Summary

تخطيط كهربائي مباشر مقرونة (DC-ERG) لتسجيل الاستجابات الكهربائية ذات الضوء المُثار من ظهارة صبغ الشبكية الماوس

Published: July 14, 2020
doi:

Summary

هنا، نقدم طريقة لتسجيل الاستجابات الكهربائية التي تثير الضوء من ظهارة صبغ الشبكية (RPE) في الفئران باستخدام تقنية تعرف باسم DC-ERGs التي وصفها لأول مرة مارمورشتاين، بيتشي، وزملاؤه في أوائل العقد الأول من القرن الحادي والعشرين.

Abstract

ظهارة صبغة الشبكية (RPE) هي أحادية متخصصة من الخلايا التي تقع بشكل استراتيجي بين الشبكية و choriocapillaris التي تحافظ على الصحة العامة والسلامة الهيكلية للمقبرات الضوئية. وRPE هو الاستقطاب، وعرض مستقبلات أو قنوات apically وبسيقل، ويؤدي النقل المتجه من المياه، الأيونات، المستقلبات، ويفرز العديد من السيتوكينات.

في القياسات غير الباضعة الدالة RPE يمكن إجراء باستخدام ERGs مباشرة مقرونة (DC-ERGs). كانت المنهجية وراء DC-ERG رائدة من قبل مارمورشتاين ، بيتشي ، وزملاؤه باستخدام نظام تسجيل التحفيز المصنوع خصيصًا ، وأظهر لاحقًا باستخدام نظام متاح تجاريًا. تستخدم تقنية DC-ERG الشعيرات الدموية الزجاجية المليئة بمحلول الملح المخزن (HBSS) من هانك لقياس الاستجابات الكهربائية الأبطأ لـ RPE التي تم الحصول عليها من تغيرات التركيز التي تثيرها الضوء في الفضاء دون الجانتري بسبب نشاط المستقبلات الضوئية. إن التحفيز الضوئي المطول وطول تسجيل DC-ERG يجعلانها عرضة للانجراف والضوضاء مما يؤدي إلى انخفاض العائد من التسجيلات القابلة للاستخدام. هنا، نقدم طريقة سريعة وموثوق بها لتحسين استقرار التسجيلات مع تقليل الضوضاء باستخدام ضغط الفراغ لتقليل / القضاء على الفقاعات الناتجة عن الـ هبلسزز و حامل القطب. بالإضافة إلى ذلك، يتم تخفيف التحف خط الطاقة باستخدام منظم الجهد / مكيف الطاقة. نحن نشمل بروتوكولات تحفيز الضوء اللازمة لنظام ERG المتاحة تجاريا، فضلا عن النصوص لتحليل مكونات DC-ERG: c-موجة، التذبذب السريع، ذروة الضوء، والاستجابة قبالة. نظراً لسهولة التسجيلات المحسنة وسير العمل السريع للتحليل، فإن هذا البروتوكول المبسط مفيد بشكل خاص في قياس التغيرات المرتبطة بالعمر في وظيفة RPE، وتطور المرض، وفي تقييم التدخل الدوائي.

Introduction

ظهارة صبغة الشبكية (RPE) هي طبقة أحادية من الخلايا المتخصصة التي تصطف في الجزء الخلفي من العين وتمارس وظائف حاسمة للحفاظ على التوازن الشبكية1. RPE يدعم فوتوراسيدات من خلال تجديد الصباغ البصري التقاط الفوتون في عملية تسمى الدورة البصرية2, من خلال المشاركة في البلعومات النهارية من سقيفة الجزء الخارجي نصائح3, وفي نقل المواد الغذائية والمنتجات الأيضية بين مستقبلات فوتونية و choriocapillaris4,5. تشوهات في وظيفة RPE يكمن وراء العديد من أمراض الشبكية البشرية, مثل الضمور البقعي المرتبط بالعمر6,اعورة لوبير الخلقية7,8 وأفضل ضمور البقعي البقعي vitelliform9. كما أنسجة العين المانحة غالبا ما يصعب الحصول عليها فقط لأغراض البحث, نماذج الحيوانات مع التعديلات الجينية يمكن أن توفر طريقة بديلة لدراسة تطور أمراض الشبكية10,11. بالإضافة إلى ذلك ، فإن ظهور وتطبيق تكنولوجيا CRISPR cas9 يسمح الآن مقدمات الجينوم (الضربة القاضية) أو الحذف (خروج المغلوب) في عملية بسيطة من خطوة واحدة تتجاوز قيود تقنيات استهداف الجينات السابقة12. الطفرة في توافر نماذج جديدة ماوس13 يتطلب بروتوكول تسجيل أكثر كفاءة لوظيفة RPE غير غير الغازية.

