Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
JoVE Journal Developmental Biology
Click here for the English version

Developmental Biology

Выделение мыши Эндометриальный эпителиальных и стромальных клеток для Published: March 2, 2017 doi: 10.3791/55168
Automatic Translation
*1, *1, 1
1Department of Development and Regeneration, Katholieke Universiteit Leuven (KU Leuven)
* These authors contributed equally

Summary

Это исследование представляет собой стандартизацию и апробацию способ выделения и культуры первичных стромальных мыши внутриматочной и эпителиальных клеток, которые могут быть использованы в системе совместного культивирования для изучения в пробирке decidualization.

Abstract

Decidualization является прогестерон-зависимый процесс дифференциации эндометрия стромальных клеток и является необходимым условием для успешной имплантации эмбриона. Хотя многие были предприняты усилия, чтобы выявить основные механизмы decidualization, точная передача сигналов между эпителиальными клетками, которые находятся в контакте с эмбрионом и нижележащих стромальных клеток еще недостаточно изучена. Поэтому, изучая decidualization таким образом, который принимает как эпителиальные и стромальные клетки во внимание могли бы улучшить наши знания о молекулярных деталях decidualization. С этой целью в естественных условиях модели искусственного decidualization являются физиологически наиболее актуальными; Тем не менее, манипулирование межклеточной коммуникации ограничено. В настоящее время в пробирке культур эндометрия стромальных клеток используются для исследования модуляции decidualization нескольких сигнальных молекул. Обычно стромальные клетки человека или мыши являются внутриматочныеиспользуемый. Тем не менее, наличие образцов человека очень часто ограничены. Кроме того, применение мышиных тканей сопровождается разнообразием в способе культивирования. Данное исследование представляет собой проверенную и стандартизированный метод для получения чистого Эндометриальный эпителиальной клетки (ЕЭС) и стромальных клеток (ESC) с использованием культуры взрослых интактных мышей, получавших эстроген в течение трех дней подряд. Протокол оптимизирован для повышения выхода, жизнеспособности и чистоты клеток и затем было продлено с целью изучения decidualization в сокультивирования ЭВП и ESC. Эта модель может быть пригодным для использования важность обоих типов клеток в decidualization и оценить вклад значащих сигнальных молекул, секретируемых ЕЭС или ESC во время межклеточной коммуникации.

Introduction

Человек эндометрий внутренней оболочки матки и проходит ежемесячные циклы пробоя и ремонта в качестве подготовки к возможной беременности. Он состоит из одного слоя эпителиальных клеток, выстилающих маточные люмена и основной стромы, который изменяется по толщине в зависимости от колебаний гормонов яичника эстрогена и прогестерона. Во время лютеиновой фазы, постовуляторной прогестерон всплеск будет индукции дифференцировки клеток эндометрия стромальных в более крупные, круглые децидуальных клеток, процесс , называемый decidualization 1, 2. У человека, это явление происходит спонтанно формировать predecidua, но становится более выраженным при имплантации эмбриона. Функциональная следствием decidualization является то, что матка скоротечно становится восприимчивым к имплантации эмбриона. Этот интервал обозначен как «окна имплантации». В ранний период имплантации эмбриона, тем decidualized еndometrial стромальные клетки , окружающие имплантацию эмбриона обеспечит барьер для предотвращения прохождения вредных веществ к зародышу 3. Во время беременности, это децидуальная обеспечит питательные вещества для развивающегося плода , прежде чем плацентацией произошло, и позже образуют материнскую часть плаценты 4.

Этические и практические соображения ограничивают конструкцию человеческих исследований, чтобы исследовать процесс decidualization и побудили использование животных моделей. Будучи членом hemochorial плацентацией группы, эндометрий грызунов также претерпит decidualization до начала плацентацией 5. У грызунов, тем не менее, начало процесса decidualization зависит от наличия бластоцист в маточной полости, что свидетельствует о том , что дополнительный стимул необходимо вызвать децидуальной реакции 6. Это предполагает сложную связь между гое внутриматочные эпителиальные клетки, которые имеют непосредственный контакт с бластоцисты, а также лежащие в их основе стромальных клеток. Тем не менее, decidualization может быть искусственно с помощью стимулов, как механического натирания или закапывания масла в гормонально загрунтованную матки. Хотя исследования в естественных условиях с использованием искусственных моделей decidualization позволили нам улучшить наши идеи в сложном процессе сигнализации decidualization, механистической углубленных исследований, например, исследование непременном связи между эпителиальных и стромальных клеток, ограничены. Таким образом, в пробирке исследования decidualization могут быть использованы для манипулирования важных путей и изучать фундаментальные процессы. С этой целью, первичные внутриматочные культуры стромальных клеток могут быть созданы из человека или грызуна эндометрии. Использование грызунами соглашается с использованием генетически модифицированных животных с целью изучения роли конкретного интересующего белка в процессе decidualization. Тем не менее, незрелые, prepuberти мышей часто используются для того, чтобы избежать осложнений эстрального цикла, в то время как в других случаях Матки собраны из всех фаз эстрального цикла, что приводит к неоднородности в культурах. Кроме того, процесс decidualization был изучен в различных протоколах, например, по формуле (I) , дополняющих гормоны (эстроген, прогестерон или циклического аденозинмонофосфата (цАМФ)) в культуральной среде, либо (II) выделение децидуальными клеток от мышей в день 4.5 (псевдо) беременности, которые требуют дополнительной необходимости проверки зажигания и вазэктомии мужчин. Эти ограничения показывают необходимость стандартизированного метода для изучения в лабораторных условиях decidualization. В этом исследовании, физиологическая модель для изучения decidualization в пробирке , начиная с взрослого, будут представлены не являющиеся (псевдо) беременных мышей. В этом методе в день инъекции 17 & beta; эстрадиола (Е2) будет индуцировать пролиферацию клеток эндометрия, что приводит к увеличению выхода гомогенной и рпопуляции клеток Юр. Кроме того, использование системы сокультивировани позволяет изучение эпителиального-стромальных перекрестных помех и способность манипулировать процесс decidualization на разных уровнях.

Protocol

AlexaFluor

Все эксперименты на животных для этого исследования были одобрены этическим комитетом по рассмотрению действия KU Leuven (Бельгия) (Проект Р174 / 2013). Мышей содержали в стандартных условиях, при свободном доступе к пищевым гранулах и водопроводной воды, и выдерживают в контролируемых условиях (23 ± 1,5 ° С, относительная влажность 40 - 60%, 12/12 цикл свет / темнота).

