Summary

Calvarial modell av Ben styrking i kanin for vurdering av Bone vekst og Neovascularization i Bone substitusjon materialer

Published: August 13, 2019
doi:

Summary

Her presenterer vi en kirurgisk protokoll i kaniner med sikte på å vurdere bein substitusjon materialer i form av bein regenerering kapasiteter. Ved å bruke PEEK sylindere fast på kanin hodeskaller, osteoconduction, osteoinduction, Osteogenesis og vasculogenesis indusert av materialene kan evalueres enten på Live eller euthanized dyr.

Abstract

Det grunn-prinsippet av kaninen calvarial modell er å avle ny Ben tissue loddrett på toppen av det kortikale del av hodeskallen. Denne modellen tillater vurdering av bein substitusjon materialer for oral og kraniofacial bein regenerering i form av bein vekst og neovascularization støtte. Når dyrene er anesthetized og ventilert (endotrakeal intubering), fire sylindere laget av polyeter Eter keton (PEEK) er skrudd på skallen, på begge sider av medianen og koronale sting. Fem intramedullær hull er boret i benet området avgrenset av hver sylinder, slik at tilstrømningen av benmargceller. Materialet prøvene er plassert i sylindere som er så lukket. Til slutt er operasjonsstedet sutured, og dyrene våkner. Bone vekst kan vurderes på levende dyr ved hjelp av microtomography. En gang dyrene er euthanized, Ben oppblomstringen og neovascularization kanskje være vurdert av benytter microtomography, immun-histologi og immunofluorescence. Ettersom evalueringen av et materiale krever maksimal standardisering og kalibrering, vises den calvarial modellen ideelt. Tilgang er veldig enkelt, kalibrering og standardisering er tilrettelagt ved bruk av definerte sylindere og fire prøver kan vurderes samtidig. Videre, bo tomografi kanskje bli brukt og til sist en stor nedgang inne dyrene å bli euthanized kanskje være foregripe.

Introduction

Den calvarial modellen av bein styrking ble utviklet på 90-tallet med sikte på å optimalisere begrepet guidet bein regenerering (GBR) i muntlig og kraniofacial kirurgisk domene. Det grunnleggende prinsippet i denne modellen er å vokse nytt bein vev vertikalt på toppen av den kortikale delen av skallen. For å gjøre dette, en reaktor (f. eks Titan-Dome,-sylinder eller-buret) er festet på skallen for å beskytte benet regenerering utført av en pode (f. eks, hydrogel, bein erstatning, etc.). Ved hjelp av denne modellen, Titan eller keramiske bur1,2,3,4,5,6, GBR membraner7,8,9 ,10, osteogen faktorer11,12,13,14,15,16,17, nye bein erstatninger12,16,17,18,19,20,21,22,23 , 24 priser og , 25 priser og , 26 i , 27 andre priser , 28 flere , 29 eller mekanismen for neovascularization under bein regenerering prosessen30 ble vurdert.

Fra et translational synspunkt representerer calvarial modellen en en-vegg defekt som kan sammenlignes med en klasse IV defekt i kjeven31. Målet er å dyrke nye bein over et kortikale område, uten noen lateral støtte fra endogene bein vegger. Modellen er således ekstremt streng og vurderer det virkelige potensialet til vertikal osteoconduction over den kortikale delen av benet. Hvis modellen som beskrives her, hovedsakelig er dedikert til vurderingen av osteoconduction i bein erstatninger, kan Osteogenesis og/eller osteoinduction også vurderes, i tillegg til vasculogenesis1,2,3, 4,5,6,7,8,9,10,11,12,13 ,14,15,16,17,18,19,20,21,22 ,23,24,25,26,27,28,29,30.