ويمكن قياس الاستجابات الكهربائية التي تثير الضوء من RPE يمكن أن يتحقق باستخدام تقنية تخطيط كهربائي مقرونة مباشرة (DC-ERG). عند استخدامها في تركيبة مع تسجيلات ERG التقليدية التي تقيس مستقبلات ضوئية (a-wave) و ثنائي القطب (b-wave) استجابات الخلية14، يمكن لـ DC-ERG تحديد كيفية تغيير خصائص الاستجابة لـ RPE مع انحطاط الشبكية15،16،17 أو ما إذا كان الخلل RPE يسبق فقدان الحساسية الضوئية. يصف هذا البروتوكول طريقة مقتبسة من عمل مارمورشتاين، بيتشي، والزملاء الذين طوروا أولا تقنية DC-ERG16،18،19،20 ويحسن على إعادة إنتاج وسهولة الاستخدام.

يصعب تنفيذ تسجيل DC-ERG بسبب وقت الاكتساب الطويل (9 دقائق) الذي يمكن أن يؤدي أي انقطاع أو إدخال للضوضاء إلى تعقيد تفسير البيانات. وميزة هذه الطريقة الجديدة هي أن خطوط الأساس تصل إلى حالة ثابتة في غضون فترة أقصر من الزمن مما يقلل من احتمال أن يستيقظ الحيوان قبل الأوان من التخدير وأقل عرضة لتشكيل الفقاعة في الأقطاب الشعرية.

Protocol

يتبع هذا البروتوكول إرشادات رعاية الحيوانات الموضحة في بروتوكول دراسة الحيوانات الذي وافقت عليه لجنة رعاية الحيوان واستخدامه في المعهد الوطني للعيون. 1. استيراد بروتوكولات التحفيز الضوئي لDC-ERG ملاحظة: اتبع الإرشادات أدناه لاستيراد بروتوكولات تحفيز الضوء لـ D…

Representative Results

الشكل 2 هو عينة من مجموعة البيانات من miR-204 ko/ko cre/+ (KO الشرطي) وفئران النوع البري (WT). MiR-204 ko/ko cre/+ هي فئران مع خروج المغلوب المشروط من ميكرورنا 204 في ظهارة صبغة الشبكية. يتم إنشاء هذه الفئران عن طريق عبور الفئران miR-204 مفلوكس (التي تنتجها NEIGEF)22 مع VMD2-CRE الفئران2…

Discussion

الخطوات الهامة

يتطلب تسجيل DC-ERG الجيد أقطابًا كهربائية مستقرة خالية من الفقاعات التي تخلق القطع الأثرية والانجراف غير المرغوب فيه لأنها حساسة للغاية للتغيرات في درجة الحرارة والخروج. من الضروري أن يتم تحقيق خط أساس مستقر عندما يتم وضع الأقطاب الكهربائية في محلول ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

وقد دعم هذا العمل صناديق داخل الثقافات. الكتاب نعترف بصدق الدكتور شيلدون ميلر لتوجيهه العلمي ، والمشورة التقنية ، والخبرة في علم وظائف الأعضاء RPE والمرض. يشكر المؤلفان ميغان كوبرا وموظفي رعاية الحيوانات على إدارة مستعمرات الماوس، والدكتور تارون بانسال وريموند تشو ويوان وانغ على الدعم الفني.

