Summary
La evaluación simultánea de la hemodinámica cerebral y las propiedades de dispersión de luz de ratas in vivo en el tejido cerebral se demuestra usando un sistema de imagen de reflectancia difusa multiespectral convencional.
Introduction
La imagen de reflectancia difusa multiespectral es la técnica más común para obtener un mapa espacial de señales ópticas intrínsecas (IOSs) en el tejido cortical. Los IOS observados en el cerebro in vivo se atribuyen principalmente a tres fenómenos: variaciones en la absorción de la luz y propiedades de dispersión debido a la hemodinámica cortical, variación en la absorción dependiendo de la reducción o oxidación de los citocromos en las mitocondrias y variaciones en las propiedades de dispersión de la luz inducidas por alteraciones morfológicas 1 .
La luz en el rango espectral visible (VIS) al infrarrojo cercano (NIR) es efectivamente absorbida y dispersada por el tejido biológico. El espectro de reflectancia difusa del cerebro in vivo se caracteriza por espectros de absorción y dispersión. Los coeficientes de dispersión reducidos μ s ' de tejido cerebral en el intervalo de longitud de onda VIS-a-NIR dan como resultado una exposición monótona del espectro de dispersióning magnitudes más pequeñas en longitudes de onda más largas. El coeficiente de dispersión de espectro μ reducida s '(λ) se puede aproximar a estar en la forma de la función de la ley de potencia 2, 3 como μ s' (λ) = a × λ -b. El poder de dispersión b está relacionada con el tamaño de dispersores biológicas en el tejido 2, 3 viviente. Las alteraciones morfológicas del tejido y la reducción de la viabilidad de tejido vivo cortical pueden afectar el tamaño de los dispersores biológicos 4, 5, 6, 7, 8, 9.
Un sistema óptico para obtener imágenes de reflectancia difusa multiespectral se puede construir fácilmente a partir de un li incandescentefuente de lucha, componentes ópticos simples, y un dispositivo de carga acoplada monocromática (CCD). Por lo tanto, varios algoritmos y sistemas ópticos para obtención de imágenes multiespectrales de reflectancia difusa se han utilizado para evaluar la hemodinámica corticales y / o la morfología del tejido 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18.
El método descrito en este artículo se utiliza para visualizar tanto la hemodinámica y las propiedades de dispersión de luz de tejido cerebral de rata in vivo usando un sistema de imagen de reflectancia difusa multiespectral convencional. Las ventajas de este método sobre técnicas alternativas son la capacidad de evaluar los cambios espacio-temporales en ambos hemodinámica cerebral y el tejido corticalmorfología, así como su aplicabilidad a diversos modelos animales de disfunción cerebral. Por lo tanto, el método será adecuado para las investigaciones de lesión traumática cerebral, ataque epiléptico, derrame cerebral e isquemia.
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Protocol
cuidado de los animales, la preparación y los protocolos experimentales fueron aprobados por el Comité de Investigación Animal de la Universidad de Tokio de Agricultura y Tecnología. Por esta metodología, la rata se encuentra en un ambiente controlado (24 ° C, 12 h ciclo de luz / oscuridad), con comida y agua disponible ad libitum.
1. Construcción de un sistema convencional de reflectancia de imágenes multiespectrales difusa
- Monte nueve filtros de interferencia óptica de banda estrecha con longitudes de onda centrales de 500, 520, 540, 560, 570, 580, 600, 730, y 760 nm para los orificios de filtro de la rueda de filtros motorizada.
- Construir un sistema de imagen multiespectral utilizando una fuente de luz blanca de banda ancha, una rueda de filtros motorizada con el anterior conjunto de filtros de interferencia de banda estrecha, una guía de luz, una lente colectora, una lente de zoom de vídeo, y una cámara CCD monocromática. La disposición de los componentes ópticos, que se muestran en la Figura 2, se puede hacer referencia a para el thes el procedimiento de construcción.
NOTA: El ángulo de iluminación es de aproximadamente 45 ° con respecto a la superficie de la muestra. - A su vez en la fuente de luz de la lámpara de halógeno para iluminar la superficie de la muestra a través de un filtro de interferencia, la guía de luz, y la lente colectora.
- Abra el software de funcionamiento de la cámara CCD.
2. Preparación de los animales
NOTA: En este protocolo, la rata no se usó para los experimentos futuros y se sacrificó inmediatamente después de las mediciones de imágenes multiespectrales.
