Este protocolo describe técnicas para la evaluación química del cross-linking de la esclera de conejo usando proyección de imagen de segunda harmónica y calorimetría diferencial.
Métodos para fortalecer el tejido mediante la introducción de enlaces químicos (cross-linking no enzimática) en proteínas estructurales (colágenos fibrilares) para la terapia incluyen tejido Cross-linking métodos (TXL) y fotoquímica del cross-linking. Tales métodos para inducir cambios de propiedad mecánica del tejido se están empleando a la córnea en enfermedades adelgazamiento corneal (mecánicamente debilitado) queratocono así como la esclerótica en la miopía progresiva, donde el adelgazamiento y debilitamiento de la parte posterior esclera ocurre y probablemente contribuye a la elongación axial. Las proteínas de la blanco principal para tal fortalecimiento de tejido son colágenos fibrilares que constituyen la gran mayoría de proteínas de peso seco de la córnea y la esclerótica. Fortuitamente, colágenos fibrilares son la fuente principal de segunda generación armónica señales en el espacio extracelular del tejido. Por lo tanto, modificaciones de las proteínas de colágeno, como las inducida a través de cross-linking terapias, potencialmente podrían ser detectados y cuantificados mediante el uso de la microscopia de segunda generación armónica (SHGM). Monitoreo SHGM señales mediante el uso de un láser escáner sistema de microscopía juntada con una excitación infrarrojo luz de fuente es un método de proyección de imagen moderna emocionante que goza de uso extenso en las ciencias biomédicas. Así, el actual estudio fue emprendido para evaluar el uso de la microscopia SHGM como un medio para medir efectos Cross-linking en vivo ex esclerótica de conejo, después de una inyección de un producto químico agente del cross-linking en el espacio de la sub-Tenon (sT), causados por un inyección de acercarse es práctica estándar para causar anestesia ocular durante procedimientos clínicos oftalmológicos. El químico agente del cross-linking, sodio hydroxymethylglycinate (SMG), es de una clase de conservantes cosméticos conocida como formaldehído liberando agentes (FARs). Cambios esclerales tras reacción con SMG resultaron en un aumento en las señales de la SHG y correlacionados con cambios en la temperatura de desnaturalización térmica, un método estándar para evaluar inducida tejido efectos del cross-linking.
Miopía progresiva se postula para ser tratable a través de no-enzimáticos escleral del cross-linking (fotoquímico o química), que tiene sentido dado que el bloqueo de reticulación enzimática de colágeno puede aumentar la privación de forma experimental (FD)-inducida miopía de1. Venimos y Phillips2 recientemente discutida la viabilidad y el potencial de utilizar estándar irradiación ultravioleta-A (UVA)-riboflavina mediada fotoquímica del cross-linking (también conocido como el protocolo de Dresden), abreviado aquí como (riboflavina CXL) para la estabilización escleral posterior detener la elongación axial en miopía. Este método fotoquímico se ha utilizado con éxito para tratar la desestabilización de la superficie anterior del globo (es decir, la córnea abultada) vista en keratectasia queratocono y post-LASIK. Sin embargo, aplicación de este protocolo CXL de la esclera es obstaculizado por problemas relacionados con dificultades en el acceso a la esclera posterior con una fuente de luz ultravioleta (UV), así como la necesidad de modificar un mucho mayor superficie área de tejido. Que dicho, el enfoque CXL se ha utilizado para detener la elongación axial en forma visualmente priva conejos (tarsorrhaphy), aunque las regiones múltiples de la esclera posterior requieren varias zonas separadas de la irradiación en eso estudio3. Por el contrario, la inyección de un agente químico estabilizador (es decir, agente Cross-linking) vía el espacio sT podría representar una manera más simple de modificar la esclera posterior, evitando la necesidad de introducir una fuente de luz UV. Esta técnica de inyección es conocida como una forma útil de inducir anestesia ocular durante procedimientos oftalmológicos como cirugía de catarata4,5,6. WOLLENSAK7 ha descrito anteriormente el uso de una inyección de sT con gliceraldehído (un cross-linking agente químico similar en concepto al formaldehído liberando agentes (FARs) descritos en este estudio) rigidizar el conejo sclera y genipin ha ha demostrado que limitar la longitud axial en FD conejillos de Indias8,9. Estos investigadores han demostrado una clara ventaja de la utilización de un agente químico soluble sobre la fotoquímica técnica CXL. Por lo tanto, escleral del cross-linking utilizando un agente químico inyectable de algún tipo, incluyendo el FARs (es decir, TXL)10, podría proporcionar un método de tratamiento viable para detener la progresión de la elongación escleral en miopía.
