Summary

Fluorescens molekylär tomografi för In Vivo Imaging av Glioblastoma xenograft

Published: April 26, 2018
doi:

Summary

Ortotop intrakraniell injektion av tumörceller har använts inom cancerforskningen för att studera hjärnan tumörbiologi, progression, evolution och terapeutiskt svar. Här presenterar vi fluorescens molekylär tomografi av tumör xenograft, vilket ger realtid intravital avbildning och kvantifiering av en tumör massa i prekliniska glioblastoma modeller.

Abstract

Tumorigenicitetsprov är möjligheten av cancerceller att bilda en tumör massa. En allmänt använd metod att avgöra om cellerna är tumörframkallande är genom att injicera nedsatt immunförsvar möss subkutant med cancerceller och mäta tumör massan efter det blir synlig och påtaglig. Ortotop injektioner av cancerceller syftar till att införa xenograft i den närmiljön som mest liknar vävnaden av beskärningen av tumören som studeras. Brain cancerforskning kräver intrakraniell injektion av cancerceller för att tillåta den tumörbildning och analys i den unika närmiljön i hjärnan. Av in-vivo imaging av intrakraniell xenograft övervakar omedelbart tumör massa orthotopically rekonstituerades möss. Här rapporterar vi användningen av fluorescens molekylär tomografi (FMT) av hjärnan tumören xenograft. Cancercellerna är först sensorik med nära infraröd fluorescerande proteiner och injiceras sedan i hjärnan hos immunsupprimerade möss. Djuren är sedan skannas för kvantitativ information om tumören massan över en längre tidsperiod. Cell före märkning möjliggör kostnadseffektiva, reproducerbar och tillförlitlig kvantifiering av tumör bördan inom varje mus. Vi eliminerade behovet av injicera imaging substrat, och därmed minskat belastningen på djuren. En begränsning av detta synsätt är representerat av oförmåga att upptäcka mycket små massorna; Det har dock bättre upplösning för större samlas än andra tekniker. Det kan användas för att utvärdera effekten av en läkemedelsbehandling eller genetiska förändringar av gliom cellinjer och patientderiverade prover.

Introduction

Cancer är en av de ledande orsakerna till sjukdom-relaterade dödsfall hos människor i den industrialiserade världen. Med en extremt hög dödssiffran är nya behandlingar angeläget. Glioblastoma multiforme (GBM) är en extremt dödliga typ av hjärncancer, sammansatt av heterogena populationer av tumör, stromaceller och immun hjärnceller. Enligt centralhjärnan tumören registret av USA är förekomsten av primära maligna och icke-maligna hjärntumörer cirka 22 fall per 100 000. Cirka 11.000 nya fall förväntas diagnostiseras i USA i 20171.

Prekliniska studier undersöka sannolikheten för att en drog, förfarande eller behandling är effektiv före provning hos människor. En av de tidigaste laboratorium stegen i prekliniska studier är att identifiera potentiella molekylära mål för läkemedelsbehandling med hjälp av cancerceller som implanteras i en värdorganism, definieras som människors xenograft-modeller. I detta sammanhang har intrakraniell hjärnan tumören xenograft-modeller patientderiverade xenograft (PDXs) använts i stor utsträckning att studera hjärnan tumörbiologi, progression, evolution och terapeutiskt svar, och mer nyligen för biomarkörer utveckling, drog screening och personlig medicin2,3,4.

En av de mest prisvärda och icke-invasiv i vivo imaging metoder för att övervaka intrakraniell xenograft är Mareld imaging (BLI)5,6,7,8. Men inkluderar vissa BLI begränsningar substrat administration och tillgänglighet, enzym stabilitet, och ljus snabbkylning och spridning under imaging förvärv9. Här rapporterar vi det infraröda FMT alternativt imaging metod för att övervaka prekliniska glioblastoma modeller. I denna metod, signal förvärv och kvantifiering av intracranially implanterade PDXs, uttrycker en nära-infraröd fluorescerande protein iRFP72010,11 (som hädanefter kallas FP720) eller turboFP635 (hädanefter kallas FP635), utförs med en FMT imaging system. Använda tekniken för FMT, övervakade den ortotop tumörer kan vara i vivo före, under eller efter behandling, i en icke-invasiv, substrat-fri och kvantitativa sätt för prekliniska observationer.

