Summary
Ce protocole est pour l’exécution de celui-anastomose pontage gastrique (OAGB) chez le rat. L’opérateur effectue une poche gastrique longue et tubulaire-agrafé suivie d’anastomose cousus à la main. Pour ce modèle, l’opérateur a reproduit le même rapport entre la dérivation biliopancréatique et branche commune chez l’être humain ; par conséquent, la branche de dérivation biliopancréatique mesure 35 cm.
Abstract
Le but du présent protocole est de mettre en place un modèle préclinique de la chirurgie bariatrique et, plus précisément, l’OAGB chez les rats obèses. Basé sur ce modèle préclinique, études longitudinales est réalisable pour fournir une meilleure compréhension des mécanismes qui sous-tendent les résultats observés après une chirurgie bariatrique chez l’homme. À cette fin, des rats sont commandés sur à une laparotomie sous anesthésie générale à l’isoflurane. Tout d’abord, le chirurgien crée une poche gastrique longue et tubulaire : après la grande courbe et dissection hiatal, l’estomac mycangiums est agrafé et retiré. Ensuite, l’estomac restant est également agrafé afin de créer une sonde gastrique et exclure l’antre de l’estomac. Après cela, le chirurgien effectue une seule extrémité à l’autre gastrojéjunostomie 35 cm de l’angle duodéno-jéjunale. Cette longueur de branche a été choisie afin de reproduire le même rapport entre la dérivation biliopancréatique limb (BPL) et la longueur de branche (CL) commune comme en chirurgie bariatrique humaine. L’opération se termine par la fermeture aponévrotique et cutanée. La gestion postopératoire précoce se compose d’hydratation sous-cutanée, une injection intramusculaire d’antibiotiques prophylactique, une injection pariétale de xylocaine, l’administration d’analgésiques et une réintroduction progressive de l’alimentation.
Introduction
L’obésité morbide est un problème de santé majeur dans le monde occidental, avec l’augmentation de la prévalence de1. La chirurgie bariatrique reste la thérapie efficace seulement à long terme pour l’obésité morbide2, avec des avantages évidents sur les comorbidités associées à l’obésité,3. Gastrique Roux-en-Y bypass (RYGB) demeure l’étalon-or comme c’est une des procédures plus anciens et l’un des plus joués dans le monde entier avec le plus long suivi de4. OAGB est un procédé plus récent tout d’abord décrit en 2001 par Rutledge5. Il a été décrit comme une alternative efficace au RYGB6 et a certains avantages. Les premières données indiquent une efficacité similaire à RYGB en ce qui concerne la perte de poids et la résolution des comorbidités associées à l’obésité6,7. En outre, les risques de sténose ou fuite de l’anastomose jejunojejunal dans RYGB est évité, et le risque d’une hernie interne peut être plus faible qu’avec RYGB8.
Les mécanismes physiologiques qui sous-tendent la perte de poids après la chirurgie bariatrique demeurent controversées et peuvent être difficiles d’étudier les humains9. Modèles animaux sont utiles pour comprendre les chirurgies bariatriques comment peuvent avoir une incidence du métabolisme du glucose, des modifications neuro-endocrines ou les mécanismes de la satiété. On manque de données comparatives entre les procédures et les effets à long terme de ces chirurgies doivent être mieux comprise10. Il n’est pas possible de normaliser pleinement les soins cliniques pré- et postopératoire, et suivi satisfaisant peut être difficile à réaliser : certaines études rapport perte-pour-suivi des tarifs jusqu'à 30 % pour la première année11.
Le concept de pontage gastrique est une combinaison d’une procédure restrictive, en raison de la création d’une poche gastrique et un degré modéré de malabsorption, résultant de l’exclusion du duodénum et du jéjunum proximal du transit gastro-intestinal. Actuellement, longueur de branche de la chirurgie bariatrique est toujours un sujet de débat12,13. Les données disponibles montrent qu'une grande variabilité des procédures et aucun consensus n’a encore été conclue sur la longueur de la branche optimale pour OAGB14,15. Néanmoins, de nombreux auteurs ont signalé une longueur de 200 cm BPL comme norme pour l’OAGB16,17,18. La longueur moyenne de l’intestin grêle est environ 700 cm19.