I all vesentlighet for etikken, praktisk og økonomisk anledninger, det calvarial modell var bebygget inne kaninen i hvilket benet metabolisme og struktur er helt relevant når sammenlignet med human32. Av de 30 referansene sitert ovenfor, 80% brukte kanin calvarial modell1,2,3,4,5,6,7,8 ,9,10,11,12,13,14,15,17,22, 23,26,27,28,29,30,33, og dermed demonstrere relevansen av denne dyre modellen. I 2008, den Busenlechner gruppen overført calvarial modellen til grisen, slik at sammenligningen av åtte bein erstatninger samtidig20 (sammenlignet med to bein erstatninger med kaninen). På den annen side, vår gruppe overført kaninen calvarial modellen til sau. Kort sagt, Titanium kupler ble plassert på sau hodeskaller å karakterisere osteoconduction av en ny 3D-trykt bein erstatning. Disse studiene tillot oss å utvikle og mestre calvarial modellen og dens analyse16,21.

De tre siste studiene sitert16,20,21, sammen med flere andre undersøkelser12,17,18,19,22, 23,24,26,27,28,29, bekreftet det store potensialet i calvarial-modellen som en screening og karakterisering Modell. Men selv om resultatene innhentet var ganske tilfredsstillende, de også påpekt noen begrensninger: (1) bruk av Titan kupler, som hindret røntgen spredning og i sin tur Live Micro-CT bruk. Disse kunne ikke fjernes før histologiske behandling, tvinger forskerne til å legge inn prøvene i Poly (metyl akrylat) harpiks (PMMA). De resulterende analysene ble derfor i stor grad begrenset til topografi. (2) høye økonomiske kostnader, spesielt på grunn av kostnadene for dyrene, og kostnader knyttet til logistikk, vedlikehold og kirurgi av dyrene. (3) vanskeligheter med å oppnå etiske godkjenninger for store dyr.

En fersk studie av Polo, et al.26 i stor grad forbedret modellen på kaninen. Titanium kupler ble erstattet av lukkes sylindere som kunne fylles med et konstant volum av materiale. Fire av disse sylindere ble plassert på kanin hodeskaller. Ved ferdigstillelse, kan sylindere fjernes slik at biopsier var metall-fri, innføre mye mer fleksibilitet om prøven behandling. Kaninen calvarial modell ble attraktiv for samtidig tester med lavere omkostningene, lett dyr handling og tilrettelegging av eksemplar bearbeiding. Dra nytte av disse siste utviklingen, har vi ytterligere forbedret modellen ved å erstatte Titan med PEEK å produsere sylindere, og dermed gir røntgen spredning og bruk av microtomography på levende dyr.

I denne artikkelen vil vi beskrive anestesi og kirurgi prosesser og viser eksempler på utganger som kan fås ved hjelp av denne protokollen, dvs., (Immuno-) histologi, histomorphometry, live og ex vivo microtomography å evaluere mekanismer av bein regenerering og kvantifisere den nye bein syntese støttes av bein erstatning materialer.

Protocol

I tråd med sveitsiske juridiske krav ble protokollen godkjent av en akademisk komité og overvåket av kantonale og føderale veterinær myndigheter (autorisasjoner n ° GE/165/16 og GE/100/18). 1. bestemte enheter og dyr Sylindere Maskin sylindere med lateral stabiliserende tabs ut av PEEK å ha indre diameter på 5 mm, ytre diameter på 8 mm og en høyde på 5 mm (figur 1). Maskin PEEK caps med en design som till…

Representative Results

Modellen som beskrives her, er dedikert til vurderingen av osteoconduction i bein erstatninger. Osteogenesis og-eller osteoinduction av bein erstatter enten (pre-) cellularized eller lastet med bioaktive molekyler kan også vurderes, samt vasculogenesis1,2,3,4, 5 andre priser , 6 andre priser …

