Summary
Het doel van dit protocol is om aan te tonen van de plaatsing van een vertraagde beklemmende apparaat (een ameroid constrictor) rond een hartkransslagader in een varkens-model. Dit apparaat maakt een ischemische ruimte van het hart dat is handig voor het bestuderen van nieuwe diagnostische imaging technieken en nieuwe methodes van behandeling.
Abstract
Hart-en vaatziekten nog steeds de nummer een oorzaak van sterfte in de Verenigde Staten. Er zijn vele benaderingen voor de behandeling van deze ziekten, maar ongeacht de benadering, een in vivo model nodig is voor het testen van elke behandeling. Het varken is een van de meest gebruikte grote diermodellen voor hart-en vaatziekten. Haar hart is zeer vergelijkbaar in de anatomie en de functie met die van een mens. De ameroid plaatsing techniek maakt u een ischemische gebied van het hart, die veel nuttige toepassingen heeft in het bestuderen van myocardinfarct. Dit model is gebruikt voor chirurgische onderzoek, farmaceutische studies, beeldvormingstechnieken en celtherapieën.
Er zijn verschillende manieren van het inducerende een ischemische gebied in het hart. Elk heeft zijn voordelen en nadelen, maar de plaatsing van een ameroid-constrictor blijft de meest gebruikte techniek. De belangrijkste voordelen van het gebruik van de ameroid zijn de prevalentie in bestaand onderzoek, de beschikbaarheid ervan in verschillende maten voor de anatomie en de grootte van het schip worden beperkt, de operatie is een relatief eenvoudige procedure, en de postoperatieve bewaking is minimaal, aangezien er geen externe apparaten te handhaven. Dit witboek biedt een gedetailleerd overzicht van de juiste techniek voor de plaatsing van de ameroid-constrictor.
Introduction
Coronaire hartziekten (CAD), die tot myocardiale ischemie leidt, is de belangrijkste oorzaak van invaliditeit, overlijden en gezondheidszorg kosten rond de wereld4 en die kunnen worden toegerekend voor ongeveer 1 uit elke 3 doden in de VS1,2 , 3 , 4 , 5 , 6. Hoewel er al veel vooruitgang in zowel percutane en chirurgische behandelingen, maar liefst eenderde van de patiënten die lijden aan CAD komen niet in aanmerking voor deze behandelingen als gevolg van leeftijd, gezondheidstoestand of suboptimaal anatomie4, 5 , 6 , 7. om te beoordelen van nieuwe methoden van diagnostische beeldvorming of behandeling, de ontwikkeling van een passende diermodel is van cruciaal belang.
Bij het ontwikkelen van een dierlijk model voor een ziekte, moet de geïnduceerde aandoening nauw de anatomische en fysiologische kenmerken van de aandoening in de mens8,9emuleren. Een van de meest gebruikte grote dieren voor cardiovasculaire studies is het varken. Het hart van het varken is nauwst analoog aan het menselijk hart in termen van grootte, anatomie en fysiologie van de3,6. Gelijkaardig aan het menselijk hart, het myocardium van van het varken hart niet bezit een uitgebreide collaterale circulatie6. Vanwege dit, het varken hart tolereert geen acute coronaire occlusie goed, maar het kan een geleidelijke coronaire occlusie tolereren. Als een hartkransslagader langzaam is geroteerd, kan het worden gebruikt als een model voor chronische myocardiale ischemie, chronische myocardiaal infarct en hartfalen5,6,9,10, 11 , 12 , 13. chronische myocardiale ischemie kan worden opgewekt door de stent inplanting of de plaatsing van een hydraulische occluder, een vaste stenose occluder of een ameroid constrictor. Er zijn voor- en nadelen voor al deze methoden die worden beschreven in detail in verschillende publicaties6,-9,13 maar de meest gebruikte methode is de ameroid plaatsing5, 6,10,11.
