Summary
本文介绍的光谱仪，在流式细胞术中使用的发射光谱的形状来区分的荧光染料的新方法。算法替代补偿，可以把自动荧光作为一个独立的参数。这种新方法允许从实体器官分离的细胞的正确分析。
Abstract
流式细胞仪已被用于在过去40年来定义和分析淋巴细胞和其他造血细胞的表型。最初仅限于少数荧光染料的分析，目前有几十种不同的荧光染料，以及多达14-18不同的染料可以在同一时间内合并。然而，一些限制仍然影响的分析能力。因为荧光探针的多重性的，数据分析已经变得越来越复杂，因为需要的大，多参数的补偿矩阵。此外，携带荧光蛋白，以检测和跟踪在不同的组织的特定细胞类型的突变体小鼠模型已经变得可用，因此需要的分析（通过流式细胞术）从实体器官得到自体荧光的细胞悬液。光谱流式细胞仪，其沿宽范围连续波长区分的发射光谱的形状，解决一些上述问题。分析数据w ^第i个的算法代替补偿矩阵和治疗自体荧光作为一个独立的参数。因此，光谱流式细胞仪应该能够以类似的发射峰鉴别荧光的，并且可以提供一个多参数分析，而无需补偿要求。
该方案描述的光谱流式细胞分析，从而允许一个21参数（19个荧光探针）的表征和自动荧光信号的管理，提供在微小的人口检测高分辨率。这里的结果表明，光谱流式细胞术呈现细胞群从组织难以在以往的流量表征流式细胞术，如心脏和肠的分析的优点。光谱流式细胞仪从而表明高性能，而不要求流式细胞术常规流动补偿，使自发荧光管理的多参数分析能力。
Introduction
在过去的几十年中，流式细胞仪（FCM），成为细胞表型研究的一个必不可少的广泛使用的分析方法。出现了在可用的荧光染料的大幅增加，特别是荧光染料由紫色激光（405nm）的（ 例如，亮紫和新的Q点染料）激发。然而，现有的荧光染料的增长增加了重叠排放的风险和需要劳动密集型补偿矩阵。 FCM成为广泛用于分析从固体组织的细胞悬浮液，但自体荧光的细胞的存在限制特异性标记群的判别。
光谱FCM的基本原理被报告中详细二村等人。 1，2。简言之，此处所用的光谱FCM（见材料的表）配备有405，488，和638纳米的激光器。光谱捕获FCM所有散发氟luorescence如32通道线性阵列PMT（32CH PMT）500〜800nm的和，用于分别为420nm至440nm和450nm至469纳米，2个独立的光电倍增管，其取代传统的带通滤波器的光谱。 488个六百三十八分之四百零五nm激光光斑在空间上分离，而405nm和638 nm的激光斑点是共线的。对于每一个单独的颗粒中，光谱FCM措施达到由405nm的激发的荧光数据的66个信道和488个纳米激光器。当细胞通过638 nm激光激发，光谱测量FCM 58个通道的荧光数据的，因为掩模被插入以防止638 nm激光从照入PMT。光谱与FCM基于加权最小二乘法（WLSM），使荧光光谱重叠的分离的算法分析所获取的全光谱数据。从单染色和未染色的样品衍生的光谱，确认为基本参考光谱。多染色的样品被数学嵌合的ND未混合，并用混合荧光标记的样品的光谱被分解成其组成的光谱的集合。解混，在光谱技术3,4，替换，可以消除除了所述一个测量给定染料的所有检测器的信号中的补偿。
在这项研究中，我们结合并在一个单一的，21参数分析其特征在于，所述小鼠脾脏中发现的主要的造血子集进行测试19点的荧光染料。此外，我们证明了光谱仪可管理的自体荧光信号，从而改善肠道上皮内淋巴细胞和胚胎心脏的表征。事实上，在这些组织中，自发荧光管理允许特定荧光的细胞的分配，将在从常规FCM分析中排除。
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Protocol
所有实验均根据巴斯德研究所伦理宪章和欧盟指南进行，并且法国农业部批准。
从成年小鼠器官1.细胞悬浮液的制备
- 脾细胞的分离
- 颈椎脱位安乐死的成年小鼠。请在腹部正中切口，打开用剪刀皮肤。嘉实用钳子脾。
- 粉碎2玻璃显微镜之间的脾滑动以解离细胞，并稀释它们在5mL Hank平衡盐渍溶液（HBSS）含有1％胎牛血清（FCS）。
