非常经济的方法涉及的圆形菜定轨振荡器上24的位置。这个协议是很简单的,并且可以按比例增加,以实现高的数字研究复制,每个具有相对较大的表面面积,根据需要。但是,设在盘的中心的细胞暴露于不同的流动模式比沿周细胞,产生在相同的培养皿混合蜂窝的表型应答。
_content“>在当前的报告中,我们通过限制流量描述”剪切戒指',我们的模型创建单向和定期剪应力的建设和使用,设计的剪切环有效限制“混合”蜂窝剪切引起的表型通过内圈的位置的圆形培养皿至周边内途径。剪切环的结构和操作是简单和经济的,并且可以很容易地扩展使用广泛使用的组织培养供应以适应广泛范围的轨道摇床中。这模型可以在内皮细胞实验应用于生理和病理水平之内提供单向和周期性流动模式。Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
1.直径为150mm剪切戒指建设(图1)
注:剪切环可以被构造通过改变内外培养皿大小,导致与不同的总表面积,细胞产量的设备和开发的剪切力范围以创建许多不同的尺寸。本报告描述了150毫米的菜具有内部100mm培养皿为98 平方厘米( 图2)的总表面积相结合。
图1.剪切环组件。该图的顶部示出了部分组装的剪切环。通过3毫米的孔用移液管注入加入0.5ml二氯甲烷,如果一个紧密的密封还没有完全的内部和外部的菜肴之间形成。剪切环是通过将硅橡胶粘合剂的1mm厚的珠周围的内EDG密封关剪切环顶部电子。图的底部显示组装剪切环。蓝色代表镀内皮细胞的区域。外部和内部的红色箭头表示当置于轨道摇床剪切环内的剪切圈和媒体的轨道运动。 请点击此处查看该图的放大版本。
图2.表面三围为150mm的剪切环(未按比例)。前面板显示对响应的轨道旋转外圈液离心式换档。 请点击此处查看该图的放大版本。
- 通过生成创建剪切环建筑模板在与放置在150 mm直径圈的中心100毫米的内直径的演示软件150毫米外缘轮廓。打印在A4白纸一张的模板。
- 吸管的10ml二氯甲烷(二氯甲烷)至150毫米的玻璃培养皿。至关重要的是,该盘是玻璃,而不是聚苯乙烯(或其它的乙烯基塑料),二氯甲烷溶解大部分塑料并在这里用来加入塑料部件。
注意:使用手套所有建筑有足够的通风罩。二氯甲烷是接触刺激性和是肝毒性。 - 对齐150毫米的塑料培养皿到外切环模板。
- 使用旋转工具100毫米的菜的中心钻3毫米的孔。取下钻探产生的任何塑料刮屑。
- 同时用戴手套的手保持,反转和浸来自前一步骤到二氯甲烷池100毫米的培养皿的顶部边缘约3秒。
- 横贯FER的“湿”100mm皿边缘向下到150毫米盘的中央,仔细调整100毫米的菜到显着的模板。二氯甲烷将保险丝塑料,加入有100 mm和150 mm培养皿。轻轻顺时针旋转碟100mm的旋转和逆时针几次,以确保良好的附着力,以150毫米的菜。
注:应特别小心,以确保内部菜的外盘中央的正确对齐。偏心对准可能导致在在剪切环的不同位置的剪切应力的变化。小心不要让二氯甲烷到100mm皿的放置期间偶然滴到150毫米的培养皿的外轨道部分。这会熔化的底表面,其中的细胞将生长在塑料,产生不平坦的表面,可能会引起干扰。 - 一旦二氯甲烷已经干涸,翻转新绑定的培养皿中,仔细检查的接触点,以确保紧密的密封已被两个培养皿中之间形成。
- 如果一个密封还没有完全形成,通过3毫米的孔用移液管注入加入0.5ml二氯甲烷中。拿起菜并轻轻旋转,以允许二氯甲烷到达边缘。
注:如果旋转太快,二氯甲烷可以蔓延到150毫米的菜的外部分,表面细胞的地方将增长变形,破坏剪切环。泄漏的剪切戒指应该被丢弃。 - 通过采用硅橡胶密封胶的3毫米珠封锁在100毫米的菜孔。
- 使用配备有一台切割头旋转工具,切断一个15毫升的锥形聚苯乙烯组织培养试管前3 cm长的,造成至少1厘米以下帽管。抛光切割管的边缘,直到光滑和平坦使用切削头的平侧面。除去研磨产生的任何塑料刮屑。
- 跟踪切断的15毫升锥形管到150毫米的菜用记号笔,从盘的边缘约为0.5厘米处的盖子。钻一个孔的描画圆内,留下一个余量大致从圆的边缘1-2毫米。
- 将切断锥形管顶在钻孔。使用移液管,施加约250微升的二氯甲烷到锥形管的切断边缘与锥形管的150毫米盖结合。
- 通过施加硅橡胶密封剂中的1毫米厚的珠周围的顶部培养皿的内边缘密封150毫米盖到150毫米的菜。
2.剪切戒指的消毒
- 吸取约10毫升磷酸盐通过15毫升锥形管口缓冲液进入新成立的剪环。漩涡周围去除剪切环内的任何杂物。用巴斯德吸管/真空抽吸器除去磷酸盐缓冲盐水。
