Summary
Updegraff法はセルロース推定に最も広く用いられている方法です。本デモの主な目的は、植物バイオマスサンプル中のセルロース含有量を推定するための詳細なUpdegraffプロトコルを提供することです。
Abstract
セルロースは、光合成によって生成される地球上で最も豊富なポリマーであり、細胞壁の主な耐荷重成分です。細胞壁は、強さ、剛性、細胞増殖の速度と方向、細胞形状維持、および生物および無生物性ストレッサーからの保護を提供することにより、植物の成長と開発に重要な役割を果たしています。細胞壁は主にセルロース、リグニン、ヘミセルロースおよびペクチンで構成される。近年、植物細胞壁は第二世代バイオ燃料とバイオエネルギー生産を目標としている。具体的には、植物細胞壁のセルロース成分がセルロース系エタノールの製造に用いられる。バイオマスのセルロース含量の推定は、基本的な応用細胞壁の研究に不可欠です。Updegraff法は、植物バイオマスの結晶セルロース含有量の推定に、シンプルで堅牢で最も広く使用されている方法です。Updegraff試薬による処理時のアルコール不溶性粗細胞壁分率は、ヘミセルロースおよびリグニン画分を排除する。その後、Updegraff試薬耐性セルロース画分を硫酸処理を施し、セルロースホモポリマーを単量グルコース単位に加水分解する。回帰直線は、ブドウ糖の様々な濃度を使用して開発され、実験サンプル中のセルロース加水分解時に放出されるグルコースの量を推定するために使用されます。最後に、セルロース含有量は、色分け制即位アッセイによるグルコースモノマーの量に基づいて推定される。
Introduction
セルロースは、セルウォールの一次耐荷重成分で、一次セル壁と第二次セル壁の両方に存在します。細胞壁は植物細胞を取り囲む細胞外マトリックスであり、主にセルロース、リグニン、ヘミセルロース、ペクチン、マトリックスタンパク質で構成されています。植物バイオマスの約3分の1はセルロース1であり、強さ、剛性、細胞増殖の速度と方向、細胞形状維持、生物および無生物的ストレッサーからの保護を提供することにより、植物の成長と開発において重要な役割を果たしています。綿繊維は95%セルロース2含み、一方、樹木は植物種および臓器タイプ3に応じてセルロースの40%〜50%を含む。セルロースは、セロビオースの反復単位から構成され、β-1,4グリコシド結合により接続されたグルコース残基の二糖体4。セルロース系エタノールは、植物細胞壁5に存在するセルロースに由来するグルコースから製造される。セルロース繊維は、各マイクロフィブリルが500-15000グルコースモノマー1,6を有するコアユニットとして作用するいくつかのマイクロフィブリルから構成される。セルロースホモポリマーは、セルロース合成錯体(CSC)1,7の細胞膜埋め込みセルロース合成錯体によって合成される。個々のセルロース合成酵素A(CESA)タンパク質は、グルカン鎖と隣接するグルカン鎖を合成し、水素結合により結合して結晶セルロース1,8を形成する。セルロースは、2つの主要な形態を有する数種類の結晶形で存在する、セルロースIα及びセルロースIβを天然型9として挙げる。高等植物では、セルロースIβ型にセルロースが存在し、一方、低い植物のセルロースはIα形態10,11に存在する。全体的に、セルロースは、植物細胞壁に強度と剛性を付与する上で重要な役割を果たしています。
第一世代のバイオ燃料は、主に食料源であるトウモロコシデンプン、サトウキビ糖、ビート糖から製造され、第二世代のバイオ燃料は非食品植物バイオマス電池壁材料12からのバイオ燃料生産に焦点を当てている。結晶セルロース含有量の正確な推定は、セルロース生合成や細胞壁ダイナミクスの基礎研究だけでなく、応用バイオ燃料やバイオ製品の研究にも重要です。植物バイオマスにおけるセルロースの推定に向けて様々な方法が開発され、最適化されており、セルロース推定法として最も広く使用されているUpdegraff法です。セルロース推定の最初の報告された方法は、1908年13年にクロスとベバンによってであった。この方法は、硫酸ナトリウムによる代替塩素化および抽出の原理に基づいていた。しかしながら、CrossおよびBevan法の原本および改変プロトコルによって得られたセルロースは、かなりの量のキシランおよびマンナン14に加えて、リグニンの小さい分画の汚染を示した。