Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Medicine

一种优化的血凝抑制 (HI) 测定流感特异抗体滴

doi: 10.3791/55833 Published: December 1, 2017
* These authors contributed equally

Summary

本协议描述了如何进行血凝抑制试验, 以量化流感疫苗接受者血清样本中的流感特异性抗体滴。第一种方法是通过血凝法确定最佳病毒抗原浓度。第二种方法通过血凝抑制来量化流感特异抗体滴。

Abstract

抗体滴是常用的替代标志, 用于血清保护流感和其他病原体。对抗体产生前和后接种的详细知识需要了解疫苗诱导免疫。本文介绍了一个可靠的点对点协议来确定流感特异抗体滴。第一个协议描述了一种方法来指定血凝所需的抗原量, 它标准化了第二个协议中随后使用的浓度 (血凝试验, HA 测定)。第二个协议描述了对不同病毒株的流感特异性抗体滴的定量化, 使用人血清或细胞培养清 (血凝抑制法, HI 测定) 的序列稀释。

作为一个应用实例, 我们展示了一个健康的队列的抗体应答, 它接受了三价灭活流感疫苗。此外, 还说明了不同流感病毒之间的交叉反应性, 并解释了使用不同类型的动物红细胞 (红细胞) 减少交叉反应性的方法。讨论突出了所提出的化验的优缺点, 以及如何确定流感特异抗体滴可以提高对疫苗相关免疫的认识。

Introduction

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

感染流感病毒与相当大的发病率, 死亡率和高医疗费用相关的1,2,3,4。特别是, 老年人、新生儿、孕妇和慢性病患者面临更严重的临床后果。因此, 预防循环流感病毒株的接种是降低高危人群疾病负担的主要措施。疫苗接种后个体免疫应答的增加,例如, 高于保护性阈值的流感特异性抗体, 降低了个体感染的风险, 并在总体上减少了病毒在人群中传播的可能性5. 详细了解不同人群及各年龄组的疫苗诱导体液免疫应答是回答重要临床问题的关键因素678,9, 例如: 为什么有些老年患者尽管曾接种过疫苗, 但仍有感染?什么是 "好" 和 "足够" 疫苗诱导的保护?疫苗应多久免疫患者才能达到保护性滴?什么是最有效的剂量?新佐剂对后接种抗体滴的影响是什么?对疫苗特异抗体的测定可以帮助回答这些重要问题, 提高疫苗接种效果。

病毒特异性抗体滴的定量可以用各种免疫学方法进行。这包括固相10或基于磁珠的 ELISA11化验、HI 化验12和中和分析13。以 ELISA 为基础的方法可以筛选相对大量的血清标本对各种抗原。另外, 可以分别探讨病原体特异免疫球蛋白 (Ig) 和 IgG。虽然抗原的特征,如例如, 线性氨基酸序列或类似病毒的微粒可能影响抗体的结合, 潜在的表位的光谱是非常宽广的并且不提供信息关于是否抗体响应具有功能相关性。

与此相反, 中和试验确定了抗体在功能上抑制细胞感染的潜能, 从而反映了中和电位。然而, 这种方法是非常劳动密集型, 需要培养特定的细胞系和活病毒, 因此, 它是费时, 昂贵, 并要求特殊设备。

本文介绍了一个循序渐进的世界卫生组织 (WHO) 为基础的 HI 协议12 , 以量化流感特异性抗体滴。血凝是某些病毒导致红细胞凝集的一种特征性效应。这种效果与患者血清的抑制, 使抑制抗体浓度的测量, 这反映了中和效应。

我们修改了 WHO 协议的工作流程, 以便在同一时间更有效地处理多个样本, 从而减少所需的时间。第一个协议描述了特定流感抗原的凝集电位的测定。这样做, 确定了正确的流感抗原浓度的第二个协议。这部分应重复每一个新的病毒抗原, 以及每一批血液。

第二个协议描述了流感特异性抗体滴的测定。针对流感病毒和人血清样本的研究, 提出的协议进行了优化但是, 它也可以用于小鼠血清样本或细胞培养清的刺激免疫细胞,例如, 特定病毒 B 细胞。结果可以确定为绝对测量滴。在许多疫苗研究中, 每个特定种群都显示了几何平均滴和95% 置信区间。对于解释, seroprotection 或血清经常被用来描述人口对某种病毒的易感性。Seroprotection 被定义为≥1:40 的效价, 血清为超过4倍的效价增加与 seroprotective 滴在两个时间点之间的成就 (最常见的预接种和30天后接种使用)。

这两种协议都很容易使用, 而且可以适应范围广泛的研究问题。特别是, 他们可以用来确定可靠和快速的抗体滴对其他各种病毒的血凝能力, 如麻疹, polyomaviruses, 腮腺炎, 或风疹14,15,16.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