- 直到碎片被删除重复上述步骤。
- 要STERI丽泽剪切环,使用用紫外线照射70%的乙醇漂洗的组合。
- 拧开盖子通风,吸管大约10mL,70%的乙醇通过接入端口,并重新拧紧瓶盖。旋转和剪切环多次翻转,确保剪切环的内部被充分洗涤。
- 在通风橱,吸出多余的70%的乙醇。用喷雾瓶,彻底喷用70%乙醇在盖和进入端口。
- 将下的组织培养罩内的紫外线辐射剪切环和帽直至完全干燥。
- 干燥后,拧在室温下回到了帽和消毒店剪戒指,直到在细胞培养电镀。
3.剪应力研究
- 板下通常使用1标准细胞培养协议消毒剪切环内皮细胞:转化的内皮细胞系4分流比。
注:大鼠视网膜microv在商业上获得ascular内皮细胞。人脑内皮细胞(hCMEC / D3)细胞提供从皮埃尔 - 奥利弗博士Couraud(INSERM,法国)一份厚礼,并在完全内皮基础培养基(EBM)进行培养。 - 允许文化中流动的研究开始之前达到汇合。 USE 30 ml的组织培养基(10%胎牛血清,Dulbecco改良的Eagle与1%青霉素/链霉素/两性霉素培养基)。改变细胞培养基,每3天,并保持细胞在37℃用7.5%的CO 2和92.5%的室内空气。
- 放置在孵化器的轨道摇床。
注:轨道摇床通常是重(> 10公斤)。放置培养箱的底部货架上的轨道摇床,以尽量减少货架应力和振动。 - 将实验剪切环对轨道振动筛。将静态对照组剪切环同样的培养箱内。
- 在SH内估计最大剪应力耳环与方程哪里是旋转的轨道摇床半径(厘米), 为介质的粘度(泊), 是介质的密度(以g / ml)和是旋转频率(旋转/秒)24。
- 发起于轨道摇床旋转设置到所需的转速( 例如,90转),而使剪切环上的振动筛剪切应力应用程序( 例如 ,72小时)的所需的持续时间。
注:轨道振动器能够产生的热量,所以培养箱温度最初应监测,以确保37℃保持整个实验的持续时间。另外,S听到环可转移到环境室( 例如 ,模块化培养箱室),然后置于旋转培养箱内。 - 后的细胞层被暴露于剪切为所需的时间长度,从孵化器中移除剪切环。拉断的剪切环盖和检索单元和/或媒体进行检查所需端点分析( 例如,蛋白质印迹,荧光激活细胞分选等 )25。
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Representative Results
在这里,我们提出从两个hCMEC / D3脑内皮细胞和大鼠视网膜微血管内皮细胞单层,在剪切环培养代表性的结果。
允许hCMEC / D3脑内皮细胞单层生长在完整的EBM至汇合后,剪切环被放置在定轨摇床上72小时。从步骤3.5使用等式,计算出的最大剪应力约为2.8达因/厘米2(与参数 = 0.95厘米, = 0.0101风度, =0.9973克/ ml的24, = 1.5转/秒 )。我们已发现,这些内皮细胞单层有时表现出对准平行于周期性流( 图3)的方向上,虽然这不是均匀地观察到,因为电池层通常具有优良的粘合性剪切环表面在整个研究。
允许后大鼠视网膜微血管内皮细胞单层生长在完整大鼠内皮细胞培养基,包括EGF / VEGF的生长因子补充至汇合,剪切环被放置在定轨摇床上72小时。从步骤3.5使用等式,计算出的最大剪应力为约12达因/厘米2(与参数 = 0.95厘米, = 0.0101风度,尔斯/ ftp_upload / 54632 / 54632eq4.jpg“/> =0.9973克/ ml的24, = 4转/秒)。 图4示出,相对于β肌动蛋白的上样对照,有从内皮细胞表面的血小板内皮细胞粘附分子(PECAM-1 / CD31)的大量显著损失。
PECAM-1是一种完整的膜蛋白,其是一个包含免疫受体酪氨酸依赖性抑制基序或'ITIM'26的免疫球蛋白(Ig)-superfamily的成员。 PECAM-1不仅表达在内皮细胞上,但也造血细胞上发现的。 PECAM-1起着内皮细胞 - 细胞粘附,白细胞交界轮回,细胞信号传导显著角色,和重要的是,剪切应力的机械性转导。 PECAM-1的在感应剪切应力作用是血管endotheli的功能临界人的细胞和动态平衡17。当内皮单层暴露于剪切应力,PECAM-1直接响应通过改变其酪氨酸磷酸化在其上被施加的机械力,和ERK1 / 2的信号级联27的后续活化。此外,PECAM-1-eNOS的复杂的关联是通过干扰在剪切应力28中断。因此,PECAM-1使血管内皮细胞以感测在流体剪切应力的力的变化,可导致血管壁29的反应性扩张。