1. Мыши

  1. Используйте имеющийся в продаже штамм мыши (т.е. C57BL / 6, женщина 8 - 12 недель). Как правило, 4 - 5 мышей даст соответствующее количество клеток для дальнейших экспериментов.
  2. Вводят интактных мышей подкожно 100 мкл 17 & beta-эстрадиола (Е2) раствора (100 нг / 100 мкл) в течение 3 последовательных г до выделения для того, чтобы стандартизировать фазы эстрального цикла животных и индуцировать пролиферации внутриматочной клетки. Необходимость проверки фазы цикла мышей перед запуском протокола преодолимо BeПричина 3 D 'лечения эстрадиола.

2. Подготовка

  1. Приготовьте раствор 100 нг / 100 мкл E2 в арахисовом масле. Для инъекций пяти мышей (как описано в разделе 1.2), количестве 1,5 мл требуется.
    1. Растворите 1 мг E2 в 1 мл этанола, чтобы иметь исходного раствора 1 мг / мл.
    2. Развести этот маточный раствор 1: 1000 в арахисовом масле.
  2. Сделать 500 мл Хэнкса сбалансированный солевой раствор (HBBS) 1x, дополненных 100 ед / мл пенициллина и 100 мкг / мл стрептомицина (далее упоминается как HBSS +).
  3. Сделать 500 мл отфильтрованной мыши Эндометриальный стромальных клеток (МЕСК) среда для культивирования МЕСК: среда Игла в модификации Дульбекко / питательной смеси F12 (DMEM / F12) с фенолом красным, L-глютамин и 4- (2-гидроксиэтил) пиперазин-1-этансульфоновой кислоты, N - (2-гидроксиэтил) пиперазин - N '- (2-этансульфоновой кислоты) (HEPES) , содержащей 10% FBS, 0,5 мкг / мл амфотерицина В, и 100 мкг / мл гентамицина (фуrther называют MESC среды).
  4. Сделать 500 мл фильтрованной 2% МЕСК среды к культуре МЕСК во время decidualization: DMEM / F12 с фенолом красным, L-глютамина и HEPES, содержащим 2% FBS, 0,5 мкг / мл амфотерицина В, и 100 мкг / мл гентамицина.
  5. Приготовьте 500 мл отфильтрованной мыши Эндометриальный эпителиальные клетки (MEEC) среда: DMEM, содержащей 10% FBS, 0,5 мкг / мл амфотерицина В, 100 мкг / мл гентамицина, 25% MCDB-105 среде и 5 мкг / мл инсулина (далее в качестве MEEC среды).
  6. Подготовка покровные поли-L-лизином (ФАПЧ) покрытие для МЕСК культуры.
    1. Растворите 25 мг ФАПЧ в 250 мл дистиллированной воды. Фильтр раствора с использованием фильтра 0,22 мкм.
    2. Добавить стерильные покровные в 12-луночный планшет. Добавить 300 мкл растворенного ФАПЧ на покровные.
    3. Удалите раствор через 30 мин инкубации. Пластины можно хранить при температуре 4 ° С до дальнейшего использования (до 1 - 2 месяца).
  7. Приготовьте 10 мг / мл маточного раствора OF коллагеназы типа IA и хранить аликвоты 300 мкл при -20 ° С. Фильтр перед использованием.

3. Подготовка Требуемые 24 ч до изоляции

  1. Подготовка коллагена покровные покрытием для MEEC культуры.
    1. Готовят раствор кислоты 0,02 М уксусной в дистиллированной воде (1 мл на покровное).
    2. Добавьте 150 мкл коллагена в 12 мл 0,02 М уксусной кислоты с получением конечной концентрации 50 мкг / мл.
    3. Добавить стерильные покровные в 12-луночный планшет.
    4. Добавить 1 мл раствора коллагена (см 3.1.2).
    5. Выдержите O / N (минимум 12 ч) при 37 ° С.
      Во время изоляции:
    6. Удалите раствора коллагена выключения покровные путем всасывания и дайте ему воздушно-сухой в стерильной среде (в шкафу ламинарного потока).
    7. Промыть покровные дважды фосфатно-буферном солевом растворе (PBS).
  2. Готовят 2,5% раствор панкреатина путем добавления 0,25 г панкреатина в 15 мл каноническому пробирку, содержащую 10 млHBSS +. Взболтать (200 оборотов в минуту) раствора при температуре 37 ° С в течение 1 ч для увеличения растворимости. Хранить при температуре 4 ° С.

4. Выделение и культивирование мыши Эндометриальный эпителиальных клеток (MEEC) и мышь Эндометриальный Стромальные клетки (MESC)