- 离心机在120×g离心10分钟，4℃。弃去上清液。
- 重悬在5ml HBSS 1％FCS的沉淀。计数与使用台盼蓝活力染色纽鲍尔室中的细胞。
注：80万个细胞应该从一个成人脾脏中获得。
- Isolati对细胞从小肠
- 颈椎脱位安乐死的成年小鼠。用剪刀，使皮肤切口在腹部正中线。抓住小肠用钳子，一手用剪刀剪下它的两端：第一，胃之后，然后在小肠的末端，只是大肠之前。使用2毫升的注射器用针冲洗小肠用1X Dulbecco氏磷酸盐缓冲盐水（DPBS）。
- 放在纸巾小肠并小心地用一对锋利的剪刀的去除淋巴集结。
- 用剪刀插入肠道内的剪刀的一个分支，以打开其长边肠道。切开肠成使用锋利的剪刀1厘米的片。
- 孵育在37℃下持续搅拌下在30mL HBSS中有10％FCS 30分钟。
- 放置与剩余的非解离的片段的细胞悬浮液在50mL塑料管，涡旋以高速5分钟。注：还有就是组织没有进一步的分解。
- 孵育在冰上10分钟，以允许大的，非解离的片段以沉淀。
- 收集上清液并通过离心，在120×g下7分钟集中它。
- 弃上清，用1％FCS重悬在10mL HBSS的沉淀。计数与使用台盼蓝活力染色纽鲍尔室细胞。
注：〜6000万内上皮细胞（IELs）应该从一个成人的小肠中获得。
- 面板设计策略
- 制备具有直接与荧光染料的抗体的面板。
注意：所有的抗体被预先滴定以获得细胞群的最佳清晰度（滴定可以与抗体批次而变化）。在19彩色面板用于染色的脾细胞的抗体列在表1中 。 - 构建多科洛科洛[R面板的流式细胞仪。由于这是一项艰巨的任务，请遵循以下准则，以优化面板：
- 检查频谱配置，并且可以在仪器上使用的荧光染料。
- 使用由制造商提供的亮度指标/染色指数信息。
注：亮度指数/染色指数为荧光强度对背景对于每个荧光染料的相对指标。 - 选择遵循以下规则抗体：
- 选择对于那些弱表达的蛋白质中最亮的荧光染料和更多的高表达的蛋白质的最暗的荧光染料。
注意：例如，CD45，CD4，和CD8中高度表达，并且可以与暗淡的荧光染料使用。 - 开始，首先选择具有最少的荧光染料的可能性抗体设计的面板。
- 如果可能的话，应选择具有发射光谱f的最小重叠的荧光染料或标记上相同类型的细胞中表达。
注：双座（ 例如，PE-Cy5的，PE-Cy7的，和PerCP-Cy5.5的）应当谨慎使用，因为它们是通过光照射而降解更敏感。
- 选择对于那些弱表达的蛋白质中最亮的荧光染料和更多的高表达的蛋白质的最暗的荧光染料。
- 制备具有直接与荧光染料的抗体的面板。
- 细胞仪分析的染色
- 制备一个5毫升管1×10 6脾细胞和一个5毫升管1×10 6个肠细胞并保持未染色用作阴性对照。
- 准备并根据表1每个样品和每个面板标记一个5毫升管中。制备抗体的组合，根据表1，在HBSS 1％FCS。
- 传送1×10 6个细胞-脾细胞要么或肠细胞-到每个5毫升管中。添加HBSS的2毫升1％FCS和离心机在4℃，5分钟和120×g下。弃上清，重悬沉淀的抗体混合物的50μL。
- 标签的S全细胞分两步。首先，使用50μL含有PE-Cyanine 5，PerCP-Cyanine 5.5和PerCP（具有Fc受体阻断）标记的抗体的混合物在5mL管中。在4℃的黑暗中孵育20分钟后，加入50μL含有所有其他抗体的混合物至5 mL管中。
注意：这个策略限制空间位阻。 - 在4℃的黑暗中孵育20分钟。
- 加入2mL HBSS 1％FCS，并在4℃和120×g离心5分钟。弃去上清液，并将沉淀物重悬于200μL含有0.5μg/ mL碘化丙啶（PI）的HBSS 1％FCS中。
2.商业补偿珠微球（ 例如 UltraComp eBeads）上的每个荧光色素的单染色的制备，此后称为珠
- 准备和标记与面板中使用的抗体数量相同的5 mL管。在每个管中放置1滴珠，并加入1＆＃181，L每管抗体。
注：这里使用的珠子（见材料表）包含染色（阳性）和未染色（阴性）珠。抗体被置于过量的小珠，以确保明亮的信号，从而明确的光谱标志对于每个染料。这是由软件需要能够做出精确的光谱分离。 - 孵育在4℃下在黑暗中20分钟。
