Summary
وهنا يقدم بروتوكول لاستخدام رفرف مخرز شريان شرسوفي متفوقة خنزير كوحدة نمطية تعلم للتعمير ميكروفاسكولار الرأس والرقبة.
Abstract
النماذج الحية التي تشبه الحالات الجراحية من البشر هناك حاجة للتدريب مجاناً رفرف الحصاد وملامسة. لم تتوافر نماذج حيوانية لأغراض التدريب لمدة سنوات في العديد من المجالات الجراحية. كنا الأنثى (لأنها سهلة للتعامل مع الإجراء) يوركشاير الخنازير لتعمير الرأس والرقبة بحصاد مخرز شريان شرسوفي العميق أقل شأنا أو رفرف مخرز شريان شرسوفي متفوقة. تم إعداد الموقع ملامسة (عيب الجلد العنق أو عيب الجدار الرغامى) عبر تشريح الشريان السباتي المشترك وحبل الوريد الداخلي، في × 3.5 التي استخدمت التكبير العدسة اللاصقة لملامسة كما أننا نستخدم في الحالات البشرية في الحياة الحقيقية. هذا الإجراء يوضح طريقة تدريب جديدة باستخدام نموذج تعلم يمكن الاعتماد عليها، ويوفر تشريح مفصل في سيناريو حية. ركزنا على الوقت الاسكيمية، الحصاد، ملامسة السفينة، وتصميم رفرف لتناسب الموقع عيب. هذا النموذج ويحسن التعامل مع الأنسجة ومع استخدام الأدوات المناسبة يمكن أن تتكرر مرات عديدة حيث أن الجراح واثقة تماما قبل البدء عملية جراحية على البشر.
Introduction
إعادة البناء في أعقاب عملية جراحية للرأس والرقبة الأمراض الخبيثة إجراء صعبة المرتبطة باعتلال كبير. Microvascular رفرف مجاناً التعمير قد أنشئت أيضا كمنهج موحد لإعادة الإعمار لما يزيد على 20 سنة1،،من23. نقل رفرف مجاناً تلعب دوراً هاما في تحسين إدارة الرأس والعنق في مرضى السرطان وإصابات ما بعد الصدمة مما دفع حدود الاستئصال الجراحي للمرض خارج التقنيات السابقة، أدى إلى زيادة المريض نوعية الحياة، والبقاء على قيد الحياة أطول معدل1،،من23. اللوحات المختلفة لإعادة الإعمار تشمل التناوب، graft، والحرة اللوحات.
ووسعت دور اللوحات مجاناً في تعمير الرأس والرقبة. وهو رفرف الأكثر صعوبة للعمل مع، التي تتطلب المعالجة الدقيقة وغير المهرة. فشل رفرف حدث كارثية، مع اعتلال كبير4،5. وهكذا، مطلوب الوقت قدر كبير من التدريب لتطوير الدقة اللازمة لنتائج العمليات الجراحية الناجحة3،4،5،6،،من78، 9. يمكن التأثير على نتيجة للمرضى حاد منحنى التعلم المرتبطة بمثل هذه جراحة وتؤثر على معاملة إدارة3،4،5،،من67، 8،9. لتقليل وقت التدريب ومنحني التعلم لجراحي جديد، ونموذج تدريب المسبق الذي يحاكي البيولوجيا البشرية وتوفر شروط مشابهة الحقل الجراحي8.
والهدف من هذه الدراسة إظهار رؤية لحم الخنزير كوحدة تدريبية جيدة لإعادة ميكروفاسكولار الرأس والرقبة تشبه حالة الإنسان مع تحسين المهارات بطريقة نشطة.
حققت هذه الدراسة استخدام نموذج الخنزير لتكملة تدريب الزملاء الجدد في الرأس والرقبة ميكروفاسكولار إعادة إعمار لنقل رفرف مجاناً لتقديم فعالية من حيث التكلفة وأقل إرهاقاً للتدريب الميداني السريري مع موثوق بها مماثلة ميزات لإجراءات رفرف مجاناً. وقد استخدمت الخنازير للعديد من الدراسات والتدريس نماذج لإعادة البناء الجراحية المختلفة، مثل إعادة بناء الثدي؛ 5 ومع ذلك، لم يتم استخدام الخنازير لتعمير الرأس والرقبة ما عدا في دراستنا للتعمير الرغامى سبب تضيق الرغامى10.