Materials

Ag/AgCl (mouth) Electrode WPI Inc EP1 Mouth reference electrode for mouse
Ceramic Tile Sutter Instrument CTS Used to cut the glass capillary tube to an appropriate size
Cotton Tipped Cleaning Stick Puritan Medical Products 867-WC No Glue To be used as a spacer to improve the fit of the electrode holder assembly
Electroretinogram (ERG) System Diagnosys LLC E3 System Visual electrophysiology system to diagnose ophthalmic conditions in vision research and drug trials
Bunsen Burner Argos Technologies BW20002460 Or equivlaent to shape glass under flame
Glass Capillary Tube (1.5 mm) Sutter Instruments BF150-75 For filling with HBSS and making contact to the cornea
Hank’s Buffered Salt Solution (HBSS) Thermo Fisher Scientific Inc 14175-095 Commercially available. Maintain at RT
In-Line Filter Whatman 6722-5001 To protect vacuum pump from aerosols
Low Noise Cable for Microelectrode Holders WPI Inc 5372 Suggested for improving the length and placement of the cables and electrode holder assemblies
Magnetic Ball Joint WPI Inc 500871 For magnetically positioning the electrode holder assembly on the stage
MatLab Mathworks MatLab: For editing the analysis software
Matlab Curvefit Toolbox Mathworks Toolbox for MatLab (only required for editing the analysis software)
MatLab Compiler Mathworks Toolbox for MatLab (only required for editing and re-releasing the analysis software)
MatLab Runtime version 9.5 Mathworks R2018b (9.5) Required to run the analysis software: https://www.mathworks.com/products/compiler/matlab-runtime.html
Microelectrode Holders (45 degrees) WPI Inc MEH345-15 For holding the capillaries
Needle (25 ga) Covidien 8881250313 For filling the capillary tubes with HBSS
needle (ground) electrode Rhythmlink 13mm – one elctrode Subdermal needle electrode (ground) for mouse (13mm long, 0.4mm diameter needle, 1.5m leadwire)
Regulator/Power Conditioner Furman P-1800 Or equivalent to remove DC-offset from noise introduced through power line
Syringe (12 mL) Monoject 1181200777 For filling the capillary tubes with HBSS
T-clip Cole-Parmer 06852-20 For electrode holder assembly
Vacuum Desiccator Bel-Art 420120000 Clear polycarbonate bottom & cover
Pharmacological treatment
Lubricant eye gel Alcon 0078-0429-47 Helps lubricates corneal surface and maintain electrical contact with capillary electrodes
Phenylephrine Hydrochloride 2.5% Akorn 17478-201-15 Short acting mydriatic eye drops (for pupil dilation)
Proparacaine Hydrochloride 0.5% Akorn 17478-263-12 Local anesthetic for ophthalmic instillation
Tropicamide 0.5% Akorn 17478-101-12 Short acting mydriatic eye drops (for pupil dilation)
Xylazine AnaSed sc-362949Rx Analgesic and muscle relaxant
Zetamine (Ketamine HCl) VetOne 501072 Anesthetic for intramuscular injections