De ameroid-constrictor bestaat uit materiaal van de caseïne ingekapseld in een RVS, kunststof of titanium ring. Wanneer geplaatst rond een slagader (meestal de linker anterior aflopende coronaire (LAD) of de links met accent circonflexe coronaire (LCX)), de caseïne materiaal absorbeert de omliggende vloeistof waardoor de innerlijke lumen te smal geleidelijk, het nabootsen van de langzame stenose van een slagader en de daaruit voortvloeiende tot slot u in volledige occlusie9,13,14. Deze procedure gebruikt op zichzelf of in combinatie met andere methoden resultaten in een regio van chronische myocardiale ischemie en/of infarct van het linkerventrikel van het hart dat is handig voor het ontwikkelen en evalueren van nieuwe beeldvormende technieken8, 10,15, therapeutische behandelingen7,16,17,18 en chirurgische procedures19,20.
Protocol
de hier beschreven procedures werden goedgekeurd door het National Heart, Lung, en bloed Instituut Animal Care en gebruik Comité bij de National Institutes of Health en voldoen aan het beleid beschreven in The Public Health Service beleid op Humane zorg en gebruik van proefdieren, de handeling van het dierenwelzijn en de gids voor de verzorging en het gebruik van proefdieren.
Opmerking: het doel van deze chirurgische procedure is voor de productie van een dierlijk model van chronische myocardiale ischemie die kan worden gebruikt voor het ontwikkelen van de behandelingen die klinisch relevant voor patiënten met ernstige CAD zijn. Dit kan niet worden verwezenlijkt met behulp van een in vitro model.
1. dieren
- gebruiken mannelijke Yorkshire varkens met een gewicht tussen 12 en 15 kg.
2. pre-surgical Procedures
- voor een profylactische antibiotica, gebruik amoxicilline en clavulanate kalium (15 mg/kg) oraal tweemaal per dag 24 uur vóór de ingreep beginnen.
Opmerking: Dit mondeling antibioticum wordt gestart voor de ingreep om ervoor te zorgen dat het varken het zal slikken en ook ervoor te zorgen dat zij niet een allergische reactie op de medicatie post-operatively hebben zullen. - Onthouden van voedsel en water uit het varken 12 uur vóór de ingreep.
- Anesthetize op de dag van de operatie, het varken met een cocktail van ketamine (33 mg/kg), midazolam (0.5 - 0,75 mg/kg) en glycopyrrolaat (0,01 mg/kg) gegeven intramusculair (IM).
- Plaats een 20 G intraveneuze (IV) katheter in de ader van een oor en het dier met een 7.0 Fr Endotracheale tube intubate.
Opmerking: De grootte van de IV-katheter en de Endotracheale tube afhankelijk van de grootte van het varken aanpassen. - Verwijderen de onthaarde (scheren) voor de linker kant van het varken uit de schouder naar de navel en de buik middellijn aan de wervelkolom.
- Beheren de profylactische antibiotica (piperacillin en tazobactam: 100 mg/kg IV) en pijn medicatie (buprenorfine opgelopen release: 0,2 mg/kg subcutaan (SC) of een fentanyl transdermaal patch 25-50 µg/h).
Opmerking: Het antibioticum IV is gegeven omdat de dieren zijn gevast voor 12 uur vóór de ingreep en niet de eerder genoemde mondelinge antibiotica gedurende deze tijd krijgen. - Vervoer van het varken op de operatiekamer en sluit de Endotracheale tube de verdoving machine uitgerust met een sensor sidestream te volgen van de luchtweg gassen. Mechanisch ventileren van het varken met behulp van een ademhalingsvolume van 10 mL/kg als uitgangspunt en niet hoger zijn dan een luchtroutedruk 30 cm H 2 O. Set het respiratoire tarief tussen 10-20 ademhalingen per min (bpm) en pas desgewenst te houden van de einde-getijde CO 2 ( PetCO 2) niveaus tussen 28 en 35 mm Hg. behouden de narcose met Isofluraan (1-3%) of Sevofluraan (2-5%).
- Positie varken-rechts beneden op de operatietafel. Toevoegen van alle benodigde sondes voor het controleren van de lichaamstemperatuur (BT), elektrocardiogram (ECG), pulse oxymetrie (SpO 2), enz
- bereiden de chirurgische site via drie afwisselende scrubs met 2% chlorohexidine en 70% alcohol (toepassen een cirkelbeweging beginnen met centrum en verhuizen naar buiten).