セルロース分画からリグニンとヘミセルロースを除去するためにいくつかの変更にもかかわらず、クロスベバン法はセルロースと一緒にマンナンのかなりの量を保持しました。後に、クルシュナーの方法は、セルロース15を抽出するために硝酸とエタノールを採用することによって開発された。この方法では、総リグニンとペントサンの75%が除去されたが、真のセルロースの結果は、クロスとベバンの塩素化方法によって推定されたものと同じであると述べた。別の方法(ノーマンとジェンキンス)は、メタノールベンゼン、硫酸ナトリウム、および次亜塩素酸ナトリウムを使用してセルロース16を抽出することによって開発された。この方法はまた、リグニンの一部を保持しました (3%)セルロースの正確な推定につながるペントサンのかなりの量。その後、KieselとSemiganowskyは、80%の濃硫酸を用いてセルロースを加水分解する別のアプローチを用い、加水分解還元糖をベルトランの方法17によって推定した。2つの方法は、キーゼルとセミガノフスキーの方法に基づいて開発されたワクスマンとスティーブンス18とサロ14、19、また、以前の方法20と比較して4〜5%少ないセルロース含有量を生み出した。
Updegraff法は、結晶セルロース含有量の推定に最も広く使用されている方法です。この方法は、1969年21年にセルロースの測定のためにUpdegraffによって最初に説明された。Updegraff法は、クルシュナー法(硝酸の使用)、キーゼル法およびセミノフスキー法(硫酸を用いたグルコースモノマーへのセルロースの加水分解)をいくつかの改変と統合し、グルコースおよび結晶セルロース含有量の単純な着色推定のためのVilesとシルバーマンの即位アッセイを統合する。この方法の原理は、酢酸および硝酸(Updegraff試薬)を使用して、ヘミセルロースおよびリグニンを均質化した植物組織から排除し、さらに処理および推定のために酢酸/硝酸耐性セルロースを残す。酢酸/硝酸耐性セルロースは、セルロースをグルコースモノマーに分解するために67%の硫酸で処理され、放出されたグルコースモノマーは、即位アッセイ21、23によって推定される。元のUpdegraff法のいくつかの変更は、即位アッセイ24による手順およびセルロース推定を簡素化するために使用された。大まかに言えば、この方法は5つのフェーズに分けることができる。第1段階では、植物材料が調製される。第2段階では、セルロースが植物細胞壁の重要な構成要素であるため、粗細胞壁はバイオマス全体から分離される。後に、第3段階において、セルロースはUpdegraff試薬で処理することにより非セルロース細胞壁成分から分離される。第4段階では、酢酸/硝酸耐性セルロースは硫酸処理によりグルコース単量体に分解される。セルロースの硫酸処理は、グルコースモノマーと硫酸の反応から5-ヒドロキシメチルフルフラール化合物の生成をもたらす。最後に、最後の段階では、即位は、前のフェーズ25で生成されたフルフラール化合物で沸騰することによって緑がかった青い複合体を生成する。この即位の色測定法は、1942年にドレイウッドによって初めて使用されました。アントロンは、5-ヒドロキシメチルフルフラールなどの脱水物、酸性条件下でペントースおよびヘキソーゼのフルフラール化合物を識別する色素です。ヘキソスとの反応は、ペントース25と比較して強烈な色と良い応答を生成します。結合グルコースの量は、620nmの分光光度計の吸光度で測定され、緑がかった青色錯体の強度は、試料中の糖の量に直接比例する。測定された吸光度値をグルコース標準曲線回帰線と比較し、試料のグルコース濃度を算出した。測定したグルコース含有量を使用して、植物バイオマスのセルロース含有量を推定した。
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Protocol
1. 実験準備
- 乾燥した植物材料を細かい粉末に粉砕します。
- タンパク質可溶化バッファー (PSB): 1 M トリス (pH 8.8)、0.5 M エチレンジアミンテトラ酢酸 (EDTA) (pH 8.0) のストック溶液を準備し、それらをオートクレーブします。50 mMトリス、0.5 mM EDTA、10%のドデシル硫酸ナトリウム(SDS)を滅菌水中で最終的な濃度で、これらのストック溶液から新鮮なPSBバッファーを作ります。