Protocol

Användning av experimentell forskning djur och smittämnen, såsom lentivirus till transduce cancercellerna, kräver förhandsgodkännande genom programmet animaliska institutionsvård och institutionella Biosäkerhetskommittén. Detta protokoll följer djurvård riktlinjer på University of California San Diego (UCSD). 1. märkning av Glioblastoma celler med FP635 eller FP720 konstruktion Producera och rena lentivirus enligt protokollet beskrivs av Tiscornia o.a. <sup clas…

Representative Results

Glioblastom celler U87EGFRvIII (U87 celler som uttrycker över den EGF-receptor varianten III) odlades enligt steg 1.2. Lentivirus producerades och renas enligt steg 1,1. Viral koncentrationen bestämdes av p24 ELISA analys. Cellerna var sensorik med lentivirus som transporterar infraröd fluorescerande proteiner enligt steg 1,8. Plasmiden kodning FP72010,11 var vänligen tillhandahållen av Dr V.V. Verkhusha och FP635 vector köp…

Discussion

Tumör xenograft har använts flitigt i cancerforskning och ett antal väletablerade bildgivande tekniker har utvecklats: BLI; magnetisk resonanstomografi (MRT); positron emissions tomografi (PET), beräknade datortomografi (CT); FMT. Alla dessa metoder kommer med för- och nackdelar, men i slutändan kompletterar varandra med typ av information som tillhandahålls. En av de vanligaste i vivo imaging teknik är BLI5,6,7

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi tackar Dr. Frederick Lang, MD Anderson Cancercenter för GBM-PDX neurospheres. Detta arbete stöds av de nederlag GBM forskning Collaborative, ett dotterbolag till National hjärnan tumören Society (Frank Furnari), R01-NS080939 (Frank Furnari), James S. McDonnell Foundation (Frank Furnari); Jorge Benitez stöddes av en utmärkelse från den amerikanska hjärnan tumören Association (ABTA); Ciro Zanca stöddes delvis av ett amerikansk-italienska Cancer Foundation postdoc-stipendium. Frank Furnari får lön och ytterligare stöd från Ludwiginstitutet för cancerforskning.

Materials

DMEM/High Glucose  HyClone/GE SH30022.1
DMEM/F12 1:1  Gibco 11320-082
FBS HyClone/GE SH30071.03
Accutase Innovative cell technologies AT-104
Trypsin HyClone/GE SH30236.01
B27 supplement Gibco 17504044
human recombinant EGF  Stemcell Technologies 2633
human recombinant FGF Stemcell Technologies 2634
DPBS Corning 21-031-00
FACS tubes Falcon 352235
DAPI ThermoFisher Scientific 62248
Blasticidin ThermoFisher Scientific A1113903
p24 ELISA  Clontech 632200
Xylazine Akorn NDC 59399-110-20
Ketamine Zoetis NADA 043-403 Controlled substance
Ointment Dechron NDC 17033-211-38
Absorbable suture CpMedical VQ392
5 ul syringe Hamilton 26200-U Catalog number as sold by Sigma-Aldrich
Cell Sorter Sony SH8007
Mouse stereotaxic frame  Stoelting 51730
Motorized stereotaxic injector Stoelting 53311
Micromotor hand-held drill Foredom K1070
Mouse warming pad  Ken Scientific Corporation TP-22G
Fluorescence Tomography System  PerkinElmer FMT 2500 XL
TrueQuant Imaging Software  Perkin Elmer  7005319
Ultra-centrifuge Optima L-80 XP Beckman Coulter 392049
Tissue Culture 100mm Dishes Olympus Plastics 25-202
Tissue Culture 150mm Dishes Olympus Plastics 25-203
Tissue Culture Flasks T75 Corning 430720U
50 mL conical tubes Corning 430290
15 mL conical tubes Olympus Plastics 28-101
Centrifuge Avanti J-20 Beckman Coulter J320XP-IM-5
Tube, Polypropylene, Thinwall, 5.0 mL Beckman Coulter 326819
Tube, Thinwall, Polypropylene, 38.5 mL, 25 x 89 mm Beckman Coulter 326823
Athymic nude mice Charles River Laboratories Strain Code  490 (Homozygous) Prior approval by the Institutional Animal Care Program and by the Institutional Biosafety Committee required.   