- 加入2毫升HBSS 1％FCS和离心机的5分钟，在120×g下。弃上清，重悬沉淀在100μLHBSS 1％FCS的。
从胚胎小鼠心脏3.细胞悬浮液的制备
- 胚胎的解剖
- 打算通过在一天结束配合与一个阳（总是在男性的笼子）的女性2（17和19小时之间），以获得预先定时怀孕女性。第二天早上，阴道塞的女性被认为是0.5天后交配。
- 安乐死E17.5孕雌性颈椎脱位ES。确保该动物是通过在小鼠爪（脚趾捏反射）用力按压响应。湿用70％乙醇的腹部消毒，防止老鼠皮毛的传播。
- 使皮肤切口在腹部用剪刀中间，用手指拉开皮肤。
- 通过朝向使用毛镊子和剪刀腹部的两侧从中心在腹部肌肉牵拉，使切口打开腹腔。
注：小心不要损坏小肠，这是立即腹腔肌肉下方。 - 通过既在和卵巢的子宫体的水平切割收集子宫角（与胚胎）。浸泡其中在一个90×15毫米2培养皿用50mL DPBS的。
- 由每个蜕膜，其次是子宫肌壁和用细镊子和剪刀的卵黄囊之间切割隔离每个胚胎。拉出胚胎INT法案。最后，剪断脐带。
- 在开始解剖前切E17.5胚胎用剪刀（斩首）的头。
- 心中的集合
- 浸泡断头胚在含有在培养皿底部的湿纸巾寝具和50mL HBSS的用1％FCS 90×15毫米2培养皿中。
- 在立体显微镜下，用保持毛钳子每个胚使得腹侧朝上。
- 小心地切割用剪刀胸部右侧，以避免对心脏的损伤打开胸腔电网。
- 通过按住肋骨与毛钳暴露心脏。
- 通过保持大血管（含有的入口和流出心脏的大血管）拉开心脏（与肺和胸腺仍然组装）并将它们放置在一个35×15毫米2培养皿用2mL的HBSS 1％有FCS。
- 从周围器官隔离心和结缔组织用细镊子和手术刀。
- 洗心在一个新的35×15毫米的培养皿用2mL HBSS 1％FCS的并保持在冰上20分钟，以允许心脏泵出腔室内部的血液。
- 心脏细胞悬浮液的制备
- 预温热的HBSS + / +（以下简称为酶溶液）的200微克/毫升胶原酶至37℃。
注：稀释胶原酶在HBSS + / +（用Ca 2+和Mg 2+阳离子）最大化的酶活性;胶原酶活性是批次之间是稳定的。 - 替换洗涤溶液中浸泡，用1mL预温酶溶液的心（HBSS 1％FCS）。
- 在立体显微镜下，剁碎的心成1毫米使用细镊子和手术刀3件。添加另一个1毫升预热的酶溶液和切碎的组织有盖转移到5mL的试管中。
注：对于最佳的消化，放置最大的每2毫升的酶溶液5个E17.5心。如果有更多的心都在同一时间消化后，将它们分为不同的5个毫升管中。 - 孵育剁碎心15分钟，在37℃。
注：放下在培养箱中5支毫升的管（正常关闭），以沿着所述溶液散布在组织。- 在温育结束时，通过用移液管P1000上下吸液约20次均质化在相同的酶溶液的组织。把5毫升管在垂直位置，并让剩余的组织片段沉淀（大约3分钟）。
- 收集上清液（含有在悬浮液中的消化的细胞）在50mL管中，加入2毫升HBSS的10％FCS（相同的体积的酶溶液的体积加入到该组织片段），并保持在冰上，同时继续消化过程。
注意：HBSS 10％FCS溶液和冰是重要的为不活动的酶的作用而剩余的组织是消化。 - 加入2毫升预热的酶溶液于5 mL管与剩余的组织碎片和通过重复步骤3.3.4直到没有更多的组织被观察到继续消化。
注：消化的大约4个周期是足以完全解离的心脏组织（5个E17.5心在2mL酶溶液）。
- 离心50-mL管与细胞在悬浮液中，在300×g离心10分钟并弃去上清液。
- 重悬细胞沉淀，加入1毫升的HBSS - / - 1％FCS，并过滤细胞悬浮液虽然70微米尼龙网。计数与使用台盼蓝活力染色纽鲍尔室中的细胞。
注：重悬细胞用HBSS - / - （不含Ca 2+和Mg 2+阳离子）以最小化细胞聚集。之间800,000 1,000,000个细胞从一个E17.5心脏获得。
- 预温热的HBSS + / +（以下简称为酶溶液）的200微克/毫升胶原酶至37℃。
- 染色心肌细胞荧光抗体
