Summary
Formålet med denne protokol er at vise placeringen af en forsinket snærende enhed (en ameroid constrictor) omkring en koronar arterie i et svin model. Denne enhed opretter en iskæmisk område af hjertet, der er nyttige for at studere nye diagnostiske Billeddannende teknikker og nye behandlingsmetoder.
Abstract
Hjerte-kar-sygdom er stadig den største årsag til dødelighed i USA. Der er mange tilgange til behandling af disse sygdomme, men uanset tilgang, en i vivo model er nødvendig for at teste hver behandling. Grisen er en af de mest anvendte store dyremodeller for hjerte-kar-sygdom. Dens hjerte er meget ens i anatomi og funktion som et menneske. Ameroid placering teknik skaber en iskæmisk område af hjertet, som har mange nyttige anvendelsesmuligheder i studere myokardieinfarkt. Denne model er blevet brugt til kirurgisk forskning, farmaceutiske undersøgelser, Billeddannende teknikker og celle behandlingsformer.
Der er flere måder at inducere iskæmiske område i hjertet. Hver har sine fordele og ulemper, men placeringen af en ameroid constrictor er stadig den mest anvendte teknik. De vigtigste fordele ved at bruge ameroid er dens udbredelse i eksisterende forskning, dens anvendelighed i forskellige størrelser til at rumme anatomi og størrelsen af fartøjet at være trange, kirurgi er en forholdsvis enkel procedure, og postoperativ overvågning er minimal, da der ikke er nogen ydre enheder til at opretholde. Dette papir giver en detaljeret oversigt over den korrekte teknik til placering af ameroid constrictor.
Introduction
Koronararteriesygdom (CAD), hvilket fører til Myokardie iskæmi, er den hyppigste årsag til invaliditet, død og sygesikringsudgifter omkring verden4 , og kan henføres til ca. 1 ud af hver 3 dødsfald i USA1,2 , 3 , 4 , 5 , 6. selv om der er sket mange fremskridt i både perkutan og kirurgiske behandlinger, så mange som en tredjedel af patienterne lider af CAD er udelukket fra disse behandlinger på grund af alder, dårligt helbred eller suboptimal anatomi4, 5 , 6 , 7. for at vurdere nye metoder til billeddiagnostik eller behandling, udviklingen af en passende dyremodel er kritisk.
Når de udvikler en dyremodel for en sygdom, bør den inducerede lidelse nøje efterligne de anatomiske og fysiologiske karakteristika for uorden i mennesker8,9. En af de mest udbredte store dyr for hjerte-kar-studier er grisen. Gris hjertet er mest nøje svarer til det menneskelige hjerte med hensyn til størrelse, anatomi og fysiologi3,6. Svarende til det menneskelige hjerte, myokardiet af grisens hjerte råder ikke over en omfattende sikkerhedsstillelse omløb6. På grund af dette, gris hjertet tåler ikke akut koronar okklusion godt, men det kan tåle en gradvis koronar okklusion. Hvis en koronararterie er langsomt tilstoppet, kan det bruges som model for kronisk myokardieiskæmi, kronisk myokardieinfarkt og hjertesvigt5,6,9,10, 11 , 12 , 13. kronisk Myokardie iskæmi kan være fremkaldt gennem stent implantation eller placeringen af en hydraulisk occluder, en fast stenose occluder eller en ameroid constrictor. Der er fordele og ulemper for alle disse metoder, der er beskrevet i detaljer i forskellige publikationer6,9,13 , men den mest anvendte metode er ameroid placering5, 6,10,11.
Ameroid constrictor består af kasein materiale indkapslet i en rustfrit stål, plastik eller titanium ring. Når placeret omkring en arterie (normalt venstre forreste faldende koronararterie (LAD) eller den venstre cirkumfleks koronar arterie (Tove)), kasein materiale absorberer de omkringliggende væske forårsager indre lumen at indsnævre gradvist, efterligne den langsomme stenose af en arterie og deraf følgende sidst fuld i okklusion9,13,14. Denne procedure anvendes alene eller sammen med andre metoder resulterer i en region af kronisk myokardieiskæmi og/eller infarkt af venstre hjertekammer af hjertet, der har været nyttig for at udvikle og evaluere nye billeddiagnostiske teknikker8, 10,15, terapeutiske behandlinger7,16,17,18 og kirurgiske procedurer19,20.
