Este artigo apresenta uma série de protocolos para o desenvolvimento de células manipuladas e superfícies funcionalizadas que permitem sinteticamente engenharia E. coli para controlar e manipular superfícies de materiais programáveis.
Nós desenvolvemos uma interface abiótico-bióticos que permite que as células manipuladas para controlar as propriedades do material de uma superfície funcionalizada. Este sistema é feito através da criação de dois módulos: um sinteticamente estirpe de células de E. coli e uma interface de material funcionalizado. Dentro deste artigo, detalhamos um protocolo para a engenharia genética de comportamentos selecionados dentro de uma estirpe de E. coli utilizando estratégias de clonagem molecular. Uma vez desenvolvidas, esta estirpe produz níveis elevados de biotina quando exposta a um indutor químico. Adicionalmente, protocolos para a criação de detalhe duas superfícies funcionalizadas diferentes, cada um dos quais é capaz de responder a biotina sintetizado por células. Tomados em conjunto, apresentamos uma metodologia para a criação de um sistema ligado, abiótico-biótico que permite que as células para controlar a composição do material e montagem em substratos inanimados engenharia.
Aqui, relatamos os procedimentos para o desenvolvimento de um substrato programável capaz de responder a um sinal químico a partir de uma linha celular de engenharia. 1 Fazemos isso através da criação de uma interface de biotina-estreptavidina que responde a biotina produzida pelas células Escherichia coli sinteticamente engenharia (E. coli). Anteriormente, superfícies programáveis foram projetados para uma ampla gama de aplicações de detecção de toxina 2 e point-of-care diagnóstico 3 a defesa e segurança. 4 Enquanto superfícies programáveis podem ser úteis como sensores e atuadores, eles podem ser feitos "mais inteligentes", dotando-os com a capacidade de se adaptar a diferentes desafios ambientais. Em contraste, mesmo microorganismos simples, tais como E. coli, têm adaptabilidade inerente e são capazes de responder aos desafios com soluções sofisticadas e muitas vezes inesperados. Esta adaptação tem permitido E.populações coli, controladas por suas redes de genes complexos, de forma rentável para buscar recursos, 5 criar produtos de valor acrescentado, 6 e até robótica micro-escala de energia. 7, por acoplamento das vantagens adaptativas de células vivas com o uso de superfícies programáveis, podemos criar um substrato inteligente capaz de responder às diferentes condições ambientais.
A biologia sintética tem dado aos pesquisadores novas habilidades para programar o comportamento de organismos vivos. Pela engenharia células para conter redes reguladoras novo gene, os pesquisadores podem criar células que exibem uma gama de comportamentos programados. 8, 9 Além pesquisa básica, esses comportamentos podem ser usados para aplicações como controle de montagem de material e biologicamente a produção de produtos de valor agregado. 10 Nisto, nós detalhe como usamos as ferramentas da biologia sintética para engenheiro uma estirpe de E. coli que sintetiza biotina após indução. Esta estirpe foi desenvolvida utilizando métodos de clonagem da enzima de restrição para montar um plasmídeo, pKE1-LACI-BIOB. Este plasmídeo, quando usado para transformar a estirpe de E. coli K-12 MG1655, dota células com a capacidade para expressar níveis elevados de BIOB, uma enzima essencial para a síntese de biotina. Quando as células transformadas foram induzidas com isopropil β-D-1-tiogalactopiranósido (IPTG) e fornecido com um precursor de biotina, destiobiotina (DTB), níveis elevados de biotina foram produzidos.
interacção de ligação da biotina com estreptavidina é um dos mais fortes ligações não covalentes encontrados na natureza. Como tal, a interacção biotina-estreptavidina é tanto bem caracterizados e altamente utilizado em biotecnologia. 11 Dentro deste manuscrito, apresentamos duas estratégias que empregam a interacção biotina-estreptavidina para detectar e detectar a biotina produzidos em células com uma superfície funcionalizada. Nósreferem-se a estas superfícies contrastantes como esquemas de controle "diretos" "indiretas" e. No esquema de controlo indirecto, biotina produzidos em células compete com biotina que foi conjugado e imobilizados numa superfície de poliestireno para locais de ligação a estreptavidina. Além disso, a estreptavidina é conjugado com peroxidase de rábano (HRP). HRP modifica 3, 3 ', 5, 5'-tetrametilbenzidina (TMB), para produzir um sinal óptico, 12, a qual pode ser monitorizada por quantificação da absorvância espectral (ou seja, a densidade óptica) a 450 nm (OD 450). Assim, o esquema de controle indireto permite aos pesquisadores para medir biotina produzida por células monitorando a attentuation do sinal de OD 450.
O esquema de controlo directo explora o evento estreptavidina-biotina estreptavidina imobilizando directamente para uma superfície do material e permitindo biotina produzidos por células e de HRP biotinilada para competir por sítios de ligação a estreptavidina. Mais uma vez, oníveis relativos de biotina produzidos de células são monitorizados pela medição de uma sinal de OD 450.