- Drape de chirurgische site met behulp van aseptische techniek 21.
3. Chirurgische ingreep
- bloot van het hart via een linker Thoracotomie.
- Maak een huid incisie parallel aan de 4 th en 5 th intercostale ruimte ongeveer 8-9 cm in lengte met behulp van een scalpel blad van no. 10.
- Doorsnijden de latissimus dorsi en musculus serratus spieren van de Buizerd met behulp van een paar gebogen Metzenbaum schaar en pincet Brown Adson. Elektrocauterisatie gebruiken om hemostase zonodig.
- Voer de pleurale holte via de intercostale spieren tussen de 4 th en 5 th ribben met de Metzenbaum schaar snijden langs de anterior aspect van de 4 th-rib. Verklein de kans op per ongeluk beschadigen de longen en uitschakelen van de ventilator op het uitademen net vóór het binnenrijden van de pleura holte. Zodra de pleurale Holte heeft geschonden, de ventilator weer inschakelt.
- Via een kleine Finochietto oprolmechanisme te verspreiden van de ribben uit elkaar, het hart bloot.
- Gebruik Debakey pincet te begrijpen en til het hartzakje. Gebruik Potts schaar om een klein gaatje in het hartzakje, waardoor lucht om in te voeren van de pericardvocht ruimte. De incisie met de schaar Potts blijven over de kruising van de LAD en LCX slagaders.
- Gebruik Babcock Tang te trekken van de linker atriale aanhangsel. Met behulp van Debakey en kleine loodrechte pincet, ontleden de LCX-slagader van het omringende weefsel voorafgaand aan of proximale aan de stompe marginale tak 1 st.
- Plaats twee lussen van het vaartuig onder de ontleed LCX-slagader, een aan elk uiteinde. Houd een grootte 3.0 mm ameroid constrictor met de kleine rechte hoek verlostang en til de vaartuig lussen om zachtjes begeleiden de LCX-slagader door de opening van de constrictor. Zachtjes draaien de constrictor zodat de opening boven ligt. Verwijder de lussen van het vaartuig. Zie Figuur 1.
Opmerking: Adequate dissectie van de arteria is essentieel om te voorkomen dat knikken. Selecteer het juiste formaat constrictor voor het individuele dier. Het juiste formaat constrictor zal nauw omcirkelen het schip zonder eerst het beklemmende van het vaartuig. Binnenlandse varkens met een gewicht van tussen de 12 en 15 kg vereisen ameroid constrictors formaat 2.5-3.5 mm. De locatie van de ameroid-constrictor op het schip hangt af van de gewenste grootte van het gebied van ischemische. - Opnieuw benaderen het hartzakje en sluit met 4-0 polypropyleen hechtingen.
- Herstellen de thoracale onderdruk door het invoegen van een 12 Fr borst buis of equivalent in de pleurale ruimte met het verlaten van de einde uit tussen de lagen van sluiting, over het algemeen twee intercostale ruimten posterieure naar Thoracotomie site.
Opmerking: Let op de Long voor atelectase vóór het sluiten van de ribben. Indien symptomen van onderinflatie worden waargenomen, opnieuw opblazen van de longen handmatig tot een druk van 30 mm Hg. - Sluit de borst met behulp van 1 polypropyleen hechtingen voor de intercostale laag, 0 polypropyleen hechtingen voor de musculus serratus en fasciaal laag, polypropyleen hechtingen van de 2-0 voor de subcutane laag, en de polypropyleen hechtingen 3-0 voor de subcuticular laag. Nieten of de huid suture.
- Hechten de pik van een drie-weg stop aan het uiteinde van de buis van de borst en evacueren van de lucht in de borst met een 40-60 cc spuit totdat een negatieve zegel is bereikt. Rol het dier op zijn kant van het borstbeen of omgekeerde om het verwijderen van alle lucht. Zodra de borst onderdruk onderhoudt, verwijderen van de borst buis en suture de site verlaten. Als dieren afzonderlijk post-operatively zijn ondergebracht, de incisie voor enkele dagen kan worden verbonden.