Protocol
de procedurer, der beskrives her blev godkendt af National Heart, Lung, og Blood Institute Animal Care og brug Udvalget på National Institutes of Health og i overensstemmelse med de politikker, der er skitseret i The Public Health Service politik på Human pleje og brugen af forsøgsdyr, animalsk velfærd opføre og vejledning til pasning og anvendelse af forsøgsdyr.
Bemærk: Formålet med denne kirurgiske procedure er at producere en dyremodel af kronisk myokardieiskæmi, der kan bruges til at udvikle behandlinger, der er klinisk relevant for patienter med svær CAD. Dette kan ikke opnås ved hjælp af en in vitro- model.
1. dyr
- bruge mandlige Yorkshire svin vejer mellem 12 og 15 kg.
2. pre-surgical procedurer
- For en profylaktisk antibiotikum, bruge amoxicillin og clavulanat kalium (15 mg/kg) oralt to gange om dagen begynder 24 timer forud for operationen.
Bemærk: Denne mundtlige antibiotika er startet før operationen for at sikre, at grisen vil sluge det og også sørge for, at de ikke vil have en allergisk reaktion over for medicin post-operatively. - Tilbageholder mad og vand fra gris 12t forud for operationen.
- På dagen for operationen, bedøver gris med en cocktail af ketamin (33 mg/kg), midazolam (0,5 - 0,75 mg/kg) og Glycopyrrolat (0,01 mg/kg) gives intramuskulær (IM).
- Placer et 20 G intravenøs (IV) kateter i en øre vene og intubate dyr med en 7,0 Fr endotrakealtube.
Bemærk: Justere størrelsen af IV kateter og endotrakealtube som passende for størrelsen af grisen. - Fjerne hår (barbering) på venstre side af grisen fra skulder til navlen og abdominal midterlinjen til rygsøjlen.
- Administrere profylaktisk antibiotika (piperacillin og tazobactam: 100 mg/kg IV) og smertestillende medicin (buprenorphin vedvarende frigivelse: 0,2 mg/kg subkutant (SC) eller en fentanyl transdermalt plaster 25-50 µg/h).
Bemærk: IV antibiotika er givet, fordi dyrene er fastet i 12 timer forud for operationen og får ikke den tidligere nævnte mundtlige antibiotika i løbet af denne tid. - Transportere grisen til operationsstuen og tilslutte den endotrakealtube til anæstesi maskinen udstyret med en sidestream sensor til at overvåge luftvejene gasser. Mekanisk ventilere grisen ved hjælp af en tidalvolumen 10 mL/kg som udgangspunkt og ikke overstiger en luftvejs Tryk på 30 cm H 2 O. sæt respirationsfrekvens mellem 10-20 vejrtrækninger pr. min. (bpm) og justere efter behov at holde end-tidal CO 2 ( PetCO 2) niveauer mellem 28 og 35 mm Hg. Bevar anæstesi med enten isofluran (1-3%) eller Sevofluran (2-5%).
- Placer gris højre side ned på operationsbordet. Fastgør alle nødvendige sonder til at overvåge kropstemperatur (BT), elektrokardiogram (EKG), pulsoximetri (SpO 2), etc.
- forberede operationsstedet via tre skiftevis scrubs med 2% chlorohexidine og 70% alkohol (gælder i en cirkelbevægelse begynder med center og bevæger sig udad).
- Drapere operationsstedet ved hjælp af aseptisk teknik 21.
3. Kirurgisk Procedure
- udsætte hjertet gennem en venstre torakotomi.
- Gøre en hud snit parallelt med de 4 th og 5 th intercostale mellemrum omkring 8-9 cm i længden af med no. 10 skalpel klinge.
- Skære igennem til latissimus dorsi og serratus ventralis muskler ved hjælp af en buet Metzenbaum saks og Brown Adson pincet. Bruge Elektrokauterisation at opretholde hæmostase fornødent.
- Enter i pleural hulrum via den interkostale muskulatur mellem de 4 th og 5 th ribben med Metzenbaum saks skære langs den forreste del af de 4 th rib. For at mindske risikoen for et uheld beskadige lungerne, slukke ventilator på udånder lige inden den føres ind i pleural hulrum. Når den pleural hulrum er blevet brudt, drej ventilator tilbage på.
- Bruger en lille Finochietto retractor for at sprede ribben fra hinanden, udsætter hjertet.