- 70%エタノール(v/v)の100 mLを調製:70 mLの100%エタノールと30mLの無菌水を調製します。
- 100 mLのメタノールを調製:クロロホルムを1:1比(50 mL メタノールと50 mLクロロホルム)で調製します。
- 82.5 mLのアップデグラフ試薬を調製します。水の最終的な比率になるように硝酸の7.5 mLに80%酢酸の75 mLを加える:酢酸:硝酸は2:8:1(v/v)にあります。80%酢酸を調製するには、80mLの氷酢酸を20mLの滅菌水(v/v)に溶解します。
- 1 mg/mLのグルコース溶液の新鮮なストックを準備します。10mLの水(w/v)に10mgのグルコースを溶かします。
- 67%の硫酸(v/v)の100 mLを調製し、33mLの水に67mLの濃縮硫酸を加える。常にガラス瓶を使用し、ゆっくりと水に酸を加えます。このステップは発熱性である(熱を放出する)。したがって、氷の上にこの溶液を準備し、使用前に少なくとも2時間冷蔵庫で冷却します。
- 実験サンプルの各バッチに対して、0.2%の新しい即位(w/v)を準備します。0.2gの玉座を秤量し、アルミニウム箔で包んだガラス瓶に冷蔵濃縮硫酸100mLに溶解します。冷蔵庫で1~2時間お使いください。
注:実験当日に冷蔵庫に濃縮硫酸を事前に冷却し、新たな即位の調製は、グルコース含有量の正確な推定のために強くお勧めします。
植物バイオマス材料の製造
- 同じ成長条件、同じ開発段階、植物の同じ位置と同じタイプの組織(葉/茎/根)と温室で栽培された2ヶ月の古い綿実験ラインから植物バイオマスサンプルを収集します。
注:各サンプルに対して最低 3 つの生物学的複製を収集します。水で十分に洗い流し、根組織から汚れを取り除きます。 - 空気乾燥根組織は、水分を除去するために室温でペーパータオルに2日間(図1)を除去する。
注:任意の真菌汚染を防ぐためにセルロース推定のための空気乾燥所望の組織。 - ルート サンプルを個々のコンテナーに配置します。その後、49°Cのインキュベーターで10日間ラベルを付けて乾燥させます(材料表)。
注:あるいは、凍結乾燥機は、植物バイオマス材料に化学変化を起こすことなく、より短時間(1日または2日)で植物組織を乾燥させるために使用することができる。 - 乾燥したサンプルを小さく切り、液体窒素で凍結し、乳鉢と害虫、冷凍工場、またはバイオマスグラインダーを使用して均一な微粉末に粉砕する(図1)。
注:冷凍工場は3サイクルで10cpsの速度で使用されました。 - 接地された組織(図2)を収集し、細胞壁の抽出を進めます。
注: この時点で、サンプルを室温で気密容器に保管することで、プロセスを一時停止できます。
植物バイオマスからの粗細胞壁の抽出
注:植物細胞壁には、セルロース、リグニン、非セルロース成分、ペクチン、マトリックスタンパク質、フェノール化合物、および水26が含まれています。セルロースは細胞壁に存在するので、第一のステップは、植物バイオマス26の非細胞壁成分から細胞壁成分を分離するものである。
- 細胞壁抽出プロセスを開始する前に、個々のブランク2 mLチューブにラベルを付け、重量を量ります。
- さらに進む前に、ラボ ノートブックに空のチューブウェイトを書き留めます。
- ステップ2.5から粉末状組織の20mgを秤量し、あらかじめ計量した2mLチューブに移し、ラベルを付けます。
- タンパク質可溶化バッファー (PSB) (50 mM 塩酸塩 (HCl) バッファー pH 8.8、0.5 mM EDTA、および 10% ドデシル硫酸ナトリウム (SDS) を加え、タンパク質を可溶化します。室温(RT)で5分間25,200 x gで渦と遠心分離機。遠心後、上清を捨ててペレットを保存します。
注:タンパク質成分を分析する必要がある場合は、上清を保存することができます。 - ステップ 3.4 をさらに 2 回繰り返します。
- 保持されたペレットに、蒸留水と渦の1 mLを加えます。室温(RT)で5分間25,200xgの遠心分離機を使用し、上清を取り除きます。
- ステップ 3.6 をさらに 2 回繰り返します。
- 保存したペレットに70%エタノールの1 mLを加え、渦を加え、水浴/熱ブロックで70°Cで1時間加熱し、サンプルから可溶性成分とデンプンを除去します。RTで5分間25,200 x gの渦と遠心分離機を捨て、ペレットを保存します。
- ステップ 3.8 をもう一度繰り返します。