这些数据支持该模型显示出血管内皮细胞通过下调的重要交界和粘合剂的决定因素,其介导细胞间的接触,以及经血管细胞交换到曝光响应周期性的,单向的流体剪切力。
632fig3.jpg“/>
在一个剪切环 图3. 脑内皮细胞形态。hCMEC / D3endothelial细胞单层的剪切环48h后定期流体剪切力或静态曝光的外观。文化的对齐并不总是遵守平行于流动方向(箭头所示)。 请点击此处查看该图的放大版本。
图4. 细胞对周期性剪切。大鼠视网膜微血管内皮细胞单层剪切戒指培养 显示出在/ CD31相对PECAM1减少对β-肌动蛋白(每个n = 3,学生非配对t检验,* -p <0.05,误差条参考标准偏差),72小时的定期流体乳木果的R IN剪切环。
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Discussion
对暴露的内皮细胞剪切剪切环系统的建设是一个简单的方法来进行剪切应力的研究。然而,有一些是获得卓越的剪切戒指和更好的结果的关键几步之遥。一个完整的密封应在内和外环,以防止介质从泄漏可能创建样品之间不一致的剪切应力之间进行。如果完整的密封不进行,二氯甲烷最小量应通过在内圈的孔被加入到内和外碟用移液管之间的边缘。轻轻转动该环应该允许二氯甲烷以形成一个完整的密封。此外,塑料刮屑从切削无意中产生可以存在剪切环的轨道上,所以冲洗出来后施工剪切环应该删除任何碎片可能细胞生长产生不利的影响,并给出不一致的剪切应力的应用。
在S在文章中描述听到环体积相当庞大,导致了大批量每个样品的输出。然而,更小的版本,可以使用较小的培养皿来构造( 如 100毫米的培养皿用60毫米插入)。构造多个较小剪切环可以允许较高的数字的研究复制与其他方法相比时,同时仍保持每个样品相对大的流体体积和表面积。
使用剪切环时的几个问题已悉。第一,一些轨道摇床产生过量的热,并且一些孵化失败来控制这个温度上升。这可以通过旋转器的适当的选择和使用非水夹套保温箱,其更容易地进行热交换的被避免。使用剪切戒指的时候,尤其是以下装配在露天环境中培养污染是另一个潜在的担忧。剪切戒指使用前必须彻底消毒。
等 )以产生期望的周期性的,单向的剪切应力。
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Disclosures
J.汶禹云已经从吕秀莲尼切洛基础研究基金。 J.亚历山大·史蒂芬拥有神经内科,LSUHSC-S系研究支持。
Acknowledgments
作者要感谢克里斯托弗先生阮亚伦亨特和什里夫波特的Jumpstart,SMART和Biostart培训计划的援助以及生物物理,什里夫波特,LA的路易斯安那百年学院中文系。
Materials
Name | Company | Catalog Number | Comments |
100 x 20 mm plastic tissue culture dish | Corning | 430167 | The dishes must be polystyrene |
150 x 25 mm plastic tissue culture dish | Corning | 430599 | The dishes must be polystyrene |
150 mm glass Petri dish | Fisher | 3160150BO | |
15 ml polystyrene tissue culture plastic tubes | Falcon | 352099 | |
Methylene chloride | Sigma-Aldrich | D65100 | |
silicone rubber sealant | DAP | 7079808641 | |
ethanol | Decon | 2701 | |
3 ml transfer pipette | Becton-Dickinson | 357524 | |
printer paper | |||
scissors | |||
gloves | |||
rotary tool and set | Dremel | 4000-6/50 | |
rotary tool cutting head | Dremel | EZ476 | |
rotary tool drill head | |||