  1. Добавьте 25 мг трипсина в пробирку 15 мл, содержащего 2,5% раствор панкреатина (см 3.2), чтобы в конечном итоге с окончательным раствором, содержащим 0,25% трипсина (далее, как MESC переваривания смеси).
  2. Выделение маток
    1. Проверьте фазу цикла животных с вагинального мазка.
      1. Задержите животное и промойте влагалище осторожно с помощью 50 мкл PBS 3 - 5 раз.
      2. Собирают окончательный флеш на предметном стекле.
      3. Осмотрите материал под ярким поле микроскопа с использованием объектива 10X или 20X.
      4. Используйте только мышей, которые находятся в фазе течки. Эта стадия характеризуется наличием ороговевших эпителиальных клеток в вагинальных лаважа (рис 1
    2. Эвтаназии животных с помощью соответствующего метода , такие как цервикальной дислокации или СО 2 наркоза индуцированного.
    3. Спрей туш с 70% этанола с целью получения стерильной среде.
    4. Использование стерильных хирургических инструментов, откройте живот и раздвинуть кишечник в сторону, чтобы визуализировать оба рога матки.
    5. Захватите рог матки на самом дальнем конце под маточной трубе. Рассеките рога матки из фаллопиевых труб и удаления жировой и соединительной ткани. Вырежьте рог на дальнем конце над телом матки и поместить его в 35 мм чашки Петри с 3 мл HBSS +.
      1. Повторите этот шаг для другого рога и для других животных, пока все рога матки не собираются.
    6. Очистите рога матки (в HBSS +) далее под стереоскоп и удалить все остатки жировой или соединительной ткани.
    7. Вырезать рога матки открытые в продольном направлении, чтобы разоблачить просвет матки и заменить тысе рог в новой чашки Петри со свежим HBSS +.
    8. Перенесите все рога матки к 15 мл пробирку, содержащую панкреатин и трипсин.
    9. Выдержите в горизонтальном положении в течение 60 мин при температуре 4 ° С на орбитальном шейкере (50 оборотов в минуту).
    10. Выдержите в горизонтальном положении в течение 45 мин при 23 ° C (RT), без встряхивания.
    11. Выдержите в горизонтальном направлении в течение 15 мин при 37 ° С (водяная баня), без тряски.
    12. В то же время сделать Переваривание смеси МЕСК путем растворения 300 мкл 1 мг / мл коллагеназы запаса в 2,7 мл 0,05% раствора трипсина-этилендиаминтетрауксусной кислоты (ЭДТА).
      Примечание: С этого момента, дальнейшие шаги изоляции выполняются в стерильной среде под шкафом ламинарного потока.
  3. Mouse Эндометриальный эпителиальной клетки (MEEC) Культура
    1. Через 2 ч инкубации, осторожно вылить раствор супернатанта.
    2. Передача матках в чашку Петри, содержащую холодную MEEC среду и инкубируют в течение 5 мин для того, чтобы инактивировать трипсинМероприятия.
    3. Передача матках в пробирку 15 мл раствора, содержащего 3 мл холодного HBSS +.
    4. Vortex в течение 10 секунд, чтобы освободить эпителиальные листов.
    5. Промыть матках в чистую чашку Петри с 3 мл HBSS +.
    6. Повторите шаг 4.3.2 - 4.3.4, чтобы получить в общей сложности три суспензий, содержащих эпителиальные листов.
    7. Передача матках в MESC переваривания смеси и инкубировать в течение 30 мин при 37 ° C при встряхивании (200 оборотов в минуту) (перейти к шагу 4.4 для дальнейшей изоляции MESC).
    8. Восстановление эпителиальные листов с помощью пипетки три клеточные суспензии осторожно на нейлоновую сетку 100 мкм для того, чтобы удалить остатки ткани.
    9. Центрифуга собранной клеточной суспензии при 500 мкг в течение 5 мин.
    10. Ресуспендируют осадок в 12 мл MEEC среды и хорошо перемешать.
    11. Settle раствор в течение 5 мин, чтобы отделить оставшиеся MESC с помощью гравитационного оседания.
    12. Осторожно снять верхние 2 мл с использованием 5 мл пипетки.
    13. Центрифуга suspensio клетокп при 500 мкг в течение 5 мин.
    14. Ресуспендируют в MEEC среде, осторожно пипеткой вверх и вниз.
    15. Пластина клеток на коллагене покрытием покровные в желаемой плотности для дальнейших экспериментов (фиг.2А).
    16. Инкубируйте клетки при 37 ° С в атмосфере 5% СО 2 инкубаторе в течение минимум 12 часов.
      Примечание: Для получения иммунным окрашиванием или функциональных экспериментов, таких как флуоресцентных изображений кальция, рекомендуется для высевания клетки непосредственно на покровных стеклах, в то время как затравки в 6-луночный планшет, рекомендуется, когда РНК или белка изоляции желательно. Выделение мышиных эндометриальных стромальных клеток делится на два этапа, как чистота клеток после только одного переваривания может быть недостаточным. Матки переваривается дважды для оптимального восстановления сил клеток и чистоты. В обоих раундах технические мероприятия идентичны. Клетки, собранные в обоих раундах могут быть сохранены для дальнейших экспериментов, по желанию исследователя.
  4. Эндометриальный ул мышиOMAL Cell (MESC) Культура: 1 - й тур
    1. Перед началом первого раунда переваривания, подготовить второй переваривания смеси путем растворения 300 мкл 1 мг / мл коллагеназы складе в 2,7 мл 0,05% раствора трипсина-ЭДТА. Эта смесь необходимо на этапе 4.4.8.
    2. Готовят три небольшие чашки Петри с холодной (4 & deg; С) HBSS + и 3 × 15 мл пробирки с 3 мл МЕСК среды (трубка X1, X2 и X3).
    3. Через 30 мин инкубации, трясти матках раствор, содержащий трипсин медленном огне в течение 10 сек. MESC клетки будут отделяться от ткани матки и будет оставаться в растворе трипсина.
    4. Передача матках на первую чашку Петри, содержащую 3 мл холодного (4 ° С) HBSS + и хорошо промыть.
    5. Добавьте 3 мл МЕСК среды в трубе, первоначально содержащей рога матки (труба на этапе 4.4.3), чтобы ингибировать активность трипсина.
    6. Передача маток из чашки Петри с холодным (4 ° С) HBSS + к трубке X1, содержащую 3 мл мЭСК среды и слегка встряхнуть в течение 10 секунд. Повторите шаги 4.4.4 (перевод на чашку Петри с холодным (4 ° С) HBSS +) и 4.4.6 (переход к трубки X2 и X3) дважды.
      Примечание: В конце концов, этот протокол приведет к 4 суспензии клеток: одна трубка, содержащая раствор трипсина и 3 пробирки с средой, содержащей MESC MESC (трубки X1, X2 и X3).
    7. Передача Матки в новом МЕСК пищеварения, как описано на стадии 4.4.1 и инкубировать в течение 30 мин при температуре 37 ° С, в вертикальном положении.
    8. Сбор стромальных клеток путем пропускания четыре клеточные суспензии через нейлоновую сетку 40 мкм. Ополосните сетку с дополнительными 5 мл МЕСК.
    9. Центрифуга клеточной суспензии при 500 мкг в течение 7 мин.
    10. Ресуспендируют осадок в MESC и пластины на покровные ФАПЧ покрытием для дальнейших экспериментов с желаемой плотности.
    11. Выдержите в течение как минимум 4 - 6 ч или O / N при 37 ° С в 5% CO 2 инкубаторе.
  5. Mouse Эндометриальный стромальных клеток (MESC) Культура: 2 - й раунд <ол>
  6. Готовят три небольшие чашки Петри с холодной (4 & deg; С) HBSS + и 3 × 15 мл пробирки с 3 мл среды МЕСК (трубки y1, y2 и y3).
  7. Повторите шаги 4.4.3 - 4.4.7.
  8. Перенести последнюю клеточную суспензию вместе с маток к нейлоновой сеткой 40 мкм.
  9. Сбор стромальных клеток, передавая содержание трубки Y1, Y2 и Y3 через нейлоновую сетку. Ополосните сетку с дополнительными 5 мл МЕСК.
  10. Центрифуга клеточной суспензии при 500 мкг в течение 7 мин.
  11. Ресуспендируют осадок в среде MESC и пластины на покровные ФАПЧ покрытием для дальнейших экспериментов (рис 2b).
  12. Инкубируют в течение как минимум 4 - 6 ч при температуре 37 ° С с 5% CO 2.
    Примечание: Для получения иммунным окрашиванием или функциональных экспериментов, таких как флуоресцентных изображений кальция, рекомендуется для высевания клеток на покровных стеклах, в то время как затравки в 6-луночный планшет, рекомендуется, когда РНК или белка изоляции желательно.