4. Postoperatieve
- na sluiting, infiltreren de incisie langs beide zijden van de Thoracotomie site met 0,25% bupivacaine.
- Spenen van het dier uit de ventilator en uitschakelen van de narcose. De Endotracheale tube verwijderen zodra het dier is op zijn eigen ademhaling en slikken.
- Volgen het dier totdat het volledig is hersteld (wakker en sternale). Moet er geen afwijkingen of hartritmestoornissen op het ECG, de BT 38.7-39.8 ° C moeten worden, moeten de SpO 2 95-100% en de luchtwegen tarief moet 32-58 bpm.
- Beheren amiodaron (100 mg, mondeling twee keer per dag) en clopidogrel bisulfate (75 mg, mondeling eenmaal per dag) ter voorkoming van trombose en hartritmestoornissen. Doorgaan met amoxicilline en clavulanate kalium (15 mg/kg) oraal tweemaal per dag voor 10 dagen na operatie. Post-operatieve pijn wordt beheerd met buprenorfine SR (aanhoudende release) 0,2 mg/kg. SQ elke drie dagen. De buprenorfine SR kan worden aangevuld met carprofen (4,4 mg/kg) eens en vervolgens (2,2 mg/kg) PO of IM bod.
- Houden alle bedden en foerageren materiaal uit het dier ' s huisvesting gebied totdat de incisie is volledig genezen.
Representative Results
Na het analyseren van de gegevens die zijn verkregen uit ameroid plaatsing operaties uitgevoerd in onze faciliteit over een periode van twee jaar, vonden we het overlevingspercentage op 80%. De procedure werd uitgevoerd op 25 Yorkshire varkens met een gewicht van 12-15 kg. Van de 25 varkens, 20 overleefde tot de opvolgingsprocedure, 2 fibrillated en stierf kort nadat sluiten, 2 waren euthanized voor ernstig hartfalen en longoedeem, en 1 had een verdoving dood tijdens een follow-up radiografie. Necropsie gebleken een infarcted ruimte van het linkerventrikel in de dieren die binnen 24 uur na de procedure gestorven. Het is verdacht, maar kon niet worden bevestigd dat de slagader opgerold als gevolg van de aanwezigheid van de ameroid sinds het lumen van de ameroid nog open was. De ameroids die zijn verkregen van dieren die als gevolg van hartfalen werden euthanized werden onderzocht. Er was totale sluiting van de lumen in 18 dagen.
De overlevende dieren waren beeld door Magnetic Resonance Imaging (MRI) in 28 dagen post-ameroid plaatsing de hartfunctie en de grootte van het ischemische gebied te meten. Figuur 2 en Figuur 3 tonen de MRI beelden verkregen uit een varken met een titanium ingekapseld ameroid en een varken met een kunststof materialen ameroid, respectievelijk. Na imaging, werd een tweede Thoracotomie uitgevoerd voor een cel injectie of sham procedure. Dieren werden gevolgd uit zolang op 16 weken post-ameroid plaatsing.
Figuur 1: beelden van het varken hart tijdens de procedure van de plaatsing van de ameroid. (A) afbeelding van het varken hart tonen de LAD, LCX en stompe marginale slagader (OM). (B) afbeelding van de ontleed LCX-slagader vóór de plaatsing van de ameroid. (C) beeld van de juiste plaatsing van de ameroid rond de LCX met de opening van de ameroid die omhoog of weg van het hart. Klik hier voor een grotere versie van dit cijfer.
Figuur 2: MRI beeld van varken hart met een titanium ingekapseld ameroid. MRI beeld van een varken hart genomen van vier weken na de plaatsing van een titanium materialen ameroid constrictor op de LCX-slagader. De pijl wijst naar het artefact gemaakt door de titanium. Klik hier voor een grotere versie van dit cijfer.