- Brug Debakey pincet til at gribe og løfte at hjertesækken. Bruge Potts saks til at lave et lille hul i hjertesækken, tillader luft at indtaste perikardial plads. Fortsætte snit med Potts saks over krydset af Lund og Tove arterierne.
- Brug Babcock pincet til at trække den venstre atriale vedhæng. Brug Debakey og lille ret vinkel pincet, dissekere Tove arterie fra det omgivende væv forud for eller proksimalt for grenen 1 st stump marginale.
- Placere to fartøj sløjfer under dissekeret Tove arterie, en i hver ende. Hold en størrelse 3,0 mm ameroid constrictor med lille ret vinkel pincet og løfte fartøj loops til at forsigtigt guide Tove arterie gennem åbningen af constrictor. Forsigtigt rotere constrictor, så åbningen er opad. Fjerne fartøj sløjfer. Se figur 1.
Bemærk: Tilstrækkelig dissektion af arteria er afgørende for at forhindre kinke. Vælg den passende størrelse constrictor for det enkelte dyr. Den passende størrelse constrictor vil nøje omringe fartøjet uden i første omgang snærende fartøjet. Tamsvin vejer mellem 12 og 15 kg kræver ameroid kvælerslanger størrelse 2.5-3.5 mm. Placeringen af ameroid constrictor på fartøjet, afhænger af den ønskede størrelse af området iskæmisk. - Re anslået at hjertesækken og lukke med 4-0 polypropylen suturer.
- Genoprette thorax undertryk ved at indsætte en 12 Fr brystet tube eller tilsvarende i pleural rummet end spændende ud mellem lag af lukning, generelt to interkostale rum posteriort for torakotomi websted.
Bemærk: Observere lunge for atelektase før du lukker ribbenene. Hvis nogen tegn på underinflation er observeret, re puste lungerne manuelt op til et tryk på 30 mm Hg. - Lukke brystet ved hjælp af 1 polypropylen suturer for den interkostale lag, 0 polypropylen suturer serratus og fascial lag, 2-0 polypropylen suturer for det subkutane lag, og 3-0 polypropylen suturer for subcuticular lag. Hæft eller sutur i huden.
- Vedhæfte en tre-vejs stop pik til slutningen af brystet tube og evakuere luften i brystet med en 40-60 cc sprøjten, indtil en negativ seal er opnået. Roll dyr på sin brystbenet eller modsatte side til at gøre det lettere at fjerne al luft. Når brystet fastholder undertryk, fjerne brystet tube og sutur webstedet exit. Hvis dyr er opstaldet enkeltvis post-operatively, snit kan være bandager i flere dage.
4. Postoperativ
- efter lukningen, infiltrere indsnittet langs begge sider af webstedet torakotomi med 0,25% bupivacaine.
- Vænne dyr ud af ventilator og slår anæstesi. Fjerne den endotrakealtube når dyret vejrtrækning på sin egen og synke.
- Overvåge dyret indtil det er fuldt tilbagebetalt (vågen og brystbenet). Der bør være nogen abnormiteter eller arytmier på EKG, BT skal 38,7-39,8 ° C, SpO 2 bør være 95-100%, og den respirationsfrekvens skal være 32-58 bpm.
- Administrere amiodaron (100 mg oralt to gange om dagen) og clopidogrel bisulfate (75 mg oralt en gang om dagen) at forhindre blodpropper og arytmier. Fortsætte med amoxicillin og clavulanat kalium (15 mg/kg) oralt to gange om dagen for 10 dage efter operationen. Post-operative smerter styres med buprenorphin SR (vedvarende frigivelse) 0,2 mg/kg. SQ hver tre dage. Buprenorphin SR kan suppleres med carprofen (4,4 mg/kg) én gang og derefter (2,2 mg/kg) PO eller IM bud.
- Holde alle sengetøj og fouragering materiale ud af dyret ' s bolig område indtil indsnittet er fuldt helbredt.
Representative Results
Efter at have analyseret resultaterne af ameroid placering operationer udføres i vores anlæg over en toårig periode, fandt vi overlevelsesraten til 80%. Proceduren blev udført på 25 Yorkshire grise vejer mellem 12-15 kg. De 25 svin 20 overlevede til opfølgningsproceduren, 2 fibrillated og døde kort efter lukning, 2 blev aflivet for svær hjertesvigt og lungeødem, og 1 havde en bedøvende død under en opfølgende røntgenbillede. Obduktion viste et infarcted område af venstre ventrikel i dyr, der døde inden 24 timer efter proceduren. Det er mistænkt, men kunne ikke bekræftes, arteria snoet på grund af tilstedeværelsen af ameroid siden lumen af ameroid var stadig åben. Ameroids fremstillet af dyr, der blev aflivet på grund af hjertesvigt blev undersøgt. Der var total lukning af lumen på 18 dage.