References

  1. Steinberg, R. H. Interactions between the retinal pigment epithelium and the neural retina. Documenta Ophthalmologica. 60 (4), 327-346 (1985).
  2. Sahu, B., Maeda, A. RPE Visual Cycle and Biochemical Phenotypes of Mutant Mouse Models. Methods in Molecular Biology. 1753, 89-102 (2018).
  3. Mazzoni, F., Safa, H., Finnemann, S. C. Understanding photoreceptor outer segment phagocytosis: use and utility of RPE cells in culture. Experimental Eye Resarch. 126, 51-60 (2014).
  4. Wimmers, S., Karl, M. O., Strauss, O. Ion channels in the RPE. Progress in Retinal Eye Research. 26 (3), 263-301 (2007).
  5. Gundersen, D., Orlowski, J., Rodriguez-Boulan, E. Apical polarity of Na,K-ATPase in retinal pigment epithelium is linked to a reversal of the ankyrin-fodrin submembrane cytoskeleton. Journal of Cell Biology. 112 (5), 863-872 (1991).
  6. Fletcher, E. L., et al. Studying age-related macular degeneration using animal models. Optometry and Vision Science. 91 (8), 878-886 (2014).
  7. Gu, S. M., et al. Mutations in RPE65 cause autosomal recessive childhood-onset severe retinal dystrophy. Nature Genetics. 17 (2), 194-197 (1997).
  8. Marlhens, F., et al. Mutations in RPE65 cause Leber’s congenital amaurosis. Nature Genetics. 17 (2), 139-141 (1997).
  9. Marmorstein, A. D., et al. the product of the Best vitelliform macular dystrophy gene (VMD2), localizes to the basolateral plasma membrane of the retinal pigment epithelium. Proceedings of the National Academy of Sciences U S A. 97 (23), 12758-12763 (2000).
  10. Chang, B. Mouse models for studies of retinal degeneration and diseases. Methods in Molecular Biology. 935, 27-39 (2013).
  11. Collin, G. B., et al. Mouse Models of Inherited Retinal Degeneration with Photoreceptor Cell Loss. Cells. 9 (4), (2020).
  12. Shrock, E., Güell, M. CRISPR in Animals and Animal Models. Progress in Molecular Biology and Translational Science. 152, 95-114 (2017).
  13. Smalley, E. CRISPR mouse model boom, rat model renaissance. Nature Biotechnology. 34 (9), 893-894 (2016).
  14. Benchorin, G., Calton, M. A., Beaulieu, M. O., Vollrath, D. Assessment of Murine Retinal Function by Electroretinography. Bio Protocol. 7 (7), (2017).
  15. Zhang, C., et al. Regulation of phagolysosomal activity by miR-204 critically influences structure and function of retinal pigment epithelium/retina. Human Molecular Genetics. 28 (20), 3355-3368 (2019).
  16. Samuels, I. S., et al. Light-evoked responses of the retinal pigment epithelium: changes accompanying photoreceptor loss in the mouse. Journal of Neurophysiology. 104 (1), 391-402 (2010).
  17. Wu, J., Marmorstein, A. D., Peachey, N. S. Functional abnormalities in the retinal pigment epithelium of CFTR mutant mice. Experimental Eye Research. 83 (2), 424-428 (2006).
  18. Wu, J., Peachey, N. S., Marmorstein, A. D. Light-evoked responses of the mouse retinal pigment epithelium. Journal of Neurophysiology. 91 (3), 1134-1142 (2004).
  19. Peachey, N. S., Stanton, J. B., Marmorstein, A. D. Noninvasive recording and response characteristics of the rat dc-electroretinogram. Visual Neuroscience. 19 (6), 693-701 (2002).
  20. Samuels, I. S., Bell, B. A., Pereira, A., Saxon, J., Peachey, N. S. Early retinal pigment epithelium dysfunction is concomitant with hyperglycemia in mouse models of type 1 and type 2 diabetes. Journal of Neurophysiology. 113 (4), 1085-1099 (2015).
  21. Marmorstein, L. Y., et al. The light peak of the electroretinogram is dependent on voltage-gated calcium channels and antagonized by bestrophin (best-1). Journal of General Physiology. 127 (5), 577-589 (2006).
  22. Zhang, C., et al. Invest. Ophtalmol. Vis. Sci. Annual Meeting for the Association for Research in Vision and Ophthalmology. , 3568 (2017).
  23. Iacovelli, J., et al. Generation of Cre transgenic mice with postnatal RPE-specific ocular expression. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 52 (3), 1378-1383 (2011).
  24. Wang, F. E., et al. MicroRNA-204/211 alters epithelial physiology. FASEB Journal. 24 (5), 1552-1571 (2010).
  25. He, L., Marioutina, M., Dunaief, J. L., Marneros, A. G. Age- and gene-dosage-dependent cre-induced abnormalities in the retinal pigment epithelium. American Journal of Pathology. 184 (6), 1660-1667 (2014).
  26. Gallemore, R. P., Steinberg, R. H. Light-evoked modulation of basolateral membrane Cl- conductance in chick retinal pigment epithelium: the light peak and fast oscillation. Journal of Neurophysiology. 70 (4), 1669-1680 (1993).
  27. Blaug, S., Quinn, R., Quong, J., Jalickee, S., Miller, S. S. Retinal pigment epithelial function: a role for CFTR. Documenta Ophthalmologica. 106 (1), 43-50 (2003).
  28. Gallemore, R. P., Griff, E. R., Steinberg, R. H. Evidence in support of a photoreceptoral origin for the “light-peak substance”. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 29 (4), 566-571 (1988).
  29. Shahi, P. K., et al. Abnormal Electroretinogram after Kir7.1 Channel Suppression Suggests Role in Retinal Electrophysiology. Science Reports. 7 (1), 10651 (2017).
  30. Li, Y., et al. Mouse model of human RPE65 P25L hypomorph resembles wild type under normal light rearing but is fully resistant to acute light damage. Human Molecular Genetics. 24 (15), 4417-4428 (2015).

Play Video

Cite This Article
Miyagishima, K. J., Zhang, C., Malechka, V. V., Bharti, K., Li, W. Direct-Coupled Electroretinogram (DC-ERG) for Recording the Light-Evoked Electrical Responses of the Mouse Retinal Pigment Epithelium. J. Vis. Exp. (161), e61491, doi:10.3791/61491 (2020).

View Video