- ペレットに100%メタノールおよび渦の1mLを加える。室温(RT)で5分間25,200xgの遠心分離機を使用し、上清を取り除きます。
- ペレットと渦に1mLのクロロホルム/メタノール(クロロホルムとメタノールを1:1比で)加えます。25,200 x gでRTで5分間遠心分離機を使用し、上清を取り除く。メタノールおよびクロロホルム溶媒を添加すると、バイオマス27から脂質分画を可溶化除去する。
- ペレットに、100%アセトンと渦の1mLを加えます。室温で5分間インキュベートします。25,200 x gでRTで5分間遠心分離機を使用し、上清を取り除く。アセトンは、バイオマス28,29からクロロフィルや遊離脂肪酸などの顔料を除去する。
- ペレットを一晩37°Cで乾燥するか、真空乾燥によりさらに進行する。
注:乾燥ペレットは、結晶セルロース推定に使用される粗細胞壁です。この時点でプロセスを一時停止するか、サンプルを乾燥するための真空乾燥機を使用してさらに進むことができます。
4. 非セルロース成分を除去するためのUpdegraff試薬(酢酸および硝酸)による治療
注:プロトコルは、酸やその他の化学物質の使用を含みます。プロセス全体を通して、個人用保護具(PPE)を着用してください。
- 乾燥した粗細胞壁ペレットの5mgを新鮮な2mLねじキャップチューブに測定します。正確な重み (図 3)30に注意してください。
- この時点で正のコントロールを含めます。80%セルロース含量を得る正のコントロールとして、2mgの濾紙(材料表)を使用してください。
- 重量を量った5mgの細胞壁抽出物および陽性対照にUpdegraff試薬の1.5 mLを加える。渦を混ぜます。
注: 正のコントロールは、このステップ以降の実験サンプルと同じ方法で処理する必要があります。このステップは、適切な個人用保護具(PPE)とヒュームフードで行われるべきです。
注意:このステップは、サンプルの飛び散りやチューブの飛び出しを防ぐためにスクリューキャップチューブで行う必要があります。各サンプルの3つの生物学的複製と、陽性制御のための3つの複製を含めるべきである。 - 沸騰水槽で30分間100°Cで懸濁液を熱し、ベンチで10分間冷やします。25,200 x gで10分間の遠心分離器を10分間で、遠心分離によって上清を除去し、ペレットを保存します。
注:生成された廃棄物は、有機溶剤、硫酸、およびUpdegraff試薬(酢酸および硝酸)のために別々に収集する必要があります。酢酸と硝酸の廃棄物は、換気キャップで涼しい温度で保管し、爆発を防ぐために他の有機溶媒および他の酸と混合しないでください。 - ペレットに1mLの水を加えます。25,200 x gでRTで10分間遠心分離機を取り出し、チューブにアセトンを1 mL加えます。
- 25,200 x gで5分間の遠心分離機 RT. 上清の 1 mL を除去し、チューブにアセトン 1 mL を加え、25,200 x g で遠心分離機を 25,200 x g で RT で 5 分間追加します。
- 遠心分離後、上清をすべて取り除き、1mLのアセトンにペレットを懸濁します。室温で5分間チューブをインキュベートし、RTで5分間25,200 x gでスピンします。
- 上清を捨ててペレットを保存します。ペレットを一晩37°Cで乾燥させます(図3)。
注: この時点でプロセスを一時停止するか、さらに乾燥のための真空乾燥機を使用して続行し、次のステップに進むことができます。
5. グルコースモノマー単位を生成する酸によるセルロースの加水分解
- 乾燥ペレットに67%の硫酸1mLを加えます。ボルテックスは、酸中にペレットを完全に混合する。
- セルロースペレットを67%硫酸に溶解させるために1時間室温でチューブを振る。
注:代替として、67%硫酸中のセルロースペレットの可溶化は、シェーカーで30分のインキュベーションの後10分間、各サンプルの超音波処理によって改善することができます。超音波処理の後、サンプルはRTでシェーカーで再インキュベートすることができます。しかし、5mgの粗細胞壁抽出物から始めると、超音波処理を行わないセルロースペレットの完全な溶解性を観察した(図3)。この手順は、様々な植物バイオマスサンプル3に対してうまく機能しました。
6. セルロース含有率の測定と評価によるグルコース含有量の測定