- Conectar el puerto de entrada de una cámara de inducción al orificio de salida de una máquina de anestesia con un tubo. Conectar el puerto de salida de la cámara de inducción al puerto de entrada de la máquina de anestesia con un segundo tubo.
- Coloque la rata en la cámara de inducción y inducir la anestesia con 5,0% de isoflurano. Mantener la anestesia a una profundidad tal que la rata no responde a pellizcos del dedo del pie. LA 2,0% de isoflurano utilizando un botón giratorio en la máquina de anestesia.
- Fijar la cabeza de la rata en un marco estereotáxico. Conecte una boquilla para anestesia al marco estereotáxico.
- Conecte el orificio de entrada de la boquilla al orificio de salida de la máquina de anestesia con un tubo. Conecte el orificio de salida de la boquilla al orificio de entrada de la máquina de anestesia con un tubo.
- Afeitar la región de la cabeza más allá del sitio de la incisión prospectivo utilizando cortadoras de pelo hasta que aparezca la superficie de la piel.
- Hacer una incisión longitudinal de aproximadamente 20 mm de largo a lo largo de la línea media de la cabeza usando un bisturí quirúrgico ( Figura 1 (a) ) y exponer los tejidos conectivos subcutáneos ( Figura 1 (b) ).
- Retire los tejidos conectivos subcutáneos usando una cureta afilada o una pinza y tire de ella a ambos lados de la cabeza para exponer el hueso del cráneo ( Figura 1 (c) ).
- Cavar una zanja elipsoidal en el hueso del cráneo dentro del sutur cranealES (sutura coronal, sutura sagital, y de sutura lamboidea) usando un taladro de alta velocidad (Figura 1 (d)).
- Poco a poco y de forma homogénea excavar el hueso del cráneo dentro de la zanja usando el taladro de alta velocidad.
- Presione ligeramente en la superficie del cráneo adelgazada con la punta de la pinza para estimar el espesor y la resistencia ósea después de que aparezca un vaso sanguíneo cerebral. Si la región cráneo adelgazada deprime fácilmente, terminar la reducción del hueso del cráneo con el taladro de alta velocidad.
- Cortar la línea frontera elipsoidal del cráneo adelgazada poco a poco usando la punta de la pinza o pequeñas tijeras quirúrgicas.
- Retire el cráneo adelgazado desde la superficie del cerebro lenta y suavemente utilizando la pinza.
- bañarse suavemente la ventana craneal con solución salina fisiológica y se cubre con una placa de vidrio transparente de aproximadamente 0,1 mm de espesor.
3. Regulación de la fracción de oxígeno inspirado
NOTA: La condi respiratoriación se puede cambiar mediante la regulación de la fracción de oxígeno inspirado (FiO 2).
- Uso de un tubo, conectar el primer puerto de un conector de tubo en forma de Y (conector 1) al primer puerto de otro conector de tubo en forma de Y (conector 2).
- Conectar el puerto de entrada de la boquilla al segundo puerto de conector de tubo 1.
- El uso de un tubo, conecte el tercer puerto de conector de tubo 1 a un dispositivo de monitor de concentración de oxígeno.
- Con un tubo, conectar el segundo puerto de conector de tubo 2 al orificio de salida de una máquina de anestesia.
- El uso de un tubo, conecte el tercer puerto de conector de tubo 2 al orificio de salida de un dispositivo de mezcla de gas.
- Conectar un puerto de entrada del dispositivo de mezcla de gas a una alta presión 95% O 2 - 5% de CO 2 cilindro de gas usando un tubo.
- Conectar el otro puerto de entrada del dispositivo de mezcla de gas a un 2 de alta presión 95% N - cilindro de gas CO 2 al 5% utilizando un tubo.
- Cambiar las velocidades de flujo de gas of O 2 y N 2 usando los botones giratorios en el dispositivo de mezcla de gas.
- Comprobar y regular la FiO 2 utilizando el dispositivo de monitor de concentración de oxígeno.
4. Adquisición de la reflectancia difusa imágenes multiespectrales
- Adquisición de imágenes de referencia
NOTA: Los componentes ópticos utilizados en este experimento, tales como la fuente de luz, fibra óptica, y los detectores tienen sus propias características espectrales. Por lo tanto, la intensidad de la luz pasa a través de estos componentes debe ser registrada como imagen de referencia. La imagen de referencia es una imagen tomada con un difusor blanco estándar iluminado con la luz de la fuente de luz.- Ponga el difusor blanco estándar en el escenario horizontalmente.