研究方案通过当地道德审查委员会 (www.EKNZ.ch) 批准, 并获得了所有与会者的书面知情同意。

1. 血清采集

  1. 在感兴趣的时间点从人体收集血清样本。在这项研究中, 我们收集的血清在0天 (流感疫苗接种时间), + 7, + 30, + 60, 和 +180 后接种。
  2. 为了获得血清, 离心的样品管在 1200 x g 为10分钟室温 (20-25 ° c)。
    注: 非离心血液样品应贮存在4° c, 且不超过24小时。
  3. 将血清分到不同的管中 (冷冻瓶), 并在-80 ° c 冷冻直至使用。
  4. 执行随后的化验批次-明智的, 包括一个人的所有时间点, 以减少在病人的变异性。

2. 抗原的制备

警告: 使用五种不同的抗原 (请参见材料表)。在生物安全2级 (BSL-2) 实验室制备抗原。

  1. 根据制造商的指示, 重建一个冻干流感抗原安瓿的总内容与1.0 毫升蒸馏水, 并允许溶解抗原在室温下至少站立5分钟, 然后再继续。
  2. 将抗原溶液分至1.5 毫升管, 并在-80 ° c 冷冻, 直至进一步使用。

3. 霍乱滤液的制备

注: 霍乱滤液根据 WHO 协议12被用作受体破坏酶 (RDE)。这将消除血清中的天然抑制剂, 这将干扰化验17

  1. 根据制造商的说明重组冻干 RDE。
  2. 将 RDE 溶液储存在4° c 的15毫升管中直到进一步使用。

4. HA 测定

注意: 为了确保高含量的样品在几个板块之间是可比较的, 每个盘子必须使用相同数量的病毒颗粒。ha 检测 (也称为 ha 滴定) 是用来量化的病毒粒子的血凝必要的, 并记录在 ha 单位。血凝的 "单位" 是一个操作单位, 依赖于用于 HA 滴定的方法, 而不是测量绝对数量的病毒。因此, HA 单位被定义为凝集标准红细胞悬浮液的等量量所需的病毒数量。根据 WHO 的标准量, 用于高含量的检测是每25µL 4 公顷的单位。有关 HA 测定的原理的说明, 请参见图 1

Figure 1
图 1: 血凝和血凝抑制的原理.在没有病毒和抗体 (左栏) 的阴性控制情况下, 没有血凝发生, 只有在流感病毒 (中柱) 存在的红细胞 hemagglutinate。然而, 当流感病毒的血被特定病毒抗体阻断时, 就不会发生血凝 (右栏)。请单击此处查看此图的较大版本.

注: 所使用的红细胞取决于检测中的流感病毒类型 (表 1)。此外, 对于各种类型的96井微滴板, 孵化时间以及非粘结细胞的外观不同 (表 2)。

流感抗原 A/California/7/09 (H1N1) A/Switzerland/9715293/2013 (H3N2) A/Texas/50/2012 (H3N2) B/Brisbane/60/08 B/Massachusetts/02/2012
红细胞种类 豚鼠 豚鼠 土耳其 土耳其

表 1: 流感抗原及相应种类的红细胞。根据制造商的说明 (NIBSC)。

红细胞种类 土耳其 豚鼠 人型 O
红细胞浓度 (v/v) 0.75% 0.75% 1% 1%
孔板类型 V 底 V 底 U 底 U 底
孵化时间, RT 30分钟 30分钟 1小时 1小时
非粘结细胞的外观 按钮* 按钮* 光环 光环

表 2: 不同种类的红细胞的测定条件.根据世卫组织的议定书。(* 倾斜时流动)。

  1. 红细胞悬浮液的制备
    1. 稀释红细胞悬浮物 (10%, v/v; 除了人类类型 O) (见材料表) 与磷酸盐缓冲盐水 (PBS), 使适当浓度的鸟类和哺乳动物红细胞的0.75% 和 1%, 分别。

Figure 2
图 2: HA 检测的板设计.HA 滴定是重复执行的。控制行中没有添加抗原。还请参见图 4确定最佳抗原浓度。请单击此处查看此图的较大版本.