- この段階では、セルロースは遊離グルコースモノマーの形態である。分光光度法により試料中に存在するグルコース量を測定することによりセルロースの量を決定する。
- ステップ5からサンプル10μLを取り、490μLの滅菌蒸留水に加え、各サンプルを500 μLに希釈します。
- 各チューブに0.2%の新たに調製した即位試薬の1 mLを加え、ボルテックスですぐに混合します。
- サンプルを100°Cで10分間沸騰させ、氷上で5分間冷却します。各サンプルの200 μLを96ウェルプレートの3つのウェルに移します。96ウェルプレートを分光光度計に積み込み、620nmで吸光度を測定します。
注:高温で沸騰する場合は、有害な化学物質の飛散を防ぎ、サンプルの損失を避けるために、ねじ込みチューブを使用してください。
7. グルコース標準曲線の調製
- グルコース標準を調製するには、10ミリグラムの無菌蒸留水に10mgのグルコースを溶解して1mg/mLグルコースの新鮮なストックを作ります。このストック溶液を20μL単位で20μL(0,20,40,60,80,100,120,140,160,180 μL)に加えて、無菌蒸留水(総体積1mL)に添加し、0μgから180μg/mL濃度のグルコース基準を調製します(図3)。無菌水を添加した後の各グルコース標準をボルテックス。
- これらの10の異なる濃度から、各グルコース濃度のアリコート500μLは、新鮮な2mLスクリューキャップチューブに。
- 各チューブに作りたての0.2%の玉座の1 mLを追加し、渦によってすぐに混ぜます。氷の上でインキュベートし、100°Cで10分間沸騰し、その後氷の上で5分間23分間インキュベーションを行います。
- 各規格の200 μLを3つの技術的複製のための96ウェルマイクロ力価板の3つの井戸に移し、620 nmで吸光度を測定する(図3)。
- 620 nmで正規化された吸光度値に対して異なるグルコース濃度(0〜180 μg/mL)をプロットすることにより、標準グルコース曲線を開発する(図7)。吸光度値から生成された回帰直線 Y= mx+c を使用して、準備されたサンプルのセルロース含量を計算します。
注:グルコース基準は、実験の各セットに対して新たに準備する必要があります。OD値が高すぎる/低い場合、これらの値が標準曲線吸光度値の範囲内に収まるようにグルコースの濃度を増加する必要があります。回帰直線は、サンプルの各バッチに使用されるグルコース基準に基づいて異なるmとc値を生成します。即位23の追加直後にチューブをミックス。この反応の発熱性のために、即位、希釈されたサンプルおよび調製された標準は、即位アッセイが行われるまで常に冷たく保たれていた。
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Representative Results
緑の家で栽培された綿の植物がこの研究のために選ばれました。セルロース含量の比較分析のために、2種類の実験用コットンを選択した。各実験ラインについて、3つの生物学的複製物から根組織を採取した。合計500mgの組織を均質化し、20mgの粗細胞壁抽出に使用した。その後、5mgの粗細胞壁抽出物を、セルロースからヘミセルロースおよびリグニンを除去するUpdegraff試薬処理に使用した。精製セルロースを硫酸処理により加水分解し、セルロースをグルコース単位に分解した。620nmの吸光度測定値の結果(補足表1)は、即位アッセイによるグルコース濃度の測定およびセルロース含有量の推定に用いた。3つの技術的複製の平均吸光度値を、0μgのグルコース濃度のブランク吸光度値を差し引いて正規化した。グルコース標準曲線は、散乱棒グラフを用いて生成した(図4)。
結果の回帰直線であるy = mx + cは、正規化された吸光度測定値を用いて抽出された試験サンプル内の未知のグルコース濃度を計算するために使用される。x(μg/μLの未知のグルコース濃度)を計算するために、式(x =正規化された吸光度-c/m)を用いた。標準グルコース曲線の回帰線からのc値およびm値(R2=0.99)をμg/μLでグルコース濃度を測定するために用いた。 その後、最終体積が500μLであるため、この値を希釈係数2で割り、さらに10μLサンプル体積で割ってμg/μLのグルコース濃度を測定します。算出値は5mgの細胞壁抽出物に対して、さらに5で割るか、または各実験試料に用いられたそれぞれの粗細胞壁量でmg当たりのグルコース濃度を得る。この値は、加水分解の過程で得られた水を補うためにさらに1.1で割る(グルコースは分子量180、水分子は分子量18を有し、したがって、グルコースモノマーを放出する過程で発生した水は、水分係数を分割して除去した、1.1)。得られた値に100を掛けて、結晶セルロースの含有量をパーセントで計算する(補足表1)。