5. Виментин/ Цитокератин Двойной Окрашивание для проверки Pure MEEC и MESC культур

  1. Семенной клеток на покровные.
  2. Промыть 3 х 5 мин с ФБС, содержащим кальций и магний на орбитальном шейкере (50 оборотов в минуту).
  3. Зафиксировать клетки , 4% параформальдегида (PFA) (Внимание!) В течение 10 мин, а не на шейкере.
  4. Промыть 3 раза с PBS без кальция и магния на качалке (50 оборотов в минуту).
  5. Клетки проницаемыми с 0,2% Triton X-100 в течение 10 мин на качалке (50 оборотов в минуту).
  6. Промыть 3 раза с PBS на шейкере.
  7. Блок с 5% сыворотки козьего (GS) в PBS в течение 2 ч на качалке (50 оборотов в минуту)
  8. Инкубируйте клетки с моноклональными кроличьей античеловеческой виментину (1: 500) и мышиных моноклональных антител против человеческого pancytokeratin (1: 1000) при 4 ° С на качалке (50 оборотов в минуту). Антитела разводили в PBS с 0,5% GS.
  9. Вымойте 3x с PBS на качалке (50 оборотов в минуту).
  10. Инкубируйте клетки с вторичными антителами (1: 1000 в 0,5% GS) Alexa Fluor 488-сопряженного анти-кроличьего IgG и Alexa Fluor 488-conjuзакрытого типа IgG анти-мыши на шейкере.
  11. Промыть 3 раза с PBS на шейкере.
  12. Mount сползает с водной монтажной средой, содержащей DAPI и сухой O / N.
  13. Печать слайдов с лаком для ногтей и держать на 4 ° C для дальнейшего использования (рис 2а, б).

6. В Vitro Decidualization в системе сокультивирования

Примечание: От четырех до пяти животных требуется установить систему сокультивирования в 24-луночного планшета. Продолжить со следующим протоколом в стерильной среде, предпочтительно в камере с ламинарным потоком.

  1. Подготовка вставок клеточных культур при центрифугировании и / или инкубационных стадий эпителиальной выделения клеток (как это описано в разделе 4.3) в качестве дополнительного 24-луночного планшета.
    1. Добавить 200 - 400 мкл МЕСК среды в желаемое количество лунок в 24-луночный планшет.
    2. Поместите вставки в укажи 24 скважин с использованием стерильного пинцета.
  2. Ресуспендируют осадок MEEC(Этап 4.3.14) в MEEC среде и разделите над вставками (рабочий объем: 150 - 300 мкл на вставке). Культуры клеток при 37 ° С в 5% CO 2 инкубаторе.
  3. Семенной стромальных клеток в другой 24-луночный планшет (совместим со вставками клеточных культур) после второго раунда выделения стромальных клеток (этап 4.5.6). Используйте рабочий объем 400 мкл суспензии клеток на лунку.
  4. Разрешить стромальные клетки приложить на минимум 4 - 6 ч при 37 ° С в атмосфере 5% СО 2 инкубаторе.
  5. Перенесите вставки клеточных культур, покрытые эпителиальными клетками из первого 24-луночного планшета, во вторую 24-луночного планшета, охватываемого клетками стромы. Используйте стерилизованные пинцет или коснуться вставки только при их висящей ноги.
  6. Культуры клеток при 37 ° С в атмосфере 5% СО 2 инкубаторе в течение 3 - 5 дней до тех пор пока эпителиальные клетки образуют монослой и стромальные клетки достигать 80 - 90% сплошности. Кроме того, используйте трансэпителиальная Электрическое сопротивление (TEER)следить за эпителиальный монослой путем использования эпителиальной вольтметр / Ом , как описано грантом и др. 7. Значения 800-1000 / лунку были достаточны, чтобы рассмотреть вопрос о эпителиального монослоя сливающиеся.
  7. При необходимости, замените носитель каждые 2 - 3 D с использованием стеклянных пипеток или тонкие кончики пипеткой. Начнем с заменой среды стромальных клеток (высевают в нижней части), перед заменой среды в вкладышами. Рекомендуется использовать предварительно нагретую среду для культивирования клеток при 37 ° С.
  8. Подготовьте decidualization среду , чтобы вызвать в пробирке decidualization перед началом эксперимента. Используйте рабочий объем 400 мкл на лунку стромальных клеток.
    1. Приготовьте следующие растворы и хранить аликвоты при -20 ° С.
      1. Готовят 250 мкМ медроксипрогестерона 17-ацетата (MPA) в этаноле.
      2. Подготовьте 100 мМ маточного раствора 8-Bromoadenosine 3 ', 5'- цАМФ в сверхчистой воде.
    2. Сделать децидуальной среду, содержащую 1 мкМ Мпа и 0,5 мМ цАМФ в MESC среде, содержащей 2% FBS.
  9. Осторожно удалите среду из лунок и добавить децидуальной среды на стромальных клетках. Если условие управления необходимо использовать среду МЕСК, содержащей 2% FBS.
  10. Извлеките носитель из вставок для культивирования клеток и добавляют 300 мкл MEEC среды на клетки.
  11. Инкубируйте клетки в течение 5 дней в инкубаторе при температуре 37 ° С в 5% CO 2.
  12. После пятого дня, оценить степень decidualization в стромальных клеток с помощью RT-КПЦР (смотри ниже).
  13. Проверка жизнеспособности эпителиальных клеток с использованием реагента жизнеспособность ресазурина основе.
    1. Приготовьте раствор в соотношении 1:10 реагента жизнеспособности в MEEC среде.
    2. Перенесите вставки культуры клеток в новый 24-луночный планшет.
    3. Добавить 150 - 300 мкл Жизнеспособность реагента - MEEC раствора на клетки.
    4. Инкубировать при 37 ° С в 5% CO 2 в течениене менее 4 - 5 ч или в течение ночи и оценить жизнеспособность клеток, наблюдая изменение цвета (синего до фиолетового / розовый).
      Примечание: Decidualization также может быть оценена с помощью мыши пролактин-специфической ELISA, как предпочтительный исследователем.

7.Validation из Decidualization по QRT-PCR

ПРИМЕЧАНИЕ: Для валидации decidualization по QRT-PCR, рекомендуется выполнять все тест-условий в двух экземплярах, чтобы получить достаточное количество клеток для анализа РНК.
Количественный ОТ-ПЦР проводят , как описано ранее в Де Клерк и соавт. 8.
Вкратце:

  1. Изолируйте тотальной РНК с использованием набора для выделения РНК коммерческой.
    1. Оценка количества и качества РНК с использованием коммерческих методов в соответствии с протоколом производителя, соответственно.
  2. Синтеза кДНК, в соответствии с протоколом производителя, начиная с 1 мкг общей РНК.
  3. С помощью коммерческого набора в соответствии с протоколом производителя для проведения реакции QRT-PCR.
    1. Выполнить все образцы в трех экземплярах.
    2. Используйте коммерческий TaqMan Master Mix и конкретных TaqMan зондов для желательных генов домашнего хозяйства и пролактина (prl8a2) для проведения реакции.