بدأت الفكرة بعد بودين فريدريك7، الذي وصف رفرف مماثلة لإعادة بناء الثدي. والميزة الرئيسية لهذه الدراسة على وحدة أخرى من التدريب microvascular هو الوحدة النمطية ليفينينج النشطة مع نتيجة فورية حقيقية للإجراء.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
هذه الدراسة واسترشد والمعتمد من قبل الإدارة مختبر الحيوان الموارد، يونسي الطبية معهد أبحاث "يونسي كلية الطب في جامعة"، معتمدة من قبل جمعية التقييم والاعتماد لرعاية الحيوانات المختبرية الدولية. المبادئ التوجيهية هذه الدراسة لرعاية واستخدام الحيوانات المختبرية من معهد مختبر الحيوان لجنة الموارد في "مجلس البحوث الوطني في علوم الحياة". وقد تأقلم كل الخنازير لمدة أسبوع قبل العملية.
1-إعداد
- تبقى الخنازير دون طعام لأكثر من 12 ح قبل التخدير العام مع حرية الوصول إلى المياه.
ملاحظة: استخدمت ستة خنازير يوركشاير الإناث وزنها 25-30 كجم كل. - استخدام إبرة قياس 16 من طول 1 سم لحقن العضل الفاكسان (1 مغ/كغ) وإكسيلازيني (2 مغ/كغ) وأزابيروني (2 مغ/كغ) خلف وأسفل الإذن لبدء التخدير.
- يحلق خط الوسط الأمامي من الرقبة وجدار البطن الخنازير باستخدام ماكينة إزالة شعر جراحية.
- تأمين عن طريق الحقن في الوريد (رابعا) عن طريق الوريد الإذن الوسطى أو هامشية على الجانب الخلفي من عقوبة قطع صوان بإبرة 22-ز. حقن كيتورولاك (1 مغ/كغ) عن طريق خط الرابع.
- ثم حقن الأتروبين (0.04 مغ/كغ) عضليا كما هو موضح في 1-2. حقن سيفازولين (30 ملغ/كغ) عضليا كما هو موضح في 1-2.
- وضع الخنزير الاستلقاء في موقف ضعيف إزاء الجدول غرفة العمليات.
- تسمح الخنزير إلى التنفس 2 ل الأكسجين بنسبة 5% إيسوفلوراني عن طريق تخدير الخنازير قناع عفويا.
- تعريض الاحبال الصوتية عن طريق الفم باستخدام المنظار ورذاذ لهم مع نفث اثنين من 2% ليدوكائين حل موضعي لمنع لارينجوسباسم التي يسببها تنبيب.
- التنبيب مع أنبوب 6.5 ملم، وتضخيم الكفة أنبوب مع 3-5 مل هواء استخدام حقنه بدون إبرة مرفقة به.
ملاحظة: إجراء كابنوميتري لضمان أن الأنبوب الرغامى، الذي جزء من آلة التخدير، في موقف سليم وهناك CO2 مرة أخرى إلى الجهاز كمؤشر للأوكسجين السليم. - الاحتفاظ التخدير بعد التنبيب مع إيسوفلوراني 2%.
- استخدم مرهم البيطرية في عيون خنزير وإغلاقه مع تصحيح غطاء عين.
2-الإجراء: موقع الاستقبال
- تطهير في الرقبة وجدار البطن مع % 1 حل فرك المستندة إلى اليود.
- بدء شق خط الوسط عمودي في الرقبة الأمامية باستخدام شفرة رقم 23 حتى القص.
- تشريح عضلات حزام وأتراجع أفقياً باستخدام مقص الأنسجة كيلي وضام أهي.
- كشف القصبة الهوائية من الحلقة الأولى إلى مدخل الصدر.
- بعد ذلك، تعرض الشريان السباتي المشترك وحبل الوريد الداخلي لملامسة.
- إنشاء نافذة في غضروف الرغامى الثانية أو الثالثة، ~ 1 سم في العرض باستخدام شفرة رقم 11.
- ابحث عن أنبوب داخل الرغامى عن طريق العيب القصبة الهوائية التي تم إنشاؤها، وتأكد من تهوية عن طريق الأنبوب واستمر استخدام التنفس الصناعي دون تسرب.
3-الإجراء: رفرف الموقع
ملاحظة: الحصاد رفرف مخرز (السكرتارية) شريان شرسوفي متفوقة يمكن أن يؤديها، وفقا لطريقة وصف بودين فريدريك7.
- تصميم رفرف في الجزء العلوي من البطن بقلم ماركر جراحية (الشكل 1A).