distilled water | |||
orbital shaker | VWR | 57018-754 | |
incubator | |||
Rat retinal microvascular endothelial cells | Cell Biologics | RA-6065 |
References
- Resnick, N., Gimbrone, M. A. Hemodynamic forces are complex regulators of endothelial gene expression. FASEB J. 9 (10), 874-882 (1995).
- Malek, A. M., Izumo, S. Control of endothelial cell gene expression by flow. J Biomech. 28 (12), 1515-1528 (1995).
- Ando, J., Kamiya, A. Flow-dependent Regulation of Gene Expression in Vascular Endothelial Cells. Jpn Heart J. 37 (1), 19-32 (1996).
- Resnick, N., Yahav, H., et al. Endothelial Gene Regulation by Laminar Shear Stress. Adv Exp Med Biol. 430, 155-164 (1997).
- Gaucher, C., et al. In vitro impact of physiological shear stress on endothelial cells gene expression profile. Clin Hemorheol Mico. 37 (1-2), 99-107 (2007).
- Fisslthaler, B., et al. Identification of a cis -Element Regulating Transcriptional Activity in Response to Fluid Shear Stress in Bovine Aortic Endothelial Cells. Endothelium-J Endoth. 10 (4-5), 267-275 (2003).
- Chen, W., Bacanamwo, M., Harrison, D. G. Activation of p300 Histone Acetyltransferase Activity Is an Early Endothelial Response to Laminar Shear Stress and Is Essential for Stimulation of Endothelial Nitric-oxide Synthase mRNA Transcription. J Biol Chem. 283 (24), 16293-16298 (2008).
- Sumpio, B. E., et al. Regulation of PDGF-B in Endothelial Cells Exposed to Cyclic Strain. Arterioscl Throm Vas. 18 (3), 349-355 (1998).
- Yang, Y., et al. Triplex-forming oligonucleotide inhibits the expression of tissue factor gene in endothelial cells induced by the blood flow shear stress in rats. Acta Pharm Sinic. 41 (9), 808-813 (2006).
- Sumpio, B. E., Chang, R., Xu, W. -J., Wang, X. -J., Du, W. Regulation of tPA in endothelial cells exposed to cyclic strain: role of CRE, AP-2, and SSRE binding sites. Am J Physiol. 273 (5 Pt 1), C1441-C1448 (1997).