Figuur 3: MRI beeld van het hart van een varken met een plastic ingekapseld ameroid. MRI beeld van een varken hart genomen van vier weken na de plaatsing van een kunststof materialen ameroid constrictor op de LCX-slagader. De pijl wijst naar de ameroid constrictor. Geen artefact wordt waargenomen. Klik hier voor een grotere versie van dit cijfer.
Discussion
Ameroid constrictors zijn uitgebreid gebruikt voor het maken van diermodellen van chronische myocardiale ischemie, chronische myocardiaal infarct en hartfalen5,6,7,9,10 , 11 , 12 , 13 , 15 , 16 , 17 , 18 , 19 , 22. Hoewel deze modellen kunnen worden gemaakt door het gebruik van stents, hydraulische occluders of vaste stenose occluders, de prevalentie van ameroid gebruik in de wetenschappelijke literatuur kan onderzoekers nauwkeuriger de resultaten te vergelijken hun werk met eerder gepubliceerde studies5,6,7,9,10,11,12,13, 15 , 16 , 17 , 18 , 19 , 22. een ander voordeel van het gebruik van de ameroid-constrictor is dat de procedure betrekkelijk eenvoudig is en met succes kan worden uitgevoerd door iedereen met redelijke chirurgische vaardigheden, en geen gespecialiseerde instrumenten vereist. De andere bovengenoemde methodes vereisen meer technische vaardigheden en, in het geval van de hydraulische occluder, vereist een intensieve post-operatieve controle als gevolg van de externalized apparaat6,13.
De belangrijkste beperking van het gebruik van de ameroid-constrictor is de variabiliteit in het tarief van occlusie9,13. In het algemeen, hebben de meeste studies met behulp van de ameroid-constrictor het tempo van de stenose als hoogst in de eerste twee weken en dan geleidelijk taper off, totdat volledige occlusie23,24 optreedtgevonden. Ex vivo studies direct meten van de snelheid van de sluiting van de ameroid lumen hebben bevestigd dat de grootste verlaging in lumen diameter treedt op in de eerste twee weken en daarna25,26 vertraagt. Echter hebben deze dezelfde studies ook aangetoond dat glucose en eiwitten concentraties rond kan invloed hebben op de snelheid en volledigheid van de sluiting van de ameroid, waardoor suggereren dat in vivo voorwaarden waarschijnlijk verantwoordelijk voor de variabiliteit zijn occlusie tarieven in ameroid25,26. Andere onderzoekers hebben gesuggereerd dat mechanische trauma, ontsteking en fibrose vorming van trombose veroorzaakt door de ameroid plaatsing procedure zelf tot deze variabiliteit5,6,25 bijdragen kunnen . Het laatste scenario is waarschijnlijk de reden voor de voortijdige sterfgevallen en hart storingen waargenomen in deze studie. Het kan niet genoeg benadrukt het belang van de delicate, maar voldoende, slagader dissectie aan weerszijden van de ameroid om te voorkomen dat het knikken van het schip doen.
Goede plaatsing van de ameroid-constrictor is cruciaal voor de ontwikkeling van een ischemische ruimte van het hart dat groot genoeg is om te behandelen maar niet zo groot dat het resulteert in de dood. De ameroid-constrictor brengen op de LCX voordat de eerste stompe marginale tak lijkt te werken het beste in Yorkshire varkens. Zoals gemeld elders, resulteerde dit in een ischemische gebied van ongeveer 25-30% van de linkerventrikel6. Plaatsen van de ameroid lagere een resulteerde in een ischemische gebied dat was onvoldoende voor de specifieke behandeling die werd onderzocht in deze studie.
Hartritmestoornissen die zich voordoen tijdens de chirurgische ingreep zijn zeldzaam. Beheert mondelinge amiodaron na operatie tot het einde van de studie, kan voorkomen dat ritmestoornissen tijdens de 2 tot 3 weken na operatie, bij het sluiten van de ameroid is uitgeschakeld. Bovendien, moeten conciërges en medisch personeel waakzaam zijn met name bij vaststellend een hoest gedurende deze tijd, die een vroeg teken van pulmonaire oedeem/hartfalen kan zijn.