注意：所有antibod先前滴定以获得细胞群体的最佳定义（滴定可以随抗体批次而变化）。心脏图谱中使用的抗体列于表1中。- 通过96孔板（圆底）将心脏细胞分配在悬浮液中。将它们均匀分布在所有需要的孔中（每孔200μL），短距离旋转将96孔板以480xg离心1分钟，并弃去上清液。
注意：可以使用96孔板（圆底）的所有孔。 - 重悬细胞沉淀，并在4℃黑暗中孵育心肌细胞20分钟，加入100μL抗体混合物（ 即 CD45-PE，TER119-PE，CD31-Alexa 647和Sca-1-PE-Cyanine5 ）稀释于HBSS - / - 1％FCS。
- 通过加入200μLHBSS - / - 1％FCS，将细胞从过量的抗体中洗涤心脏细胞，并以480 x g将细胞短时间离心1分钟。
- 弃上清并重复短旋转离心（步骤3.4.3）。
- 将细胞重悬于HBSS的200μL - / - 1％FCS，并将它们传送到已经含有200μLHBSS的5mL的管 - / - 1％FCS。
- 采集前，加入HBSS的400μL - / - 1％FCS用0.5微克/毫升PI和过滤细胞悬浮液虽然70微米尼龙网。
- 通过96孔板（圆底）将心脏细胞分配在悬浮液中。将它们均匀分布在所有需要的孔中（每孔200μL），短距离旋转将96孔板以480xg离心1分钟，并弃去上清液。
4.标记脾，肠，和心肌细胞与光谱流式细胞仪的采集
- 采集数据之前，自动校准光谱仪按照制造商的说明。执行每日和每月的质量控制程序，实验的每一天。
- 当细胞计数仪已准备就绪，开始含有标记与所有抗体的细胞悬浮液样品的预览。
注意：不要购买。 - 确保所有激光器的要求上。调整FSC增益，使得所有细胞在各个可见地块。门控细胞群，并将该门应用于对应于488nm和638 / 405nm激光的两个光谱图。
注意：当荧光染料被638nm激光激发时（ 即，当638nm激光打开时），有一个屏蔽屏蔽617-662nm的光以防止638nm激光照射到PMT中。这导致光谱的一部分的损失，因此导致在这些波长中发射的近染料的较低分离。然而，如果不需要采集，可以通过关闭638nm激光器来收集整个信号。 - 调整32通道光电倍增器（PMT）电压（％），使得所有荧光染料在显示488 nm和405/638的两个不同光谱图中显示在y轴（1-10 6 ）中的强度范围内nm激发。
注意：需要进行培训来识别所有使用的荧光染料的光谱。 - 开始获取样品。点击 ”;预览”以可视化的细胞在屏幕上，然后点击‘获取’，记录样品节省高达来自每个样品2×10 6个事件。
- 获取染色样品后，取得与该活体染料，然后将补偿珠中使用的所有抗体单独染色染色的样品。点击“预览”可视化屏幕上的细胞，然后在“获取”，记录样品。
注意：保持对所有样品和对照（ 即，珠和未染色样品）相同的PMT电压; 5000个事件在很大程度上是足够的。 - 最后，获得来自未染色的细胞悬浮液中的数据。点击“预览”可视化屏幕上的细胞，然后在“获取”，记录样品。
注：在实验结束时获取的未染色样品最小化荧光细胞的结转。 - 清洁流式细胞仪根据制造商的指令的d合实验中采集的文件夹。
注意：只有在关闭实验后它会被保存，以便进行分析。
与光谱FCM软件进行数据的分析5
- 在“Analysis”标签的“调色板”的窗口，通过添加使用的每个荧光染料和相应的标记寄存器存在于面板的所有参数（从可用列表中选择或添加新的参数）。另外，包括自体荧光和生存能力参数;所有选定的参数将出现在“未混合的”窗口。
- “试管列表”这个实验中，“分析”选项卡上的下选择“控制”窗口中的第一单染色的样本（带补偿珠完成）。在工作表中，点击“多边形设计工具”，设计上在FSC / SSC图的珠子群门。在门的顶部双击打开频谱或点图以可视化的门控珠的女儿的情节。
- 设计，为积极的栅极和用于无论是在频谱上或散点图负珠一个门。检查对应于两个激光集对于每个正和负分数整个光谱和通过连续地选通和点击栅极验证女儿人口消除异常值。在“像元分解”窗口中输入的消极和积极的大门。
- 重复步骤5.2每个单染色的样品。