Plusieurs modèles de rongeurs du RYGB ont été développés dans le monde entier contre20, avec grandes variations en termes de taille de poche, la longueur de la branche et la préservation du nerf vagal. Mais très peu d’auteurs a signalé un modèle expérimental OAGB ; pour cette raison, l’équipe theresearch a développé un modèle d’OAGB en collaboration avec des chirurgiens bariatriques. Le raisonnement derrière le développement du modèle était d’imiter le bypass gastrique pratiqué chez l’homme. Le modèle comprend la construction d’une poche gastrique à l’exclusion de l’antre et le corps de l’estomac. Pour cela, le chirurgien fait une ablation de l’estomac mycangiums à l’aide d’une agrafeuse. Par rapport à un précédent protocole20, l’équipe a décidé d’ajouter une antibioprophylaxie per-opératoire afin de diminuer la morbidité liée à l’anastomose gastro-intestinale, comme est courante dans la chirurgie humaine21.
La longueur de branche de rat utilisée dans ce modèle a été choisie de reproduire le rapport entre la BPL et le CL chez les humains. Des mesures préliminaires ont montré la longueur totale de l’intestin grêle chez les rats se situer entre 90 et 120 cm22. Par conséquent, la longueur de la BPL choisie pour OAGB a 35 cm. En outre, ce modèle est possible sans faire aucune ligature vasculaire, évitant l’ischémie de la poche gastrique.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Tous les animaux utilisés étaient conformes aux orientations de la Communauté européenne et a été approuvé par le Comité d’éthique local (Comité d'éthique en expérimentation animale N ° 121) et le ministère de l’enseignement supérieur et de recherche (Ref #02285.03).
1. les animaux et les régimes alimentaires
-
Rats
- Utiliser des rats Wistar mâles pesant 260-320 g, a commencé sur une alimentation riche en graisses (HFD) à 7 semaines d’âge.
-
Régime alimentaire
- Induire une obésité induite par la diète, au moins 12 semaines préopératoire de la SIH. Donner les rats libre accès à l’eau et le SIH.
Remarque : Le SIH se compose d’une alimentation rongeurs de laboratoire purifiée hypercaloric contenant 45 % de matière grasse (voir Table des matières). - Veiller à ce que les rats sont obèses au moment de la chirurgie, avec un poids compris entre 600 à 800 g.
- Induire une obésité induite par la diète, au moins 12 semaines préopératoire de la SIH. Donner les rats libre accès à l’eau et le SIH.
2. matériel
-
Appareils d’électrochirurgie
- Stériliser tous les instruments de chirurgie avant la chirurgie.
- Disposer tous les instruments chirurgicaux utilisés pour la procédure (voir Table des matières).
- Effectuer l’anastomose sous loupes, à l’aide d’instruments classiques et microchirurgies.
- Veiller à ce que les rats sont positionnés sur la plaque chauffante à une température de 37 ° C et sous une lampe chauffante. Placez le tableau électrique isotherme selon le besoin.
-
Préparation de l’anesthésie et l’animal
- Anesthésier le rat avec une inhalation d’isoflurane vol 3 % dans l’air pour l’induction de l’anesthésie dans la boîte de rongeur.
- Transférer le rat à la plaque chauffante et maintenir l’anesthésie avec le masque facial au même débit de 3 %. Veiller à ce que l’anesthetization est terminée en pinçant la queue de l’animal.
- Raser la fourrure antérieure, correspondant à incision zone de la laparotomie, un ~ 3 cm-large zone de la xiphoïde à bassin et animal, à l’aide d’un rasoir électrique.
- Raser une zone de 3 cm de large sur le dos de l’animal, centrée sur le cou de l’animal. Cette étape facilite la conduction électrique monopolaire.
- Pulvériser une solution désinfectante à base d’alcool sur le site de l’opération.
3. chirurgie
-
Laparotomie
- S’applique à base d’alcool local antiseptique sur la peau rasée.
- Ouvrir l’abdomen avec une incision cutanée de la médiane du processus xiphoïde d’environ 3 cm de long avec un scalpel. Ouvrez le carénage et le péritoine le long de la linea alba avec un bistouri monopolaire.
- S’assurer que la cavité péritonéale est ouvert sur toute la longueur de l’incision cutanée.