De overlevende dyr blev afbildet af Magnetic Resonance Imaging (MR) på 28 dage post-ameroid placering til at måle hjertefunktion og størrelsen af den iskæmiske område. Figur 2 og figur 3 viser de Mr billeder fremstillet af en gris med en titanium indkapslet ameroid og en gris med en plastik indkapslet ameroid, henholdsvis. Efter imaging, blev en anden torakotomi udført for enten en celle indsprøjtning eller fingeret procedure. Dyrene blev fulgt ud så længe som 16 uger post-ameroid placering.
Figur 1: billeder af grisen hjerte under ameroid placering proceduren. (A) billedet af grisen hjertet viser Lund, tove og stump marginale arterie (PEØ). (B) billede af dissekerede Tove arterie før ameroid placering. (C) Image af den korrekte placering af ameroid omkring Tove med åbningen af den ameroid, som vender op eller fra hjertet. Venligst klik her for at se en større version af dette tal.
Figur 2: Mr billedet af grisen hjerte med en titanium indkapslet ameroid. Mr billedet af et svin hjerte taget fire uger efter placeringen af en titanium indkapslet ameroid constrictor på Tove arterie. Pilen peger på artefakt lavet af titanium. Venligst klik her for at se en større version af dette tal.
Figur 3: Mr billede af en gris hjerte med en plastik indkapslet ameroid. Mr billedet af et svin hjerte taget fire uger efter placeringen af en plast indkapslet ameroid constrictor på Tove arterie. Pilen peger på ameroid constrictor. Ingen artefakt er observeret. Venligst klik her for at se en større version af dette tal.
Discussion
Ameroid kvælerslanger har været brugt i udstrakt grad at skabe dyremodeller for kronisk myokardieiskæmi, kronisk myokardieinfarkt og hjertesvigt5,6,7,9,10 , 11 , 12 , 13 , 15 , 16 , 17 , 18 , 19 , 22. selv om disse modeller kan oprettes ved hjælp af stents, hydraulisk occluders eller fast stenose occluders, forekomsten af ameroid brug i videnskabelige litteratur tillader forskere mere præcist at sammenligne resultaterne af deres arbejde med tidligere offentliggjorte undersøgelser5,6,7,9,10,11,12,13, 15 , 16 , 17 , 18 , 19 , 22. en anden fordel ved at bruge ameroid constrictor er, at proceduren er forholdsvis ligetil og kan udføres med succes af alle med rimelig kirurgiske færdigheder, og kræver ingen specielle instrumenter. De andre ovennævnte metoder kræver større tekniske færdigheder, og i tilfælde af den hydrauliske occluder, kræver intens postoperativ overvågning på grund af externalized enhed6,13.
Den største begrænsning ved at bruge ameroid constrictor er variation i antallet af okklusion9,13. Generelt er har de fleste undersøgelser bruger ameroid constrictor fundet sats af stenose er højest i de første to uger og derefter gradvist taper ned indtil komplet okklusion opstår23,24. Ex vivo undersøgelser direkte måling af lukning hastigheden af ameroid lumen har bekræftet, at den største reduktion af lumen diameter opstår i de første to uger og bremser derefter25,26. Men disse samme undersøgelser har også viste, at omkring glukose og protein fusioner kan påvirke hastigheden og fuldstændigheden af ameroid lukning, hvilket tyder på, i vivo betingelser er sandsynligvis ansvarlige for variabiliteten i ameroid satser okklusion25,26. Andre forskere har foreslået, at mekanisk traume, betændelse, fibrose og blodprop dannelse forårsaget af ameroid placering selve proceduren kan bidrage til denne variabilitet5,6,25 . Den sidstnævnte scenario er sandsynligvis årsagen til for tidlige dødsfald og hjerte fejl konstateret i denne undersøgelse. Det kan ikke være stresset nok betydning gør sarte, men passende, arterie dissektion på begge sider af ameroid at forhindre kinke af fartøjet.