- Enfoque la lente de la cámara en la superficie del difusor blanco girando el anillo de zoom del barril.
- Ajustar el tiempo de integración de la cámara, seleccione el valor apropiado de laEn la lista desplegable de tiempos de integración en el software de funcionamiento de la cámara de manera que la mayor cantidad de luz que produce una señal que es aproximadamente el 75% de los recuentos máximos. Mientras observa el histograma de valores de pixel, ajustar el tiempo de integración hasta que el nivel de intensidad de la señal es de aproximadamente 75% de los recuentos máximos.
- Seleccionar la opción "Guardar" en el menú archivo para guardar una imagen en un archivo.
- Cambiar la ubicación del filtro mediante la rotación de la rueda de filtros.
- Guardar una imagen en las otras longitudes de onda de acuerdo con el proceso descrito anteriormente. El nombre del archivo debe identificar la muestra y la longitud de onda utilizada (por ejemplo, W500, W520, W540 W760 ...).
- Adquisición de imágenes de muestra
Nota: Las imágenes de la intensidad de la luz reflejada de forma difusa de cerebro de rata expuestos en nueve longitudes de onda son capturados y guardados en el disco duro de un ordenador personal usando las mismas condiciones de adquisición.- Con cuidado, coloque el ren la etapa y lentamente ajustar el nivel de escenario para que la cámara puede enfocar en la superficie del cerebro de la rata.
- Seleccionar la opción "Guardar" en el menú archivo para guardar una imagen en un archivo.
- Cambiar la ubicación del filtro mediante la rotación de la rueda de filtros.
- Guardar una imagen en las otras longitudes de onda de acuerdo con el proceso descrito anteriormente. El nombre del archivo debe identificar la muestra y la longitud de onda (por ejemplo, R500, R520, R540 R760 ...).
- Adquisición de las imágenes oscuras
NOTA: La cámara CCD puede generar una intensidad de luz en respuesta a una señal eléctrica. Sin embargo, hay algo de producción de menor importancia debido al ruido en los circuitos eléctricos y los detectores, incluso si la luz no entra al detector; esto se llama ruido de corriente oscura. Para medir con precisión la intensidad espectral de la luz, el componente de corriente oscura debe ser registrada como una imagen oscura y luego se resta de la señal medida. La imagen oscura es una toma de imagenn con la trayectoria de luz bloqueado.- Apagar la fuente de luz de la lámpara de halógeno.
- Bloquear el paso de luz al sistema de cámara CCD usando una placa de protección.
- Seleccionar la opción "Guardar" en el menú archivo para guardar una imagen en un archivo. El nombre del archivo debe identificar la muestra (por ejemplo, oscuro).
5. La visualización del contenido de hemoglobina y de la dispersión de luz Parámetro
NOTA: Un conjunto de imágenes multiespectrales de reflectancia difusa se guarda en el disco duro de un ordenador personal y analizada fuera de línea. Un análisis de regresión múltiple con la ayuda de una simulación de Monte Carlo 19 de las imágenes de reflectancia difusa multiespectrales en nueve longitudes de onda (500, 520, 540, 560, 570, 580, 600, 730, y 760 nm) se realiza a continuación, para visualizar el bidimensional mapas de concentración oxigenada hemoglobina, la concentración de hemoglobina desoxigenada, concentración total de hemoglobina, la saturación de oxígeno cerebral regional, y Scattering poder. El algoritmo detallado ha sido publicada en la literatura 17, 18.
- Restar la imagen oscura tanto el la imagen de la muestra a cada longitud de onda imagen de referencia y de.
- Normalizar la imagen de muestra la imagen de referencia por en cada λ la longitud de onda. El tratamiento de la imagen normalizada como la imagen de reflectancia difusa R.
- Calcular la absorbancia (o densidad óptica) de una imagen tomando el logaritmo de la inversa de la difusa R imagen reflectancia en cada λ la longitud de onda:
(1) - Generar una matriz tridimensional por el apilamiento de las imágenes de absorbancia en el orden de sus longitudes de onda, donde el x - plano y muestra la información estructural obtenida para la superficie del cerebro y la z eje x muestra la información espectral.
- Educación físicarforma un análisis de regresión múltiple para el espectro de absorbancia A (λ) en cada xy de coordenadas.