Exposer la cavité péritonéale d’un rétracteur à soi.
-
La courbe supérieure et dissection hiatal
- Disséquer la courbe gastrique supérieure de la jonction entre l’estomac glandulaire et mycangiums sur le côté gauche de l’oesophage abdominal avec des ciseaux chirurgicaux.
- Progressivement de coaguler les vaisseaux gastrosplenic avec le bistouri monopolaire, afin de libérer entièrement la grande courbe gastrique à son angle. Puis exposer la zone hiatal en sectionnant des ligaments minces.
- Disséquer le côté droit de l’oesophage abdominal, préservant l’artère gastrique gauche et nerf vagal, utilisant un dissecteur manuelle.
-
Confection de la poche gastrique
-
Ablation de l’estomac mycangiums
- Appliquer un aliment de base de 35 mm gun (voir Table des matières) à la jonction entre l’estomac glandulaire et mycangiums sur le côté gauche de la jonction gastro. Veiller à ce que l’estomac mycangiums est sur le côté droit de l’agrafeuse.
- Le canon à tir, puis enlever l’estomac mycangiums réséqué.
-
Poche gastrique
- Appliquer une deuxième agrafeuse utilisant un dispositif de (TA) thoraco-abdominaux (3 à 3,5 mm) (voir la Table des matières), parallèle à la première d’agrafage, sur le côté droit de la jonction gastro pour exclure l’antre et une partie du corps de l’estomac.
- Veiller à ce que le résultat des deux lignes discontinues est une poche gastrique environ 0,5 cm de large.
-
Ablation de l’estomac mycangiums
-
OAGB
-
Mesure de l’intestin grêle
- Localiser l’angle duodéno-jéjunale. Le jéjunum proximal est la portion de l’intestin grêle située sous la partie médiale du côlon ; C’est la partie non seulement mobile de l’intestin chez le rat.
- Avec une bande de 5 cm de long, manuellement mesurent 35 cm de l’angle duodéno-jéjunale. Effectuez ensuite un enterotomy punctiform sur le côté antimesenteric du jéjunum.
-
Anastomose gastro-jéjunale
- Effectuer une gastrotomie ponctuelle avec le bistouri monopolaire côté courbe supérieure de la poche gastrique, précisément entre les deux précédents discontinues de lignes. Si la poche gastrique n’est pas totalement vide, effectuer une légère pression manuelle sur la poche gastrique pour le vider.
- Réaliser une anastomose gastro-jéjunale bout-à-côte avec pinces non traumatique et détenteur d’une petit aiguille.
- Commencer la suture avec deux points d’extrémité de polypropylène isotactique 7-0 (voir Table des matières), suturer les deux extrémités de la gastrotomie avec les extrémités de l’enterotomy.
- Puis, avec les fils même utilisés pour les points de deux extrémité, effectuer deux sutures en cours d’exécution sur chaque côté de l’anastomose. Le cas échéant, renvoyer l’anastomose pour faciliter la manœuvre. Assurer la qualité de l’anastomose en plaçant près des points, au moins sept ou huit de chaque côté de l’anastomose.
- Prendre 1 mm de large séreuse dans chaque maille. Évitez de prendre toute la muqueuse dans la maille pour enterrer doucement la muqueuse gastrique et entérique à l’intérieur de la suture.
Remarque : Le résultat de ceci est une anastomose gastro-jéjunale de terminolateral avec une branche de dérivation biliopancréatique sur la gauche et un digestif/cl de (AL) sur la droite. S’assurer que l’anastomose est perméable par légère pression sur la poche gastrique.
-
Mesure de l’intestin grêle
-
Fermeture et soins immédiats
- Rincer la cavité péritonéale avec une solution de NaCl 0,9 % et remplacez manuellement les organes abdominaux dans leur position physiologique.
- Fermer la paroi abdominale avec une suture en cours d’exécution de tressé suture en polyester 2-0 (voir Table des matières) avec un aiguille classique-support.
- Fermer la peau avec une suture en cours d’exécution de polyglactine 910 4-0 (voir Table des matières).
- Effectuer deux pariétales injections de lidocaïne 1 % de chaque côté de la laparotomie. Administrer une dose totale de 1 mL/kg de lidocaïne 1 % dans l’aponévrose du muscle abdominaux rectus.
