Den presenterte protokollen beskriver en metode for en neurite utvekstanalyse og nevrotoksisitetsvurdering av små molekylforbindelser.
Neurite utvekstanalyse og nevrotoksisitetsvurdering er to store studier som kan utføres ved hjelp av den presenterte metoden heri. Denne protokollen gir pålitelig analyse av nevronal morfologi sammen med kvantitative målinger av modifikasjoner på neurite lengde og synaptisk protein lokalisering og overflod ved behandling med små molekylforbindelser. I tillegg til anvendelsen av den presenterte metoden i neurite utvekststudier, kan nevrotoksisitetsvurdering utføres for å vurdere, skille og rangere kommersielle kjemiske forbindelser basert på deres potensielle utviklingsnevrotoksisitetseffekt.
Selv om cellelinjer i dag er mye brukt i sammensatte screening analyser i nevrovitenskap, de ofte avvike genetisk og fenotypisk fra deres vev opprinnelse. Primærceller, derimot, opprettholde viktige markører og funksjoner observert in vivo. Derfor, på grunn av oversettelsespotensialet og fysiologisk relevans at disse cellene kan tilby neurite utvekstanalyse og nevrotoksisitetsvurdering, kan det være betydelig nytte av å bruke humane nevrale stamceller (hNPCer) som den primære humane cellemodellen.
Den presenterte metoden her kan brukes til å screene for evnen til forbindelser for å indusere neurite utvekst og nevrotoksisitet ved å dra nytte av den menneskelige nevrale stamcelleavledede nevroner, en cellemodell som representerer menneskelig biologi nøye.”
Neurite vekst er en prosess som er grunnleggende for dannelsen av det nevronale nettverket og nerveregenerering1,2. Etter en skade spiller neurite utvekst en nøkkelrolle i regenerering av nervesystemet. Neurite utvekst er også et viktig element i den ekstracellulære signalisering i indusere nevronale regenerative aktiviteter for å forbedre resultatene for nevrodegenerative lidelser og nevronal skade3,,4,5,6.
Ved å opprettholde sitt differensieringspotensial i å produsere ulike nevrale slekter, kan humane nevrale stamceller (hNPCer) gi et modellsystem for studier av sentralnervesystemet (CNS) funksjon og utvikling7,,8,9. Høyt translasjonelt potensial og fysiologisk relevans av hNPCer som en primær human cellemodell gir en betydelig fordel i neurite utvekst-relaterte narkotika oppdagelse screenings. Vedlikehold og skalering av primærcellemodellene for høygjennomstrømningsanalyser kan imidlertid være tidkrevende ogarbeidsintensive 10,,11,,12,,13.
I tillegg til anvendelsen av den presenterte metoden i neurite utvekststudier, er nevrotoksisitetsvurdering et annet program ved hjelp av hNPC-avledede nevroner. Det er tusenvis av kommersielle kjemiske forbindelser som enten ikke undersøkes eller med dårlig forstått nevrotoksisitetspotensial. Derfor er mer pålitelige og effektive screeningeksperimenter for å vurdere, skille mellom og rangere forbindelser basert på deres potensial til å fremkalle utviklingsnevrotoksisitet i høy etterspørsel14. Økningen i prevalens og forekomst av nevrologiske lidelser sammen med overflod av utestede forbindelser i miljøet nødvendiggjør utviklingen av mer pålitelige og effektive eksperimenter for å identifisere farlige miljøforbindelser som kan utgjøre nevrotoksisitet15.
Den presenterte metoden her kan brukes til å screene for evnen til forbindelser for å indusere neurite utvekst og nevrotoksisitet ved å dra nytte av den menneskelige nevrale stamcelleavledede nevroner, en cellemodell som representerer menneskelig biologi nøye.
Denne protokollen er en av de få publiserte papirene som beskriver testen for neurite lengde ved behandling med testforbindelser. Videre beskriver vi hvordan du bruker hNPCer for en neurite utvekstanalyse og nevrotoksisitetsvurdering. Ved å benytte denne neurite utvekstanalysen og nevrotoksisitetsvurderingen på hNPCs-avledede nevroner, er det nevrogene potensialet til en kategori av epigenetiske småmolekylforbindelser, HDAC-hemmere, i induserende neurite utvekst demonstrert22. Videre, i et ann…
The authors have nothing to disclose.
Denne forskningen ble finansiert av NIMAD forskningsstipend (940714) tildelt MAF.
4-well Glass Chamber Slides | Sigma | PEZGS0816 | |
Alexa Fluor 488 | Invitrogen | A-11001 | |
Alexa Fluor 594 | Invitrogen | R37117 | |
Antibiotic-Antimycotic | Gibco | 15240062 | |
Anti-β-Tubulin III | Thermo | MA1-118X | |
B27 | Thermo | 17504001 | |
B27 – minus vitamin A | Thermo | 12587010 | |
BDNF | PeproTech | 450-02 | |
BSA | Sigma | A8531 | |
CellTiter-Glo | Promega | G7572 | |
CoolCell | Corning | 432000 | Cell freezing containers ensuring standardized controlled-rate -1℃/minute cell freezing in a -80℃ freezer |
CryoStor CS10 | StemCell Technologies | 7930 | Cryopreservation medium containing 10% DMSO |
DAPI | Thermo | D1306 | |
DMEM/F12 | Gibco | 11320033 | |
DMSO | Sigma | 34869-100ML | |
EGF | Gibco | PHG0311 | |
FGF | Gibco | PHG6015 | |
Formaldehyde | Thermo | FB002 | |
GDNF | PeproTech | 450-10 | |
Glutamax | Gibco | 35050061 | L-alanyl-L-glutamine supplement |
Goat Serum | Thermo | 50062Z | |
Heparin | Calbiochem | 375095 | |
Laminin | Sigma | L2020-1MG | |
L-Ascorbic Acid | Sigma | A92902-25G | |
L-lysine | Sigma | L5501 | |
MEM non-essential amino acids | Gibco | 11140050 | |
mFreSR | StemCell Technologies | 5854 | Serum-free cryopreservation medium designed for the cryopreservation of human embryonic and induced pluripotent stem cells |
N2 | Gibco | 17502048 | |
NaCl | Sigma | 71376 | |
Neurobasal Medium | Gibco | 21103049 | |
Nunc 384-Well Polystyrene White Microplates | Thermo | 164610 | |
PBS | Thermo | 10010-049 | |
Poly‐L‐lysine | Sigma | P5899-5MG | |
ProLong Gold Antifade Mountant | Thermo | P10144 | |
Retinoic Acid | Sigma | R2625 | |
Sodium Azide | Sigma | S2002 | |
StemPro Accutase | Gibco | A1110501 | Cell dissociation reagent containing proteolytic and collagenolytic enzymes |
Synaptophysin | Thermo | MA5-14532 | |
Tris Base | Sigma | 10708976001 | |
Triton X-100 | Sigma | X100-100ML |