En los protocolos aquí presentados, se usa una solución química de cross-linking de sodio hydroxymethylglycinate (SMG), entregada vía la inyección de sT a la esclera de los ojos de conejo cadavérico. Hemos implementado protocolos similares para reticulación química tópica de la córnea. En particular en los estudios previamente divulgados, Cross-linking efectos dependientes de la concentración podría obtenerse utilizando SMG, con un rango de efecto que abarca bien superior a la alcanzable con CXL fotoquímica según lo determinado por análisis de desnaturalización térmica11 .
Aquí se describen los protocolos para evaluar el efecto Cross-linking de SMG suministra a través de inyecciones de sT al tejido escleral, desnaturalización térmica utilizando calorimetría diferencial de barrido (DSC) y microscopía de segunda de generación armónica (SHGM).
Mediante calorimetría diferencial de barrido (DSC), también conocido como análisis térmico, una transición de desnaturalización térmica se mide, que para el tejido escleral es predominantemente guiado por las propiedades de los colágenos fibrilares, ya que constituyen la mayoría a granel de la proteína. Este método evalúa la estabilidad de la estructura molecular del colágeno y los bonos reticulados que estabilizan las fibrillas de colágeno, la estructura principal proteína terciario. Durante el calentamiento en el DSC, se alcanza una temperatura crítica de transición que da lugar a la desnaturalización de la molécula de colágeno, dando como resultado el desenrollar de la triple hélice, un proceso que constituye lo que comúnmente se conoce como gelatina. Esta desnaturalización térmica interrumpe enlaces del hidrógeno a lo largo de la molécula de colágeno y puede ser cambiado de puesto a temperaturas más altas a través de métodos reticulación inducida12,13. Este método se ha utilizado durante muchas décadas, particularmente en la industria de biomateriales y de procesos que incluyen la fabricación de cuero. Sin embargo, este método requiere la extracción del tejido de la esclerótica y por lo tanto sólo puede ser útil como una técnica ex vivo .
Microscopia de la generación de segundo armónico (SHGM) se basa en las propiedades ópticas no lineales de materiales particulares, con entornos moleculares no centrosimétricas. En tales materiales, luz intensa, por ejemplo luz producida por el láser, genera señales de SHG, en el que la luz del incidente se dobla en frecuencia. Materiales biológicos que se conocen para crear señales SHG son colágeno, microtúbulos y miosina del músculo. Por ejemplo, colágeno excitada con una luz infrarroja de longitud de onda de 860 nm emite una señal de la SHG en la gama visible con longitud de onda de 430 nm. Segunda generación armónico (SHG) proyección de imagen de señales es un método prometedor para la evaluación de cross-linking del colágeno terapéutica. Ha sido conocido por más de 30 años que las fibrillas del colágeno en los tejidos emiten señales SHG14. Sin embargo, sólo recientemente imágenes de alta resolución se obtendría15 en una variedad de tejidos, incluyendo el tendón16, piel, cartílago17,18de los vasos sanguíneos y en los geles de colágeno19.
Basándose en este conocimiento, este estudio evalúa los cambios de señal SHG inducidos en la esclera a través de SMG químicamente inducida por Cross-linking del colágeno. Los resultados indican que la modificación de SMG de la esclera aumenta las señales SHG producidas a partir de haces de fibras de tejido colágeno (el más alto orden estructura cuaternaria formada por fibrillas de colágeno) y también produce un cambio morfológico estructural en el colágeno red de fibra, refleja en fibra paquete el “enderezando.”
Experimentos realizados han mostrado evidencia apoya el uso de la microscopia de señal SHG como método para la evaluación de efectos en esclera, levantando la posibilidad futura de usar esta técnica como una herramienta de monitoreo para tratamientos del cross-linking del cross-linking de colágeno apuntan las proteínas de colágeno. De nota, un instrumento ya está en uso clínico que potencialmente puede captar esta señal SHG. Aunque este instrumento fue diseñado principalmente para la proyección de imagen derm…
The authors have nothing to disclose.