Representative Results

Общий обзор протокола

Фигура 1А иллюстрирует общий обзор протокола. Ежедневная инъекция E2 (100 нг) в течение трех последовательных дней, был использован для синхронизации животных и стандартизировать фазы эстрального цикла. Цикл течки может быть оценена с помощью вагинальных промываний и делится на проэструса течки, диэструсе и фазы metestrus. Фазовый цикл может быть определен в соответствии с соотношением десквамированных клеток в промывании, которые подвержены гормональным изменениям. Повышение уровня эстрогена заставит животных развиться до течки фазы. Эта фаза может быть легко обнаружена в присутствии исключительно ороговевших эпителиальных клеток и отсутствие лейкоцитов (рис 1б). На 4 -й день, матках животных , которые находятся в фазе течки собирают и MEEC и МЕСК изолированы (рис 1C). Decidualization грап индуцировали добавлением 0,5 мМ цАМФ и 1 мкМ MPA до 2% FBS среды в течение инкубационного периода в 5 дней.

Контроль качества MEEC и MESC культур

Чистота первичных клеточных культур может быть оценена с помощью разницы в выражении виментина и цитокератин. Виментин является промежуточным нить, которая выражается в мезенхимальных клеток, следовательно, в эндометриоидных стромальных клетках. Цитокератин является промежуточным нить найдено в цитоскелета эпителиальной ткани. На фиг.2А показан уровень экспрессии мРНК виментину и цитокератином в MEEC и MESC оценивали с использованием QRT-PCR. Уровни Виментин высоки в MESC и низко в MEEC (2.2x выше, р <0,001), в то время как Цитокератин уровни высоки в MEEC и низко в MESC (36x выше, р <0,001). Виментин / цитокератин двойное окрашивание проводили и показали, что стромальные клетки экспрессируют виментин, тогда как epithelial клетки экспрессируют цитокератин (рис 2B, C). Отсутствие первичных антител использовали в качестве отрицательного контроля для иммунным (рис 2D, Е). Эти иммуногистологические окрашивания показывают, что оба внутриматочные клеточные культуры (MEEC и МЕСК) имеет чистоту до 90%.

Decidualization в MEEC / MESC совместных культурах

После выделения, внутриматочные мыши и стромальные клетки были высеяны в системе сокультуры, чтобы имитировать внутриматочную среду. Клетки культивировали до тех пор, пока эпителиальные клетки образовали монослой во вставке клеточной культуры (значения Teer 800 - 1000 / лунку), и стромальные клетки достигли суб-сливающийся состояние. Decidualization индуцировали в стромальных клеток с применением 0,5 мМ цАМФ и 1 мкМ MPA. После пяти дней инкубации, пролактина уровни мРНК были оценены в стромальных клетках QRT-PCR в качестве показателя для decidualization (Фиг.3А). Уровни пролактина были высоко экспрессируется в клетках, подвергнутых гормонами и невыявляемый в клетках, инкубированных с контрольной средой (р <0,01).

Так как эпителиальные клетки трудно визуализировать внутри вставок клеточных культур, пробирного жизнеспособность проводили сразу после пятидневного инкубационного периода (рис 3B). Сочетание нормальной ростовой среды и реагента жизнеспособность добавляли в лунки и инкубировали в течение периода минимального 8 - 12 ч. Сдвиг цвета от синего до ярко-розового указывает на присутствие жизнеспособных клеток эпителия. Следует отметить, что изменение цвета будет происходить только тогда, когда жизнеспособные клетки присутствуют.

Рисунок 1
Рисунок 1: Общий обзор Протокола. (А) Схема протокола изоляции , начиная с трехдней подряд эстрогена инъекций. На 3-й день, необходимые препараты должны быть приготовлены. На 4-й день, течка фаза вычисляется (обозначается звездой), выполняя промывание влагалища. MESC и MEEC выделяют с использованием различных стадий пищеварения. На 6-й день, или когда клетки сливающийся, decidualization могут быть вызваны в системе совместного культивирования путем добавления цАМФ и MPA к среде и инкубационный период в пять дней (день 6 - 11). (Б) репрезентативную картину течки фазы , характеризующейся наличием ороговевших эпителиальных клеток в вагинальных лаважа (увеличение 10х). (C) представитель картина MESC и MEEC (увеличение 20x, масштаб бар: 100 мкм). Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.

фигура 2
(A) уровни РНК посыльного экспрессии виментина и цитокератин указать чистоту культур. уровни РНК были относительно количественно среднего геометрического генов домашнего хозяйства ACTB и ТБФ. Данные представлены как средние значения ± SEM. Виментин / цитокератин двойное окрашивание на MESC культур (Б) и MEEC культур (C). Вставить в левой показывает вид увеличения 63X. Отрицательный контроль с первичным антителом , исключенных для MESC (D) и MEEC (E) (Масштаб бар: 50 мкм). ***: Р <0,001 с двухсторонним ANOVA с коррекцией Бонферрони для множественного тестирования. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.


Рисунок 3: Проверка Decidualization с помощью RT-PCR. Уровни (А) мРНК пролактина экспрессии в стромальных клетках , чтобы оценить decidualization. уровни РНК были относительно количественно среднего геометрического генов домашнего хозяйства PGK1 и ТБФ. Складка изменения в клетках, культивируемых в контроле или децидуальной среде показан в виде среднего значения ± SEM. (Б) Наглядные фотографии стромальных клеток до (вверху) и после (внизу) decidualization раздражитель. Вставка на справа показывает увеличение в более decidualized стромальной клетки. Decidualization характеризуется наличием многоядерные клетки, показано черными стрелками. (С) Типичные изображения оценки жизнеспособности клеток эпителиальной во вставке после анализа. Фотографии были сделаны сразу же после введения реагента жизнеспособности (Prestoblue) (0 ч) и Following утро (ON). **: Р <0,01 с помощью теста Манна-Уитни U. ON: в течение ночи. Шкала бар: 100 мкм. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.