セルロース含有量の結果は、それらが生物学的複製の間で一貫していることを示し、Updegraff法の技術的正確性を示唆している。また、2Dグラフを用いてその差をプロットした。これらの結果は、比較実験サンプル番号1および2におけるセルロース含有量の差を示した(図4)。サンプル1は43.4%を示し、サンプル2は28.12%を示し、この方法は実験サンプル間の違いを区別できることを示唆している。学生のt検定は、有意差をテストするために95%の有意水準で適用されました。
図1:根元におけるセルロース含量推定用綿花植物バイオマスの調製(A)温室栽培の植物を土壌から優しく引き出し、水で十分に洗浄した。植物根組織を分離し、ペーパータオルに保管し、2日間空気乾燥させた。(B)次に根組織を個別に標識された容器に移し、49°Cのインキュベーターで-10日間乾燥させた。(C)乾燥した組織を小片に切り、液体窒素で凍結し、粉砕バイアルに装填し、冷凍工場を用いて微粉末に粉砕した。(D)微細に接地した組織粉末を50 mLチューブに回収した。この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。
図2: Updegraff法に関わる主な手順のフローチャート (A) プロトコルの主要なステップの図示。(B) パネル (A) に表示された重要な手順について説明します。 この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。
図3:標準曲線用のグルコースの異なる濃度の調製. (A) グルコースの10 mgを滅菌蒸留水の10 mLに溶解させて、最終的な濃度のストックが1mg/mLになるように準備します。20 μL単位で1mg/mLのグルコースのストック溶液を、滅菌蒸留水で1mLの最終体積に加え、0 μgから180 μg/mLまでの異なる濃度のグルコースを調製します。(B)グルコースの異なる濃度を作るために添加される1mg/mLグルコースおよび滅菌蒸留水の量を示す表。 この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。
図4:620nmで異なるグルコース濃度の吸光度値を用いて生成したグルコース標準曲線(A)表は、620nmのそれぞれの正規化された吸光度値を有する0〜180μg/mLの範囲の異なるグルコース濃度を示す。(B) 吸光度値(A)から散布図を用いて生成されるグルコース標準曲線(C)実験試料1及び2における結晶セルロース含有量の相違を示す棒グラフ。この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。
補足表1:実験試料中のセルロース含有量の推定このテーブルをダウンロードするには、ここをクリックしてください。
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Discussion
綿繊維は綿実から生み出される天然繊維です。綿繊維は、繊維工業31における広範な用途を有する高結晶セルロース含有量を有するセルロース含有量2〜95%のセルロースを有する単一細胞である。綿繊維は、約95%のセルロースを含み、結晶セルロース含有量の推定の実証に綿根組織を用いた。綿根組織は、結晶セルロース含有量が適度に豊富であり、一般的に入手可能な植物バイオマスを表します。結晶セルロース含有量に必要な全細胞壁の量はわずか5mgであり、したがって、この方法は、異なる発達段階/組織特異的セルロース含有量推定における結晶セルロース含有量を推定するために採用することができる。硫酸の割合 (67%)また、グルコースモノマーにセルロースを分解し、超音波処理を必要とせずに完全に23セルロースを溶解する上で重要な役割を果たしています。サンプル損失は、結晶セルロースペレットが推定過程で異なるステップでチューブの底部に固体でないとしてUpdegraff処理後に一般的である。