Discussion

Modellen er beskrevet her er enkel og bør utvikles ganske enkelt så lenge alle trinnene er fulgt og utstyret er egnet. Som protokollen beskrevet er en kirurgisk metode, alle trinnene vises kritisk og må følges riktig. Det er viktig å være trent for dyreforsøk, spesielt i kanin håndtering og anestesi. Ikke nøl med å be om profesjonell anesthetist og veterinær hjelp. Det er avgjørende å insistere på den daglige visuelle overvåking av dyr før og etter Sutur fjerning. Selv om huden fra skallen er tykk, rikeli…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne står i gjeld til Geistlich AG (Wolhusen, CH) og Osteologi Foundation (Lucerne, CH) (Grant n ° 18-049) for deres støtte, så vel som global D (Brignais, FR) for å gi skruene. En spesiell takk går til Dr B. Schaefer fra Geistlich. Vi er også takknemlige for Eliane Dubois og Claire Herrmann for deres utmerkede histologiske prosessering og deres dyrebare råd. Til slutt, Vi hjertelig erkjenner Xavier Belin, Sylvie Roulet og hele teamet av PR Walid Habre, “eksperimentell kirurgi DPT”, for deres bemerkelsesverdige teknisk assistanse.

Materials

Drugs
Enrofloxacine Baytril 10% Bayer Antibiotic
Fentanyl Bischel For analgesia
Ketalar 50mg/ml Pfizer Ketamine for anesthesia
Lidohex Bichsel Lubricating gel for the eyes
Opsite Smith and Nephew 66004978 Sprayable dressing
Povidone iodine 10%, Betadine Mundipharma anti-infective agent
Propofol 2% Braun 3538710 For anesthesia
Rapidocain 2% sintetica Local anesthesia
Ringer-acetate Fresenius Kabi Volume compensation
Rompun 2% Bayer Xylazin for anesthesia
Sevoflurane 5% Abbvie For anesthesia
Sterile saline Sintetica
Temgesic Reckitt Benckiser Buprenorphine hydrochloride, analgesia
Thiopental Inresa Ospediala For anesthesia
Xylocaine 10% spray Astra Zeneca For intubation
Name Company Catalog Number Comments
Equipment
Fresenius Vial pilot C Imexmed Infusion pump
Heated pad Harvard Apparatus
Suction dominant 50 Medela
Suction tubing Optimus Promedical 80342.2
Surgical motor Schick dental Qube Drilling of intramedullary holes
Ventilation Maquet Servo1
Name Company Catalog Number Comments
Material
Cylinders and caps Boutyplast Customized composition: PEEK (poly ether ether ketone)
Manual self-retaining shaft GlobalD ACT1K
Mobile handle for self-retaining shaft GlobalD MTM
Self- drilling screws GlobalD VA1.2KL4 cross-drive screws composed by Titanium grade5, ISO 5832-3
Name Company Catalog Number Comments
Surgical tray
Endotracheal tube Shiley diameter 2,5mm Covidien 86233 For intubation
Endotracheal tube Shiley diameter 4,9mm Covidien 107-35G For intubation
Ethicon prolene 4-0 Ehticon 8581H Non-resorbable suture
Forceps Marcel Blanc BD027R 145 mm
Intubation catheter Cook medical Guide for intubation
Needlle holder Marcel Blanc BM008R
Needles BD Microlance3 Becton Dickinson 300300/304622 26G; 18G
Periosteal HU-Friedy P9X
Round surgical burs Patterson 78000 0.8 mm in diameter, Drilling of intramedullary holes
Scalpel Swann-Morton n°10 and n°15
Scissors Marcel Blanc 00657 180 mm
Syringes Omnifix Braun 4616057V 5ml, 10ml and 50ml
Venflon G22 Braun 42690985-01 Vasofix safety for the ear iv line