- إنشاء شق جلد بيضاوي الشكل 4 × 3 سم باستخدام مشرط رقم 23 للغلاف الأمامي من جدار البطن في الجانب الآنسي من رفرف عليه (الشكل 1B).
- رفع غمد (قشر) رفرف من العضلات البطنية المستقيمة تبحث عن ثاقبات الذهاب إلى رفرف الجلد بينما يمسك اللفافة قبل أليس.
- إجراء التشريح العضلي واتبع ثاقبات للسفن شرسوفي متفوقة (الشكل 1B)
- الآن تنفيذ شق الجلد الوحشي على رفرف المصممة (الشكل 1A) باستخدام مشرط رقم 23 (الشكل 1)
- المشبك بسفن شرسوفي متفوقة و وريدان كوميتانتيس مع هيموستات ﻷسلحته واستخدام مقص الأنسجة كيلي لقص أدناه هيموستات واضطر السفينة أعلاه هيموستات بخياطة 3-0. ثم تقلع في هيموستات.
4-ملامسة والإغلاق
- وضعت العدسة اللاصقة جراحية.
- المشبك الشريان السباتي باستخدام هيموستاتس اثنين بمسافة 1-2 سم فيما بينها.
- ضمان الاستخدام الجزئي-مقص قطع بين الشريان السباتي وربط الجزء متفوقة بخياطة مزدوجة لا ناز.
- استخدام المشبك مزدوجة دون الإطار بين الشريان السباتي والشريان رفرف.
- بدء ملامسة باستخدام سمك 10-0 كاملة بسيطة خياطة تفسيرها.
- خياطة الجروح مكان الأول اثنين البقاء بعيداً في محيط السفينة ثم بين مكان 2-3 غرز حوالي 120 درجة.
- الإصدار المشبك. إذا لم يكن هناك دم ناز القيام بخياطة مماثلة في موقع ناز.
- ابحث عن تدفق العودة الوريدية من وريدان كوميتانتيس.
- إجراء مفاغره كما هو موضح في الخطوة 4، 1 إلى 4.7 الداخلية حبل الوريد و وريدان كوميتانتيس (الشكل 1).
- استخدام حجم إبرة حقنه 18 وخز الجلد لضمان بقاء رفرف برؤية قطره دم.
- قم بإغلاق نافذة الرغامى وخياطة رباط العضلات السكرتارية رفرف استخدام خياطة 3-0.
- اكستريورز وخياطة مضرب جلد من رفرف السكرتارية لشق الجلد خط الوسط عنق الرحم (الشكل 2A).
- إغلاق شق الجلد البطن (الشكل 2).
5-بعد العمليات الجراحية الرعاية
- نعود الخنزير في موقف المعرضة.
- وقف إيسوفلوراني وفطم الخنزير من التنفس الصناعي.
- تسمح الخنزير استرداد في قفص الحيوان ورصده عن كثب لضمان انتعاشها سلسة من الإجراءات.
- ابحث عن رفرف في موقع إعادة الإعمار بعد الشفاء (الشكل 2).
- البحث في موقع الجهات المانحة في الحيوان بعد الشفاء (الشكل 2D).
- بدء اللاكتات في المسابقة بمعدل 150 مل/ساعة حتى الشفاء التام وإدارة البوبرينورفين 0.3 ملغم للتسكين.
- وبعد نزع الأنبوب، رصد الخنزير عن كثب حتى استعاد وعيه كافية للحفاظ على الموقف والتنفس وهي قادرة على شرب عفويا.
- تبقى الخنازير ما بعد الجراحة في مكان المنفصلين عن ذويهم من الحيوانات لا تعمل.
- بدء أموكسيسيلين العضلي – كلافولاناتي (14 مغ/كغ) لمدة أسبوع واحد.
- بدء العضلي ميلوكسيكام (0.2 مغ/كغ) لمدة أسبوع واحد.
6-القتل الرحيم
- بدء التخدير للخنازير عن طريق حقن بروبوفول عن طريق رابعا (5-10 مل) والحفاظ عليه مع إيسوفلوراني 5%.
- التنبيب الخنزير كما هو موضح في الخطوة (1.1, 1.2, 1، 6-1، 10).
- الحث سكتة قلبية عن طريق الحقن الوريدي من 40 مليمول بوكل.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
يمكننا تنفيذ الإجراء على الخنازير ستة: التعمير عيب الجلد سرطان عنق الرحم في اثنين من الخنازير، والإعمار الرغامى الخنازير اثنين، ورفرف مجاناً لاختبار جهاز الأوعية الدموية ملامسة الخنازير اثنين. وتم رصد الخنازير لمدة 3 أشهر وكان هناك أي علامة سريرية للعجز العصبي.