- Silberman, M., et al. Shear stress-induced transcriptional regulation via hybrid promoters as a potential tool for promoting angiogenesis. Nato Adv Sci Inst Se. 12 (3), 231-242 (2009).
- Dschietzig, T., et al. Flow-induced pressure differentially regulates endothelin-1, urotensin II, adrenomedullin, and relaxin in pulmonary vascular endothelium. Biochem Biophys Res Commun. 289 (1), 245-251 (2001).
- Nagel, T., Resnick, N., Atkinson, W. J., Dewey, C. F., Gimbrone, M. A. Shear stress selectively upregulates intercellular adhesion molecule-1 expression in cultured human vascular endothelial cells. J Clin Invest. 94 (2), 885-891 (1994).
- Bateman, G. A., Levi, C. R., Schofield, P., Wang, Y., Lovett, E. C. The venous manifestations of pulse wave encephalopathy: windkessel dysfunction in normal aging and senile dementia. Neuroradiology. 50 (6), 491-497 (2008).
- Juurlink, B. H. J. Is there a pulse wave encephalopathy component to multiple sclerosis. Curr Neurovasc Res. 12 (2), 199-209 (2015).
- Topper, J. N., Gimbrone, M. A. Jr Blood flow and vascular gene expression: fluid shear stress as a modulator of endothelial phenotype. Mol Med Today. 5 (1), 40-46 (1999).
- Tzima, E., et al. A mechanosensory complex that mediates the endothelial cell response to fluid shear stress. Nature. 437 (7057), 426-431 (2005).
- Li, Y. -S. J., Haga, J. H., Chien, S. Molecular basis of the effects of shear stress on vascular endothelial cells. J Biomech. 38 (10), 1949-1971 (2005).
- Reinhart-King, C. A., Fujiwara, K., Berk, B. C. Physiologic Stress-Mediated Signaling in the Endothelium. Method Enzymol. 443, 25-44 (2008).
- Frangos, J. A., McIntire, L. V., Eskin, S. G. Shear stress induced stimulation of mammalian cell metabolism. Biotechnol Bioeng. 32 (8), 1053-1060 (1988).
- Lane, W. O., et al. Parallel-plate Flow Chamber and Continuous Flow Circuit to Evaluate Endothelial Progenitor Cells under Laminar Flow Shear Stress. J Vis Exp. (59), (2012).
- Reinitz, A., DeStefano, J., Ye, M., Wong, A. D., Searson, P. C. Human brain microvascular endothelial cells resist elongation due to shear stress. Microvasc Res. 99, 8-18 (2015).
- Dewey, C. F., Bussolari, S. R., Gimbrone, M. A., Davies, P. F. The Dynamic Response of Vascular Endothelial Cells to Fluid Shear Stress. J Biomed Eng. 103 (3), 177 (1981).
- Dardik, A., et al. Differential effects of orbital and laminar shear stress on endothelial cells. J Vasc Surg. 41 (5), 869-880 (2005).
- Honda, S., et al. Ligand-induced adhesion to activated endothelium and to vascular cell adhesion molecule-1 in lymphocytes transfected with the N-formyl peptide receptor. J Immunol. 152 (8), 4026-4035 (1994).
- Watt, S. M., Gschmeissner, S. E., Bates, P. A. PECAM-1: its expression and function as a cell adhesion molecule on hemopoietic and endothelial cells. Leukemia Lymphoma. 17 (3-4), 229-244 (1995).
- Fujiwara, K. Platelet endothelial cell adhesion molecule-1 and mechanotransduction in vascular endothelial cells. J Intern Med. 259 (4), 373-380 (2006).
- Dusserre, N. PECAM-1 Interacts With Nitric Oxide Synthase in Human Endothelial Cells: Implication for Flow-Induced Nitric Oxide Synthase Activation. Arterioscl Throm Vas. 24 (10), 1796-1802 (2004).
- Bagi, Z. PECAM-1 Mediates NO-Dependent Dilation of Arterioles to High Temporal Gradients of Shear Stress. Arterioscl Throm Vas. 25 (8), 1590-1595 (2005).