- Utilice el espectro de absorbancia A (λ) como la variable dependiente y el coeficiente de extinción espectros molar de hemoglobina oxigenada ε HbO (λ) y HBr desoxigenada hemoglobina ε (λ) como las variables independientes para la etapa 5.5 (valores publicados para ε HbO (λ) y ε HBr (λ) se proporcionan en la Tabla 1).
- Compruebe los mapas bidimensionales (imágenes) de los tres coeficientes de regresión múltiple de un HBO, HBr, y un 0.
- Generar una matriz tridimensional por el apilamiento de las imágenes de los coeficientes de regresión múltiple en el orden de un HBO, HBr, y un 0, donde el
- Calcular la concentración de hemoglobina oxigenada C HBO, la hemoglobina desoxigenada concentración C HBr, y el poder de dispersión b del conjunto de regresión múltiple coeficientes a HBO, HBr, y un 0 en cada coordenada XY usando las siguientes fórmulas empíricas (él valores de β HBO, i, β HBr, i, y β 0, i (i = 0,1,2,3) se proporcionan en la Tabla 2):
(2) 
(3)
(4) - Compruebe los mapas bidimensionales (imágenes) de la concentración de hemoglobina oxigenada C HbO , la concentración de hemoglobina desoxigenada C HbR y el poder de dispersión b .
- Calcular un mapa bidimensional de la concentración total de hemoglobina C HbT sumando C HbO y C HbR en cada coordenada x - y .
- Calcular un mapa bidimensional de la saturación regional de oxígeno cerebral rSO 2 dividiendo la concentración de hemoglobina oxigenada C HbO por la concentración total de hemoglobina C HbT en cada coordenada x - y .
(1) 
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Representative Results
Imágenes espectrales representativos de reflectancia difusa adquirido de in vivo cerebros de rata se muestran en la Figura 3. Las imágenes en 500, 520, 540, 560, 570, y 580 nm visualizar claramente una densa red de vasos sanguíneos en la corteza cerebral. El deterioro del contraste entre los vasos sanguíneos y el tejido circundante se observa en las imágenes a 600, 730, y 760 nm refleja la menor absorción de la luz por la hemoglobina en longitudes de onda NIR más tiempo y.
La Figura 4 muestra imágenes estimadas representativas de un cerebro de rata expuestos para la concentración de hemoglobina oxigenada, la concentración de hemoglobina desoxigenada, concentración total de hemoglobina, la saturación de oxígeno cerebral regional, y el poder de dispersión. Como era de esperar a partir de las imágenes de reflectancia difusa a longitudes de onda más cortas en la Figura 3, la concentración total de hemoglobina en los ves sangreregión sel es mayor que en la región de tejido circundante. Por otro lado, las concentraciones de hemoglobina oxigenada en arteriolas son más altos que los de las vénulas debido a la hemoglobina en la sangre arterial de ser mucho más oxigenada que en la sangre venosa. Por lo tanto, la distribución de las arteriolas y vénulas puede distinguirse claramente en la imagen estimada de la saturación de oxígeno regional.
Imágenes representativas estimados de un cerebro de rata expuestas durante los cambios en la FiO 2 para reflectancia difusa a 500 nm r (500), concentración de hemoglobina oxigenada C HBO, concentración de hemoglobina desoxigenada C HBr, concentración de hemoglobina total C HbT, saturación de oxígeno cerebral regional RSO 2, y la dispersión de energía B se muestran en la Figura 5. El valor de la rSO2 aumentó en condiciones hiperóxicasy disminución notablemente después de la inducción de condiciones anóxicas. El valor de b se incrementó ligeramente durante el período comprendido entre el inicio de la anoxia hasta paro respiratorio, mientras que continuamente disminuyó durante el período de 5 min a 30 min después del inicio de anoxia. Estos cambios en el valor de b eran indicativos de cambios morfológicos, tales como la hinchazón y la contracción de las estructuras celulares y subcelulares, inducidas por la pérdida de la viabilidad del tejido en el cerebro.