4. postopératoire soins
- Effectuer une injection intramusculaire de 20 000 unités/kg la pénicilline G.
- Effectuer une injection sous-cutanée de 10 mL de potassium de solution isotonique polyionic (2 g de KCl/L, 4 g de NaCl/L et 50 g de glucose/L). Dans cette injection, il est possible de mélanger avec des analgésiques appropriés tels que de la buprénorphine (0,1 mg/kg) et meloxicam (2 mg/kg).
- Placer les rats dans des cages individuelles, réchauffés par un feu jusqu'à ce qu’ils sont tout à fait réveillés.
- Inspecter fréquemment les animaux afin d’administrer un traitement postopératoire avec une analgésie appropriée et l’hydratation (solution isotonique polyionic).
- Injecter analgésique approprié, buprénorphine (0,1 mg/kg) et le meloxicam (2 mg/kg), par voie sous-cutanée de l’immédiate postopératoire période jusqu’au jour 4, toutes les 12 h.
- Gardez les rats avec libre accès à l’eau au cours de la journée 1. Jour 2/3, donner gratuitement accès à une alimentation liquide. Jour 4, leur donner accès ad libitum d’un régime alimentaire normal.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Ce protocole est reproductible et imite OAGB telle que pratiquée sur l’homme. La sécurité de ce protocole est pris en charge avec les données publiées23,24 , avec un faible taux de mortalité entre 12 % et 25 %. Les chirurgiens différents dans l’équipe de recherche avec un taux de mortalité similaires ont pratiqué ce protocole.
Néanmoins, chirurgie de rongeur d’apprentissage est complexe, et l’utilisation de loupes est obligatoire. En effet, l’étape cruciale de la construction d’une anastomose microscopique nécessite une période d’apprentissage d’environ 15 à 20 opérations d’atteindre une dextérité optimale. Un défaut chirurgical peut entraîner une fuite anastomotique d’une obstruction gastrique, qui est la cause principale de décès dans notre expérience. Une autre clé du succès est la nutrition postopératoire ; en effet, une nutrition postopératoire précoce du solide peut être dangereuse. Ce protocole prévoit également un protocole précis de nutrition postopératoire, qui a été démontré pour être sûr. Le concept de cette chirurgie chez l’homme et le rat est illustré à la Figure 1. Un résultat de l’opération après le sacrifice est fourni à la Figure 2.
Résultats obtenus sur la perte de poids après l’opération sur des rats obèses sont très semblables à ceux observés chez l’homme, avec une perte de poids d’environ 20 %, stable après l’opération. Les résultats sont détaillés dans la Figure 3. Meilleure sensibilité à l’insuline et la tolérance au glucose ont été observés dès que 2 semaines après la chirurgie, comme il est dosé par une épreuve orale (HGPO), avec une tolérance d’insuline tester (ITT). Ces résultats sont détaillés dans la Figure 4. L’obésité induite par le SIH a été décrite pour favoriser la résistance à l’insuline et l’intolérance au glucose à des rats de Wistar25; des données comparables ont été rassemblées dans notre unité (non publiée). Des rats Wistar ne sont pas un modèle de diabète de type 2.
Figure 1 : Illustration des OAGB sur l’homme et sur ce modèle de rat. (A) régime d’un OAGB chez l’homme ; la poche gastrique est long et tubulaire et la BPL mesure entre 150 et 200 cm. (B) modèle de Rat de l’OAGB. Le ratio de la BPL et l’AL/CL reproduire celui pratiqué pour la chirurgie humaine ; la BPL mesure 35 cm. Abréviations : GP = poche gastrique ; Ana = anastomose ; AL = branche alimentaire ; CL = branche commune. S’il vous plaît cliquez ici pour visionner une version agrandie de cette figure.
Figure 2 : Illustration des OAGB chez le rat après le sacrifice. Abréviations : GP = poche gastrique ; Ana = anastomose ; AL = branche alimentaire ; CL = commune membre ; OES = oesophage ; Duo = duodénum s’il vous plaît cliquez ici pour visionner une version agrandie de cette figure.
Figure 3 : Postopératoire evolution (moyenne ± écart-type) de poids après OAGB ni truqués chirurgie. La chirurgie de l’imposture comprenait une laparotomie et une pincée sur la grande courbe gastrique avec une pince non traumatique. S’il vous plaît cliquez ici pour visionner une version agrandie de cette figure.