Door de jaren heen, heeft het ontwerp van de ameroid-constrictor verbeterd. Ameroids zijn momenteel beschikbaar in vele formaten zodat de chirurg om te selecteren van een ameroid die overeenkomt met de diameter van het schip worden geroteerd. De buitenste ring van de ameroid is beschikbaar in roestvrij staal, titanium of kunststof. Dit is vooral belangrijk bij de evaluatie van de getroffen harten met behulp van MRI. Alle metalen zal een artefact veroorzaken op de MRI beelden. Titanium ameroids veroorzaken minder van een artefact dan roestvrij staal, terwijl kunststof geen bij allen laat. MRI afbeeldingen tonen het verschil tussen een titanium-ameroid en een kunststof ameroid worden weergegeven in Figuur 2 en Figuur 3, respectievelijk. Het artefact aan de rechterkant van het hart in Figuur 2 wordt veroorzaakt door de titanium ring omkadering van de ameroid. Tot voor kort was de insluiting ring op de plastic ameroid te omvangrijk plaatsen rond een hartkransslagader zonder te knikken van het vaartuig. De ameroid constrictor in deze studie gebruikt (Zie Tabel of Materials) is een veel meer gestroomlijnde versie, die dezelfde buitenste diameter als de metalen ameroids.
Disclosures
De auteurs hebben geen conflict van belang om te vermelden.
Acknowledgments
Intramurale financiering werd verstrekt voor dit project door de divisie van intramurale onderzoek, nationale hart, Long- en bloed Instituut van het National Institutes of Health. Wij willen erkennen van Dr. James Hawkins, Dr. Robert Hoyt, de NIH divisie van veeartsen en het personeel van de Cardiothoracale chirurgie Research program op de NIH.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Anesthesia: ketamine | Putney, INC | Dose: 25mg/kg, IM | |
| Anesthesia: midazolam | App Pharmaceuticals | Dose: 0.75mg/kg, IM | |
| Anesthesia: isoflurane | Baxter | Dose: 1-3%, INH | |
| Antibiotics: amoxicillin and clavulanate potassium | WG Critical Care | Dose: 15mg/kg, IV | |
| Antibiotics: piperacillin and tazobactam | Fresenius Kabl | Dose: 100mg/kg, PO | |
| Analgesia: buprenorphine (sustained release) | Zoo Pharm | 10mg/ml bottle, Dose: 0.2mg/kg SC | |
| Analgesia: fentanyl patch | Mylan | Dose: 25-50mcg/hr, TD | |
| Analgesia: bupivicaine 0.25% | Hospira | Give SC at incision site for analgesia | |
| Alcohol 70% | Humco | NDC 0395-4202-28 | for scrubbing surgical site |
| Chlorhexidine scrub 2% | Vet One | 510083 | for scrubbing surgical site |
| Datex-Ohmeda Aestiva /5 anesthesia machine | GE Healthcare Madison WI. | ||
| Pediatric anesthesia circuit | Westmed | 7-8901 | www.westmedinc.com |
| Water blanket | Cincinnati Sub Zero | Blanketrol 2 | |
| EKG | Medtronics- Physiocontrol | LifePak 20 | |
| Oxygen saturation monitor | GE Healthcare Madison WI. | ||
| Temperature probe | GE Healthcare Madison WI. | ||
| Electrical cautery unit | Valley Labs | Force 2 | Cut-30 Coag-40 |
| Endotracheal tube | Hudson RCI | HUD510312 | Hudson brand - appropriate size for animal |
| Intravenous catheter, size 20 gauge | Santa Cruz Biotechnology, Inc | SC-360097 | Fluid and drug administration |
| Lactated Ringers Solution | Hospira | NDC 0409-7953-03 | |
| Macro IV drip set 15 drops/ml | Hospira | 12672-28 | |
| Surgical gowns | Kimberly Clark | 90142 | |
| Utility drapes | Kimberly Clark | 89731 | |
| Adult laparotomy drape | Medline | DYNJP3004 | |