  1. 96井微滴板的制备
    注意: 有关板设计的概述, 请参见图 2
    1. 使用多通道吸管 (图 2), 在96阱微滴板的每行使用1至12的µL 中添加25的 PBS。使用 V 型微滴板时, 与禽红细胞, 如鸡肉和土耳其工作。使用 U 型微滴板时, 与哺乳动物红细胞, 如豚鼠和人类类型 O (表 2) 工作。
    2. 在抗原行的第一个井中加入25µL 流感抗原, 这是以重复的方式排列的。控制行中不添加抗原。控制行不应显示血凝效果并充当负控制 (图 2)。
    3. 通过使用多通道吸管将25µL 从抗原行的第一口井转移到连续井, 进行连续2倍稀释。每稀释一步由移上下轻轻10次。
    4. 丢弃最后一口井的最后25µL。
    5. 使用多通道吸管将 PBS 的25µL 添加到1到12的每一个行中, 以达到每井50µL 的总体积。
    6. 加入50µL 的红细胞悬浮液, 每一个使用多通道吸管。
    7. 小心地轻敲盘子10次在所有四边混合。
    8. 用盖子盖住盘子, 在室温下孵育适当的时间, 这取决于所使用的红细胞种类 (参见表 2)。在孵化时不要移动盘子。

Figure 3
图 3: 鸟类和哺乳动物红细胞的凝集模式.在与禽红细胞工作时, 使用 V 型微滴板。读数是在倾斜的板块位置, 非粘结红细胞开始运行下来形成一个撕裂状的形状。U 形孔板使用时, 与哺乳动物红细胞。然后在非倾斜位置进行读数, 非粘结红细胞形成一个小光环。请单击此处查看此图的较大版本.

  1. 阅读板
    注: 与哺乳动物红细胞相比, 由于不同形状的微滴度井 (图 3), 在使用禽红细胞时, 读数略有不同。
    1. 禽红细胞的读数
      1. 倾斜板90°二十五年代。
        注: 倾斜板对禽型的分化至关重要, 因为所有三种不同类型的凝集模式 (完全粘结、部分粘结和非粘结) 在不倾斜时显示为按钮。
      2. 立即标记结果, 而该板仍处于倾斜位置, 在96井板的打印方案。禽红细胞的凝集模式如图 3所示。
    2. 哺乳动物红细胞的读数
      1. 将结果标记在96井板的打印方案上, 而不倾斜板 (工作台的水平位置)。
        注: 当血凝发生时, 粘结细胞不会沉淀到底部, 而非粘结细胞则会出现在井底的光环中。部分粘结的细胞的晕强度较小, 直径较大 (图 3)。
    3. 4公顷单位的测定。
      注: HA 滴定终点是完全血凝发生的最后一处井。这井包含1公顷的病毒单位。由于抗原的2倍稀释, 在 ha 滴定终点之前的两口井是包含4公顷病毒的井 (图 4)。

Figure 4
图 4: ha 滴定与禽红细胞的读数, 以确定 4 ha 单位的效价.用血凝试验 (抗原滴定法) 测定血凝所需的最佳抗原量。最后一井, 完全血凝发生是 ha 滴定终点和包含1公顷单位。由于抗原的2倍稀释, 在 ha 滴定终点之前有两口井, 其滴度对应于4公顷的单位。请单击此处查看此图的较大版本.

5. HI 检测

注意: 该协议的工作流程已经过优化, 可以同时使用 PCR 管条纹和热循环更有效地处理多个样品。

  1. 血清标本的制备
    注: 在 BSL-2 实验室制备血清样品。
    1. 在室温下解冻每个人的每个时间点的冰冻血清样本 (见步骤 1.2)。
    2. 将每个解冻的血清样本的分10µL 添加到 PCR 管条 (一条带10管) 的试管中。
      注: 使用 PCR 管条的最大优点是多通道吸管可用于以下步骤的 HI 测定;这节省了大量的时间, 当测试大量的血清样本和执行重复的措施相同的样本抗体滴对不同的病毒株。
    3. 将 aliquoted 血清样本储存在-80 ° c 的 PCR 管条中直到使用。
    4. 在进行 HI 化验前的一天, 在室温下解冻血清样品等分。
    5. 在一个空的 PCR 管中加入10µL 的适当抗血清。
      注意: 作为一个积极的控制, 抗血清对特定的病毒必须匹配使用的病毒。正向控制允许在多个板上对板的性能进行标准化。
    6. 使用多通道吸管将30µL 的霍乱滤液溶液添加到每个血清分和抗血清 (3 卷霍乱滤液到1的血清) 中。
    7. 将 pcr 管放在 pcr 的96井机架上, 或者是一个空的尖盒和 5 s 的涡流。
    8. 用热循环在37° c 的夜间孵育样品。
    9. 在56° c 孵育样品30分钟, 用热循环将霍乱滤液灭活。
      注: 根据热循环, 此步骤可编程以进一步自动化过程。
    10. 将 pcr 管放在 pcr 的96井机架上, 或者是一个空的尖盒和 5 s 的涡流。
    11. 将样品储存在4° c 的冰箱中, 直到用于 HI 化验。

Figure 5
图 5: 板的设计和工作流程的 HI 检测.两个人的五时间点可以在一个板块上测量。高滴度范围从8到1024。对所用抗原的抗血清作阳性对照, 并进行反滴定检查抗原稀释是否等于 4 HA 单位。血清样本的序列稀释显示为2个人疫苗接受者。 请单击此处查看此图的较大版本.