これは、Updegraff処理後の水およびアセトンの各ステップで少量の上清を除去することによって最小限に抑えることができます。さらに、試料と標準の即座の渦は、色の発達および規格の精度の向上において重要な役割を果たし、99.5%の決定係数(R2)値(図3)に至る。グルコース標準曲線はグルコース濃度を決定する際に重要であり、これは結晶セルロース含有量を推定するために使用される。したがって、グルコースの濃度は、必要な濃度の範囲に応じて調整することができる。実験値に適合する値の範囲に応じて、標準曲線は0〜100 μg/mLまたは0〜200 μg/mLから1000 μg/mL濃度のグルコースの範囲です。これにより、回帰値cおよびmがさらに変化し、結晶セルロース推定の精度が向上する。サンプルと標準の両方で、常に0.2%の新鮮な王位を作ることが重要です。統計測定のR-2乗は、回帰直線上のすべてのデータポイントの変動性を表します。同じ時間の間に即位を加えた後、標準とサンプルの両方を沸騰させる必要があります。既知のセルロース含量を有する陽性対照を含む事が常に重要である。効果的なデータ再現性を得るには、溶液調製(標準、標準曲線、Updegraff試薬)を含む全ての手順を正確に遵守する必要があります。
近年、セルロースは、セルロースエアロゾル、コンピュータ部品、セルロースエタノール32、33などの非繊維用途向けに探求されている。したがって、このメソッドは将来、幅広いアプリケーションを持つことになります。科学的進歩は、概念の理解、代替仮説の提案、既存の知識の提供/不理解の段階的な進歩によって行われます。同様の進展は、植物バイオマスにおけるセルロース含量の推定のための信頼できる方法の開発に見ることができる。細胞壁は複雑なマトリックスであり、Updegraff法は、純粋なセルロースからの非セルロース画分を順次に除去し、植物バイオマス中のセルロース含有量の正確な推定につながる。また、グルコース濃度を測定してセルロース含有量の推定を行う簡便な着色法により、この方法は高度に適応性と広く用いられている。現在の研究では、セルロースデータは、単一のラインから収集されたサンプルの異なる生物学的複製の間で一貫していた。したがって、この方法によって生成されるデータは、一貫した信頼性が高く、再現性があり、簡単な着色アッセイによってセルロース含有量を測定することが容易であることを示唆しています。
Updegraff法はセルロース推定に最も広く用いられている方法です。食品、木材、紙、繊維、バイオ燃料、衣服、化粧品、医薬品などのセルロースの産業応用の近年の拡大に伴い、植物バイオマスのセルロース含有量の正確な推定は、様々な用途に不可欠である。これはセルロース推定に最も広く使用されている方法ですが、再現性のあるデータを得るためにいくつかの予防措置を講じる必要があります。バイオマスサンプルは、セルロース含量の正確かつ再現性のある推定を得るために、同じサイズに粉砕する必要があります。グルコース標準曲線を生成する際に注意を払う必要があります。グルコース標準曲線調製に使用されるグルコース基準は、サンプル吸光度測定値に基づいて、標準曲線を調製するために使用されるグルコース濃度の範囲内に収まるように、増減すべきである。そうでなければ、mおよびc値が変化し、結晶セルロース含有量の不正確な推定をもたらす可能性がある。サンプルの各バッチの0.2%の新たな準備は、Updegraff法のもう一つの重要なステップです。セルロース含有量の正確な推定のために、作りたての0.2%の即位を使用することが不可欠です。
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Disclosures
著者らは、利益相反はないと宣言している。
Acknowledgments
私たちは、この研究の部分的なサポートのために植物土壌科学とコットン社の部門に感謝します。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Acetone | Fisher Chemical | A18-500 | Used in the protocol |
| Anthrone | Sigma Aldrich | 90-44-8 | For colorimetric assay |
| Centrifuge | Eppendorf | 5424 | For centrifugation |