Discussion

Decidualization является прогестерон-зависимой дифференцировки эндометриальных стромальных клеток в круглые секретирующие децидуальных клеток. У человека этот процесс происходит спонтанно в течение лютеиновой фазы менструального цикла и инициируют в стромальных клетках, окружающих клетки сосудов с образованием predecidua. Тем не менее, у грызунов, наличие бластоцисты крайне важно, чтобы побудить decidualization. Тот факт, что decidualization происходит только после контакта с эндометриальных эпителиальных клеток подразумевает, что важные факторы, которые секретируются эпителиальными клетками, чтобы вызвать decidualization в нижележащей стромой. Хотя эта разница в начале процесса decidualization следует признать тот факт, что человек decidualization становится более устойчивым при имплантации эмбриона позволяет предположить, что подобные механизмы могут быть вовлечены. В пробирке клеточных культур часто используются для изучения влияния специфических молекул в процессе decidualization.Тем не менее, наличие и количество человеческих тканей , которые могут быть собраны часто ограничено и сопровождается изменениями, например, фазы цикла, количество беременностей и наличие гинекологических заболеваний , как эндометриоз или аденомиоз. Многие из этих проблем могут быть предотвращены использованием мышиной ткани, который легко доступен и фазы цикла независимы. Другим сильным преимуществом использования мышиной ткани является возможность использовать генетически модифицированные грызуны и возможность установки большого количества экспериментов. На данный момент, множество различных протоколов изоляции, были описаны в литературе, с высокой изменчивостью в возрасте животных и период течки в фазе в момент использования.

Это исследование представляет новый метод первичного эндометрия сопутствующих культур стромальных и эпителиальных клеток, в которых преимущество было принято стандартизированного эстрального цикла путем ежедневной инъекции эстрогена предварительного выделения. Кроме того, эстроген кNown индуцировать пролиферацию эпителиальных и стромальных клеток, которые дополнительно увеличивает выход за изоляцию. Протокол изолирования , описанный в этой статье , был основан на Грант и др. 7, тем не менее, были включены дополнительные шаги по оптимизации , чтобы увеличить выход, чистота и жизнеспособности различных клеточных культур. Во-первых, HBSS всегда была дополнена с антибиотиками, чтобы избежать загрязнения первичной культуры. Во время выделения MEEC, адаптация температуры было сделано (15 мин при 37 ° С), чтобы увеличить урожай эпителиальных клеток в течение первого пищеварения. Далее, дополнительный шаг был включен к отпускной ферментативную активность после того, как трипсин-переваривание добавлением среды, содержащей FBS, чтобы ингибировать его активность. Кроме того, MEECs пропускали через фильтр из которых сетка была больше, чем то, что обычно описывается (100 мкм), так как они часто приходят в кластерах и клеточных листов. Кроме того, загрязнение стромальных клеток была уменьшена путем выполнения надстройкиitional этап, на котором MEECs и MESCs были отделены друг от друга на основе гравитационного осаждения. И, наконец, MEECs высевали на коллаген покрытием покровные увеличить присоединение клеток к покровные стекла, как стало ясно, что привязанность к непокрытыми или ФАПЧ покрытием покровные стекла была недостаточной. Во время изоляции MESCs, коллагеназы (1 мг / мл), дополненной для улучшения пищеварения. Кроме того, этот шаг ферментацию проводили в двух экземплярах, чтобы избежать загрязнения оставшихся MEECs. Все эти дополнительные шаги привели в чистых и жизнеспособных культур популяций однородных клеток.

Чистота популяции клеток оценивали с иммунное и QRT-ПЦР с использованием в качестве виментин стромы маркера и цитокератином как эпителиальный маркера. Очевидно, что наблюдалась противоположная картина экспрессии виментину и цитокератином в MEEC и MESC. Тем не менее, можно заметить, что относительное экспрессии мРНК виментину и цитокератином похож на MEEC культурах. SimilРезультаты А.Р. публикуются другими исследовательскими группами, в которых эпителиальные клетки в выражении виментина культуры приобретают 9. Более важным является различие в экспрессии белка между виментину и цитокератином, как наблюдалось в иммуногистологических окрашиванием различных клеточных популяций. Двойной иммунное показал, что ОЦОД были положительными для цитокератином и ESC были положительными для виментину. Использование этих маркеров в иммунное окрашивание является признанным методом и Стандартно используется для указания типов элементов 10.

Хотя много исследований было выполнено на decidualization мЭСК, остается возможным, что присутствие эпителиальных клеток в этой модели может изменить результаты decidualization. Во-первых, было показано, что если MEEC растут на монослой в присутствии МЕСК-кондиционированной среды или в условиях совместного культивирования монослой имеет улучшенную эпителиальные клетки трансэпителиального электрического сопротивления (TEER), в результате чего из факторов , секретируемых MESC 7. К тому же , Пьерро и др. 11 при условии доказательства того, что эпителиальной пролиферации, под влиянием эстрадиола-17 & beta ; , возможно , опосредована факторами , секретируемыми из стромальных клеток, а также в качестве альтернативы, эпителиальные клетки могут выделять факторы , которые модулируют стромы decidualization 12, 13. В целом, очевидно, что окружающая среда сокультуры эпителиально-стромальных обеспечивает более физиологическую ситуацию, которая позволяет паракринной взаимодействия и коммуникации. Способ культивирования двух различных типов клеток с использованием системы сокультивирования вставки была описана ранее 14, 15 и был адаптирован для использования мышиных первичных клеток. Путем выявления уровня мРНК пролактина как считыванием для decidualization, описанный метод имеет очень воспроизводимые считывание для decidualization доступны и позволяютS, таким образом, изучение эпителиально-стромальных взаимоотношений во время decidualization. ПАРАКРИННОЙ сигналы, опосредованные от MEEC может изменить степень decidualization в стромальных клетках. Кроме того, модель позволяет специфической модуляции эпителиальной стороне, не влияя непосредственно стромальных клеток. Поэтому, это совместное культивирование MEEC и MESC предлагает идеальный инструмент для оценки влияния гормонов, цитокинов и т.д. на эпителиальных клетках с считыванием на стромальных decidualization. Другим преимуществом этой системы сокультуры является то, что она позволяет ученым исследовать причастность конкретного белка в decidualization-процесса либо в эпителиальные или стромы отсека с использованием клеток, выделенных из трансгенных животных. Кроме того, этот метод будет очень полезным для изучения адгезии бластоцисты, чтобы оценить ли факторы паракринные секретируемые эпителиальными клетками в присутствии бластоцисты достаточны, чтобы вызвать decidualization нижележащего стромальныхклетки. Важным шагом в трофобласта вторжения коррелирует с внеклеточной деградации матрицы, которая опосредуется действием протеолитических ферментов. Предложенный метод может быть применен в качестве модели в пробирке для исследования перекрестных помех между бластоцисты, эпителиальных клеток и поддерживающей стромы.