  1. HI 检测
    注: 为高分析的原则的例证参见图 1。根据病毒, 不同种类的红细胞用于检测 (表 1)。不同种类的红细胞用于各种类型的 96-井板, 孵化时间以及非粘结细胞的外观不同 (表 2)。对于 HI 化验, 4 公顷的病毒或抗原的单位被添加到2倍稀释系列的样品。
    1. 抗原溶液的制备
      1. 根据所使用的96井板的数量计算所需抗原溶液的体积 (25 µL 抗原每 96 = 2400 µL 抗原每 96-井板; 增加100µL 每盘由于多通道吸管的使用水库; 共2.5 毫升的 antigen 每盘)。
        注: 例如, 如果测量100血清样本, 则需要10板 (每盘10样品): 2.5 毫升 x 10 = 25 毫升的抗原溶液总共需要。
      2. 使用 PBS 为计算出的容积准备适当稀释 4 HA 单位。
        注: 4 公顷单位是确定的 ha 化验。对于适当的抗原量, 除以与 4 HA 单位对应的滴度计算的体积。例如, 4 HA 单位对应于稀释 1/64, 并且我们需要1.5万µL 抗原解答是需要的: 1.5万/64 = 234.4 µL 溶解冻干流感抗原被增加。
    2. 红细胞悬浮液的制备
      1. 根据所使用的96井微滴度板的数量计算红细胞悬浮液的体积 (50 µL 红细胞悬架每井 x 96 = 4800 µL 红细胞悬浮每 96-井板; 添加200µL 每板额外由于使用了一个水库为多通道吸管).
      2. 稀释红细胞悬浮液 (通常为 10%, v/v; 除了人型 O) 与 PBS, 使适当的浓度为鸟类和哺乳动物红细胞的0.75% 和1% 分别。
    3. 96井微滴板的制备
      1. 标签96井微滴板 (样品 ID, 阳性对照, 和背部滴定)。请仔细检查图 5中的板方向。
      2. 除了 "后滴定" 行的第一个井 (图 5, 12th行), 使用多通道吸管将 PBS 的25µL 添加到每个井。
        注: 采用后滴定法检查所使用的抗原稀释是否等于4公顷的单位。如果在 "后滴定" 排的前三井中发生血凝, 而在第四井则不存在, 则表明 4 HA 单位的抗原效价。
      3. 在 "后滴定" 行 (12th行) 的第一个井中添加50µL 的准备抗原溶液 (在5.2.1 中描述)。
      4. 使用多通道吸管, 将 RDE 处理过的血清样品的25µL 添加到每片1至10排的第一口井。
      5. 将适当抗血清的25µL 添加到 11th行的第一个井中作为阳性对照。
      6. 通过使用多通道吸管将25µL 从每行 (1-12) 的第一口井转移到连续井, 执行串行2倍稀释。混合由移上下 10-15 倍为每个稀释步骤。同样的提示可以用于每一个稀释步骤的每个样品。
      7. 丢弃最后一口井的最后25µL。
      8. 增加25µL 的抗原溶液, 使用多通道吸管, 每行1至 11 (血清样本和抗血清)。如果他们不接触水井, 也可以使用同样的技巧。
      9. 在 "后滴定" 行 (12th行) 的每个井中添加25µL 的 PBS 而不是抗原。
      10. 小心地轻敲盘子10次在所有四边混合。
      11. 用盖子盖住盘子, 在室温下孵育30分钟。在孵化时不要移动盘子。
      12. 每井加50µL 的红细胞悬浮液。
      13. 小心地轻敲盘子10次在所有4边混合。
      14. 用盖子盖住盘子, 在室温下孵育适当的时间, 这取决于所使用的红细胞种类 (参见表 2)。在孵化时不要移动盘子。
    4. 阅读板
      注: HI 滴度是最后稀释 (抗) 血清的倒数, 完全抑制血凝。重要的是要考虑到, RDE 处理的血清已经稀释 1:4, 并在连续稀释步骤后, 在第一口井的血清稀释 1:8, 这相当于一个 HI 效价8。
      1. 禽红细胞的读数
        1. 倾斜板90°二十五年代。
          注: 倾斜板对禽型的分化至关重要, 因为所有三种不同类型的凝集模式 (完全粘结、部分粘结和非粘结) 在不倾斜时显示为按钮。
        2. 立即标记结果, 而该板仍处于倾斜位置, 在96井板的打印方案。禽红细胞的凝集模式如图 3所示。
      2. 哺乳动物红细胞的读数
        1. 在不倾斜板的情况下, 将结果标记为96井板的打印方案。
          注: 当血凝发生时, 粘结细胞不会沉淀下来, 而非粘结细胞则会出现在井底的光环中。部分粘结的细胞的晕强度较小, 直径较大 (图 3)。
        2. 确定每个示例的 HI 并将其传输到基于计算机的表 (图 6)
        3. 注: 部分粘结井被确定为较低滴度。例如, 如果一个血清样本完全抑制了凝血多达第四井 (1:64 稀释) 和 5th井 (1:128 稀释) 是部分粘结, 然后高滴度是设置到较低的效价64的最终分析 (图 6,4th行)。