注：请注意，正面和负面的门控策略对应于被分析的样品，虽然该计划允许它被放置在任何样本。代替确定用于每个单染色的样品的负级分，使用未染色样品珠设置一个通用负。
- 选择在“管表”设计门的自发荧光和非自发荧光细胞未染色的细胞样本。 <LI>当所有的所有参数，包括自体荧光和生存力的负和正栅极，在“像元分解”的窗口被选择，点击“计算”。应用光谱分离到的样本进行分析。
- 通过设计门和创建双参数图分析数据。
- 首先，设计了一个门，用于对SSC FSC和然后通过排除标记有活力标记（PI与CD45）所有细胞去除死细胞。对细胞的其余部分，对于以下每个细胞悬浮液中描述的策略的所有感兴趣的种群设计栅极（ 图1-3）。
注意：如果需要，调整在补偿“参考光谱调节。”这是一个可以去混合后用来重新调整阳性群体的中位数为每一个荧光染料如果算法做不到完美的工具。
- 首先，设计了一个门，用于对SSC FSC和然后通过排除标记有活力标记（PI与CD45）所有细胞去除死细胞。对细胞的其余部分，对于以下每个细胞悬浮液中描述的策略的所有感兴趣的种群设计栅极（ 图1-3）。
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Representative Results
21-参数光谱FCM面板来分析脾细胞
图1示出了具有施加到包括识别T，B，NK，树突，和髓样细胞亚群的不同抗体的脾细胞中的19-荧光抗体面板所获得的结果，而CD45标记所有造血核细胞。该面板还包括一个生存力染料（PI），以及大小（FSC）和粒度（SSC）的参数。 图1A示出了参考荧光光谱。消除在CD45 +栅极（ 图1B）的死细胞后，分析表明，CD3 + T细胞表达TCRβ链和具有CD25 +细胞在CD4 + T细胞的预期CD4 / CD8分布和比例。 CD8 + T细胞显示CD44-和Ly49D表达细胞的正常分布。 CD19 + B细胞共表达B220的ðMHCII，以及为IgM和IgD，典型成熟脾B细胞的。 NK1.1 + NK细胞的子集代表了共表达的Ly49D脾淋巴细胞的一小部分。剩余的细胞包括具有高水平的MHC II，其中的一些也细胞CD11b + CD11c的的+树突细胞的一小部分。特性组织定居巨噬细胞共表达CD11b和CD44的在脾中发现的最高水平的F4 / 80 +细胞。将剩余的细胞（CD19 - NK1.1 - CD3 - F4 / 80 -表面CD11c - ）可以通过CD11b和Gr1的，其中双阳性细胞的小的子集也表达高水平的CD44的，可能对应于祖细胞的表达被细分已知存在在脾低频。有相当大一部分是负的三个标志。 图2示出了调整补偿之前相同的分析。
图1：一个19色彩抗体小组的小鼠脾细胞的分析。 （A）小鼠的脾细胞进行染色，与先前的抗体组合，其CD45-演变655加入。所有的荧光染料的参考光谱被示出。荧光团标记的CD45由红色箭头标记。荧光染料列于表1（B）中列出的等高线图显示这多参数分析的辨别能力分开，T，NK，树突状，或髓样细胞的B中的不同群体。该分析是在传统的FCM软件未混合的反褶积后进行。
图2：一个19色彩抗体小组的小鼠脾细胞的分析。同样的分析，如图1中的adjus之前完成与参考光谱调整的补偿tment。
小肠上皮内淋巴细胞
几个T细胞群体在肠上皮细胞层5,6内找到。这些子集的常规分离包括用于分隔上皮细胞的淋巴细胞密度梯度。然而，这种准备是微妙的，耗费时间，并在细胞损失的结果。为了改善定量，并促进所述的实验程序，光谱FCM的上皮细胞的大部分内辨别肠淋巴细胞种群的电位进行了测试。上皮组织的机械破裂后，细胞悬浮液以该标签αβ的子集和γδ通常在肠上皮中发现T细胞的抗体染色。该细胞两个常规流式细胞仪和在光谱FCM分析。