وكان وقت يعني الاسكيمية 50 دقيقة (النطاق، 35-80 دقيقة)؛ وانخفض الوقت كما تم تكرار الإجراء. وكان وقت الحصاد يعني الخنازير ستة 55 دقيقة. ليس هناك أي اعتلال يحدث في الموقع المانح في وحدة لدينا. وكان حجم اللوحات بيديكلي يعني 10 سم، ومماثل لأقصى ما في الإنسان الرأس والرقبة. قطر الشريان يعني 4.5 مم أكبر تماما من البشر 2 مم وقطر الوريد يعني كان أيضا أكبر تماما من البشر 2 مم 5.84 مم على الرغم من أنها تحاكي تجربة الحياة الحقيقية. حجم مجداف الجلد تتراوح ما بين 25 سم2 إلى 40 سم2 دون تأثير كبير في فشل رفرف (الجدول 1).
مع الممارسة، تم تحسين الثقة المتكررة ومهارة ووقت الجراحة. ولسوء الحظ، كان الحصول على رقم القضية 5 وقتاً أطول في الحصاد وملامسة. رفرف نهاية في هذه الحالة مع مجموع الخسارة بالإضافة إلى قطر الشريان واحد أصغر والتي تمثل أحد التحديات في مجال الجراحة إعادة الإعمار وكان درسا جيدا للحكم على اختيار بيديكلي مع تأثير كبير في نجاحنا الجراح في الحقيقية لي fe.
| الحيوان | الغرض مجاناً رفرف | وقت الحصاد (دقيقة). | الاسكيمية الوقت (دقيقة). | النتيجة رفرف | المانحة الموقع الاعتلال | بيديكلي طول (سم) | موقع المتلقي | الشريان القطر (ملم) | قطر الوريد (ملم) | حجم مجداف الجلد رفرف سم (2) |
| 1 | التعمير عيب الجلد سرطان عنق الرحم | 45 | 55 | ونجا | لا شيء | 10 | العنق | 4 | 6.5 | 32 |
| 2 | التعمير عيب الجلد سرطان عنق الرحم | 50 | 50 | ونجا | لا شيء | 10 | العنق | 6 | 5 | 25 |
| يعني | 47.5 | 52.5 | 10 | 5 | 5.75 | 28.5 | ||||
| 3 | عيب الرغامى التعمير | 55 | 40 | ونجا | لا شيء | 9 | العنق | 5 | 7 | 35 |
| 4 | عيب الرغامى التعمير | 62 | 45 | ونجا | سيروما | 15 | العنق | 4 | 6 | 40 |
| يعني | 58.5 | 42.5 | 12 | 4.5 | 6.5 | 37.5 | ||||
| 5 | اختبار الجهاز لملامسة الأوعية الدموية | 70 | 80 | إجمالي الخسارة | N/A | 8 | العنق | 3.5 | 5 | 28 |
| 6 | اختبار الجهاز لملامسة الأوعية الدموية | 49 | 35 | ونجا | سيروما | 8 | العنق | 4 | 5 | 32 |
| 54.625 | 50 | 50.8333 | 10.25 | 10.25 | 4.5 | 5.84375 | 32.25 | 32 |
الجدول 1- التعمير الخنزير رفرف نموذج القياس
رقم 1. نموذج الخنزير السكرتارية رفرف التعمير الحصاد والرأس والرقبة. (أ) فلابدراوينج العلوي من البطن لشريان شرسوفي متفوقة مخرز (السكرتارية). (ب) السكرتارية التشريح العضلي. (ج) رفرف الواردة الجلد والنسيج تحت الجلد والعضلات مع اللفافة وشريان شرسوفي متفوقة مع وريدان كوميتانتيس. (د) الشريان السباتي والداخلية حبل الوريد بعد ملامسة. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-
رقم 2. نموذج الخنزير بعد الجراحة وبعد 3 شهور- (أ) الجلد مجداف من رفرف السكرتارية بعد اكستيريوريزيد وخياطة لشق الجلد خط الوسط عنق الرحم. (ب) شق الجلد البطن بعد الإغلاق. (ج) الموقع الرقبة التعمير بعد 3 أشهر. (د) موقع المانحة البطن بعد 3 أشهر. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
الاعتلال كبيرة وعيوب يمكن أن تحدث في الرأس والرقبة مرضى الورم الخبيث أثناء إدارة العمليات الجراحية. وأصبح نقل الأنسجة الحرة microvascular الأساسية لإعادة الإعمار في معظم الحالات. استمرارية رفرف قضية حساسة، تتطلب الثبات، دقة التعامل مع بيديكلي والإحساس باللمس، وقدرة فيسوسباتيال، وتدفق المنطوق ممتازة من الجراح8. لتطوير هذه المهارات، ويحتاج المرء ممارسة واسعة النطاق مع تدريب نموذجي3،4،5،6،7،،من89.