References

  1. Anderud, J., et al. Guided bone augmentation using a ceramic space-maintaining device. Oral Surgery, Oral Medicine, Oral Pathology and Oral Radiology. 118 (5), 532-538 (2014).
  2. Lundgren, A. K., Lundgren, D., Hammerle, C. H., Nyman, S., Sennerby, L. Influence of decortication of the donor bone on guided bone augmentation. An experimental study in the rabbit skull bone. Clinical Oral Implants Research. 11 (2), 99-106 (2000).
  3. Lundgren, D., Lundgren, A. K., Sennerby, L., Nyman, S. Augmentation of intramembraneous bone beyond the skeletal envelope using an occlusive titanium barrier. An experimental study in the rabbit. Clinical Oral Implants Research. 6 (2), 67-72 (1995).
  4. Slotte, C., Lundgren, D. Impact of cortical perforations of contiguous donor bone in a guided bone augmentation procedure: an experimental study in the rabbit skull. Clinical Implant Dentistry and Relat Research. 4 (1), 1-10 (2002).
  5. Tamura, T., et al. Three-dimensional evaluation for augmented bone using guided bone regeneration. Journal of Periodontal Research. 40 (3), 269-276 (2005).
  6. Yamada, Y., et al. Correlation in the densities of augmented and existing bone in guided bone augmentation. Clinical Oral Implants Research. 23 (7), 837-845 (2012).
  7. Chierico, A., et al. Electrically charged GTAM membranes stimulate osteogenesis in rabbit calvarial defects. Clinical Oral Implants Research. 10 (5), 415-424 (1999).
  8. Ikeno, M., Hibi, H., Kinoshita, K., Hattori, H., Ueda, M. Effects of the permeability of shields with autologous bone grafts on bone augmentation. International Journal of Oral and Maxillofacial Implants. 28 (6), e386-e392 (2013).
  9. Ito, K., Nanba, K., Murai, S. Effects of bioabsorbable and non-resorbable barrier membranes on bone augmentation in rabbit calvaria. Journal of Periodontology. 69 (11), 1229-1237 (1998).
  10. Lee, Y. M., et al. Enhanced bone augmentation by controlled release of recombinant human bone morphogenetic protein-2 from bioabsorbable membranes. Journal of Periodontology. 74 (6), 865-872 (2003).
  11. Fugl, A., et al. S-nitroso albumin enhances bone formation in a rabbit calvaria model. International Journal of Oral and Maxillofacial Surgery. 43 (3), 381-386 (2014).
  12. Ikeno, M., Hibi, H., Kinoshita, K., Hattori, H., Ueda, M. Effects of self-assembling peptide hydrogel scaffold on bone regeneration with recombinant human bone morphogenetic protein-2. International Journal of Oral and Maxillofacial Implants. 28 (5), e283-e289 (2013).
  13. Ito, K., et al. Effects of ipriflavone on augmented bone using a guided bone regeneration procedure. Clinical Oral Implants Research. 18 (1), 60-68 (2007).
  14. Jung, R. E., Hammerle, C. H., Kokovic, V., Weber, F. E. Bone regeneration using a synthetic matrix containing a parathyroid hormone peptide combined with a grafting material. International Journal of Oral and Maxillofacial Implants. 22 (2), 258-266 (2007).
  15. Minegishi, T., et al. Effects of ipriflavone on bone augmentation within a titanium cap in rabbit calvaria. Journal of Oral Science. 44 (1), 7-11 (2002).
  16. Moussa, M., et al. Medium-Term Function of a 3D Printed TCP/HA Structure as a New Osteoconductive Scaffold for Vertical Bone Augmentation: A Simulation by BMP-2 Activation. Materials. 8 (5), 2174-2190 (2015).
  17. Thoma, D. S., Kruse, A., Ghayor, C., Jung, R. E., Weber, F. E. Bone augmentation using a synthetic hydroxyapatite/silica oxide-based and a xenogenic hydroxyapatite-based bone substitute materials with and without recombinant human bone morphogenetic protein-2. Clinical Oral Implants Research. 26 (5), 592-598 (2014).