图3示出了以下的类似的门控策略，以消除门控PI阴性细胞的死细胞后的结果。当自动荧光管理器被失活（顶部面板，红色箭头），从而导致活细胞的不良判别自体荧光细胞的存在是在所有传统的流式细胞仪和分光术明显。在所有的图中，FSC-A / SSC-A淋巴细胞门控内的细胞以蓝色显示和细胞具有较大的散射（上皮细胞栅极）用红色显示。常规的仪器不可能从剩余的细胞中解决CD3 + T细胞亚群（蓝色）（绿松石箭头）。因此，TCRβ -细胞（绿色箭头）污染了CD3 +TCRγδ -人口，生物不可能子集separati后从未检测来自上皮细胞的淋巴细胞。相反，在频谱FCM自发荧光管理后，不同的T细胞亚群的分析不是由上皮细胞的存在削弱，所述种群分离良好的，并有在CD3 +无TCR-阴性细胞门。
图3：自动荧光细胞的存在不妨碍在光谱FCM上皮内淋巴细胞的检测。小肠细胞，包括上皮细胞和淋巴细胞，用抗体识别TCRδ，PI，TCRβCy7的-APC CD3（板B），Vγ7APC，Vδ4Cy7的-PE（面板C），和CD8 FITC（图D）染色。 PI是在分析之前的FACS缓冲液中加入。的数据的获取是在适当的质量控制后的三种仪器完成顺序。双峰是elimina泰德在FSC-H / FSC-W。该分析是在传统的FCM软件完成。图显示的门控策略的不同步骤。的FSC-A / SSC-A淋巴细胞门控内的细胞被标记为蓝色，而肠上皮细胞门控内的细胞以红色被标记。箭头指向不同人群的扭曲和自动荧光。用C图显示而不在解混自发荧光管理在光谱FCM获得的数据的分析，而D示出了具有自发荧光管理解混后的相同的数据。
胚胎心脏
常规FCM表明，被排除在分析之外，因为它在CD45和TER119转储通道（PE）发出的荧光的自体荧光的细胞（黑色箭头）的主要群体，标记造血细胞。与此相反，此自动荧光人口不存在这样的光谱FCM和被包含在所述CD45
图4：在E17.5心肌细胞悬浮液自动荧光细胞在光谱FCM的阴性细胞已经适当地包括。 （A）从胎儿心脏细胞悬浮液用抗TER119和CD45-PE，的Sca-1-PECy5和CD31-APC在三个仪器获得的抗体，并依次进行染色。黑色箭头显示在两个便利着想自动荧光细胞ntional流式细胞仪，而这些细胞不被检测为在光谱仪的自体荧光，因此可以分析特异性荧光染色。 （B）自动荧光细胞（绿色椭圆栅内），但不是CD31 +细胞（蓝色，阴性对照矩形栅），表明心肌肌钙蛋白（TNNT2）7和心房轻链-2（MYL7）的表达8份成绩单。非盟 - 相对于GAPDH管家成绩单任意单位。数据表示为平均值±SEM。
| 激发激光 | 荧光 | 特异性 | 克隆 | |
| 488个纳米 | BB515 | CD8 | 53-6.7 | |
| 488个纳米 FITC | Ly49D | 4E5 | ||
| 488个纳米 | PE | F4 / 80 | 6F12 | |
| 488个纳米 | PE-CF594 | NK1.1 | PK136 | |
| 488个纳米 | PE-Cy5的 | CD44 | IM7 | |
| 488个纳米 | PE-Cy7的 | 的CD11b | M1 / 70 | |
| 488个纳米 | PerCP-Cy5.5的 | IgM抗体 | R6-60.2 | |
| 488个纳米 | PerCP | GR-1 | RB6-8CS | |
| 488个纳米 | AF532 | CD3 | 17A2 | |
| 488个纳米 | 碘化丙啶 | 可行性 | ||
| 405个纳米 | V450 | IGD | 11-26c.2a | 405个纳米 | BV421 | 表面CD11c | HL3 |
| 405个纳米 | BV510 | CD19 | 1D3 | |
| 405个纳米 | BV570 | TCRB | H57-597 | |
| 405个纳米 | BV605 | CD4 | RM4-5 | |
| 405个纳米 | BV650 | CD45R / B220 | RA3-6B2 | |
| 405个纳米 | BV711 | IA / IE | M5 / 114 | |
| 405个纳米 | BV786 | CD25 | PC61 | |
| 405个纳米 | 发展655 | CD45 | 30-F11 | |
| N / A | 净化的 | CD16 / CD32 | 2.4G2 | 的Fc受体块 |