Тем не менее, на данный момент мало известно о происхождении эпителиальных клеток, которые могут быть так же, как просветная железистые. Таким образом, дальнейшая характеристика генетического и молекулярного профиля эпителиальных клеток требуется. Кроме того, описанный способ ограничен в имеющихся знаний о поляризации эпителиальных клеток. На данный момент, поляризация эпителиальных клеток не было принято во внимание. Тем не менее, различия в экспрессии мембранных белков описаны в апикальных и базальных мембран. Неуместный поляризация эпителиального слоя может оказать влияние на паракринной взаимодействия между epitheliи др клетки стромы. Тем не менее, способы получения поляризованных эпителиальных клеток было описано и могут быть включены в описанной методике 15, 16.

В целом, описанный протокол предлагает технологию для успешного создания первичных культур клеток мышиного внутриматочной эпителиальные и стромальные клетки. Этот метод приводит в чистых культурах клеток, что подтверждается QRT-PCR и иммунное виментину и цитокератином. В конечном счете, эпителиальной и стромальных совместно культуры была введена, что позволяет для исследования паракриновых сигналов, опосредованных либо MEEC и / или MESC в процессе decidualization.

Disclosures

Авторы не имеют ничего раскрывать.

Acknowledgments

Эта работа была поддержана грантами Исследовательского Фонда Фландрии (FWO G.0856.13N) и Научно-исследовательского совета KU Leuven (OT / 13/113). KDC финансируется FWO Бельгии. AH финансируется OT / 13/113. Мы хотели бы поблагодарить ячейки изображения основной комплекс из KU Leuven (http://gbiomed.kuleuven.be/english/corefacilities/microscopy/cic/cic.htm) для использования конфокальной микроскопии.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
ThinCert Tissue culture insert for 24 well plates; 1 µm pore size; transparant Greiner Bio-one 662610 Inserts are also provided for other multiwell plates and/or other pore sizes. Other suppliers: Merck Millipore.
https://shop.gbo.com/en/row/articles/catalogue/article/
0110_0110_0090_0030/13408/ 
Nunc Cell culture treated 24 well plates Thermo Scientific 142475 http://www.thermofisher.com/order/catalog/product/142475
8-Bromoadenosine 3′,5′-cyclic monophosphate sodium salt Sigma Aldrich B7880 Prepare a stock solution of 100 mM in Milli Q water. Store aliquots at -20 °C.
http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/b7880?lang=en&region=BE 
Medroxyprogesterone 17-acetate Sigma Aldrich M1629 Prepare a stock solution of 250 µM in ethanol. Store aliquots at -20 °C.
http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/m1629?lang=en&region=BE 
Arachis oil Supermarket Standard cooking arachis oil that can be found in every supermarket is used
PrestoBlue cell viability reagent Thermo Scientific A13261 https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/A13261?ICID=cvc-prestoblue-c1t1
HBSS 1x, no calcium, no magnesium, no phenol red Gibco 14175-046 Store in fridge as long as possible. Use cold HBSS+ during the protocol.
https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/14175046 
17-β Estradiol Sigma Aldrich E8875 Prepare a stock solution of 1 mg/mL in EtOH before diluting in arachis oil (1:1,000).
http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/e8875?lang=en&region=BE
Cell medium filter Stericup, 0.22 µm, polyethersulfone, 500 mL, radio-sterilized Merck Millipore SCGPU05RE http://www.merckmillipore.com/BE/en/product/Stericup-GP%2C-0.22%C2%A0%C2%B5m%2C-polyethersulfone%2C-500%C2%A0mL%2C-radio-sterilized,MM_NF-SCGPU05RE
Penicillin-Streptomycin (5,000 U/mL) Gibco 15070-063 https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/15070063?ICID=search-15070-063
DMEM/F12, phenol red, L-glutamine, HEPES Gibco 11330-032 https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/11330057?ICID=search-11330-057
Fetal Bovine Serum, qualified, heat inactivated, E.U.-approved, South America Origin Gibco 10500-056 https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/10500064?ICID=search-10500-064
Amphotericin B Gibco 15290-018 https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/15290018?ICID=search-15290-018
Gentamicin (50 mg/mL) Gibco 15750-037 https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/15750037?ICID=search-15750-037
DMEM, low glucose, pyruvate, no glutamine, no phenol red Sigma Aldrich D5921 http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/d5921?lang=en&region=BE
MCDB-105 Sigma Aldrich M6395 Dilute in Milli Q water, adjust pH to 7 with NaOH and filter before use. Store in the dark.
http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/m6395?lang=en&region=BE 
Insulin from bovine pancreas Sigma Aldrich I1882 http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/i1882?lang=en&region=BE
Coverslips, glass, 18 mm Ø Glaswarenfabrik Karl Hecht 1001/18 http://www.hecht-assistent.de/187/?L=1&tx_rmproducts_pi1[g]=937
&tx_rmproducts_pi1[p]=3504
&tx_rmproducts_pi1[v]=20088
&cHash=abd12065683fe74b00eaa
5e562824d06
Poly-L-lysine Sigma Aldrich P2636 http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/p2636?lang=en&region=BE
Collagenase type IA from Clostridium histolyticum Sigma Aldrich C2674 http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/c2674?lang=en&region=BE
DPBS, no calcium, no magnesium Gibco 14190-094 https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/14190094?ICID=search-14190-094
Trypsin from bovine pancreas Sigma Aldrich T7409 http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/t7409?lang=en&region=BE
Trypsin-EDTA (0.05%), phenol red Gibco 25300-054 Warm to room temperature before use.
https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/25300054?ICID=search-25300-054 
Cell strainer, 40 µm mesh, disposable BD Falcon 352340 https://www.fishersci.com/shop/products/falcon-cell-strainers-4/p-48680
Cell strainer, 100 µm mesh, disposable BD Falcon 352360 https://www.fishersci.com/shop/products/falcon-cell-strainers-4/p-48680
Millex-GP Syringe Filter Unit, 0.22 µm, polyethersulfone, 33 mm, gamma sterilized Merck Millipore SLGP033RS https://www.merckmillipore.com/BE/en/product/Millex-GP-Syringe-Filter-Unit%2C-0.22%C2%A0%C2%B5m%2C-polyethersulfone%2C-33%C2%A0mm%2C-gamma-sterilized,MM_NF-SLGP033RS?bd=1
Acetic acid (glacial) 100% Merck Millipore 1.00063 https://www.merckmillipore.com/BE/en/product/Acetic-acid-%28glacial%29-100%25,MDA_CHEM-100063
Collagen I Corning  354236 From rat tail.
https://catalog2.corning.com/LifeSciences/en-BR/Shopping/ProductDetails.aspx?categoryname=&
productid=354236%28
Lifesciences%29# 
Pancreatin from porcine pancreas Sigma Aldrich P3292 http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/p3292?lang=en&region=BE
35 mm Tissue Culture Dishes, Polystyrene, Sterile BD Falcon 353001 https://us.vwr.com/store/catalog/product.jsp?product_id=4675630
Ethanol absolute AnalaR NORMAPUR ACS, Reag. Ph. Eur. analytical reagent VWR Chemicals 20821296 https://uk.vwr.com/store/catalog/product.jsp?catalog_number=20821.310DP
monoclonal rabbit anti-human vimentin (D21H3)  Cell Signalling Tech #5741 Use 1/500.
http://www.cellsignal.com/products/primary-antibodies/vimentin-d21h3-xp-rabbit-mab/5741
monoclonal mouse anti-human pan cytokeratin  Sigma Aldrich C2562 Use 1/1,000.
http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/c2562?lang=en&region=BE
Paraformaldehyde Solution, 4% in PBS Affymetrix 19943 http://www.affymetrix.com/catalog/130621/USB/Paraformaldehyde+Solution+4+percent+in+PBS#1_1
Triton X-100 Sigma Aldrich X100 http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/SIAL/X100?lang=en&region=BE&gclid=
Cj0KEQjwhN-6BRCJsePgxru9iIw
BEiQAI8rq
879lESeuIU4N4AEQRLNEXj4f
8z65KkD-q8Xr35sQDRgaAp-k
8P8HAQ
Goat serum Sigma Aldrich G9023 http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/g9023?lang=en&region=BE
Goat anti-rabbit Alexa Fluor 488 Thermo Scientific A-11034 http://www.thermofisher.com/order/genome-database/searchResults?query=488&
resultPage=1&
resultsPerPage=15&
autocomplete=&
searchMode=keyword&
productTypeSelect=antibody&
targetTypeSelect
=antibody_secondary&
species=ltechall&keyword=
488#filters=genericsort2:\%22Capra%20hircus\%22;;generic6:^\%22Oryctolagus%20cuniculus\%22$;;conjugates:^\%22Alexa%20Fluor&reg;%20488\%22$;;
Goat anti-mouse Alexa Fluor 594 Thermo Scientific A-11032 http://www.thermofisher.com/order/genome-database/searchResults?query=594&
resultPage=1&
resultsPerPage=15&
autocomplete=&
priorSearchTerms=&
searchMode=keyword&
productTypeSelect=antibody&
targetTypeSelect=
antibody_secondary&
species=ltechall&
keyword=594#filters=genericsort2:\%22Capra%20hircus\%22;;generic6:^\%22Mus%20musculus\%22$;;
VECTASHIELD mounting medium with DAPI Vector Laboratories H-1200 http://vectorlabs.com/vectashield-mounting-medium-with-dapi.html
DPBS, with calcium and magnesium Gibco 14040174 https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/14040133