Figura 1: Pasos en la exposición quirúrgica de la rata corteza cerebral. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Figura 2: Diagrama Esquemático del Aparato Experimental para Administrar Anestesia y Cambiar la Fracción de Oxígeno Inspirado. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Figura 3: Imágenes Multispectrales Representativas de Reflectancia Difusa a 500, 520, 540, 560, 570, 580, 600, 730 y 760 nm, obtenidas de un cerebro de rata in vivo . Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Figura 4: Imágenes estimadas representativas de un cerebro de rata expuesto. <strong> (a) Concentración de hemoglobina oxigenada C HBO, (b) concentración de hemoglobina desoxigenada C HBr, (c) concentración de hemoglobina total C HbT, (d) la saturación de oxígeno cerebral regional rSO2, y (e) la dispersión de energía b. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Figura 5: Los resultados representativos de un cerebro de rata expuesto durante los cambios de FiO 2. Imágenes de ratas in vivo del tejido cortical en durante los cambios de FiO 2 para reflectancia difusa a 500 nm r (500), concentración de hemoglobina oxigenada C HBO, concentraciónde hemoglobina desoxigenada C HBr, concentración de hemoglobina total C HbT, regional oxígeno cerebral saturación rSO2, y la dispersión de energía b. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
| Longitud de onda λ nm | ε HbO (λ) | ε HBr (λ) |
| 500 | 113.03712 | 112.6548 |
| 520 | 130.69296 | 170.58384 |
| 540 | 287.4744 | 251.5968 |
| 560 | 176.11128 | 290.4552 |
| 570 | 240.2784 | 243.3888 |
| 580 | 270.5616 | 199.908 | 600 | 17.28 | 79.25688 |
| 730 | 2.106 | 5.95188 |
| 760 | 3.1644 | 8.36201 |
Tabla 1: Los valores de ε HBO y ε HbO utilizado para el análisis de regresión múltiple. Los coeficientes de extinción molar de hemoglobina oxigenada ε HBO y desoxigenada HBr hemoglobina ε en cada longitud de onda λ.
| yo | β HBO, i | β HBr, i | β b, i |
| 0 | -8,3302 | -5.85271 | -0.76587 |
| 1 | 4405.877 | -143,23 | 53.34134 |
| 2 | 2740.622 | 3798.067 | 124.4656 |
| 3 | -4.40454 | -2.81699 | -1.36919 |
Tabla 2: Los valores de β HBO, i, β HBr, i, y? 0, i (i = 0,1,2,3) usado en la empírica Fórmulas para C HBO, C HBr, y b. Tenga en cuenta que las unidades de C HBO y C HBr derivados de estas fórmulas empíricas son la concentración en volumen, en el que se toma la concentración de hemoglobina de la sangre entera con una lectura de hematocrito de 44% a ser la concentración de volumen de 100% de la hemoglobina. Las fórmulas empíricas para concentr hemoglobinaA partir de los espectros de reflectancia difusa calculados por la simulación Monte Carlo del transporte ligero 19 . El proceso detallado para la derivación de las fórmulas empíricas se ha descrito en la bibliografía 17 , 18 .
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Discussion
El paso más crítico en este protocolo es la eliminación de la región del cráneo adelgazada para hacer la ventana craneal; Esto debe realizarse cuidadosamente para evitar el sangrado inesperado. Este paso es importante para obtener imágenes reflectantes difusas multiespectrales de alta calidad con alta precisión. Se recomienda el uso de un estereomicroscopio para el procedimiento quirúrgico si es posible. Pequeños trozos de esponja de gelatina son útiles para la hemostasia.
El sistema óptico descrito en este artículo pasa una luz monocromática a través de un filtro de interferencia situado delante de la fuente de luz. Esto se puede modificar colocando la rueda del filtro delante del objetivo de la cámara de vídeo o de la cámara CCD. En este caso, sin embargo, el plano focal puede ser variable si se utilizan filtros de interferencia con diferentes grosores, lo que provocará un deterioro de la calidad de la imagen. Es necesario retirar la placa de vidrio de la ventana craneal si se inserta un electrodo de registroen el tejido cortical para mediciones de electrofisiología, tales como mediciones del potencial eléctrico de campo local. En este caso, el sistema de imágenes puede detectar indeseable reflexión especular desde la superficie cortical. Este problema se puede evitar mediante el uso de un conjunto de placas de polarización con una alineación de Nicols cruzada.