  18. Busenlechner, D., et al. Resorption of deproteinized bovine bone mineral in a porcine calvaria augmentation model. Clinical Oral Implants Research. 23 (1), 95-99 (2012).
  19. Busenlechner, D., et al. Paste-like inorganic bone matrix: preclinical testing of a prototype preparation in the porcine calvaria. Clinical Oral Implants Research. 20 (10), 1099-1104 (2009).
  20. Busenlechner, D., et al. Simultaneous in vivo comparison of bone substitutes in a guided bone regeneration model. Biomaterials. 29 (22), 3195-3200 (2008).
  21. Carrel, J. P., et al. A 3D printed TCP/HA structure as a new osteoconductive scaffold for vertical bone augmentation. Clinical Oral Implants Research. 27 (1), 55-62 (2016).
  22. Murai, M., et al. Effects of different sizes of beta-tricalcium phosphate particles on bone augmentation within a titanium cap in rabbit calvarium. Dental Materials Journal. 25 (1), 87-96 (2006).
  23. Nishida, T., et al. Effects of bioactive glass on bone augmentation within a titanium cap in rabbit parietal bone. Journal of Periodontology. 77 (6), 983-989 (2006).
  24. Nyan, M., et al. Feasibility of alpha tricalcium phosphate for vertical bone augmentation. Journal of Investigating and Clinical Dentistry. 5 (2), 109-116 (2012).
  25. Polimeni, G., et al. Histopathological observations of a polylactic acid-based device intended for guided bone/tissue regeneration. Clinical Implant Dentistry and Related Research. 10 (2), 99-105 (2008).
  26. Polo, C. I., et al. Effect of recombinant human bone morphogenetic protein 2 associated with a variety of bone substitutes on vertical guided bone regeneration in rabbit calvarium. Journal of Periodontology. 84 (3), 360-370 (2013).
  27. Slotte, C., Lundgren, D., Burgos, P. M. Placement of autogeneic bone chips or bovine bone mineral in guided bone augmentation: a rabbit skull study. International Journal of Oral and Maxillofacial Implants. 18 (6), 795-806 (2003).
  28. Tamimi, F. M., et al. Bone augmentation in rabbit calvariae: comparative study between Bio-Oss and a novel beta-TCP/DCPD granulate. Journal of Clinical Periodontology. 33 (12), 922-928 (2006).
  29. Torres, J., et al. Effect of solely applied platelet-rich plasma on osseous regeneration compared to Bio-Oss: a morphometric and densitometric study on rabbit calvaria. Clinical Implant Dentistry and Related Research. 10 (2), 106-112 (2008).
  30. Yamada, Y., et al. Angiogenesis in newly augmented bone observed in rabbit calvarium using a titanium cap. Clinical Oral Implants Research. 19 (10), 1003-1009 (2008).
  31. Cordaro, L., Terheyden, H., Wismeijer, D., Chen, S., Buser, D. . ITI Treatment Guide. 7, (2014).
  32. Pearce, A. I., Richards, R. G., Milz, S., Schneider, E., Pearce, S. G. Animal models for implant biomaterial research in bone: A review. European Cells & Materials. 13, 1-10 (2007).
  33. Min, S., et al. Effects of marrow penetration on bone augmentation within a titanium cap in rabbit calvarium. Journal of Periodontology. 78 (10), 1978-1984 (2007).
  34. Braun, T. M., Giannobile, W. V., Nevins, M. Ch. 4. Osteology guidelines for oral and maxillofacial regeneration Preclinical models for translational research. , 31-43 (2011).
  35. Doro, D. H., Grigoriadis, A. E., Liu, K. J. Calvarial Suture-Derived Stem Cells and Their Contribution to Cranial Bone Repair. Frontiers in Physiology. 8, 956 (2017).
  36. Russel, W., Burch, R. . The principles of humane experimental technique. , (1959).
  37. Asvanund, P., Chunhabundit, P. Alveolar bone regeneration by implantation of nacre and B-tricalcium phosphate in guinea pig. Implant Dentistry. 21 (3), 248-253 (2012).