Los autores agradecen Tongalp Tezel, MD, de consulta con respecto a la inyección del sT; Theresa Swayne, PhD, para consulta sobre microscopía de SHG; y Jimmy Duong de diseño y recursos de Bioestadística y el centro de Bioestadística base del Irving Institute en Columbia University Medical Center.
Apoyado en parte por la investigación para prevenir la ceguera y por institutos nacionales de salud subvenciones NCRR UL1RR024156, NEI P30 EY019007, NCI P30 CA013696 y NEI R01EY020495 (DCP). La Universidad de Columbia es propietaria de propiedad intelectual relacionados con: U.S. emitido patentes Nº: 8.466.203 y no: 9.125.856. Pendiente de patente internacional: PCT/US2015/020276.
Imágenes recogidas en el Confocal y especializados microscopía compartido recursos del centro Herbert Irving integral cáncer en la Universidad de Columbia, apoyado por los NIH grant #P30 CA013696 (Instituto Nacional del cáncer). El microscopio confocal fue comprado con NIH grant #S10 RR025686.
MILLI-Q SYNTHESIS A10 120V | EMD Millipore, Massachusetts, USA | Double distilled, deionized water. – protocol step 1.1.1 | |
Sodium hydroxymethylglycinate | Tyger Chemicals Scientific, Inc. Ewing, NJ, USA | Crosslinking reagent – protocol step 1.1.2 | |
Injection needle with luer-lock syringe | BD Eclipse, NJ, USA | Syringe for sub tenon injection. – protocol step 2.1 | |
Rabbit head | La Granja poultry | Outbred | Rabbit head separated and delivered within 1 hour postmortem. – protocol step 2.2 |
Tono-pen | Reichter Technologies Depew, NY | IOP measurements – protocol step 2.4 | |
DSC 6000 Autosampler | Perkin-Elmer Waltham, MA, USA | Thermal denaturation analyzer – protocol step 7.4 | |
Pyris software | Perkin-Elmer, Waltham, MA, USA | Ver 11.0 | protocol step 7.5 |
CFI75 Apochromat LWD 25X/1.10 W MP | Nikon Instruments, Melville, NY, USA | A water immersionn objective with high IR transmittance with a working distance of 2.0 mm – protocol step 8.1.1. | |
GenTeal | Alcon, Fort Worth, TX | B000URVDQ8 | Water-based gel used as objective immersion medium instead of water to prevent evaporation – 8.1.1 |
Chameleon Vision II | Coherent, Santa Clara,CA, USA | Ti:Sapphire pulsed laser with a 140 fs pulse width at 80 MHz and a tunable range from 680 nm to 1080 nm. – protocol step 8.1.11 | |
AttoFluor cell chamber | Thermo Fisher Scientific Inc | A7816 | Fixation of the cover slip – protocol step 8.1.3 |
25-mm round coverslips, #1.5 | Neuvitro Corporation, Vancouver, WA, USA | GG-25-1.5 | protocol step 8.1.3 |
Eclipse Ti-E | Nikon Instruments, Melville, NY, USA | protocol step 8.1.4. | |
Non-descanned (NDD) GaAsP detector | Nikon Instruments, Melville, NY, USA | Equipped with a 400-450 nm band pass filter – protocol step 8.1.7 | |
A1R-MP laser scanning system | Nikon Instruments, Melville, NY, USA | Compatible with infrared (IR) multi-photon excitation. – protocol step 8.1.8 | |
NIS Elements software | Nikon Instruments, Melville, NY, USA | Ver 4.3 | refered to as "software" in the text – protocol step 8.1.9 |
Fiji/ImageJ | National Institute of Health | protocol step 9.1.2 | |
NeuronJ | Eric Meijering, Erasmus University Medical Center, Rotterdam, The Netherlands | https://imagescience.org/meijering/software/neuronj/, for protocol step 9.2.2 | |
Microsoft Excel | Microsoft Corporation, Redmond, WA, USA | Ver 14 | protocol step 9.2.8 |