Figure 6
图 6: 使用禽红细胞的 HI 检测的读数.通过 HI 试验测定了接种前后的流感特异抗体应答。在这个例子中, 人一有高滴比人二。两人在接种疫苗后均表现出抗体应答;180天在疫苗接种以后两个人的抗体滴再减少。请单击此处查看此图的较大版本.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

预防流感 H3N2 前和后接种诱导抗体应答
26健康志愿者接受了疫苗诱导的抗体应答, 他们在2014之前收到了含有流感 A/H1N1/California/2009、A/H3N2/Texas/2012 和 B/Massachusetts/02/2012 的灭活三价亚基流感疫苗。2015流感季节。图 6显示了2疫苗接收者的代表性示例。有趣的是, 在那个特定的流感季节, A/H3N2/Texas/2012 没有循环, 相反, 这个季节包括了一些不同的病毒株: A/H3N2/Switzerland/2013。病毒血的 A/H3N2/Texas/2012 和 A/H3N2/Switzerland/2013 显示97% 序列的身份和不同的只有十一氨基酸 (参见表 4), 其位置突出显示在图 7

Figure 7
图 7: 血 A/H3N2 流感菌株的比较.我们比较了 A/Texas/50/2012 和 A/Switzerland/9715293/2013 病毒株的血。由于没有血晶体结构的这些菌株, 我们使用的晶体结构的高度相似的血流感应变 A/Victoria/361/201118, 显示98% 序列的身份与得克萨斯州的应变和95%序列身分与瑞士劳损。在得克萨斯州和瑞士菌株不同的氨基酸位置被强调。请单击此处查看此图的较大版本.

我们观察了 A/H3N2/Switzerland/2013 和 A/H3N2/Texas/2012 病毒株的交叉反应免疫反应。HI 滴抗流感 A/H3N2/Switzerland/2013 是显着较低的几何平均滴和诱导 seroprotection (图 8A) 相比, 流感 A/H3N2/Texas/2012 (图 8B)。

Figure 8
图 8: 健康献血者的几何平均抗体-滴.用两种不同抗原测定25例健康献血者的滴 (GMTs) 的几何平均抗体。显示了 A/H3N2/Switzerland/2013 (A) 和 A/H3N2/Texas/2012 (B) 的平均滴。免疫应答由于接种可以被观察作为增加滴在接种以后 (d7-d60), 与 GMTs 在接种之前 (d0)。接种后180天, GMTs 再次减少。注意, 只有 A/H3N2/Texas/2012 (在疫苗中) 达到保护性滴。条形表示几何平均滴, 而晶须表示95% 置信区间。虚线指示 seroprotection 阈值。图中显示了 seroprotected 人的百分比 (滴度 > 1:40)。请单击此处查看此图的较大版本.

疫苗接种后, 大多数受试者的抗体滴 A/H3N2/Texas/2012 增加;虽然疫苗中不存在 A/H3N2/Switzerland/2013 菌株, 但在某些科目中, A/H3N2/Switzerland/2013 的效价也有所增加。图 9显示了两个滴在所有时间点之间的相关性, 其中的线性回归模型的 R2为0.745。正如人们所期望的那样, 诱导抗体对 A/H3N2/Switzerland/2013 的反应是不那么有效的。

Figure 9
图 9: A/H3N2 流感菌株之间的交叉反应.每个个体和时间点的 A/H3N2/Texas 滴是针对相应的 A/H3N2/Switzerland 滴的。线性回归模型显示 R2的0.745。请单击此处查看此图的较大版本.