Korrekt placering af ameroid constrictor er afgørende for at udvikle en iskæmisk område af hjertet, der er stor nok til at behandle, men ikke så store, at det resulterer i død. Placere ameroid constrictor på Tove, før den første stumpe marginale gren synes at virke bedst i Yorkshire svin. Som omtalt andetsteds, resulterede dette i en iskæmisk område omkring 25-30% af venstre ventrikel6. Placere ameroid lavere nogen resulterede i en iskæmisk område, der var utilstrækkelig for den særlige behandling, der blev undersøgt i denne undersøgelse.
Arytmier opstår under den kirurgiske procedure er sjældne. Administration af oral amiodaron efter operationen gennem slutningen af studiet, kan forhindre arytmier under 2 til 3 uger efter operationen, når ameroid lukkes ud. Derudover bør bevogtning og medicinsk personale være specielt årvågne i at bemærke nogen hoste i løbet af denne tid, som kunne være et tidligt tegn på pulmonal ødem/hjertesvigt.
Gennem årene er designet af ameroid constrictor blevet forbedret. Ameroids er i øjeblikket tilgængelig i mange størrelser giver kirurgen at vælge en ameroid, der passer til diameteren af fartøjet at være tilstoppet. Den ydre ring af ameroid fås i rustfrit stål, titanium eller plast. Dette er især vigtigt, når de evaluerer de berørte hjerter ved hjælp af Mr. Alle metal vil forårsage en artefakt på Mr-billeder. Titanium ameroids forårsage mindre af en artefakt end rustfrit stål, mens plast ingen efterlader overhovedet. Mr billeder viser forskellen mellem en titanium ameroid og en plastik ameroid er vist i figur 2 og figur 3, henholdsvis. Artefakt i højre side af hjertet i figur 2 er forårsaget af titanium ring omslutter ameroid. Indtil for nylig, var indeslutning ring på den plast ameroid for omfangsrig til at placere i nærheden af en koronararterie uden kinke fartøjet. Ameroid constrictor anvendes i denne undersøgelse (Se Tabel af materialer) er et langt mere strømlinet version, som har samme ydre diameter som den metal ameroids.
Disclosures
Forfatterne har nogen interessekonflikt at videregive.
Acknowledgments
Murene finansiering blev fastsat for dette projekt af Division af murene forskning, National Heart, Lung og Blood Institute på National Institutes of Health. Vi vil gerne anerkende Dr. James Hawkins, Dr. Robert Hoyt, The NIH Division af veterinære ressourcer og personale på Cardiothoracic kirurgi forskningsprogram på NIH.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Anesthesia: ketamine | Putney, INC | Dose: 25mg/kg, IM | |
| Anesthesia: midazolam | App Pharmaceuticals | Dose: 0.75mg/kg, IM | |
| Anesthesia: isoflurane | Baxter | Dose: 1-3%, INH | |
| Antibiotics: amoxicillin and clavulanate potassium | WG Critical Care | Dose: 15mg/kg, IV | |
| Antibiotics: piperacillin and tazobactam | Fresenius Kabl | Dose: 100mg/kg, PO | |
| Analgesia: buprenorphine (sustained release) | Zoo Pharm | 10mg/ml bottle, Dose: 0.2mg/kg SC | |
| Analgesia: fentanyl patch | Mylan | Dose: 25-50mcg/hr, TD | |
| Analgesia: bupivicaine 0.25% | Hospira | Give SC at incision site for analgesia | |
| Alcohol 70% | Humco | NDC 0395-4202-28 | for scrubbing surgical site |
| Chlorhexidine scrub 2% | Vet One | 510083 | for scrubbing surgical site |
| Datex-Ohmeda Aestiva /5 anesthesia machine | GE Healthcare Madison WI. | ||
| Pediatric anesthesia circuit | Westmed | 7-8901 | www.westmedinc.com |
| Water blanket | Cincinnati Sub Zero | Blanketrol 2 | |
| EKG | Medtronics- Physiocontrol | LifePak 20 | |
| Oxygen saturation monitor | GE Healthcare Madison WI. | ||
| Temperature probe | GE Healthcare Madison WI. | ||