El aparato de formación de imágenes multiespectrales convencional mostrado en este artículo es algo que consume tiempo de usar, ya que las posiciones de filtro en la rueda se cambian mecánicamente. Esto significa que el sistema de imagen captura cada imagen secuencial de reflectancia difusa en una longitud de onda de punto diferente. Debido a esta limitación, este sistema es inadecuado para capturar rápida IOSs, tales como cambios en el espectro de reflectancia debido a las actividades neuronales 20. Aunque la hemoglobina oxigenada y hemoglobina desoxigenada son los principales cromóforos en el tejido cerebral de estar, el otros cromóforos, tales como el citocromo c oxidasa, flavinadinucleótido de adenina y nicotinamida adenina dinucleótido, también contribuyen al coeficiente de absorción en la región de longitud de onda visible. Por lo tanto, los valores estimados de C HBO, C HBr, C HbT, rSO2, y b pueden ser afectados por los cromóforos de menor importancia. Por otra parte, este enfoque integra toda la información a lo largo de la dirección de profundidad porque se basa en la reflexión difusa. Por lo tanto, el sistema de formación de imágenes no realiza mediciones de profundidad de resolución temporal.
Es ventajoso que el algoritmo utilizado para el presente sistema también se puede aplicar a imágenes de reflectancia difusa multiespectrales capturadas por otras técnicas de imagen espectrales rápidos, tales como un filtro sintonizable acústico-óptico 21, una matriz de lentes multi-apertura con filtros de interferencia 22, y las imágenes espectrales de reconstrucción de una imagen RGB 17, 23. Utilizando las técnicas espectrales rápidos algoritmo y en proyecto, es un enfoque prometedor para la evaluación de imágenes IOS rápida, así como para su uso en situaciones clínicas.
La mayoría de las técnicas de imagen multiespectral cerebrales hasta la fecha se han centrado principalmente en la hemodinámica corticales y metabolismo de los tejidos, tales como el volumen cerebral arterial, saturación de oxígeno cerebral regional, y la tasa metabólica cerebral de oxígeno 10, 11, 12, 13, 14. Varios enfoques existentes evaluar la amplitud de dispersión bajo el supuesto de que el poder de dispersión es constante 15, 16. Sin embargo, las alteraciones morfológicas de los tejidos debido a los cambios fisiopatológicos y una reducción de la viabilidad en el tejido vivo cortical pueden afectar el tamaño de dispersores biológicos 4, 5, 6, 7, 8, 9. Por lo tanto, es importante para estimar el parámetro de dispersión de b cuantitativamente para evaluar las morfologías de tejido del cerebro. La importancia de la presente técnica con respecto a los métodos existentes es su capacidad para medir simultáneamente los cambios espacio-temporales en la hemodinámica cerebral y la morfología del tejido cortical.
En términos de futuras aplicaciones, este algoritmo se puede utilizar para el seguimiento de la función cerebral, signos vitales, y la viabilidad en el tejido cortical de diversos modelos animales trastorno cerebral, tales como lesión cerebral traumática, ataque epiléptico, derrame cerebral y la isquemia.
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Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 150-W halogen-lamp light source | Hayashi Watch Works Co., Ltd, Tokyo, Japan | LA-150SAE | |
| Light guide | Hayashi Watch Works Co., Ltd, Tokyo, Japan | LGC1-5L1000 | |
| Collecting lens | Hayashi Watch Works Co., Ltd, Tokyo, Japan | SH-F16 | |
| Interference filters l@ 500 nm | Edmund Optics Japan Ltd, Tokyo, Japan | #65088 | |
| Interference filters l@ 520 nm | Edmund Optics Japan Ltd, Tokyo, Japan | #65093 | |
| Interference filters l@ 540 nm | Edmund Optics Japan Ltd, Tokyo, Japan | #65096 | |
| Interference filters l@ 560 nm | Edmund Optics Japan Ltd, Tokyo, Japan | #67766 | |
| Interference filters l@ 570 nm | Edmund Optics Japan Ltd, Tokyo, Japan | #67767 | |
| Interference filters l@ 580 nm | Edmund Optics Japan Ltd, Tokyo, Japan | #65646 | |
| Interference filters l@ 600 nm | Edmund Optics Japan Ltd, Tokyo, Japan | #65102 | |
| Interference filters l@ 730 nm | Edmund Optics Japan Ltd, Tokyo, Japan | #65115 | |
| Interference filters l@ 760 nm | Edmund Optics Japan Ltd, Tokyo, Japan | #67777 | |
| Motorized filter wheel | Andover Corporation, NH, USA | FW-MOT-12.5 | |
| 8-bit monochromatic CCD camera | THE IMAGINGSOURCE, Germany | DMK21BU618.H | |
| Video zoom lens | Edmund Optics Japan Ltd, Tokyo, Japan | VZMTM300i | |
| Spectralon white standard with 99% diffuse reflectance | Labsphere Incorporated, North Sutton, NH, USA | SRS-99-020 |
References
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