血凝电位是基于血液的类型
病毒血显示不同物种依赖性的潜能, 以 hemagglutinate 红细胞。这种物种依赖性效应也影响血凝抑制试验。为了提高测定的抗病毒滴的特异性, 我们评估了五种病毒抗原 (流感 B/Brisbane/60/2008 和 B/Massachusetts/02/2012、流行性感冒 A/H1N1/California/2009、A/H3N2/Texas/2012 和/H3N2/Switzerland/2013), 以达到最大的血凝, 但也最低的交叉反应。我们利用国家生物标准和控制研究所 (NIBSC) 的阳性对照血清对每个抗原进行这些化验。

对于 B 型流感, 我们可以观察到, B/Massachusetts/02/2012 诱导的抗体应答不提供预防 B/Brisbane/60/2008。相反, 抗 B/Brisbane/60/2008 抗体显示交叉反应对 B/Massachusetts/02/2012 在4倍的低效价在不同的红细胞 (参见表 3)。利益, 几内亚猪血液没有适当地 hemagglutinate 与流行性感冒 b. 土耳其血液在显示潜力 hemagglutinate 和最高的滴以相对地低发怒反应性除早先被提及的 A/H3N2/Texas 和/瑞士菌株。

土耳其 豚鼠 人型 O
B/布里斯班 1024 - 1024 1024
B/马萨诸塞州 1024 384 768 1024
A/H3N2/Switzerland 1024 1024 - 1024
A/H3N2/Texas 1024 1024 512 1024
A/H1N1/California 1024 1024 768 768

表 3:阳性对照滴不同种类的流感 HA 抗原.

A/H3N2/Texas/2012 菌株 A/H3N2/Switzerland/2013 菌株 位置
1 胺 (N) 丙氨酸 (A) 128
2 丙氨酸 (A) 丝氨酸 138
3 异亮氨酸 (I) 精氨酸 (R) 140
4 精氨酸 (R) 甘氨酸 (G) 142
5 胺 (N) 丝氨酸 145
6 苯丙氨酸 (F) 丝氨酸 159
7 甘氨酸 (G) 缬氨酸 (V) 186
8 脯氨酸 (P) 丝氨酸 198
9 丝氨酸 苯丙氨酸 (F) 219
10 胺 (N) 天门冬氨酸 (D) 225
11 * 赖氨酸 (K) 精氨酸 (R) 326
* 不显示在图8的晶体结构, 因为血是切在残渣325。

表 4: A/H3N2/Texas/2012 与 A/H3N2/Switzerland/2013 菌株间血不同氨基酸的列表

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

对疫苗接种前后流感病毒特异性抗体滴的定量是一种重要的研究手段。基于保护病毒感染的替代措施, 如 seroprotection (> 1:40) 或血清 (4 倍效价增加), 疫苗接种策略可以优化9。使用所提供的协议可以确定: (i) 特定病毒的血凝潜能, 和 (ii) 抗体滴的病毒的利益。

修改和故障排除:

此协议基于 WHO 标准12。我们用 PCR 管条对血清制剂进行了修改 (见步骤 5)。这一修改有助于大大减少工作量和提高化验的吞吐量。此外, 在抗原滴定步骤中, 我们将抗原量减少了 1/4, 这是一种成本有效的加班。低量的血清 (10 µL) 可用于 RDE 治疗, 这有助于特别是当样本量有限 (例如, 老鼠血清)。抗体测量板中包括后滴定和阳性对照, 作为一种适当的内部控制, 监测红细胞的老化。

此外, 我们使用不同的红细胞浓度比那些在 WHO 标准12设置的最佳大小的红细胞凝块的良好视觉读数。为了保证这一点, 我们建议在化验前检查红细胞浓度。虽然, 我们没有优化这部分在我们的协议, 方法, 如吸光度测量与 OD 或细胞计数可以使用。

如果 RDE 没有完全灭活, 红细胞可以 desialylated 和逆转 HA 阳性井时, 血凝是在室温下测量。虽然我们从来没有观察到这个问题, 在这种情况下, 我们建议执行 HI 在4° c, 因为 RDE 活动是显着低在4° c。然而, 在4° c 执行 HI 试验则较慢。

技术的局限性:

高含量检测的几个关键方面包括以下几点: 有趣的是, 血凝是强烈依赖于特定类型的红细胞 (如, 如, 火鸡或豚鼠红细胞)。在评估特定病毒株之前, 应测试最佳血型, 并在整个化验中使用相同类型的血液。虽然病毒之间的交叉反应性的诱导可能产生免疫优势的情况下, 略有新的病毒19,20, 这可能会导致一些问题从诊断角度来看, 由于低特异性。因此, 在研究中, 应仔细讨论类似病毒之间的交叉反应。通过选择特定物种的红细胞, 可以降低交叉反应的数量。

关于现有方法的意义:

HI 是一种良好的黄金标准方法, 提供了高度的重现性和可靠的结果。其他技术, 如 ELISA 可以检测非中和抗体, 而 HI 只检测抗体绑定到 HA 循环, 从而与中和。

协议中的关键步骤:

最关键的步骤包括血清治疗与 RDE 灭活不抑制剂和约束力的 HA 的病毒。另一个关键的步骤是控制红细胞的溶血性随着时间的推移而老化。

未来应用:

该协议可用于其他具有血凝潜能的病毒。虽然我们在这里只显示了人类血清样本的结果, 但也可以用来测定小鼠血清或细胞培养上清液中带有刺激 B 细胞的抗体滴 (未显示数据)。总之, HI 允许快速和可重复的评估疫苗诱导抗体滴。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

a.e 得到了 "SNSF Ambizione 评分" 计划 (PZ00P3_154709)、"Forschungsfond、Förderung strategischer Projekte" 巴塞尔大学、Stiftungsinfektionskrankheiten 巴塞尔和 Bangeter Rhyner 基金会的研究资助。力得到奥地利格拉茨技术大学的资助。. 承认, 在系统生物学计划 (9th调用) 的 SystemsX.ch 倡议的 iPhD 奖学金的支持。

Acknowledgments

没有.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
25 ml Disposable Multichannel Pipette Reservoirs Integra 4312
8-well PCR tubes Brand GMBH 781332 For serum aliquots
96-well microtiter plate, U-shaped TPP 92097 For HI assay when using mammalian RBCs
96-well microtiter plate, V-shaped Corning Costar 3897 For HI assay when using avian RBCs
Aqua ad iniect. Steril Bichsel AG 1000004 For preparing influenza antigen and cholera filtrate solutions
Chicken RBC (10%) Cedarlane CLC8800 10% suspension of chicken red blood cells in Alsever's solution
Cholera filtrate Sigma-Aldrich C8772 Used as receptor destroying enzyme (RDE)
Dulbecco's PBS Sigma-Aldrich D8537 For diluting the serum samples, RBCs and antigens
Eppendorf Multichannel pipette, 12-channel, 10-100 µl Sigma-Aldrich Z683949
Eppendorf Multichannel pipette, 8-channel, 10-100 µl Sigma-Aldrich Z683930
Guinea Pig RBC (10%) Cedarlane CLC1800 10% suspension of guinea pig red blood cells in Alsever's solution
Influenza Anti-A/California/7/09 HA serum  NIBSC 14/134  Used as positive control at the HI assay
Influenza Anti-A/Switzerland/9715293/2013-like HA serum  NIBSC 14/272 Used as positive control at the HI assay
Influenza Anti-A/Texas/50/2012-Like HA Serum  NIBSC 13/178 Used as positive control at the HI assay
Influenza Anti-B/Brisbane/60/2008-HA serum  NIBSC 13/254  Used as positive control at the HI assay
Influenza Anti-B/Massachusetts/02/2012 HA serum  NIBSC 13/182 Used as positive control at the HI assay
Influenza antigen A/California/7/09 (H1N1)(NYMC-X181)  NIBSC 12/168 Inactivated, partially purified A/California/7/09 (H1N1)(NYMC-X181)  virus (ca. 46µgHA/ml)
Influenza antigen A/Switzerland/9715293/2013 (NIB88) NIBSC 14/254 Inactivated, partially purified A/Switzerland/9715293/2013 (NIB88) virus (ca. 55µgHA/ml)
Influenza antigen A/Texas/50/2012 (H3N2)(NYMCX-223) NIBSC 13/112 Inactivated, partially purified A/Texas/50/2012 (H3N2)(NYMCX-223) virus (ca. 74µgHA/ml)
Influenza antigen B/Brisbane/60/2008 NIBSC 13/234 Inactivated, partially purified B/Brisbane/60/2008 virus (ca. 42µgHA/ml)
Influenza antigen B/Massachusetts/02/2012 NIBSC 13/134 Inactivated, partially purified B/Massachusetts/02/2012 virus (ca. 35µgHA/ml)
Serum-Tubes S-Monovette, Sardstedt 01.1601.100 For serum extraction with clotting activator
Single Donor Human RBC, Type 0 Innovative Research IPLA-WB3  Suspension of single donor human red blood cells in Alsever's solution (ca. 26%)
Turkey RBC (10%) Cedarlane CLC1180 10% suspension of turkey red blood cells in Alsever's solution
Phosphate Buffered Saline (PBS) Gibco