| Chloroform | Mallinckrodt | 67-66-3 | Used in the protocol |
| Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) | Sigma Aldrich | 6381-92-6 | Used in the protocol |
| Ethanol | Millipore Sigma | EM-EX0276-4S | Used in the protocol |
| Filter paper | Whatman | 1004-090 | Positive control |
| Glacial acetic acid | Sigma | SKU A6283 | Used in the protocol |
| Heat block/ ThermoMixer F1.5 | Eppendorf | 13527550 | For controlled temperatures |
| Incubator | Fisherbrand | 150152633 | Used for drying plant sample |
| Measuring Scale | Mettler Toledo | 30243386 | For specific quantities |
| Methanol 100 % | Fisher Chemical | A412-500 | Used in the protocol |
| Microplate (96 well) | Evergreen Scientific | 222-8030-01F | For anthrone assay |
| Nitric acid | Sigma Aldrich | 695041 | Used in the protocol |
| Polypropylene Microvials (2 mL) / screw capped tubes | BioSpec Products | 10831 | For high temperatures |
| Spectrophotometer(Multimode Detector) | Beckmancoulter DTX880 | 1000814 | For measuring absorbances |
| Spex SamplePrep 6870 Freezer / Mill | Spex Sample Prep | 68-701-15 | For grinding plant tissues into fine powder |
| Sulphuric acid | J.T.Baker | 02-004-382 | Used in the protocol |
| Sodium dodecyl sulfate (SDS) | Sigma Aldrich | 151-21-3 | Used in the PSB buffer |
| Tubes (2 mL) | Fisher Scientific | 05-408-138 | Used in the protocol |
| Tris Hydrochloride | Sigma Aldrich | 1185-53-1 | Used in the PSB buffer |
| Ultrapure distilled water | Invitrogen | 10977 | Used in the protocol |
| Vacuum dryer (vacufuge plus) | Eppendorf | 22820001 | For drying samples |
| Vortex mixer | Fisherbrand | 14-955-151 | For mixing |
| Waterbath | Thermoscientific | TSGP02PM05 | For temperature controlled conditions at specific steps |
| Weighing Paper | Fisher Scientific | 09-898-12A | Used in the protocol |
References
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