| Sterile surgical gloves | Cardinal Health (Allegiance) | 22537-570 | Size 7 - use appropriate size for surgeon |
| Needle mat - sterile | Medline | NC30MBR | |
| Cautery pencil | Medline | ESPB 2000 | |
| Suction tubing | Medline | DYND50251 | |
| Suction tip; Yankauer | Medline | DYND50130 | |
| Suction cannister | Cardinal Health (Allegiance) | 65651-220 | |
| Ameroid constrictors sizes 2.5mm -3.5mm | Research Instruments SW, Inc. | 760-764-9411 | Types: Stainless steel, titanium, or plastic |
| 3-way stopcock | Cardinal Health (Allegiance) | 455991 | For chest tube |
| Stomach tube - 18 Fr | Cardinal Health (Allegiance) | DC4418 | For chest tube |
| 60cc syringe | Cardinal Health (Allegiance) | SY35060LL | For chest tube |
| 3cc syringe | Cardinal Health (Allegiance) | SY35003LL | For post-op analgesia injection |
| Skin stapler - 35W | Ethicon Endo-Surgery | PMW 35 | skin closure |
| Scalpel blade - size #10 | Cardinal Health (Allegiance) | 32295-010 | |
| Mini silicone vessel loops 1 Pak | Aspen Surgical | 011001PBX | for elevating circumflex artery to apply ameroid |
| 1 (polypropylene) taper | Ethicon | BB #8425H | close ribs |
| 2-0 (polypropylene) taper | Ethicon | SH #8523 | close muscle layers |
| 4-0 (polypropylene) taper | Ethicon | BB #8581H | close pericardium |
| 20 gauge needle | Cardinal Health (Allegiance) | 81-200219 | post-op analgesia injection |
| antimicrobial drape | 3M | 6640EZ | |
| Finochietto rib retractor - infant size | Codman | 50-8057 | |
| Potts-Smith scissors | Roboz | RS-6043 | |
| Babcock forceps | Roboz | RS-8022 | |
| Pean hemostatic forceps curved | Codman | 30-4565 | |
| scalpel handle #7 | Codman | 11-5534 | |
| Brown Adson forceps | Roboz | RS-5231 | |
| Debakey forceps | Roboz | RS-7562 | |
| Mayo scissors | Roboz | RS-6870SC | |
| Metzenbaum dissecting scissors | Codman | 36-5011 | |
| Metzenbaum dissecting scissors | Codman | 36-5016 | |
| Mayo-Hegar needle holder | Codman | 36-2017 | |
| Ryder needle holder | Codman | 36-3012 | |
| Kelly hemostatic forceps | Roboz | RS-7130 | |
| Reynolds hemostatic forcep | Roboz | RS-7211 | |
| Weitlander retractor | Roboz | RS-8612 | |
| Yorkshire domestic pigs |
References
- Mozaffarian, D., et al. Executive Summary: Heart Disease and Stroke Statistics--2016 Update: A Report From the American Heart Association. Circulation. 133 (4), 447-454 (2016).
- Heron, M. Deaths: Leading causes for 2014. National Vital Statistics Reports. 65 (5), Public Health Service. Washington, DC. (2016).
- Tsang, H. G., Rashdan, N. A., Whitelaw, C. B. A., Corcoran, B. M., Summers, K. M., MacRae, V. E. Large animal models of cardiovascular disease. Cell Biochem Funct. 34 (3), 113-132 (2016).
- Lassaletta, A. D., Chu, L. M., Sellke, F. W. Therapeutic neovascularization for coronary disease: current state and future prospects. Basic Res Cardiol. 106 (6), 897-909 (2011).
- Tuzun, E., et al. Correlation of Ischemic Area and Coronary Flow With Ameroid Size in a Porcine Model. J Surg Res. 164 (1), 38-42 (2010).
- Hughes, G. C., Post, M. J., Simons, M., Annex, B. H. Translational Physiology: Porcine models of human coronary artery disease: implications for preclinical trials of therapeutic angiogenesis. J Appl Physiol. 94 (5), 689-701 (2003).
- Sabe, A. A., et al. Investigating the effects of resveratrol on chronically ischemic myocardium in a swine model of metabolic syndrome: a proteomics analysis. J Med Food. 18 (1), 60-66 (2015).