Tomadas em conjunto, as células manipuladas e superfícies funcionalizadas permitem controlar as propriedades de uma superfície programável através da indução de redes em células vivas. Em outras palavras, nós criamos um sistema que aproveita a capacidade de adaptação dos organismos vivos e a confiabilidade ea especificação de uma interface de material de engenharia, ligando estes sistemas juntos.
Nós apresentamos uma nova estratégia para a interface células manipuladas viver com uma superfície do material funcionalizado. Isto foi conseguido através do desenvolvimento de uma linha de células capazes de sintetizar níveis elevados de biotina quando induzido com IPTG. Os níveis elevados de biotina pode então ser utilizado para modificar a superfície funcionalizada. Os protocolos detalhados como engenheiro da linha de células E. coli e como criar duas superfícies funcionalizadas diferentes.
<…The authors have nothing to disclose.
Os autores agradecem o apoio do prémio FA9550-13-1-0108 da Força Aérea Instituto de Investigação Científica dos EUA. Os autores adicionalmente reconhecer o apoio da adjudicação N00014-15-1-2502 do Office of Naval Research dos EUA, o financiamento do Instituto de Tecnologia da Critical e Ciência Aplicada na Virginia Polytechnic Institute e State University, e da Science Foundation Graduate Research Nacional Programa de bolsas, concessão número 1.607.310.
LB Broth, Miller | Fisher Scientific | 12-795-027 | |
Agar | Fisher Scientific | BP9744500 | |
Carbenicillin | Fisher Scientific | BP26481 | |
M9, Minimimal Salts, 5X | Sigma-Aldrich | M6030 | |
Casamino Acids | Fisher Scientific | BP1424-100 | |
Magnesium Sulfate, Anhydrous | Fisher Scientific | M65-500 | |
Calcium Chloride, Dihydrate | Fisher Scientific | C79-500 | |
Dextrose (D-Glucose), Anhydrous | Fisher Scientific | D16-1 | |
NEB Turbo Cell Line | New England Biolabs | C2984l | |
Oligonucleotide Primers | Thermo Fisher Scientific | N/A | 25N synthesis, DSL purification |
Q5 High-Fidelity Polymerase | New England Biolabs | M0491S | |
Q5 Reaction Buffer | New England Biolabs | B9027S | |
dNTP Solution Mix | New England Biolabs | N0447S | |
Agarose | Bioexpress | E-3120-125 | |
Ethidium Bromide, 1% | Fisher Scientific | BP1302-10 | |
Gel Extraction Kits | Epoch Biolabs | 2260250 | |
GenCatch Plasmid DNA Miniprep Kit | Epoch Biolabs | 2160250 | |
AatII | New England Biolabs | R0117S | |
SacII | New England Biolabs | R0157S | |
HindIII-HF | New England Biolabs | R3104S | |
EcoRI-HF | New England Biolabs | R3101S | |
Cutsmart Buffer | New England Biolabs | B7204S | |
T4 DNA Ligase | New England Biolabs | M0202S | |
T4 DNA Ligase Reaction Buffer | New England Biolabs | B0202S | |
ColiRolle Glass Plating Beads | EMD Millipore | 7101-3 | |
Glycerol | Fisher Scientific | BP229-1 | |
Isopropyl β-D-1-thiogalactopyranoside (IPTG) | Fisher Scientific | BP1755-10 | |
NHS-Desthiobiotin (DTB) | Thermo Fisher Scientific | 16129 | |
Succinimidyl Trans-4-(maleimidylmethyl) Cyclohexane-1-Carboxylate (SMCC) | Thermo Fisher Scientific | S1534 | |
Dimethyl Sulfoxide (DMSO) | Fisher Scientific | BP231-100 | |
Succinimidyl 3-(2-pyridyldithio) Propionate (SPDP) | Thermo Fisher Scientific | S1531 | |
NHS-LC-LC-biotin | Thermo Fisher Scientific | 21343 | |
Horseradish Peroxidase (HRP) | Thermo Fisher Scientific | 31490 | |
Phosphate Buffered Saline (PBS), 10X Solution | Fisher Scientific | BP399500 | |
Streptavidin (SA) | Thermo Fisher Scientific | 21145 | |
Bovine Serum Albumin (BSA) | Fisher Scientific | BP1600-100 | |
Dithiothreitol (DTT) | Fisher Scientific | BP172-5 | |
Ethylenediaminetetaacetic acid (EDTA) | Fisher Scientific | S311-500 | |
Tween 80 | Fisher Scientific | T164-500 | |
Hydrogen Peroxide | Fisher Scientific | H325-4 | |
3, 3', 5, 5'-tetramethylbenzidine (TMB) | Fisher Scientific | AC229280050 | |
Vivaspin 500 Centrifugal Concentrators | Viva Products | VS0192 | |
Sodium Acetate, Anhydrous | Fisher Scientific | BP333-500 | |
96-Well Polystyrene Plates | Thermo Fisher Scientific | 266120 |