Figure 4 : Le métabolisme du glucose après OAGB et simulacre de chirurgie ; post-opératoires HGPO et ITT. HGPO post-opératoire (A). Des rats OAGB et sham sont rendus pour tester la vite avant d’être soumise à une tolérance au glucose par voie orale (HGPO : 1 g/kg de poids corporel). (B) post-operative ITT : une injection d’insuline en U 1/kg de poids corporel. Des rats ont été faites avant de recevoir l’injection d’insuline rapide 4 h. Sang a été récolté dans la veine caudale à t = 0 à 10, 20, 30, 60 et 120 min après l’administration d’insuline ou de glucose. Glucose a été mesurée à l’aide d’un lecteur de glycémie. Glycémie a été exprimée en mg/dL ± écart-type. Abréviations : HGPO = épreuve d’hyperglycémie provoquée par voie orale ; ITT = test de tolérance à l’insuline ; BW = poids corporel. p < 0,05, ** p < 0,01, *** p < 0,001 ; Après deux voies test statistique de l’analyse de la variance. La chirurgie de l’imposture se composait d’une laparotomie avec une pincée de non traumatique de la grande courbe gastrique à l’aide de pinces non traumatique. Toutes les données sont présentées comme moyenne ± écart-type. s’il vous plaît cliquez ici pour visionner une version agrandie de cette figure.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Ce protocole a l’avantage d’imiter OAGB pratiqué systématiquement chez les humains. Sa sécurité et la reproductibilité chez les rats ont été démontrées dans des résultats cliniques et métaboliques.
L’anastomose dans le présent protocole pose une difficulté technique et est la principale étape critique. Pour ce faire, il est nécessaire d’utiliser des outils spécifiques de microchirurgie, comme un porte-aiguille de microchirurgie ou loupes. Afin de réaliser une anastomose hermétique sans aucune sténose, il est nécessaire d’effectuer au moins sept ou huit sutures étroites de chaque côté de l’anastomose et d’éviter de prendre toute la muqueuse dans n’importe quel point afin de l’enterrer à l’intérieur de la suture. La gestion efficace de la douleur et bien-être des animaux, ainsi que nutrition postopératoire progressive comme décrit précédemment, est obligatoire.
Toutefois, ce protocole a quelques limitations. Tout d’abord, l’approche chirurgicale est une laparotomie au lieu d’une laparoscopie, en raison de l’exiguïté des animaux. Il n’y a pas de division sur le côté droit de la poche gastrique. Ce choix a été fait pour des raisons techniques. Néanmoins, aucune repermeabilization de la poche gastrique n’a été observée après 15 semaines postopératoires. En outre, imitant les effets restrictifs sur les rats est très difficile tout en conservant un accès à une alimentation ad libitum . Animaux peut-être augmenter la fréquence de l’absorption par voie orale afin de contrebalancer l’effet restrictif de la poche gastrique22,24. En outre, il n’y a aucune résection gastrique chirurgie humaine, tandis que les mycangiums estomac de rat est connu pour être sensiblement extensible si non réséqué.
Aucun protocole de OAGB chez les rongeurs imitant la chirurgie humaine étroitement n’a jamais été publié par les autres équipes. Ce protocole pourrait offrir un bon équilibre entre faisabilité chirurgicale, la sécurité et la pertinence clinique.
Cette méthode peut également être utilisée à l’avenir de mettre en évidence les changements physiologiques observés après RYGB et OAGB chez l’homme, tels que l’augmentation du risque théorique de malignité et l’effet de malabsorption plus élevé de OAGB, par rapport au RYGB.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Les auteurs n’ont rien à divulguer.
Acknowledgments
Les auteurs tiennent à remercier Jean Pierre Marmuse pour son aide constante et de la prise en charge ; Eglantine Voitellier, Jean-Baptiste Cavin et Houneyda El Jindi pour mettre en place les modèles et les illustrations ; Anne-Charlotte Jarry et Andreia Goncalves pour leur aide avec les vidéos ; Sara J. Zaat pour modifier le texte en anglais. Matthieu A. Siebert et Lara Ribeiro-Parenti étaient bénéficiaires du parrainage de la Fondation versez la recherche médicale (FRM) et l’Association française de chirurgie (AFC).