| Electrical cautery unit | Valley Labs | Force 2 | Cut-30 Coag-40 |
| Endotracheal tube | Hudson RCI | HUD510312 | Hudson brand - appropriate size for animal |
| Intravenous catheter, size 20 gauge | Santa Cruz Biotechnology, Inc | SC-360097 | Fluid and drug administration |
| Lactated Ringers Solution | Hospira | NDC 0409-7953-03 | |
| Macro IV drip set 15 drops/ml | Hospira | 12672-28 | |
| Surgical gowns | Kimberly Clark | 90142 | |
| Utility drapes | Kimberly Clark | 89731 | |
| Adult laparotomy drape | Medline | DYNJP3004 | |
| Sterile surgical gloves | Cardinal Health (Allegiance) | 22537-570 | Size 7 - use appropriate size for surgeon |
| Needle mat - sterile | Medline | NC30MBR | |
| Cautery pencil | Medline | ESPB 2000 | |
| Suction tubing | Medline | DYND50251 | |
| Suction tip; Yankauer | Medline | DYND50130 | |
| Suction cannister | Cardinal Health (Allegiance) | 65651-220 | |
| Ameroid constrictors sizes 2.5mm -3.5mm | Research Instruments SW, Inc. | 760-764-9411 | Types: Stainless steel, titanium, or plastic |
| 3-way stopcock | Cardinal Health (Allegiance) | 455991 | For chest tube |
| Stomach tube - 18 Fr | Cardinal Health (Allegiance) | DC4418 | For chest tube |
| 60cc syringe | Cardinal Health (Allegiance) | SY35060LL | For chest tube |
| 3cc syringe | Cardinal Health (Allegiance) | SY35003LL | For post-op analgesia injection |
| Skin stapler - 35W | Ethicon Endo-Surgery | PMW 35 | skin closure |
| Scalpel blade - size #10 | Cardinal Health (Allegiance) | 32295-010 | |
| Mini silicone vessel loops 1 Pak | Aspen Surgical | 011001PBX | for elevating circumflex artery to apply ameroid |
| 1 (polypropylene) taper | Ethicon | BB #8425H | close ribs |
| 2-0 (polypropylene) taper | Ethicon | SH #8523 | close muscle layers |
| 4-0 (polypropylene) taper | Ethicon | BB #8581H | close pericardium |
| 20 gauge needle | Cardinal Health (Allegiance) | 81-200219 | post-op analgesia injection |
| antimicrobial drape | 3M | 6640EZ | |
| Finochietto rib retractor - infant size | Codman | 50-8057 | |
| Potts-Smith scissors | Roboz | RS-6043 | |
| Babcock forceps | Roboz | RS-8022 | |
| Pean hemostatic forceps curved | Codman | 30-4565 | |
| scalpel handle #7 | Codman | 11-5534 | |
| Brown Adson forceps | Roboz | RS-5231 | |
| Debakey forceps | Roboz | RS-7562 | |
| Mayo scissors | Roboz | RS-6870SC | |
| Metzenbaum dissecting scissors | Codman | 36-5011 | |
| Metzenbaum dissecting scissors | Codman | 36-5016 | |
| Mayo-Hegar needle holder | Codman | 36-2017 | |
| Ryder needle holder | Codman | 36-3012 | |
| Kelly hemostatic forceps | Roboz | RS-7130 | |
| Reynolds hemostatic forcep | Roboz | RS-7211 | |
| Weitlander retractor | Roboz | RS-8612 | |
| Yorkshire domestic pigs |
References
- Mozaffarian, D., et al. Executive Summary: Heart Disease and Stroke Statistics--2016 Update: A Report From the American Heart Association. Circulation. 133 (4), 447-454 (2016).
- Heron, M. Deaths: Leading causes for 2014. National Vital Statistics Reports. 65 (5), Public Health Service. Washington, DC. (2016).
- Tsang, H. G., Rashdan, N. A., Whitelaw, C. B. A., Corcoran, B. M., Summers, K. M., MacRae, V. E. Large animal models of cardiovascular disease. Cell Biochem Funct. 34 (3), 113-132 (2016).
- Lassaletta, A. D., Chu, L. M., Sellke, F. W. Therapeutic neovascularization for coronary disease: current state and future prospects. Basic Res Cardiol. 106 (6), 897-909 (2011).
- Tuzun, E., et al. Correlation of Ischemic Area and Coronary Flow With Ameroid Size in a Porcine Model. J Surg Res. 164 (1), 38-42 (2010).