- Santos, A., et al. Cardiovascular imaging: what have we learned from animal models? Front Pharmacol. 6, 227 (2015).
- Klocke, R., Tian, W., Kuhlmann, M. T., Nikol, S. Surgical animal models of heart failure related to coronary heart disease. Cardiovasc Res. 74 (1), 29-38 (2007).
- Tarkia, M., et al. Cardiac remodeling in a new pig model of chronic heart failure: Assessment of left ventricular functional, metabolic, and structural changes using PET, CT, and echocardiography. J Nucl Cardiol. 22 (4), 655-665 (2015).
- Caillaud, D., et al. Echocardiographic analysis with a two-dimensional strain of chronic myocardial ischemia induced with ameroid constrictor in the pig. Interact Cardiovasc Thorac Surg. 10 (5), 689-693 (2010).
- Unger, E. F. Experimental evaluation of coronary collateral development. Cardiovasc Res. 49 (3), 497-506 (2001).
- Giordano, C., Kuraitis, D., Beanlands, R. S., Suuronen, E. J., Ruel, M. Cell-based vasculogenic studies in preclinical models of chronic myocardial ischaemia and hibernation. Expert Opin Biol Ther. 13 (3), 411-428 (2013).
- St Louis, J. D., et al. An Experimental Model of Chronic Myocardial Hibernation. Ann Thorac Surg. 69 (5), 1351-1357 (2000).
- Green, J. D., et al. Comparison of X-ray fluoroscopy and interventional magnetic resonance imaging for the assessment of coronary artery stenoses in swine. Magn Reson Med. 54 (5), 1094-1099 (2005).
- Qiu, Q., Lin, Y., Xiao, C., et al. Time-Course of the Effects of QSYQ in Promoting Heart Function in Ameroid Constrictor-Induced Myocardial Ischemia Pigs. Evid Based Complement Alternat Med. , (2014).
- Zhou, Y., et al. Direct Injection of Autologous Mesenchymal Stromal Cells Improves Myocardial Function. Biochem Biophys Res Commun. 390 (3), 902-907 (2009).
- Radke, P. W., et al. Evaluation of the porcine ameroid constrictor model of myocardial ischemia for therapeutic angiogenesis studies. Endothelium. 13 (1), 25-33 (2006).
- Estvold, S. K., et al. Does laser type impact myocardial function following transmyocardial laser revascularization? Lasers Surg Med. 42 (10), 746-751 (2010).
- Kumar, A. H., et al. Intravascular cell delivery device for therapeutic VEGF-induced angiogenesis in chronic vascular occlusion. Biomaterials. 35 (32), 9012-9022 (2014).
- JoVE Science Education Database. Essentials of Lab Animal Research: Considerations for Rodent Surgery. , JoVE, Cambridge, MA. Available from: https://www.jove.com/science-education/10285/considerations-for-rodent-surgery (2017).
- Cao, X., et al. Coronary artery vasospasms in a microminipig occurred after placing an ameroid constrictor. J Vet Med Sci. 78 (7), 1213-1216 (2016).
- Sereda, C. W., Adin, C. A. Methods of Gradual Vascular Occlusion and Their Applications in Treatment of Congenital Portosystemic Shunts in Dogs: A Review. Veterinary Surgery. 34, 83-91 (2005).
- Ikonen, T. S., et al. Ligation of ameroid-stenosed coronary artery leads to reproducible myocardial infarction--a pilot study in a porcine model. J Surg Res. 142 (1), 195-201 (2007).
- Adin, C. A., Gregory, C. R., Kyles, A. E., Griffey, S. M., Kendall, L. Effect of Petrolatum Coating on the Rate of Occlusion of Ameroid Constrictors in the Peritoneal Cavity. Veterinary Surgery. 33, 11-16 (2004).
- Griffin, M. A., Hunt, G. B., Epstein, S. E. Behavior of plastic and metal ameroid constrictors during in vitro incubation in physiologic solutions of varying glucose concentration. Res Vet Sci. 105, 165-170 (2016).