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| High-Fat Diet, 45 % fat | Genestil, Royaucourt, France | C 1090-45 | http://www.genestil.com/ |
| Metzenbaum Scissors | World Precision instrument, Sarasota, US | 501739 | https://www.wpi-europe.com |
| Dumont Tweezers | World Precision instrument, Sarasota, US | 14098 | https://www.wpi-europe.com |
| Iris Forceps | World Precision instrument, Sarasota, US | 15915 | https://www.wpi-europe.com |
| Iris Scissors 10cm | World Precision instrument, Sarasota, US | 14218 | https://www.wpi-europe.com |
| Needle Holder | World Precision instrument, Sarasota, US | 14110 | https://www.wpi-europe.com |
| Alm Self Retaining Retractor | World Precision instrument, Sarasota, US | 14240 | https://www.wpi-europe.com |
| Baby Mixter Hemostatic Forceps, Right Angle | World Precision instrument, Sarasota, US | 501240 | https://www.wpi-europe.com |
| Non woven sterile swabs | LCH Medical Products, Paris, France | SN40-0755 | www.lch-medical.com |
| Galilean Binocular Loupe 2.5x | World Precision instrument, Sarasota, US | 504056 | https://www.wpi-europe.com |
| Digestive thread: Isotactic polypropylene, monofil Prolene 7-0 | Ethicon, Issy les Moulineaux, France | EH7813E | www.ethicon.com |
| Parietal thread : Coated Braided Polyester Ti-Cron 2-0 | Covidien, Mannsfield, MA, USA | 3003-52 | www.covidien.com |
| Cutaneous thread : Polyglactin, VICRYL RAPIDE 4-0 | Ethicon, Issy les Moulineaux, France | VR3100 | www.ethicon.com |
| ETS-Flex 35- mm staple gun | Ethicon, Issy les Moulineaux, France | ATS45 | www.ethicon.com |
| Proximate Reloadable Staplers | Ethicon, Issy les Moulineaux, France | XR30V | www.ethicon.com |
| TA-DST 30mm-3.5mm | Ethicon, Issy les Moulineaux, France | TX30B | www.ethicon.com |
| Alcoholic 5% Betadine | MEDA Pharma, Merignac, France | 41085 | www.medapharma.fr |
| LIDOCAINE AGUETTANT 20 mg/ml | LABORATOIRE AGUETTANT, Lyon, France | 3400940000000.0 | https://www.aguettant.fr |
| Penicillin G 5MUI | Panpharma, Luitre, France | 3.40E+12 | https://www.panpharma.eu/fr |
| Bionolyte G5 ; Sodium chloride 0.4%, glucose 5%, potassium chloride 0.2%) | Baxter, Maurepas, France | ||
| Liquid diet | Genestil, Royaucourt, France | C-0200T | http://www.genestil.com/ |
| Isoflurane 100% | Centravet, Plancoet, France | ISO007 | http://cooperative.centravet.net |
References
- Ogden, C. L., et al. Prevalence of overweight and obesity in the United States, 1999-2004. Journal of American Medical Association. 295, 1549-1555 (2006).
- Buchwald, H. Consensus Conference Panel. Consensus conference statement bariatric surgery for morbid obesity: health implications for patients, health professionals, and third-party payers. Surgery for Obesity and Related Disease. 1, 371-381 (2005).
- Mingrone, G., et al. Bariatric-metabolic surgery versus conventional medical treatment in obese patients with type 2 diabetes: 5 year follow-up of an open-label, single-centre, randomised controlled trial. Lancet. 386, 964-973 (2015).
- Nguyen, N. T., Varela, J. E. Bariatric surgery for obesity and metabolic disorders: state of the art. Nature Reviews. Gastroenterology & Hepatology. 14, 160-169 (2017).
- Rutledge, R. The mini-gastric bypass: experience with the first 1,274 cases. Obesity Surgery. 11, 276-280 (2001).
- Lee, W. J., et al. Laparoscopic Roux-en-Y vs. mini-gastric bypass for the treatment of morbid obesity: a 10-year experience. Obesity Surgery. 22, 1827-1834 (2012).