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Cummings, A. M., Yochim, J. M. Differentiation of the uterus in preparation for gestation: a model for the action of progesterone. J Theor Biol. 106 (3), 353-374 (1984).
  2. Jabbour, H. N., Kelly, R. W., Fraser, H. M., Critchley, H. O. Endocrine regulation of menstruation. Endocr Rev. 27 (1), 17-46 (2006).
  3. Wang, X., Matsumoto, H., Zhao, X., Das, S. K., Paria, B. C. Embryonic signals direct the formation of tight junctional permeability barrier in the decidualizing stroma during embryo implantation. J Cell Sci. 117 (Pt 1), 53-62 (2004).
  4. Zygmunt, M., Herr, F., Munstedt, K., Lang, U., Liang, O. D. Angiogenesis and vasculogenesis in pregnancy. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. 110 Suppl 1, S10-S18 (2003).
  5. Power, M. L., Schulkin, J. The evolution of the human placenta. , Johns Hopkins University Press. (2012).
  6. Finn, C. A. The initiation of the decidual cell reaction in the uterus of the aged mouse. J Reprod Fertil. 11 (3), 423-428 (1966).
  7. Grant, K. S., Wira, C. R. Effect of mouse uterine stromal cells on epithelial cell transepithelial resistance (TER) and TNFalpha and TGFbeta release in culture. Biol Reprod. 69 (3), 1091-1098 (2003).
  8. De Clercq, K., et al. Functional expression of transient receptor potential channels in human endometrial stromal cells during the luteal phase of the menstrual cycle. Hum Reprod. 30 (6), 1421-1436 (2015).
  9. Pieper, F. R., et al. Regulation of vimentin expression in cultured epithelial cells. Eur J Biochem. 210 (2), 509-519 (1992).
  10. Greaves, E., et al. A novel mouse model of endometriosis mimics human phenotype and reveals insights into the inflammatory contribution of shed endometrium. Am J Pathol. 184 (7), 1930-1939 (2014).
  11. Pierro, E., et al. Stromal-epithelial interactions modulate estrogen responsiveness in normal human endometrium. Biol Reprod. 64 (3), 831-838 (2001).
  12. Kim, M. R., et al. Progesterone-dependent release of transforming growth factor-beta1 from epithelial cells enhances the endometrial decidualization by turning on the Smad signalling in stromal cells. Mol Hum Reprod. 11 (11), 801-808 (2005).
  13. Chen, J. C., et al. Coculturing human endometrial epithelial cells and stromal fibroblasts alters cell-specific gene expression and cytokine production. Fertil Steril. 100 (4), 1132-1143 (2013).
  14. Renaud, J., Martinoli, M. G. Development of an Insert Co-culture System of Two Cellular Types in the Absence of Cell-Cell Contact. J Vis Exp. (113), (2016).
  15. Arnold, J. T., Kaufman, D. G., Seppala, M., Lessey, B. A. Endometrial stromal cells regulate epithelial cell growth in vitro: a new co-culture model. Hum Reprod. 16 (5), 836-845 (2001).
  16. Park, D. W., et al. A well-defined in vitro three-dimensional culture of human endometrium and its applicability to endometrial cancer invasion. Cancer Lett. 195 (2), 185-192 (2003).

Tags

Биология развития выпуск 121 первичные внутриматочные культуры мышь мышь эндометрия стромальные клетки мыши эндометрия эпителиальные клетки, лечение эстрогенами Совместное культивирование
Выделение мыши Эндометриальный эпителиальных и стромальных клеток для<em&gt; In Vitro</em&gt; Decidualization
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

De Clercq, K., Hennes, A., Vriens,… More

De Clercq, K., Hennes, A., Vriens, J. Isolation of Mouse Endometrial Epithelial and Stromal Cells for In Vitro Decidualization. J. Vis. Exp. (121), e55168, doi:10.3791/55168 (2017).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter