Summary
이 프로토콜은 베타 세포에서 인슐린 분비를 위한 프록시로 인슐린 연결된 Gaussia luciferase를 사용하여 중간 처리량에서 급속한 저비용 luciferase 분석기를 능력을 발휘하는 방법을 기술합니다. 이 분석은 대부분의 발광 플레이트 판독기 및 다중 채널 파이펫으로 수행될 수 있습니다.
Abstract
분비된 인슐린 후 샘플 수집을 위한 항체 기반 분석은 일반적으로 분석 시간의 하루에 몇 시간을 필요로 하며, 특정 분석법에 따라 비쌀 수 있다. 분비된 루시페라아제 분석제는 결과를 신속히 하고 샘플당 분석 비용을 실질적으로 낮춥시한다. 여기에서 우리는 C-펩티드 내의 유전으로 삽입된 Gaussia luciferase를 사용하여 췌장 β 세포에서 인슐린 분비 활동을 측정하기 위하여 상대적으로 과소 이용된 접근을 제시합니다. 프로 인슐린의 프로테올리처리 동안, C-펩타이드는 인슐린과 병용비되는 인슐린 분비 소포 내에서 루시페라제를 방출하는 절제된다. 결과는 luciferase assays의 속도 때문에 견본 수집 후에 분 안에 장악될 수 있습니다. 분석의 한계는 인슐린 분비의 상대적인 측정이지 절대 정량이 아니라는 것입니다. 그러나 이 프로토콜은 경제적이고 확장 가능하며 대부분의 표준 발광 플레이트 판독기를 사용하여 수행할 수 있습니다. 아날로그 및 디지털 멀티채널 파이펫은 분석의 여러 단계를 용이하게 합니다. 많은 다른 실험 적 변형을 동시에 테스트 할 수 있습니다. 조건의 집중된 세트가 결정되면, 인슐린 사격량은 luciferase 분석 결과를 확인하기 위하여 표준 곡선을 가진 항체 기지를 둔 분석제를 사용하여 직접 측정되어야 합니다.
Introduction
여기에 제시된 방법은 유전자 변형 베타 세포주에서 인슐린 분비가 96 웰 플레이트 형식으로 신속하고 저렴하게 분석될 수 있게 한다. 이 프로토콜의 핵심은 인슐린-가우시아(InsGLuc) 1,2를생성하기 위해 C-펩티드내로 삽입된 자연분비 가우시아 루시퍼라제(GLuc, ~18 kDa)를 삽입한 인슐린의 변형된 버전이다. GFP (~25 kDa)와 같은 다른 더 큰 단백질은 성공적으로 인슐린의 C-펩티드에 삽입되고 인슐린과 GFP-C-펩타이드3,4에대한 프로인슐린-GFP로부터 예상되는 번역 후 처리를 나타냈다. 본 프로토콜의 분석의 경우, GLuc는 포유류 발현에 최적화된 코돈및 2개의 돌연변이가 도입되어광과 같은 역학을 향상시키고 5,6. 치료 조건의 다중 조합 및 복제는 96 웰 플레이트 형식으로 용이하게 테스트할 수 있으며 실험 직후 분비 결과를 얻을 수 있다.
앞서 언급한 바와같이 2의 주요 장점은 효소 연계 면역흡착 분석(ELISAs)의 상대적으로 높은 비용과 기술적 측면과 차별화되는 이 루시퍼라제 기반 분비 측정(&$0.01/well)의 저렴한 비용입니다. > $2/well) 및 균일한 시간 해결 형광 (HTRF) 또는 다른 Förster 공명 에너지 전송 (FRET) 기반 항체 (> $1/well) 분석. 표준 곡선을 참조하여 인슐린의 농도를 측정하는 이러한 항체 기반 분석과 비교하여 InsGLuc 분석은 플레이트상에서 웰을 제어하는 상대적 비교로 분비 활성을 측정합니다. 이러한 이유로 모든 실험에는 적절한 컨트롤이 포함되어야 합니다. 이러한 구분은 신속하고 저렴한 측정을 허용하는 절충안입니다. 그러나, InsGLuc 분비는 ELISA1,2에의해 측정된 바와 같이 인슐린 분비와 높은 상관관계가 있는 것으로 입증되었다. 이 기술은 고처리량 스크리닝 1,2,7을 위해 확장되었으며 전압 게이트 칼륨 채널 억제제 7을 포함한 인슐린 분비물의 새로운 변조기의 식별을 주도하고 있다7 뿐만 아니라 β 세포 기능의 천연 생성억제제, 크로모마이신 A28. InsGLuc의 사용은 지속적으로 인슐린 분 비에 미치는 영향에 대 한 많은 다른 치료 조건을 테스트 하려는 연구원에 대 한 가장 적합. 후속 실험에서 부모 β 세포주에서 주요 발견을 반복하고, 뮤린 또는 인간 아일에서 최적으로, 항체 기반 분석을 사용하여 인슐린 분비를 측정할 필요가 있다.
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Protocol
1. 시약, 매개체 및 완충제 의 준비 (표 1)
- 다음 첨가제와 함께 500 mL의 고포도당 (4.5 g / L) 덜베코의 변형 된 독수리 배지 (DMEM)에서 MIN6 완전한 매체를 준비하십시오 : 15 % 태아 소 혈청 (FBS), 100 단위 / mL 페니실린, 100 μg / mL 스트렙 토마이신, 292 μl/ ll β-메르카포에탄올.
참고: 이 경우 안정된 세포주 G418 항생제의 250 μg/mL에서 유지된다. - Krebs-링거 중탄산염 완충제(KRBH)를 5 mM KCl, 120 mM NaCl, 15 mM HEPES(pH 7.4),24 mM NaHCO 3, 1 mM MM MgCl2,2 mM CaCl2,및 1 mg/mL 방사성 면역 분석 등급 소수 나트륨 혈청(BSA)을 포함하는 용액을 제조한다. 포도당은 2M 스톡으로부터 지정된 곳에 첨가되어야 한다.
참고: KRBH는 인슐린 및/또는 가우시아 루시퍼라아제 분비를 평가하기 위해 자극유무에 관계없이 세포를 배양하는 데 사용됩니다. - 다음과 같이 coelenterazine (CTZ) 스톡 솔루션을 준비합니다. 106 μL의 농축 된 HCl을 메탄올 10 mL에 첨가하여 산성화된 메탄올을 준비합니다. 다음으로, 1 mg/mL에서 산성화된 메탄올에 동포화된 CTZ를 용해시키고 나사 캡 튜브에 -80°C로 보관합니다.
참고 : 이 주식은 적절한 보관 1 년 후에도 일상적인 루시퍼라아제 어세이에서 충분한 활동을 유지합니다. - 문헌9뿐만 아니라 특허 정보(10)에 기초한 가우시아 루시퍼라제(GLuc) 분석 완충제를 준비하여 96웰 플레이트 형식으로 가우시아 루시플라아 어라세아제분석법의 반감기를 돕는다. 공식을 사용: 25 mM Tris pH 8, 1 mM EDTA, 5% 글리세롤, 1 mg/mL Na2PO4,300 mM 나트륨 아스코르브산염, 200 mM Na2SO3 물에. -20 °C에서 주식을 동결. 해동 후 버퍼를 4°C에 보관합니다.
- 가우시아 루시퍼라제 작업 용액을 준비하려면 GLuc 분석 버퍼에 1 mg/mL(2.36 mM) CTZ 스톡 솔루션의 4.2 μL/mL을 추가합니다. 이것은 분석법에서 5 μM 최종 농도를 가질 것이다 10 μM CTZ의 2x 작업 용액 을 초래한다.
2. InsGLuc MIN6 세포의 배양 및 분비 세포 에 대한 파종
- MIN6 세포를 배양하기 위해, 표준 세포 배양 기술을 사용하여 일주일에 한 번 세포를 트립시니화하고 종화시화한다. 2~3일마다 세포의 미디어를 변경합니다. 미디어에 G418의 250 μg/mL와 같은 적절한 선택 항생제를 포함시다.
- 실험을 위해 매주 충분한 수의 세포를 제공하려면 T75 플라스크에서 세포를 유지합니다. 배지의 10 mL에서 T75당 6 x 106 세포를 파종하는 것은 전형적으로 7일 의 배양 후 T75당 총 30 x 106 내지 40 x 106 세포를 산출할 것이다.
- 96 웰 플레이트에 도금을 위한 세포를 준비하려면, INsGLuc MIN6 세포의 콘립 T75를 PBS로 두 번 세척하고 트립신 2 mL을 추가합니다. 37°C에서 ~ 5분 동안 또는 세포가 플라스크에서 해리될 때까지 배양한다. 밀리리터당 세포 농도를 결정합니다.
- 세포를 완전한 매체에 1 x 106 세포/mL로 희석하여 96웰 플레이트에서 웰당 100 μL에서 1 x 105 세포를 생성합니다. 세포는 3-4 일 후에 분석에 충분히 결합되어야합니다.
참고: 배양 기간을 연장하기 위해, 세포 농도의 절반을 도금할 수 있다. 세포가 실험적인 처리를 복종하지 않는 한 매체 변경은 분석의 날 의 앞에 요구되지 않습니다.
- 세포를 완전한 매체에 1 x 106 세포/mL로 희석하여 96웰 플레이트에서 웰당 100 μL에서 1 x 105 세포를 생성합니다. 세포는 3-4 일 후에 분석에 충분히 결합되어야합니다.
3. 포도당 자극 가우시아 루시퍼라제 분비 분석
- 분석의 날에 실험에 대한 충분한 KRBH를 준비 (단계 1.2). 96웰 플레이트당 최소 50 mL의 KRBH가 필요하므로 실험을 위한 충분한 완충액을 보장하기 위해 적어도 75 mL을 준비한다. 약물 치료 조건의 상이한 조합이 희석을 위해 KRBH를 필요로 하는 경우에 추가 완충제를 준비하십시오.
- 포도당이 없는 KRBH로 저수지를 준비합니다. 실험실 싱크대 위에 플레이트를 빠르게 뒤집어 서 96 웰 플레이트에서 배지를 장식한 다음 종이 타월 더미에 단단히 얼룩을 대고 여분의 배지를 제거합니다.
- 전자 또는 수동 8채널 파이펫을 사용하여, 96웰 플레이트(들)를 가로지르는 저수지로부터 피펫 100 μL/well KRBH. 총 2회 를 반복합니다.
- (급성 화합물 치료의 선택적 단계) 약물 치료를 수행하지 않는 경우 수정없이 3.5 단계 및 3.6 단계를 진행하십시오. 인슐린 분비에 대한 작은 분자의 효과를 테스트하기 위해, 화합물은 사전 인큐베이션 기간, 자극 기간, 또는 둘 다 동안 세포에 첨가될 수 있다.
- 한 가지 기술은 1.5 mL 튜브에서 KRBH에 화합물을 일괄첨가하고 조절 가능한 8채널 디지털 파이펫을 사용하여 튜브에서 96웰 플레이트의 세포로 약물 KRBH를 전달하는 것입니다.
참고: 조정 가능한 파이펫을 사용할 수 없는 경우, 약물-KRBH의 복제 96웰 플레이트를 만들 수 있으며 표준 8채널 파이펫을 사용하여 버퍼를 전달할 수 있습니다. 치료 패러다임에 대한 추가적인 변형은 앞서 설명한바와같이 분석전에 24시간 동안 세포를 분석하기 위해 이루어질 수 있고,8.
- 한 가지 기술은 1.5 mL 튜브에서 KRBH에 화합물을 일괄첨가하고 조절 가능한 8채널 디지털 파이펫을 사용하여 튜브에서 96웰 플레이트의 세포로 약물 KRBH를 전달하는 것입니다.
- 원하는 포도당 또는 화합물 농도를 함유하는 KRBH 100 μL을 넣고 접시를 37°C 인큐베이터에 1시간 동안 놓습니다.
참고: 실험 레이아웃에 따라 8개의 1.5mL 튜브 열에서 96웰 플레이트의 8열로 채널 거리를 전환할 수 있는 전자 멀티채널 파이펫을 만드는 것이 매우 유용합니다. - 1시간 의 선입견 후, 완충기를 싱크대에 넣고 종이 타월에 단단히 얼룩을 지습니다. 100 μL의 포도당 무당류 KRBH를 잘 추가하여 가우시아 루시퍼라아제의 축적된 배경을 씻어내도록 합니다. 플레이트를 다시 장식하고 웰당 100 μL로 플레이트에 제어 및 자극 조건을 추가합니다. 접시를 37°C 인큐베이터에 1시간 동안 놓습니다.
- 신중하게 멀티 채널 파이펫을 사용하여 상층의 50 μL을 수집하고, 필요에 따라 처리 조건 사이의 팁을 변경하고, 깨끗한 불투명 한 흰색 96-well assay 플레이트에 상류를 전송합니다.
참고: 필요한 경우 흰색 벽의 투명 바닥 플레이트를 사용할 수 있지만 상당량의 루시퍼라아제 신호가 손실됩니다. - KRBH 상급제의 50 μL의 수집 후, 샘플을 즉시 분석할 수 있다. 필요한 경우, 샘플을 4°C에서 며칠 동안 밀봉 및 저장(GLuc 활성 반감기 ~6일) 또는 -20°C에서 최대 1개월동안 11,12.
4. 분비 가우시아 루시퍼라아제 분석
- GLuc 분석 작업 용액을 준비하려면 GLuc 분석 버퍼에 필요한 양의 CTZ 스톡 솔루션(4.2 μL/mL)을 파이펫합니다. CTZ의 온난화를 방지하기 위해-80°C 냉동고에서 CTZ를 빠르게 파이펫하거나 튜브를 드라이 아이스에 보관하십시오.
- 전자 멀티채널 파이펫을 사용하여 수집된 KRBH 상피제를 함유한 96웰 접시에 걸쳐 GLuc 분석 작업 용액당 50 μL을 신속하게 추가합니다. 우물 의 측면에 물방울이있는 경우, 잠시 테이블 탑 스윙 버킷 원심 분리기에 접시를 회전.
- 몇 분 내에 적합한 플레이트 리더에서 발광을 읽고 0.1 s의 통합 시간으로 각 잘 읽습니다.
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Representative Results
대조군 조건하에서 분석의 성능을 측정하기 위해, 디아옥사이드 패러다임을 이용한 간단한 포도당 투여량-반응 곡선 또는 자극을 완료할 수 있다. 전자의 경우, 포도당 없는 조건에서 1시간 동안 세포를 미리 배양한 다음 포도당 농도가 증가하여 1시간 동안 치료하면 5mM 이하에서 분비 활동이 거의 발생하지 않아야 하며, 분비는 8이상으로 관찰됩니다. mM 포도당(그림2). 35 mM KCl을 통한 자극은 또한 자극된 분비에 대한 긍정적인 대조군역할을 한다. 자극 기간 동안 분비 조절 약물의 포함은 분비된 GLuc 활성의 예상 억제 또는 전위를제공해야 한다(그림 3). 예를 들어, 디아옥사이드는 KATP 채널을 결합하고 증가된 [ATP/ADP] 비율에 따라 닫히는 것을 방지하고, 막 탈분극을 차단하고분비13을방지한다. 파라메톡시암페타민(PMA)과 같은 포르볼 에스테르는 단백질 키나아제 C(PKC)를 활성화시키고 인슐린분비제(14)의 증폭기로 알려져 있다. 마지막으로, 1 μM 피네프린을 사용하여 자극하면α 2A-아드레날린 수용체가 활성화되어 이종성 G 단백질 복합체 Gi를 활성화하고, 막 탈분극 및 인슐린 분비를 억제한다15. MIN6 세포는 불멸의 세포주이지만, 연장 된 통과16후 적절한 포도당 유도 인슐린 분비 반응 (예 : 반응 곡선의 좌측 이동)을 잃기 시작한다는 것을 인식하는 것이 중요합니다. 이러한 이유로, 액체 질소 주식에서 다시 시작하기 전에 최대 8 주 (일주일에 한 번 분할)에 대한 모든 MIN6 세포주를 일상적으로 배양하는 것이 좋습니다.
그림 1: InsGLuc 기자에 대한 설명. (a) 먼저, 안정된 β 세포주(이 경우 MIN6 세포)가 랫트 인슐린 프로모터로부터 인슐린 가우시아 이식유전자를 발현하여 생성되었다. (B) 전체 단백질은 내인성 인슐린과 함께 인슐린 과립으로 합성되고 포장됩니다. 프로호르몬 변환제는 별표로 표시된 펩티드를 갈라보며 갈라지게 됩니다. (C) 처리된 인슐린과 가우시아가 공동 분비되고, 산소 의존반응ATP에 CTZ를 첨가하여 루시퍼라아제 활성이 검출된다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 2: InsGLuc 리포터는 MIN6 베타 세포로부터인슐린 분비의 충실한 프록시이다. (A) MIN6 InsGLuc 세포의 반응으로 포도당 농도를 증가시키고 KCl(35 mM)을 가우시아 루시퍼라제 분비물로 증가시킨다. 데이터는 3개의 독립적인 실험에 대한 0 mM 포도당 조건에 비해 평균 배 루시퍼라아제 활성 ±SE이다. *, P < 0.05. 이 그림은 Kalwat 외. ACS 센서 20161의허가를 받아 수정되었습니다. © 2016 미국 화학 협회. (B) MIN6 세포의 InsGLuc 리포터는 250 μM Dz 처리가 KATP 채널을 열어 놓고 있는 디아옥사이드(Dz) 패러다임에 대한 예상 분비 반응을 나타내며, 세포외 KCl(35mM)이 제공되지 않는 한 막 탈분극을 차단합니다. 칼슘 유입을 유도합니다. Dz + KCl 조건 하에서 포도당 (20 mM)을 추가로 첨가하면 칼슘 유입이 추가로 증가하지 않고 발생하는 분비물의 대사 증폭을 알 수 있습니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 3: 포도당 동안 분비 조절 화합물의 포함-InsGLuc 분비를 자극한다. 설명된 바와 같이 96-well 형식으로 도금된 InsGLuc MIN6 세포는 1시간 동안 포도당 없는 KRBH로 미리 포양된 후 디메틸 설폭사이드(DMSO)의 존재 시 20 mM포도당(DMSO)의 유무에 관계없이 처리하였다(0.1%), KCl(35 mM), 디아옥사이드(250 μM), PMA(100 nM), 또는 에피네프린(1 μM)에 대한 1 시간 바 그래프는 적어도 3개의 독립적인 실험의 평균 ±SE를 나타낸다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
| 크렙스 링거 중탄산염 완충제 (KRBH) | |||
| 스톡 용액 또는 분말 | 주식 | 최종 농도 | 100 mL |
| KCl | 0.25 M | 5 mM | 2 ml |
| Nacl | 4 M | 120mm | 3 ml |
| 대여, pH 7.4 | 1 M | 15 mM | 1.5 ml |
| 나코3 | 0.5 M | 24 mM | 4.8 ml |
| MgCl2 | 1 M | 1 mM | 0.1 ml |
| CaCl2 | 1 M | 2 mM | 0.2 ml |
| 물 | 물 | 88.4 ml | |
| 리아 급 BSA | 분말 | 1 mg/mL | 100 mg |
| 실험 당일에 신선하게 만드세요. | |||
| 가우시아 분석 버퍼* | |||
| 스톡 용액 또는 분말 | 주식 | 최종 농도 | 50 mL |
| 디소듐 인산염 | 분말 | 0.1% (1 mg/mL) | 50 mg |
| 글리세롤 | 40% | 5% | 6.25 mL |
| 브로마이드 나트륨 | 분말 | 150 mM | 772 mg |
| EDTA pH 8 | 0.5M | 1 mM | 100 μL |
| 트리스-HCl pH 8 | 1M | 25 mM | 1.25 mL |
| 아스코르브산* | 분말 | 300 mM | 2.64 g |
| Na2SO3** | 분말 | 200mm | 1.26 g |
| 물 | 최대 50mL | ||
| -20 °C에서 알리쿼트에 보관하고 한 번에 하나씩 해동하고 4 °C에서 유지하십시오. | |||
| * 루프트 외. BMC 생화학 에서 수정 된 조리법 2014, 15:14. | |||
| 산성화된 메오 | |||
| 스톡 용액 또는 분말 | 주식 | 최종 농도 | 10 mL |
| 메탄올 | 100% | 10 mL | |
| Hcl | 11.65 M | 1.06% | 0.106 mL |
| 코엘테라진 용액 | |||
| 스톡 용액 또는 분말 | 주식 | 최종 농도 | 1 mL |
| 쿨렌테라진 | 분말 | 1 mg/mL(2.36 mM) | 1 mg |
| 산성화된 메탄올 | 1 mL | ||
| 가우시아 분석 버퍼 의 1 mL 당 재고의 4.2 μL은 2 x 작업 용액으로 사용되는 10 μM CTZ의 결과. | |||
| 예를 들어, 분비 된 가우시아를 함유 한 KRBH 샘플의 50 μL에 2x 작업 용액의 50 μL을 추가하십시오. | |||
표 1: 제시된 어술을 수행하는 데 사용되는 버퍼 및 스톡 솔루션 레시피.
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Discussion
여기서 우리는 MIN6 β 세포로부터의 포도당 자극 인슐린 분비 반응을 신속하게 평가하는 방법을 제시한다. 분석에서 최상의 응답을 위해 적절한 밀도로 MIN6 세포를 시드하고 85-95 % 동시성으로 하는 것이 중요합니다. 이는 1차 섬17,18,19,20,21뿐만 아니라 MIN6에서 모두 발생하는 향상된 세포 세포 접촉 및 동기화로 인해 포도당에 대한 β 세포 반응을 향상시킵니다. 셀16,18. 포도당 자극에 대한 분비 반응의 손실을 방지하기 위해, 가능한 한 낮은 통로로 세포를 유지하고 액체 질소 주식에서 새로운 바이알을 해동하기 전에 6-8 주 동안 세포를 배양하는 것이 중요합니다. 필요에 따라 사용 가능한 장비에 적응하기 위해 프로토콜 섹션 2의 도금 전략을 수정할 수 있습니다. 분비 실험을 위한 96웰 플레이트에 InsGLuc MIN6 세포를 도금하면 실험 조작(복제 포함)을 위한 많은 웰을 제공하며, 더 높은 웰을 가진 요리에 도금으로 도금의 정확도를 유지합니다. 일반적으로 처리량이 높은 스크리닝 코어에서 사용할 수 있는 특수 장비가 필요합니다.
여기에 기재된 간접 루시퍼라아제 분석이외의 인슐린 분비에 대한 현재 분석법, 여기에 설명된 비색 판독(직접 분석), 방사성 판독을 사용하는 방사성 면역 분석법(경쟁 분석) 및 FRET 기반 항체를 사용하는 ELISA가 포함됩니다. 염료 연계 항체 간 FRET를 이용하여 인슐린을 직접 측정하는 경쟁 분석22 및 HTRF23과 DNA aptamers24. 이러한 방법의 각각은 자신의 장점을 가지고 있지만, 일반적으로 그들은 루시 퍼라제 분석보다 더 비싸고 / 또는 시간이 많이 걸립니다. InsGLuc 분석의 한 가지 주요 제한사항은 공동 분비 된 루시퍼라제의 발광 활성이 실제 인슐린 분비에 대한 프록시일 뿐이라는 사실입니다. 또한, 가우시아 루시퍼라아제는 고아의 분비를 측정하는 태그로 성공적으로 사용되었기 때문에, 프로인슐린 단백질 내의 C-펩티드 조각과 C-테르미니 또는 가우시아의 단편과 가우시아 사이의 루시퍼라아제 활성에 대한 예상된 차이가 없습니다. 다른 단백질25. 이것은 처리된 인슐린을 구체적으로 측정하는 측정을 사용하여 확인 연구 결과의 필요조건을 강조합니다. 인슐린 분비의 직접 및 간접 측정에 대한 대안은 또한 β 세포 기능을 평가하는 데 사용될 수 있다. ATP:ADP 비, 칼슘 유입, NAD+/NADH 비율, 세포외 신호 조절 키나아제(ERK) 활성화, 또는 순환 아데노신 모노포스페이트(cAMP) 수준26을포함하는 판독값에 대한 다양한 광학 리포터가 존재한다.
특히 InsGLuc의 향후 응용 프로그램은 높은 처리량 심사에 있는 것으로 보입니다. 이 분석은 이미 게시 된 작은 화면의 소수에 사용 되었습니다 1,2 및 게시 되지 않은 큰 화면완료 7 또는 진행. 이 기술의 다른 반복의 개발은 글루카곤 또는 소마토 스타틴과 같은 빠른 측정을 용이하게하기 위해 luciferases와 다른 분비 된 아일렛 호르몬의 태그를 포함 할 수있다. 수정은 어떤 적당한 beta 세포주든지에 있는 CRISPR/Cas9, lentivirus, 또는 transposase 중재한 삽입을 포함하여 대체 접근을 사용하여 세포주가 재창조되는 어떤 경우에 이루어질 수 있었습니다. 원래 리포터에 대한 추가 가능한 수정은 가우시아에 대한 대체 분비 루시퍼라제를 대체하거나 다중화 된 분석에 대한 다른 호르몬에 연결된 여러 가지 분비 루시퍼라제를 결합하는 것을 포함 할 수있다. CRISPR/Cas9 기술은 세포 배양을 넘어, 적절한 루시퍼라이가 게놈에서 Ins2의 C-펩타이드 코딩 영역에 노크되는 마우스 모델을 생성할 수 있는 가능성을 제시한다. 이러한 마우스는 GFP가 동일한 C-펩티드 부위(27)에 노크하여 생성된 것을 감안할 때 가능할 것이고 생체 내에서 루시퍼라아제 분석으로 내인성 β 세포 기능의 측정을 허용할 것이다.
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Disclosures
저자는 공개 할 것이 없다.
Acknowledgments
저자는 귀중한 일과 토론에 대한 Cobb 실험실의 모든 현재 및 전 회원, 행정 지원을 위한 Dionne Ware에 감사드립니다. 마이클 칼왓은 청소년 당뇨병 연구 재단 SRA-2019-702-Q-R에 의해 지원됩니다. 이 작품은 NIH R37 DK34128과 웰치 재단 보조금 I1243을 통해 멜라니 콥에 가능하게되었다. 이 작업의 초기 부분은 또한 마이클 칼왓에 NIH F32 DK100113에 의해 지원되었다.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Cell culture materials | |||
| rIns-GLuc stable MIN6 cells | Parental MIN6 cell line stably expressing pcDNA3.1+rInsp-Ins-eGLuc and maintained in 250 ug/ml G418 | ||
| DMEM | Sigma | D6429 | 4.5 g/L glucose media |
| fetal bovine serum, heat-inactivated | Sigma | F4135 | |
| Penicillin/Streptomycin | Thermo-Fisher Scientific | SV30010 | |
| beta-mercaptoethanol | Thermo-Fisher Scientific | BP 176-100 | |
| glutamine | Thermo-Fisher Scientific | BP379-100 | |
| Trypsin-EDTA | Sigma | T3924-500 | |
| G418 | Gold Biotechnology | G418-10 | Stock solution 250 mg/mL in water. Freeze aliquots at -20C. |
| T75 tissue culture flasks | Fisher Scientific | 07-202-000 | |
| 96 well tissue culture plates | Celltreat | 229196 | |
| Reagent reservoirs (50 mL) | Corning | 4870 | |
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Secretion assay reagents | |||
| BSA (RIA grade) | Thermo-Fisher Scientific | 50-146-952 | |
| D-(+)-Glucose | Sigma | G8270-1KG | |
| KCl | Thermo-Fisher Scientific | P217-500 | |
| NaCl | Thermo-Fisher Scientific | S271-3 | |
| Hepes, pH 7.4 | Thermo-Fisher Scientific | 50-213-365 | |
| NaHCO3 | Thermo-Fisher Scientific | 15568414 | |
| MgCl2 | Thermo-Fisher Scientific | M9272-500G | |
| CaCl2 | Sigma | C-7902 | |
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Optional drugs for stimulation experiments | |||
| Diazoxide | Sigma | D9035 | Stock solution: 50 mM in 0.1N NaOH. Add equal amount of 0.1N HCl to any buffer where diazoxide is added. |
| epinephrine (bitartrate salt) | Sigma | E4375 | Stock solution: 5 mM in water |
| PMA (phorbol 12-myristate) | Sigma | P1585 | Stock solution: 100 µM in DMSO |
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Guassia assay materials | |||
| Disodium phosphate (Na2HPO4) | Thermo-Fisher Scientific | S374-500 | |
| Glycerol | Thermo-Fisher Scientific | G334 | |
| Sodium Bromide | Thermo-Fisher Scientific | AC44680-1000 | |
| EDTA | Thermo-Fisher Scientific | AC44608-5000 | Stock solution: 0.5 M pH 8 |
| Tris base | RPI | T60040-1000.0 | Stock solution: 1 M pH 8 |
| Ascorbic Acid | Fisher Scientific | AAA1775922 | US Patent US7718389 suggested ascorbate can increase coelenterazine stability. |
| Na2SO3 | Sigma | S0505-250G | US Patent US8367357 suggested sulfite may decrease background due to BSA |
| Coelenterazine (native) | Nanolight / Prolume | 3035MG | Stock solution: 1 mg/ml in acidified MeOH (2.36 mM) |
| OptiPlate-96, White Opaque 96-well Microplate | Perkin Elmer | 6005290 | Any opaque white 96 well plate should be sufficient. Clear bottom plates will also work, however some signal will be lost. |
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Equipment | |||
| Synergy H1 Hybrid plate reader or equivalent | BioTek | 8041000 | A plate reader with luminescence detection and 96-well plate capabilities is required. |
| 8-channel VOYAGER Pipette (50-1250 µL) | Integra | 4724 | An automated multichannel pipette is extremely useful for rapid addition of luciferase reagents and plating cells in 96 well format |
| 8-channel 200 µL pipette | Transferpette S 20-200 µL | 2703710 |
References
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