- Victorzon, M. Single-anastomosis gastric bypass: better, faster, and safer? Scandinavia Journal of Surgery. 104, 48-53 (2015).
- Magouliotis, D. E., Tasiopoulou, V. S., Tzovaras, G. One anastomosis gastric bypass versus Roux-en-Y gastric bypass for morbid obesity: a meta-analysis. Clinical Obesity. 8, 159-169 (2018).
- Seyfried, F., le Roux, C. W., Bueter, M. Lessons learned from gastric bypass operations in rats. Obesity Facts. 4 Suppl 1, 3-12 (2011).
- Wang, F. G., Yu, Z. P., Yan, W. M., Yan, M., Song, M. M. Comparison of safety and effectiveness between laparoscopic mini-gastric bypass and laparoscopic sleeve gastrectomy: A meta-analysis and systematic review. Medicine (Baltimore). 96, e8924 (2017).
- Hong, J., Park, S., Menzo, E. L., Rosenthal, R. Midterm outcomes of laparoscopic sleeve gastrectomy as a stand-alone procedure in super-obese patients. Surgery for Obesity and Related Disease. 14 (3), 297-303 (2017).
- Abellan, I., et al. The influence of the percentage of the common limb in weight loss and nutritional alterations after laparoscopic gastric bypass. Surgery for Obesity Related Disease. 10, 829-833 (2014).
- Nora, M., Morais, T., Almeida, R., Guimarães, M., Monteiro, M. P. Should Roux-en-Y gastric bypass biliopancreatic limb length be tailored to achieve improved diabetes outcomes? Medicine (Baltimore). 96, e8859 (2017).
- Madan, A. K., Harper, J. L., Tichansky, D. S. Techniques of laparoscopic gastric bypass: on-line survey of American Society for Bariatric Surgery practicing surgeons. Surgery for Obesity and Related Disease. 4, 166-173 (2008).
- Himpens, J. M., Vilallonga, R., Cadière, G. B., Leman, G. Metabolic consequences of the incorporation of a Roux limb in an omega loop (mini) gastric bypass: evaluation by a glucose tolerance test at mid-term follow-up. Surgical Endoscopy. 30, 2935-2945 (2016).
- Parmar, C. D., et al. Mini Gastric Bypass: first report of 125 consecutive cases from United Kingdom. Clinical Obesity. 6, 61-67 (2016).
- Chevallier, J. M., et al. One thousand single anastomosis (omega loop) gastric bypasses to treat morbid obesity in a 7-year period: outcomes show few complications and good efficacy. Obesity Surgery. 25, 951-958 (2015).
- Kular, K. S., Manchanda, N., Rutledge, R. A 6-year experience with 1,054 mini-gastric bypasses-first study from Indian subcontinent. Obesity Surgery. 24, 1430-1435 (2014).
- Tacchino, R. M. Bowel length: measurement, predictors, and impact on bariatric and metabolic surgery. Surgery for Obesity Related Disease. 11, 328-334 (2015).
- Bruinsma, B. G., Uygun, K., Yarmush, M. L., Saeidi, N. Surgical models of Roux-en-Y gastric bypass surgery and sleeve gastrectomy in rats and mice. Nature Protocols. 10, 495-507 (2015).
- Jeppsson, B., Mangell, P., Thorlacius, H. Use of probiotics as prophylaxis for postoperative infections. Nutrients. 3, 604-612 (2011).
- Cavin, J. B., et al. Differences in Alimentary Glucose Absorption and Intestinal Disposal of Blood Glucose After Roux-en-Y Gastric Bypass vs Sleeve Gastrectomy. Gastroenterology. 150, 454-464 (2016).
- Bruzzi, M., et al. Long-Term Evaluation of Biliary Reflux After Experimental One-Anastomosis Gastric Bypass in Rats. Obesity Surgery. 27, 1119-1122 (2017).
- Cavin, J. B., et al. Malabsorption and intestinal adaptation after one anastomosis gastric bypass compared with Roux-en-Y gastric bypass in rats. American Journal of Physiology-Gastrointestinal and Liver Physiology. 311, G492-G500 (2016).
- Jacob, P. S., et al. Isocaloric intake of a high-fat diet promotes insulin resistance and inflammation in Wistar rats. Cell Biochemistry and Function. 31, 244-253 (2013).