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Prevention and control of seasonal influenza with vaccines. Recommendations of the Advisory Committee on Immunization Practices--United States, 2013-2014. MMWR Recomm Rep. 62, Centers for Disease, C. & Prevention. RR-07 1-43 (2013).
  2. Dominguez-Cherit, G., et al. Critically Ill patients with 2009 influenza A(H1N1) in Mexico. JAMA. 302, (17), 1880-1887 (2009).
  3. Fox, B. D., et al. Pandemic influenza (H1N1): impact on lung transplant recipients and candidates. J Heart Lung Transplant. 29, (9), 1034-1038 (2010).
  4. Piercy, J., Miles, A., Krankheiten, S. B. fG. S. V., Values, M. The Economic Impact of Influenza in Switzerland: Interpandemic Situation. Swiss Federal Office of Public Health, Division of Epidemiology and Infectious Diseases, Section of Viral Diseases and Sentinel Systems. (2003).
  5. Barclay, V. C., et al. Positive network assortativity of influenza vaccination at a high school: implications for outbreak risk and herd immunity. PLoS One. 9, (2), 87042 (2014).
  6. Baluch, A., et al. Randomized controlled trial of high-dose intradermal versus standard-dose intramuscular influenza vaccine in organ transplant recipients. Am J Transplant. 13, (4), 1026-1033 (2013).
  7. Haralambieva, I. H., et al. The Impact of Immunosenescence on Humoral Immune Response Variation after Influenza A/H1N1 Vaccination in Older Subjects. PLoS One. 10, (3), 0122282 (2015).
  8. Egli, A., et al. Vaccine adjuvants--understanding molecular mechanisms to improve vaccines. Swiss Med Wkly. 144, 13940 (2014).
  9. O'Shea, D., Widmer, L. A., Stelling, J., Egli, A. Changing face of vaccination in immunocompromised hosts. Curr Infect Dis Rep. 16, (9), 420 (2014).
  10. Meulemans, G., Carlier, M. C., Gonze, M., Petit, P. Comparison of hemagglutination-inhibition, agar gel precipitin, and enzyme-linked immunosorbent assay for measuring antibodies against influenza viruses in chickens. Avian Dis. 31, (3), 560-563 (1987).
  11. Martins, T. B. Development of internal controls for the Luminex instrument as part of a multiplex seven-analyte viral respiratory antibody profile. Clin Diagn Lab Immunol. 9, (1), 41-45 (2002).
  12. Webster, R., Cox, N., Stöhr, K. WHO Animal Influenza Manual. WHO/CDS/CSR/NCS. 2002.5, 1-99 (2002).
  13. Mittelholzer, C. M., et al. Human cell lines used in a micro neutralization test for measuring influenza-neutralizing antibodies. Scand J Immunol. 63, (4), 257-263 (2006).
  14. Hamilton, R. S., Gravell, M., Major, E. O. Comparison of antibody titers determined by hemagglutination inhibition and enzyme immunoassay for JC virus and BK virus. J Clin Microbiol. 38, (1), 105-109 (2000).
  15. Kumakura, S., et al. Comparison of hemagglutination inhibition assay and enzyme immunoassay for determination of mumps and rubella immune status in health care personnel. J Clin Lab Anal. 27, (5), 418-421 (2013).
  16. Ogundiji, O. T., Okonko, I. O., Adu, F. D. Determination of measles hemagglutination inhibiting antibody levels among school children in Ibadan, Nigeria. J Immunoassay Immunochem. 34, (2), 208-217 (2013).
  17. Cwach, K. T., Sandbulte, H. R., Klonoski, J. M., Huber, V. C. Contribution of murine innate serum inhibitors toward interference within influenza virus immune assay. Influenza Other Respir Viruses. 6, (2), 127-135 (2012).
  18. Lee, P. S., et al. Receptor mimicry by antibody F045-092 facilitates universal binding to the H3 subtype of influenza virus. Nat Commun. 5, 3614 (2014).
  19. Blumel, B., et al. Age-related prevalence of cross-reactive antibodies against influenza A(H3N2) variant virus, Germany, 2003 to 2010. Euro Surveill. 20, (32), 16-24 (2015).
  20. Reber, A. J., et al. Seasonal Influenza Vaccination of Children Induces Humoral and Cell-Mediated Immunity Beyond the Current Season: Cross-reactivity with Past and Future Strains. J Infect Dis. (2016).
一种优化的血凝抑制 (HI) 测定流感特异抗体滴
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Kaufmann, L., Syedbasha, M., Vogt, D., Hollenstein, Y., Hartmann, J., Linnik, J. E., Egli, A. An Optimized Hemagglutination Inhibition (HI) Assay to Quantify Influenza-specific Antibody Titers. J. Vis. Exp. (130), e55833, doi:10.3791/55833 (2017).More

Kaufmann, L., Syedbasha, M., Vogt, D., Hollenstein, Y., Hartmann, J., Linnik, J. E., Egli, A. An Optimized Hemagglutination Inhibition (HI) Assay to Quantify Influenza-specific Antibody Titers. J. Vis. Exp. (130), e55833, doi:10.3791/55833 (2017).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
simple hit counter