قد ناقشت دراسات عدة طرق لتعلم هذه المهارات، بما في ذلك ملامسة الأوعية الدموية، وقد ركزت معظم الدراسات والتي وضعت بطاقة microvascular ممارسة؛ 9 الدجاج6،7 والفئران وقد استخدمت لهذا الغرض. كما استخدمت الجثامين البشرية للعديد من الدورات التدريبية وتقدير الحالة السريرية؛ على سبيل المثال، استخدمت الجثامين البشرية ريبيرفوسيد7 في دراسة واحدة مع نتائج جيدة. على حد علمنا، هناك أي دراسة منشورة باستخدام نموذج الخنزير السكرتارية أو ديب رفرف لعيوب الرأس والرقبة، ما عدا دراستنا على عيوب الرغامى، التي على غرار الغشاء المخاطي للجهاز التنفسي والدالة. يستخدم فريق الأبحاث في فرنسا5 رفرف ديب، ورفرف عرضية مرهف موسكولوكوتانيوس ، ورفرف مخرز شريان الوي متفوقة لإعادة بناء الثدي. بناء على الدراسة السابقة، استخدمنا رفرف نفس لوجود عيب جلد سرطان عنق الرحم لاختبار إجراءات ملامسة الأوعية الدموية وعيوب الرغامى.
بيديكلي القطر والطول في نموذج الخنزير مماثلة لتلك الموجودة في البشر، وتماثل البيولوجية عموما يكفي لتقليد الظروف الميدانية سريرية في البشر. هذه العملية ينبغي تحسين توقيت والمهارات اللازمة لإنجاز حصاد حساسة وتشريح بيديكلي وملامسة السليم3،4،5،،من67، 8،9. ولسوء الحظ، لم يكن رفرف ديب، الذي يستخدم عادة في البشر، تنطبق على هذا النموذج بسبب عيار صغير به. ونحن لم ير هذا قضية رئيسية لأن هدفنا هو تطوير المهارات وإعادة تهيئة الظروف الفسيولوجية واقعية مع ردود فعل حقيقي وفوري. الشريان السباتي المشترك والداخلية حبل الوريد تستخدم أحياناً لملامسة microvascular في البشر، ولا سيما الداخلية حبل الوريد، التي يمكن أن تستخدم لملامسة الجانب إلى نهاية أو نهاية إلى نهاية. على الرغم من أن السباتي المشترك ليست شائعة الاستخدام، يمكن استخدام السباتي الخارجي في الحالات عندما أصيب الفروع الأخرى.
نموذجنا الخنزير هو الحيوانات حية أنه على الرغم من وجود بعض الاختلافات التشريحية، موثوق بها تقريب ظروف سريرية في إجراء العمليات جراحية الفعلية تكلفة أقل الجثث بشرية، ويعطي ردود فعل حقيقي لإعادة إعمار ميكروفاسكولار، الحصاد، وملامسة المنجز في نفس الموقع. بالإضافة إلى ذلك، يمكن أن يساعد النموذج تطوير المهارة والقدرة فيسوسباتيال والحكم المطلوب لهذه الإجراءات.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
الكتاب ليس لها علاقة بالكشف عن.
Acknowledgments
تمويل هذا العمل ويدعمه "برنامج بحوث العلوم الأساسية" عبر الوطنية بحوث مؤسسة من كوريا (جبهة الخلاص الوطني) تموله وزارة العلوم وتكنولوجيا المعلومات والاتصالات وتخطيط المستقبل (2015R1C1A1A01051907). وأيد هذا العمل أيضا "برنامج بحوث العلوم الأساسية" عبر الوطنية بحوث مؤسسة من كوريا (جبهة الخلاص الوطني) تموله وزارة العلوم وتكنولوجيا المعلومات والاتصالات وتخطيط المستقبل (جبهة الخلاص الوطني-2016M3A9E9941746).