| 抗体的名单使用CARDIAC细胞悬液 | ||||
| 638个纳米 | Alexa氟647 | CD31 | MEC13.3 | |
| 488个纳米 | PE | CD45 | 30-F11 | |
| 488个纳米 | PE-Cy5的 | SCA-1 | D7 | |
| 488个纳米 | PE | TER119 | TER-119 | |
表1：使用了19色的面板，并在心脏细胞悬浮抗体的名单。
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Discussion
常规FCM是基于检测的荧光探针的激励后发射的光子。在设计用于测量从另一荧光染料的信号的检测器检测到的一种荧光染料的荧光发射诱导物理重叠。发射光谱之间的这种溢出需要通过补偿进行校正。
光谱FCM和数据处理通过解混去卷积算法允许具有接近发射峰的荧光染料的无需额外补偿组合，条件是它们具有不同的光谱形状。用于分析的算法将自发荧光作为一个独立的参数，减去固体组织的细胞悬浮液的非特异性荧光。
的19个荧光染料的面板组装到分析仅使用两个激光器（488nm和405nm）的免疫细胞。实际上，当638 nm激光已开启，则32通道PMT的部分对应的此激光的激发波长为不可用。为了获得PMT的最大容量检测，红色激光已关机。小鼠脾细胞进行了分析，允许检测超过12个不同的细胞群，其中的一些包括的造血细胞的1％或更少的。
为了测试管理自发荧光光谱FCM能力，可损害分析两种不同的情况进行了测试：一个其中淋巴细胞污染上皮细胞，和一个其中自体荧光的心肌细胞进行了分析。与常规FCM相反，光谱仪允许所有淋巴细胞亚群的鉴别，甚至当它们代表次要子集。
围绕成人心肌细胞9，10的再生能力的争论中，11是部分地由于不存在的策略的DIS定罪的心脏分离活细胞的不同子集。定义标志物的独特组合，以区分不同的心脏的子集的多参数分析可能使由于大量的细胞可被分析的子集罕见的检测。胎儿心脏（E17.5）进行分析，并自动荧光细胞，这将在常规FCM逃过检测的大部分，被集成在光谱的FCM非造血存活心肌细胞室。
这种方法的一个经常出现的问题是高质量的荧光标记的抗体的要求。使用串联染料时，其中，所述串联的组分占优势，这是特别关键的。例如，BV786和Cy7的-PE可能难以分别从BV421和PE区分。
基于质谱FCM提供比用传统的FCM获得更高的分析能力，而不需要补偿米atrices。这个原稿提供的证据表明存在另一种办法，显示高的分析能力，由于没有复杂的补偿矩阵，细胞亚群由于自发荧光的未受损伤歧视，仍然需要用于质谱FCM没有额外的金融承诺。光谱FCM因而似乎是首选从各种各样的固体组织通常不适合于常规的FCM，可以在肿瘤，发育中使用的获得的细胞的分析的方法，和干细胞生物学。
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Disclosures
作者什么都没有透露。
Acknowledgments
我们承认在K·富塔默拉，谁也批判校订手稿的光谱仪的技术和理论贡献。我们也感谢C.艾特·曼苏尔，P.-H. Commere，A班代拉和P.佩雷拉批判地阅读手稿和无尽的技术咨询和支持。我们也感谢P·佩雷拉为防Vγ7-APC和Vδ4生物素标记的抗体的礼物。我们aknowledge从巴斯德研究所的中心D'Enseignements的欢迎和支持拍摄物流。这项工作是由巴斯德研究所，研究所国家德拉桑特等德拉RECHERCHE MEDICALE（INSERM）的支持;瑞士国家科学基金会和巴斯德交易所鲁（SS）; Fundação第一个西恩西亚EA TECNOLOGIA - SFRH / BD /二千零十分之七万四千二百一十八（MV）;和巴黎大学狄德罗，法新社国立德拉RECHERCHE（ANR）项目Twothyme的ANR，并计划REVIVE（对于未来的投资）（AC）。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Mice | Janvier Labs | CD45.2 | Source of cells |