References

  1. Ostrom, Q. T., et al. CBTRUS Statistical Report: Primary Brain and Other Central Nervous System Tumors Diagnosed in the United States in 2009-2013. Neuro-Oncology. 18 (suppl_5), v1-v75 (2016).
  2. Pauli, C., et al. Personalized In Vitro and In Vivo Cancer Models to Guide Precision Medicine. Cancer Discovery. 7 (5), 462-477 (2017).
  3. Stewart, E. L., et al. Clinical Utility of Patient-Derived Xenografts to Determine Biomarkers of Prognosis and Map Resistance Pathways in EGFR-Mutant Lung Adenocarcinoma. Journal of Clinical Oncology. 33 (22), 2472-2480 (2015).
  4. Gao, H., et al. High-throughput screening using patient-derived tumor xenografts to predict clinical trial drug response. Nat Med. 21 (11), 1318-1325 (2015).
  5. Ozawa, T., James, C. D. Establishing Intracranial Brain Tumor Xenografts With Subsequent Analysis of Tumor Growth and Response to Therapy using Bioluminescence Imaging. J. Vis. Exp. (41), e1986 (2010).
  6. Kondo, A., et al. An experimental brainstem tumor model using in vivo bioluminescence imaging in rat. Child’s Nervous System. 25 (5), 527-533 (2009).
  7. Nyati, S., Young, G., Ross, B. D., Rehemtulla, A., Kozlov, S. V. . ATM Kinase: Methods and Protocols. , 97-111 (2017).
  8. Kondo, A., et al. Longitudinal assessment of regional directed delivery in a rodent malignant glioma model. J Neurosurg Pediatr. 4 (6), 592-598 (2009).
  9. Badr, C. E., Badr, C. E. . Bioluminescent Imaging: Methods and Protocols. , 1-18 (2014).
  10. Shcherbakova, D. M., Verkhusha, V. V. Near-infrared fluorescent proteins for multicolor in vivo imaging. Nat Meth. 10 (8), 751-754 (2013).
  11. Filonov, G. S., et al. Bright and stable near-infrared fluorescent protein for in vivo imaging. Nat Biotech. 29 (8), 757-761 (2011).
  12. Tiscornia, G., Singer, O., Verma, I. M. Production and purification of lentiviral vectors. Nat. Protocols. 1 (1), 241-245 (2006).
  13. Basu, S., Campbell, H. M., Dittel, B. N., Ray, A. Purification of Specific Cell Population by Fluorescence Activated Cell Sorting (FACS). J. Vis. Exp. (41), e1546 (2010).
  14. Pritchett-Corning, K. R., Luo, Y., Mulder, G. B., White, W. J. Principles of rodent surgery for the new surgeon. J Vis Exp. (47), (2011).
  15. Cetin, A., Komai, S., Eliava, M., Seeburg, P. H., Osten, P. Stereotaxic gene delivery in the rodent brain. Nat. Protocols. 1 (6), 3166-3173 (2007).
  16. Benitez, J. A., et al. PTEN regulates glioblastoma oncogenesis through chromatin-associated complexes of DAXX and histone H3.3. Nature Communications. 8, 15223 (2017).
  17. Kirschner, S., et al. Imaging of Orthotopic Glioblastoma Xenografts in Mice Using a Clinical CT Scanner: Comparison with Micro-CT and Histology. PLOS ONE. 11 (11), e0165994 (2016).
  18. Mannheim, J. G., et al. Standardization of Small Animal Imaging-Current Status and Future Prospects. Molecular Imaging and Biology. , (2017).
  19. Engblom, C., et al. Osteoblasts remotely supply lung tumors with cancer-promoting SiglecFhigh neutrophils. Science. 358 (6367), (2017).
  20. Lauber, D. T., et al. State of the art in vivo imaging techniques for laboratory animals. Laboratory Animals. 51 (5), 465-478 (2017).
  21. Zanca, C., et al. Glioblastoma cellular cross-talk converges on NF-κB to attenuate EGFR inhibitor sensitivity. Genes & Development. 31 (12), 1212-1227 (2017).
  22. Villa, G. R., et al. An LXR-Cholesterol Axis Creates a Metabolic Co-Dependency for Brain Cancers. Cancer Cell. 30 (5), 683-693 (2016).
  23. Liu, F., et al. EGFR Mutation Promotes Glioblastoma through Epigenome and Transcription Factor Network Remodeling. Molecular Cell. 60 (2), 307-318 (2015).

Play Video

Cite This Article
Benitez, J. A., Zanca, C., Ma, J., Cavenee, W. K., Furnari, F. B. Fluorescence Molecular Tomography for In Vivo Imaging of Glioblastoma Xenografts. J. Vis. Exp. (134), e57448, doi:10.3791/57448 (2018).

View Video