- Hughes, G. C., Post, M. J., Simons, M., Annex, B. H. Translational Physiology: Porcine models of human coronary artery disease: implications for preclinical trials of therapeutic angiogenesis. J Appl Physiol. 94 (5), 689-701 (2003).
- Sabe, A. A., et al. Investigating the effects of resveratrol on chronically ischemic myocardium in a swine model of metabolic syndrome: a proteomics analysis. J Med Food. 18 (1), 60-66 (2015).
- Santos, A., et al. Cardiovascular imaging: what have we learned from animal models? Front Pharmacol. 6, 227 (2015).
- Klocke, R., Tian, W., Kuhlmann, M. T., Nikol, S. Surgical animal models of heart failure related to coronary heart disease. Cardiovasc Res. 74 (1), 29-38 (2007).
- Tarkia, M., et al. Cardiac remodeling in a new pig model of chronic heart failure: Assessment of left ventricular functional, metabolic, and structural changes using PET, CT, and echocardiography. J Nucl Cardiol. 22 (4), 655-665 (2015).
- Caillaud, D., et al. Echocardiographic analysis with a two-dimensional strain of chronic myocardial ischemia induced with ameroid constrictor in the pig. Interact Cardiovasc Thorac Surg. 10 (5), 689-693 (2010).
- Unger, E. F. Experimental evaluation of coronary collateral development. Cardiovasc Res. 49 (3), 497-506 (2001).
- Giordano, C., Kuraitis, D., Beanlands, R. S., Suuronen, E. J., Ruel, M. Cell-based vasculogenic studies in preclinical models of chronic myocardial ischaemia and hibernation. Expert Opin Biol Ther. 13 (3), 411-428 (2013).
- St Louis, J. D., et al. An Experimental Model of Chronic Myocardial Hibernation. Ann Thorac Surg. 69 (5), 1351-1357 (2000).
- Green, J. D., et al. Comparison of X-ray fluoroscopy and interventional magnetic resonance imaging for the assessment of coronary artery stenoses in swine. Magn Reson Med. 54 (5), 1094-1099 (2005).
- Qiu, Q., Lin, Y., Xiao, C., et al. Time-Course of the Effects of QSYQ in Promoting Heart Function in Ameroid Constrictor-Induced Myocardial Ischemia Pigs. Evid Based Complement Alternat Med. , (2014).
- Zhou, Y., et al. Direct Injection of Autologous Mesenchymal Stromal Cells Improves Myocardial Function. Biochem Biophys Res Commun. 390 (3), 902-907 (2009).
- Radke, P. W., et al. Evaluation of the porcine ameroid constrictor model of myocardial ischemia for therapeutic angiogenesis studies. Endothelium. 13 (1), 25-33 (2006).
- Estvold, S. K., et al. Does laser type impact myocardial function following transmyocardial laser revascularization? Lasers Surg Med. 42 (10), 746-751 (2010).
- Kumar, A. H., et al. Intravascular cell delivery device for therapeutic VEGF-induced angiogenesis in chronic vascular occlusion. Biomaterials. 35 (32), 9012-9022 (2014).
- JoVE Science Education Database. Essentials of Lab Animal Research: Considerations for Rodent Surgery. , JoVE, Cambridge, MA. Available from: https://www.jove.com/science-education/10285/considerations-for-rodent-surgery (2017).
- Cao, X., et al. Coronary artery vasospasms in a microminipig occurred after placing an ameroid constrictor. J Vet Med Sci. 78 (7), 1213-1216 (2016).
- Sereda, C. W., Adin, C. A. Methods of Gradual Vascular Occlusion and Their Applications in Treatment of Congenital Portosystemic Shunts in Dogs: A Review. Veterinary Surgery. 34, 83-91 (2005).
- Ikonen, T. S., et al. Ligation of ameroid-stenosed coronary artery leads to reproducible myocardial infarction--a pilot study in a porcine model. J Surg Res. 142 (1), 195-201 (2007).
- Adin, C. A., Gregory, C. R., Kyles, A. E., Griffey, S. M., Kendall, L. Effect of Petrolatum Coating on the Rate of Occlusion of Ameroid Constrictors in the Peritoneal Cavity. Veterinary Surgery. 33, 11-16 (2004).
- Griffin, M. A., Hunt, G. B., Epstein, S. E. Behavior of plastic and metal ameroid constrictors during in vitro incubation in physiologic solutions of varying glucose concentration. Res Vet Sci. 105, 165-170 (2016).
