Summary
Questo protocollo descrive la produzione di un sistema di 3-dimensionale organoid del mouse dei dotti biliari extrahepatic. Questi organoids biliare può essere mantenute in coltura per studiare biologia dei colangiociti. Organoids biliare esprimono marcatori di cellule progenitrici e cellule biliari e sono composte da cellule epiteliali polarizzate.
Abstract
Cholangiopathies, che interessano i dotti biliari extrahepatic (EHBDs), includono atresia biliare, colangite sclerosante primitiva e colangiocarcinoma. Non hanno nessuna opzione terapeutica efficace. Strumenti per studiare EHBD sono molto limitati. Il nostro scopo era di sviluppare un modello dei colangiociti preclinici, derivati da cellule staminali organo-specifiche, versatile, adulto che può essere facilmente generato da wild type e topi geneticamente modificati. Quindi, segnaliamo sulla nuova tecnica di sviluppare un sistema di coltura EHBD organoid (EHBDO) da EHBDs di topo adulto. Il modello è costo-efficiente, in grado di essere facilmente analizzati, e ha molteplici applicazioni a valle. In particolare, descriviamo la metodologia di isolamento EHBD mouse e dissociazione singola cella, organoid cultura iniziazione, propagazione e mantenimento a lungo termine e deposito. Questo manoscritto descrive anche EHBDO elaborazione per immunoistochimica, microscopia fluorescente e quantificazione di abbondanza del mRNA da reazione a catena della polimerasi in tempo reale di trascrizione d'inversione quantitativa (qRT-PCR). Questo protocollo ha significativi vantaggi oltre a produrre organoids EHBD specifici. L'uso di un medium condizionato dalle cellule L-WRN riduce significativamente il costo di questo modello. L'uso del mouse EHBDs fornisce quasi illimitato del tessuto per la generazione di cultura, a differenza di tessuto umano. EHBDOs del mouse generati contengono una popolazione pura di cellule epiteliali con marcatori del progenitore endodermico e biliare cellule differenziate. Colta organoids mantenere omogenea morfologia attraverso passaggi multipli e possono essere recuperate dopo un lungo periodo di conservazione in azoto liquido. Il modello consente lo studio di proliferazione delle cellule progenitrici biliare, può essere manipolato farmacologicamente e può essere generato da topi geneticamente modificati. Gli studi futuri sono necessari per ottimizzare le condizioni di coltura al fine di aumentare l'efficienza di placcatura, valutare la maturità funzionale delle cellule e differenziazione cellulare diretto. Sviluppo di modelli di co-coltura e una matrice extracellulare più biologicamente neutra sono anche auspicabile.
Introduction
Cholangiopathies sono incurabili disordini progressivi cronici che colpiscono le cellule biliari situate in intra e dotti biliari extrahepatic (EHBDs)1. Alcuni cholangiopathies, come colangite sclerotica primaria, colangiocarcinoma, atresia biliare e le cisti del coledoco, interessano principalmente EHBDs. Sviluppo di terapie per cholangiopathies è limitato dalla disponibilità limitata di modelli preclinici. Inoltre, studi precedenti incentrato su cholangiopathies raggruppati: fegato, intra- ed EHBDs. Tuttavia, intra - ed EHBDs hanno un'origine embrionale distinta e, quindi, dovrebbe essere considerata come patologie molecolari distinte. Dotti biliari intraepatici sviluppano dalle piastre ductal intraepatiche e della parte cranica del diverticolo epatico, tutta EHBDs sviluppare da parte caudale del diverticolo epatico2. Si affidano anche compartimenti cellulari differenti progenitore per adulto omeostasi, compresi canali di Hering in dotti biliari intraepatici e ghiandole peribiliari in EHBDs2,3. Uso di modelli animali per studi preclinici è limitata dalla spesa e deve essere ridotto al minimo per motivi etici. Di conseguenza, riduzionista, riproducibile, tempo e costo-efficienti modelli in vitro sono altamente desiderabili.
Maggior parte degli studi precedente di cholangiopathies utilizzato mouse normale o modelli di ratto del cancro o colangiocarcinoma umano linee cellulari derivate da intra - ed EHBDs4,5,6,7. Tuttavia, questi sono modelli di cellule trasformate e non ripassare biologia dei colangiociti normale omeostasi o in uno stato sano. Recenti progressi nello sviluppo di modelli di coltura organotypic ha permesso lo sviluppo di strutture 3-dimensionale da diversi tipi di tessuto, compresi i tessuti di hepatobiliary, anche se non normale mouse EHBDs8,9, 10. Queste strutture di "organo-come" puntato che imita il tessuto primario e sono cresciute in una nicchia artificiale sostegno auto-rinnovamento delle cellule staminali/progenitrici di organo-specifiche cellule11.
"Organoid" è un vasto termine che più comunemente vengono descritti modelli 3-dimensionale del tessuto derivate da cellule staminali. Organoids può essere generato da riprogrammate pluripotenti le cellule staminali rappresentata da cellule staminali embrionali e cellule staminali pluripotenti indotte. Inoltre possono essere generate da cellule staminali adulte di organo-specific12. Sono stati proposti alcuni modelli di organoid dei colangiociti in precedenti studi di ricerca. Così, organoids derivato da cellule staminali pluripotenti umane sono stati segnalati7,9,13 e fornire uno strumento efficiente di prezioso, tempo che consente la generazione simultanea di diversi tipi di cellule. Tuttavia, questi organoids derivati da cellule staminali pluripotenti non riflettono completamente la struttura e la funzionalità del primario adulto EHBD colangiociti.
Organoids derivate da cellule staminali adulte del umano9 e felino10 del fegato sono stati anche proposti. Modelli di felini non sono ampiamente disponibili e hanno limitato armamentario di strumento per motivi di studio. Inoltre, questi fegato-derivate organoids derivati da cellule staminali di adulti non modellare extrahepatic colangiociti ma piuttosto intraepatico colangiociti.
Generazione di organoid EHBD è stato segnalato da umano normale EHBDs14 e mouse EHBD colangiocarcinoma15. Tuttavia, accesso ai tessuti umani EHBD è estremamente limitato e organoids derivata da un modello genetico murino di colangiocarcinoma15 non rappresentano dei colangiociti sano biologia all'omeostasi e sono derivati dalle cellule geneticamente modificate.
Per risolvere le limitazioni di pluripotent derivati da cellule staminali e fegato dei colangiociti organoid modelli e l'accesso limitato ai tessuti umani necessari in modelli preclinici, abbiamo sviluppato un modello murino di organoid EHBD (Figura 1A). Questo manoscritto descrive lo sviluppo di una tecnica per mouse organoids EHBD-derivate da tessuto adulto. Questi organoids EHBD denominato EHBDOs sarà un importante strumento in vitro per lo studio dei meccanismi alla base di EHBDs dei colangiociti omeostasi e processi di malattia, come ad esempio cholangiopathies.
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Protocol
Tutti i metodi descritti qui sono stati approvati dal istituzionale Animal Care e uso Committee (IACUC) della University of Michigan.
1. preparazione di attrezzature e materiali per l'isolamento EHBD Mouse
- Preparare mezzo semina e tampone di lavaggio (Tabella materiali) in 50 mL provette coniche e conservare a 4 ° C o su ghiaccio fino all'utilizzo.
- Istituito un tavolo chirurgico (Figura 1B). Preparare gli strumenti chirurgici sterilizzati (Figura 1).
- Posizionare una piastra a 24 pozzetti sterile nell'incubatore 37 ° C coltura tissutale per pre-riscaldarla.
- Trasferire un'aliquota di matrice seminterrato sul ghiaccio. Matrice di seminterrato uso solo quando esso è completamente liquefatto.
2. EHBD isolamento e coltura di Organoid biliare
-
Isolamento e la preparazione di una sospensione unicellulare del mouse EHBD
- Eutanasia di un topo adulto (età superiore a 2 mesi) secondo le linee guida istituzionali. Posizionare il mouse in posizione supina. Aprire la cavità addominale usando un metodo del midline e ritrarre il fegato a riposare sul diaframma.
- Identificare il dotto biliare comune situato immediatamente sotto l'ILO del fegato tirando delicatamente il duodeno prossimale con una pinza emostatica. Separare EHBD dai tessuti circostanti usando un bisturi. Tenendo l'estremità prossimale del dotto biliare comune con il forcipe, disseccarla distale appena sopra la giuntura con il duodeno, quindi sezionare l'estremità prossimale del dotto dal fegato (Figura 1). Inserire subito isolato EHBD (Figura 1E) nel tampone di lavaggio.
- Togliere il tampone di lavaggio EHBD e tritare in sezioni di 0,5 mm usando un bisturi sterile. Posizionare il tessuto su una lastra di vetro sul ghiaccio durante la procedura (Figura 1B).
- Inserire le sezioni EHBD in una provetta contenente 500 µ l di buffer di dissociazione. Incubare per 20 min a 37 ° C. Neutralizzare il buffer di dissociazione aggiungendo 500 µ l di terreno di coltura cellulare ghiacciata.
- Triturare la sospensione cellulare su e giù per progredire attraverso aghi 18 G e 20 G, 20 volte ciascuno. Filtrare la sospensione cellulare attraverso un colino di cella 70 µm e raccogliere il flusso continuo in una provetta da 50 mL.
Nota: La pre-condizione del filtro con 500 µ l di sterile tampone fosfato salino (PBS) prima del filtraggio per facilitare il passaggio della sospensione delle cellule.
-
Che istituisce EHBD organoids
- Centrifugare il flusso continuo dal punto 2.1.5 a 300 x g per 5 min a 4 ° C.
- Rimuovere con cautela il supernatante. Risospendere le cellule in 1 mL di PBS sterile ghiacciata. Trasferire la risospensione in una nuova provetta da 1,5 mL. Ripetere il punto 2.2.1.
- Dopo la centrifugazione, rimuovere attentamente il surnatante da cellule lavate raccolte nella parte inferiore del tubo. Risospendere il pellet cellulare in 120 µ l di matrice liquefatto seminterrato ghiacciata pipettando su e giù utilizzando P200 consigli.
Nota: Risospensione di pellet di cella nella matrice seminterrato deve essere effettuato il bagno di ghiaccio. - Piastra 40 µ l della risospensione delle cellule nella matrice seminterrato nel centro di un pozzo in una piastra a 24 pozzetti pre-riscaldato.
Nota: Evitare l'aspirazione di aria durante la manipolazione di matrice seminterrato per evitare la formazione di bolle. - Restituire la piastra con le cellule risospese in matrice seminterrato nell'incubatore di coltura del tessuto di 37 ° C per 15 minuti o fino a matrice seminterrato è solidificato. Aggiungere 600 µ l del mezzo semina riscaldato fino a 37 ° C in ogni pozzetto (Tabella materiali). Riporre la piastra nell'incubatore di coltura del tessuto di 37 ° C.
- Sostituire il mezzo di semina con 600 µ l di terreno di coltura fresco organoid in 3 giorni e da allora in poi ogni 3 giorni. Monitorare la crescita organoid con un microscopio invertito. Uso organoids per un'applicazione a valle o Spalato ogni 7 a 9 giorni prima accumulazione del collasso di detriti e organoid intraluminal sono osservati (Figura 2A).
3. EHBD Organoid passaggio e deposito
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Passaggio dei organoids EHBD 1:3 a 1:4 ogni 7-9 giorni
- Rimuovere il supporto dal pozzo e aggiungere 400 µ l di PBS ghiacciata. Risospendere il organoids pipettando delicatamente la miscela su e giù 10 volte nel pozzo. Trasferire il composto in una provetta da 1,5 mL.
- Passaggio la miscela attraverso un ago 25 G 4 volte per dissociare il organoids. Centrifugare la miscela a 400 x g per 4 min a 4 ° C.
- Rimuovere con cautela il supernatante e risospendere le cellule in matrice di seminterrato (1:3 a 1:4) per ulteriore coltura (passaggio 2.2.4.) o lavare le cellule con PBS freddo ghiaccio per un'ulteriore elaborazione.
Nota: In genere, 250-300 cellule sono placcate nella piastra a 24 pozzetti per applicazioni a valle. Efficienza di placcatura può essere valutata da microscopia luminosa del campo utilizzando un microscopio invertito il giorno 3-5 dopo passaggio contando il numero di organoids e calcolando la percentuale dal numero iniziale delle cellule. mRNA può essere isolato da EHBDOs lavate in PBS utilizzando il protocollo standard mediante estrazione del tiocianato-fenolo-cloroformio di guanidinium.
-
Archiviazione a lungo termine dei organoids EHBD
- Rimuovere il supporto dal pozzo e lavare il organoids con temperatura ambiente PBS. Rimuovere PBS dal pozzo senza disturbare la goccia di matrice del seminterrato.
- Aggiungere 500 µ l di mezzo al pozzo di congelamento delle cellule ghiacciata. Risospendere il organoids nel seminterrato liquefatto matrix e medie di congelamento delle cellule delicatamente e trasferire il composto in fiale criogeniche.
- Conservare i flaconi a-80 ° C per 48 h. trasferimento le fiale ad un serbatoio di azoto per l'archiviazione a lungo termine in una fase di vapore.
4. EHBD Organoid Pprocessing per inclusione in paraffina
- Risospendere il EHBDOs in 500 µ l di PBS ghiacciata (4 ° C) pipettando su e giù per 5 a 10 volte. Raccogliere il sedimento EHBDO in matrice liquefatto seminterrato in una provetta da 1,5 mL.
Nota: Per evitare la rottura organoids, tagliare il fondo 2-3 mm di una punta di P1000 e rimuovere il surnatante con molta attenzione. - Centrifuga EHBD organoids a 350 x g per 5 min, rimuovere con cautela il supernatante senza disturbare il pellet organoid.
- Aggiungere 1 mL di gelida paraformaldeide al 4% (PFA) per il organoids e incubare la organoids nel 4% PFA durante la notte a 4° C. Rimuovere i 4% PFA da organoids utilizzando una punta di P1000 dopo incubazione overnight.
- Aggiungere 1000 µ l di PBS di temperatura per il tubo con la organoids e incubare per 5 min a temperatura ambiente (TA). Centrifugare la provetta con organoids in PBS a 350 x g per 5 min, ripetere questo processo due volte.
- Rimuovere PBS e aggiungere 1 mL di etanolo al 30% per il organoids. Incubare per 5 min a RT.
- Centrifugare la provetta a 350 x g per 5 min a RT. Remove 30% etanolo. Aggiungere 1 mL di etanolo al 70% e incubare per 5 minuti a TA.
- Centrifugare a 350 x g per 5 min. Remove etanolo al 70%. Aggiungere 1 mL di etanolo al 100% e incubare per 5 minuti a TA.
Nota: Organoids può essere mantenuto in etanolo al 100% a temperatura ambiente fino a 48 h prima della trasformazione ulteriore. - Gel di trattamento campione in un forno a microonde per 20 di calore s o fino a quando liquefatto. Aggiungere 50 µ l di campione gel nel tubo con organoids di elaborazione. Posizionare il tubo sul ghiaccio fino a quando il trattamento gel dei campioni sono solidificato.
- Rimuovere la goccia di gel con organoids dal tubo di trattamento dei campioni e tra le pastiglie di spugna blu in una cassetta per l'ulteriore elaborazione nel processore del tessuto. Utilizzare 15 min per ogni passaggio in embedder la paraffina durante un'ulteriore elaborazione...
- Sezione organoids paraffina-incastonato nel trattamento dei campioni gel a 4 µm. procedere come descritto in precedenza16di macchiatura immunohistochemical.
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Representative Results
Il nostro protocollo descrive la generazione di mouse EHBD organoids che sono tessuto-specifici e adulto derivati da cellule staminali. Dopo il organoids sono coltivate, una formazione di struttura cistica può essere osservata più presto 1 giorno dopo l'isolamento EHBD. Contaminazione con i fibroblasti non è osservata tipicamente durante la generazione di cultura. EHBDO efficienza di placcatura è di circa il 2% quando isolato da neonatale o adulto (età superiore a 2 mesi) topi (Figura 2B). Placcatura di efficienza dei organoids EHBD derivati da topi adulti aumenta a 11% nel passaggio 2 e rimane stabile (Figura 2B). La maggior parte dei organoids dimostra morfologia cistica attraverso tutti i passaggi, con rara organoids "irregolari" (Figura 2-E). Organoids raggiungono un picco di crescita al 5-7 giorni dopo il quale iniziano ad accumulare intraluminal detriti e deteriorarsi (Figura 2A). Pertanto, per la manutenzione della cultura organoid, essi dovrebbe essere diviso ogni 7-10 giorni (Figura 2A). Una volta stabilito e quando opportunamente gestito, organoids possono essere mantenute in coltura quasi all'infinito (culture sono state osservate fino a 14 mesi). Cultura di evitare contaminazione con cellule differenziate riportati dall'isolamento iniziale delle cellule, uso organoids attraversate almeno due volte prima di utilizzarli per un'applicazione a valle. Per l'archiviazione a lungo termine, è necessario utilizzare precedente passaggio (fino a passaggio 7) organoids, dato che hanno una maggiore efficienza di placcatura dopo il recupero dall'archivio.
Quando analizzato con immunofluorescenza, EHBDOs consiste di una popolazione pura di cellule epiteliali segnata da E-caderina (Figura 3A-C). Le cellule organoid dimostrano marcatori di cellule progenitrici biliare (pancreatico e duodenale Homeobox 1 (PDX1); Figura 3A) così come marcatori di differenziazione biliare (citocheratina 19 (CK19) e Sex-Determining Region Y-Box 9 (SOX9); Figura 3B, C). Cosa importante, un'alta percentuale di organoid cellule possiedono un cilio primario caratterizzato da α-tubulina acetilata (al-AT; Figura 3D), che è una caratteristica dei colangiociti normali e suggerisce la polarizzazione cellulare organoid appropriato. L'espressione di marcatori di cellule progenitrici (Pdx1) e cellule differenziate biliare [Ck19, Sox9, Acquaporina 1 (Aqp1), regolatore di conduttanza del Transmembrane di fibrosi cistica(Cftr)] può essere confermata anche da reazione a catena della polimerasi in tempo reale di trascrizione d'inversione quantitativa (qRT-PCR) (tabella 1). Combinazione di questi indicatori è caratteristico per colangiociti in EHBDs14,17,18.
In sintesi, questo protocollo descrive la generazione di un modello di cultura organoid delle cellule epiteliali biliari polarizzate esprimendo progenitore e differenziato marcatori. Questo sistema può essere mantenuto in coltura per un tempo prolungato senza cambiamenti nella morfologia, memorizzati a lungo termine ed analizzati con l'immunoistochimica e qRT-PCR.
Figura 1 : Schematico EHBD organoid cultura generazione e chirurgica set up di (A). generazione organoid schematica di EHBD. (B). area chirurgica era impostato per isolamento EHBD e comprendeva una lastra di vetro (linea tratteggiata) tenuta su un vassoio di ghiaccio in ogni momento. (C). attrezzature chirurgiche sterili incluso forbici affilate, dritto e curvo pinzette dentellate, emostatica e bisturi. (D ed E) EHBD è isolato dal tessuto connettivo e del pancreas, seguito da dissezione accurata prossimalmente dai dotti biliari intraepatici e fegato (D, freccia) e distalmente dal duodeno (D, freccia) circostante. Indicatori dei righelli = 1 mm. per favore clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
Figura 2 : Cultura EHBDO. (A). immagini microscopiche di EHBDOs sopra un corso di 12 giorni. (B). placcatura efficienza dei organoids derivato da neonatale (2 topi per cultura, n = 3 culture) e adulti (> 2 mesi, 1 mouse per la cultura, n = 3 culture) topi dopo 300 cellule per pozzetto in piastre da 24 di placcatura e l'enumerazione stabilito organoids il giorno 5 di cultura. (C e D) EHBDO cistica contro morfologia irregolare è stato analizzato da microscopia. (E). la percentuale dei organoids forma cistica e irregolare è stata analizzata in anticipo (< 10) e fine (≥ 10) organoid passaggi. Scala bar = 500 µm. dati quantitativi ha mostrati come media + /-errore standard della media (SEM), t-test. NS = non significativo. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
Figura 3 : EHBDOs esprimono marcatori di cellule progenitrici e cellule mature biliare. (A-C). EHBDOs sono stati analizzati dall'immunofluorescenza che macchia per marcatori epiteliali (A, B. E-caderina, rosso), progenitrici (A. PDX1, verde) e differenziato (B. CK19, verde; e C. a-AT, rosse) cellule biliari. Scala bar = 25 µm. *, lumen. (D). EHBDOs sono stati analizzati per abbondanza di Pdx1, Ck19, Sox9, Aqp1e Cftr mRNA mediante qRT-PCR (media + /-SEM relativa espressione di Hprt). Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
| Gene | Numero di accessione | Sequenza più superelegante | Dimensione del prodotto | ||
| HPRT | NM_013556 | Avanti 5'-AACTTGCGCTCATCTTAGGCTTTG-3' | 173 bp | ||
| Invertire la 5'-AGGACCTCTCGAAGTGTTGGATAC-3' | |||||
| PDX1 | NM_008814 | Avanti 5'-GAATTCCTTCTCCAGCTCCA-3' | 133 bp | ||
| Invertire la 5'-GATGAAATCCACCAAAGCTCA-3' | |||||
| SOX9 | NM_011448 | Avanti 5'-TCCACGAAGGGTCTCTTCTC-3' | 107 bp | ||
| Invertire la 5'-AGGAAGCTGGCAGACCAGTA-3' | |||||
| Ck19 | NM_008471 | Avanti 5'-TCTGAAGTCATCTGCAGCCA-3' | 133 bp | ||
| Invertire la 5'-ACCCTCCCGAGATTACAACC-3' | |||||
| Aqp1 | NM_007472 | Avanti 5'-CAGTACCAGCTGCAGAGTGC-3' | 112 bp | ||
| Invertire la 5'-CATCACCTCCTCCCTAGTCG-3' | |||||
Tabella 1: primer.
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Discussion
Questo lavoro descrive la generazione di un modello 3-dimensionale organotipiche del mouse EHBD colangiociti. Passi importanti nella generazione di cultura EHBDO includono dissezione meticolosa EHBD per evitare la contaminazione delle cellule di pancreas, mantenimento di condizioni di sterilità per evitare contaminazioni batteriche e fungine e un'attenta manipolazione dopo la centrifugazione per evitare il perdita di materiale cellulare. Una stretta aderenza alle condizioni di temperatura descritto è necessaria. Ci sono alcune limitazioni alla tecnica. EHBDs di topi adulti sono piccole (circa 1 mm di diametro; Figura 1E), che richiedono finezza per isolamento. Un microscopio di dissezione può essere usato per aiutare con la dissezione.
Seminterrato utilizzato in questo protocollo è una matrice biologica che contiene i fattori di crescita noti e sconosciuti19, la concentrazione che può variare da lotto a lotto. È consigliabile che per tecnici repliche, stesso lotto e/o aliquota di matrice seminterrato essere usato per evitare la variabilità. Consigliamo anche di verificare regolarmente coltura cellulare L-WRN per contaminazione del micoplasma e medium condizionato per WNT attività11. Il laboratorio per questo studio usato un kit di rilevazione Mycoplasma e analisi di attività WNT rispettivamente. In particolare, EHBDOs medio contiene basse quantità di siero bovino fetale (0,5%; Tabella materiali).
Il protocollo presentato descrive una coltura di 3-dimensionale delle cellule epiteliali che contengono le cellule con progenitore e differenziato marcatori cellulari caratteristici per colangiociti e formati in presenza di fattori di crescita Noggin, R-spondin1 e WNT3a e definiti Supplementi (Tabella materiali). È organo-specifiche, come esso è derivato da topo adulto EHBDs. Probabilmente è derivato da cellule adulte con cellule staminali proprietà testimoniata di auto-organizzazione delle cellule nelle strutture 3-dimensionale e capacità di essere mantenuti e ampliati a lungo termine. Il organoids sono principalmente cistico nella struttura con minimo "in erba," che potrebbe indicare un più cellule staminali-come il fenotipo organoid. È possibile che fattori di nicchia ulteriori cellule staminali potrebbero portare ad una maggiore efficienza di placcatura di organoids, così come un più alto grado di differenziazione.
La nostra tecnica produce una cultura 3-dimensionale organoid che possa essere generata in modo tempo e costo-efficiente, che riduce al minimo l'uso di animali, è altamente riproducibile e consente a più applicazioni a valle. Questo nuovo strumento è importante per gli studi EHBD, poiché strumenti per studiare EHBDs adulti sono molto limitati. Sarebbe di vantaggi speciali ai laboratori che non hanno accesso ai tessuti umani o vogliono approfittare di modelli murini geneticamente modificati.
Il tessuto del mouse, a differenza di tessuto umano, è altamente accessibile. Non ci sono più reattivi, compreso gli anticorpi di immunohistochemistry per studiare i tessuti del mouse. Il costo dei reagenti per cultura tessuto adulto organoids è notevolmente diminuito dal momento che questa tecnica è stata inizialmente introdotta. Inoltre, nuovi materiali sono diventati disponibili, tra cui il mezzo di cella condizionata L-WRN utilizzato nel presente protocollo, che riduce ulteriormente il costo di cultura organoid. EHBDOs sono facili da propagare, archiviare e di processo per l'analisi. L'analisi di qRT-PCR e immunohistochemical, al microscopio, sono presentati come esempi in questo manoscritto. Inoltre, il nostro gruppo recentemente descritto generazione e utilizzo di EHBDOs da topi geneticamente ingegnerizzati e quantificazione di proliferazione delle cellule EHBDO utilizzando 5-Etinil-2-deoxyuridine (EdU)16.
Potenziali applicazioni a valle di EHBDOs includono ma non sono limitate per la coltura di una quantità quasi illimitata di colangiociti per lo studio dei meccanismi dell'omeostasi dei colangiociti EHBD. In futuro, questo protocollo può essere applicato allo studio degli Stati di malattia; per testare dei colangiociti organoids, compresa l'analisi di medicina rigenerativa (intrabiliary impianto), manipolazione genetica e farmacologica, droga test16; e per studiare gli effetti di agenti infettivi12,20. Interazione della cellula-cellula possa essere studiato utilizzando co-coltura di EHBD organoids con altri tipi di cella21.
Organoids mouse-derivato può essere utilizzato per studi pilota prima della generazione del EHBDOs umano, poiché il materiale umano è prezioso e limitato. Gli studi futuri focalizzata sulla scoperta dei fattori che promuovono una maggiore efficienza di placcatura e differenziazione cellulare organoid sono desiderati per lo studio dei organoids umana. Studi in corso che cercare una matrice extracellulare più biologicamente neutra per organoid cultura sono anche pertinenti alla raffinatezza di cultura EHBDOs.
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Disclosures
Gli autori dichiarano di non avere nessun interessi concorrenti.
Acknowledgments
Questo lavoro è stato supportato dalla associazione americana per il premio di studio del fegato malattie Pinnacle (di N.R.) e il National Institutes of Health, National Institute of Diabetes e digestivo e delle malattie renali (premi P30 DK34933 di N.R., P01 DK062041 a J.L.M.). Ringraziamo il dottor Ramon Ocadiz-Ruiz (Università del Michigan) per la sua assistenza con lo sviluppo di questa metodologia.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| L-WRN cell culture medium | |||
| Advanced DMEM/F12 | Life Technologies | 12634-010 | |
| Fetal Bovine Serum (FBS) | 1% | Life Technologies | 10437-028 |
| Penicillin-Streptomycin | 100 U/mL | Life Technologies | 15140-122 |
| Washing buffer | |||
| Phosphate Buffered Saline (PBS) | 50 mL | Life Technologies | 10010-023 |
| Penicillin-Streptomycin | 125 U/mL | Life Technologies | 15140-122 |
| Amphotericin B | 6.25 µg/mL | Life Technologies | 15290-018 |
| Organoid culture medium | |||
| L-WRN Conditioned medium | 1:1 | ATCC | CRL-3276 |
| Advanced DMEM/F12 | 1:1 | Life Technologies | 12634-010 |
| Penicillin-Streptomycin | 100 U/mL | Life Technologies | 15140-122 |
| N-Glutamine | 10 µl/mL | Life Technologies | 35050-061 |
| N-2-hydroxyethylpiperazine-N-2-ethane sulfonic acid, HEPES | 10 mM | Life Technologies | 15630-080 |
| B27 | 10 µl/mL | Gibco | 17504-044 |
| N2 | 10 µl/mL | Gibco | 17502-048 |
| Organoid seeding medium | |||
| Organoid culture medium | |||
| Epidermal growth factor (EGF) | 50 ng/mL | Invitrogen | PMG8041 |
| Fibroblast growth factor-10 (FGF10) | 100 ng/mL | PeproTech | 100-26 |
| Primary antibodies | |||
| Anti-Cytokeratin 19 (CK19) antibody, Rabbit | 1:250 | Abcam | ab53119 |
| Sex-Determining Region Y-Box 9 (SOX9) antibody, Rabbit | 1:200 | Santa Cruz | sc-20095 |
| Pancreatic Duodenal Homeobox 1 (PDX1) antibody, Rabbit | 1:2000 | DSRB | F109-D12 |
| E-cadherin antibody, Goat | 1:500 | Santa Cruz | sc-31020 |
| Acetylated α-tubulin antibody, Mouse | 1:500 | Sigma-Aldrich | T6793 |
| Secondary antibodies | |||
| 488 labeled anti-rabbit, Donkey IgG | 1:1000 | Invitrogen | A-21206 |
| 594 labeled anti-goat, Donkey IgG | 1:1000 | Invitrogen | A-11058 |
| 568 labeled anti-mouse, Goat IgG2b | 1:500 | Invitrogen | A-21144 |
| TopFlash Wnt reporter assay | |||
| TopFlash HEK293 cell line | ATCC | CRL-1573 | |
| Luciferase Assay Kit | Biotium | 30003-2 | |
| 0.05% Trypsin-EDTA | Life Technologies | 25300054 | |
| 0.4% Trypan Blue Solution | Life Technologies | 15250061 | |
| Additional materials and reagents | |||
| Basement matrix, phenol free Matrigel | CORNING | 356237 | |
| Dissociation buffer, Accutase | Gibco | A1110501 | |
| Cell culture freezing medium, Recovery | Life Technologies | 12648010 | |
| Cell strainer (70 µm, steriled) | Fisherbrand | 22363548 | |
| Guanidinium thiocyanate-phenol RNA extraction, TRIzol | Invitrogen | 15596026 | |
| Specimen processing gel, HistoGel | Thermo Fisher Scientific | HG-4000-012 | |
| Universal mycoplasma detection kit | ATCC | 30-1012K | |
| 1.5 mL microcentrifuge tube | Fisherbrand | 05-408-129 | |
| 24 well plate | USA Scientific | CC7682-7524 | |
| 50 mL conical centrifuge tube | Fisher scientific | 14-432-22 | |
| Fluorescence microscope | Nikon | Eclipse E800 | |
| Inverted microscope | Biotium | 30003-2 | |
| Necropsy tray | Fisherbrand | 13-814-61 |
References
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