| Ethanol 70% | VWR | 83801.36 | Sterilization |
| DPBS (Ca2+, Mg2+) | GIBCO ThermoFisher | 14040-174 | Embryos collection |
| Hanks' Balanced Salt Solution (+Ca2+ +Mg2+) (HBSS+/+) | GIBCO Life ThermoFisher | 14025092 | Dissociation, digestion and staining solutions |
| Hanks' Balanced Salt Solution (-Ca2+, -Mg2+) (HBSS-/-) | GIBCO Life ThermoFisher | 14175095 | Dissociation, digestion and staining solutions |
| Fetal calf serum (FCS) | EUROBIO | CVFSVF00-0U | Dissociation, digestion and staining solutions |
| Collagenase | Sigma | C2139 | Enzymatic solution |
| 90 x 15 mm, plastic tissue culture Petri dishes. |
TPP | T93100 | Embryos and hearts collection |
| 35 x 15 mm, plastic tissue culture Petri dishes. |
TPP | T9340 | Hearts collection |
| Fine iris scissor | Fine Science Tools | 14090-09 | Dissection tools |
| Gross forceps (narrow pattern forceps, curved 12 cm) | Fine Science Tools | 11003-12 | Dissection tools |
| Fine forceps (Dumont no. 7 forceps) | Fine Science Tools | 11272-30 | Dissection tools |
| Scalpel | VWR | 21909-668 | Dissection tools |
| LEICA MZ6 Dissection microscope | LEICA | MZ6 10445111 | Sampling; Occular W-Pl10x/23 |
| Cold lamp source | SCHOTT VWR | KL1500 compact | Sampling; Two goose neck fibers adapted |
| FACS tubes | VWR | 60819-310 | Digesting cells |
| 96 well plate (round bottom) | VWR | 10861-564 | Staining cells |
| Nylon mesh bolting cloth sterilized, 50/50 mm pieces. |
SEFAR NITEX | SEFAR NITEX | Cell filtration |
| UltrasComp eBeads | |||
| Fluorescence labeled antibodies | Biolegend | Catalogue number see table below | Staining cells |
References
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