  38. Gielkens, P. F., et al. Gore-Tex as barrier membranes in rat mandibular defects: an evaluation by microradiography and micro-CT. Clinical Oral Implants Research. 19 (5), 516-521 (2008).
  39. Lioubavina, N., Kostopoulos, L., Wenzel, A., Karring, T. Long-term stability of jaw bone tuberosities formed by "guided tissue regeneration&#34. Clinical Oral Implants Research. 10 (6), 477-486 (1999).
  40. Mardas, N., Kostopoulos, L., Stavropoulos, A., Karring, T. Osteogenesis by guided tissue regeneration and demineralized bone matrix. Journal of Clinical Periodontology. 30 (3), 176-183 (2003).
  41. Stavropoulos, A., Kostopoulos, L., Mardas, N., Nyengaard, J. R., Karring, T. Deproteinized bovine bone used as an adjunct to guided bone augmentation: an experimental study in the rat. Clinical Implant Dentistry and Related Research. 3 (3), 156-165 (2001).
  42. Stavropoulos, A., Kostopoulos, L., Nyengaard, J. R., Karring, T. Deproteinized bovine bone (Bio-Oss) and bioactive glass (Biogran) arrest bone formation when used as an adjunct to guided tissue regeneration (GTR): an experimental study in the rat. Journal of Clinical Periodontology. 30 (7), 636-643 (2003).
  43. Stavropoulos, A., Kostopoulos, L., Nyengaard, J. R., Karring, T. Fate of bone formed by guided tissue regeneration with or without grafting of Bio-Oss or Biogran. An experimental study in the rat. Journal of Clinical Periodontology. 31 (1), 30-39 (2004).
  44. Stavropoulos, A., Nyengaard, J. R., Kostopoulos, L., Karring, T. Implant placement in bone formed beyond the skeletal envelope by means of guided tissue regeneration: an experimental study in the rat. Journal of Clinical Periodontology. 32 (10), 1108-1115 (2005).
  45. Thomaidis, V., et al. Comparative study of 5 different membranes for guided bone regeneration of rabbit mandibular defects beyond critical size. Medical Science Monitor. 14 (4), (2008).
  46. Zhang, J. C., et al. The repair of critical-size defects with porous hydroxyapatite/polyamide nanocomposite: an experimental study in rabbit mandibles. International Journal of Oral and Maxillofacial Surgery. 39 (5), 469-477 (2010).
  47. Zhang, X., et al. Osteoconductive effectiveness of bone graft derived from antler cancellous bone: an experimental study in the rabbit mandible defect model. International Journal of Oral and Maxillofacial Surgery. 41 (11), 1330-1337 (2012).
  48. Bronoosh, P., et al. Effects of low-intensity pulsed ultrasound on healing of mandibular bone defects: an experimental study in rabbits. International Journal of Oral and Maxillofacial Surgery. 44 (2), 277-284 (2015).
  49. Gomes, F. V., et al. Low-level laser therapy improves peri-implant bone formation: resonance frequency, electron microscopy, and stereology findings in a rabbit model. International Journal of Oral and Maxillofacial Surgery. 44 (2), 245-251 (2014).
  50. Lalani, Z., et al. Spatial and temporal localization of secretory IgA in healing tooth extraction sockets in a rabbit model. Journal of Oral and Maxillofacial Surgery. 62 (4), 466-472 (2004).
  51. Osorio, L. B., et al. Post-extraction evaluation of sockets with one plate loss–a microtomographic and histological study. Clinical Oral Implants Research. 27 (1), 31-38 (2014).

Play Video

Cite This Article
Marger, L., Barone, A., Martinelli-Kläy, C. P., Schaub, L., Strasding, M., Mekki, M., Sailer, I., Scherrer, S. S., Durual, S. Calvarial Model of Bone Augmentation in Rabbit for Assessment of Bone Growth and Neovascularization in Bone Substitution Materials. J. Vis. Exp. (150), e59976, doi:10.3791/59976 (2019).

View Video