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Pigs XP Bio, Seoul, South Korea | |||
| Surgical Hair Removal shaver | 3M | ||
| 22 gage catheter | B.BRAUN | ||
| syring with needle size 18 | Jung Rim Medical | ||
| Intramuscular alfaxan | Careside | 10ml/VAL | |
| Intramuscularxylazine | Bayer | ||
| Intramuscular azaperone | Sigma-aldrich | 34223 | |
| Intramuscular atropine | Daewon | 0.5mg/A | |
| Intramuscular cefazolin | Yuhan | 1g | |
| intravenous Ketorolac | Hana Pharm | 30mg | |
| Swine ansthesia mask | DRE | 1392 | |
| endotracheal cuff tube 6.5 mm | SMITH medical | 100/150/065 | |
| ansthesia Machine | Dräger | PRIMUS IE | |
| 2% lidocaine topical solution | Taejoon | ||
| vet ointment | Pfizer | terramycin  |
|
| eye cover patch | Innomed | S-universal010S | |
| betadine solution 1%. | Korea Pharma | ||
| gauze 4*4 | First Medical | 22*30CM 320S | |
| blade No. 23 | Paragon | 23 | |
| lahey retractor | V.Mueller | SU3960 | |
| kelly tissue scissors | SOLCO | 05-1990 | |
| blade No. 11 | Paragon | 11 | |
| surgical marking pen | Aspen Surgical | Regular #2750 | |
| allis | V.Mueller | SU4055 | |
| tie suture | Covidein | non-needle | |
| 3.5× surgical loupe | zeiss | eyemag smart | |
| double clamp without frame | V.Mueller | CH7155 | |
| microscissors | AESCULAP | FD038R | |
| Ringer's lactate | Daehan | 500ml/1bag | |
| amoxicillin–clavulanate | Ilsung | 0.6g/V | |
| Meloxicam | Samil | 7.5mg | |
| propofol | Dong Kook | 120mg/V | |
| intravenous KCl solution | Daehan | 20ml/50P | |
| mosquito curved | SOLCO | 013-0111 | |
| mosquito straight | SOLCO | 05-1050 | |
| ethilone 10-0 suture | ethicone | 10/0W1756 | |
| Vicryl 3-0. | ethicone | 3/0W9890 | |
| buprenorphine | Hanlim | 0.3mg |
References
- Chen, C. L., Zenga, J., Roland, L. T., Pipkorn, P. Complications of double free flap and free flap combined with locoregional flap in head and neck reconstruction: A systematic review. Head & Neck journal of the Science and Specialties of the Head and Neck. 40 (3), 632-646 (2018).
- Smith, R. K., Wykes, J., Martin, D. T., Niles, N. Perforator variability in the anterolateral thigh free flap: a systematic review. Surgical and Radiologic Anatomy. 39 (7), 779-789 (2017).
- Bauer, F., Koerdt, S., Hölzle, F., Mitchell, D. A., Wolff, K. D. Eight free flaps in 24 hours: a training concept for postgraduate teaching of how to raise microvascular free flaps. British Journal of Oral and Maxillofacial. 54 (1), 35-39 (2016).
- Schoeff, S., Hernandez, B., Robinson, D. J., Jameson, M. J., Shonka, D. C. Jr Microvascular Anastomosis Simulation Using a Chicken Thigh Model: Interval Versus Massed Training. The Laryngoscope. 127 (11), 2490-2494 (2017).
- Bodin, F., Diana, M., Koutsomanis, A., Robert, E., Marescaux, J., Bruant-Rodier, C. Porcine model for free-flap breast reconstruction training. Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 68 (10), 1402-1409 (2015).
- Rodriguez, J. R., Yañez, R., Cifuentes, I., Varas, J., Dagnino, B. Microsurgery Workout: A Novel Simulation Training Curriculum Based on Nonliving Models. Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 138 (4), 739e-747e (2016).
- Carey, J. N., et al. Simulation of plastic surgery and microvascular procedures using perfused fresh human cadavers. Plastic and Reconstructive Surgery journal. 67 (2), e42-e48 (2014).
- Chan, W., Niranjan, N., Ramakrishnan, V. Structured assessment of microsurgery skills in the clinical setting. Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 63 (8), 1329-1334 (2010).
- Matsumura, N. A newly designed training tool for microvascular anastomosis techniques: Microvascular Practice Card. Surgical Neurology Journal. 71 (5), 616-620 (2010).
- Kim, W. S., et al. Tracheal reconstruction with a free vascularized myofascial flap: preclinical investigation in a porcine model to human clinical application. Scientific Reports. 7 (1), 10022 (2017).
