Summary
Apresentamos detalhes de procedimentos laboratoriais para ativação in vitro livre de drogas (IVA) de folículos ovarianos para pacientes com disfunção ovariana grave. Este método poderia aumentar o número de oócitos recuperáveis por hiperestimulação ovariana e beneficiar a preservação da fertilidade para esses pacientes.
Abstract
A função ovariana diminui progressivamente durante o envelhecimento e em algumas condições fisioterológicas, incluindo anormalidade do karyótipo, doenças autoimunes, quimioterapia e radioterapia, bem como cirurgias ovarianas. Em mulheres solteiras com disfunção ovariana grave, a preservação da fertilidade é importante para futuras gestações. Embora a criopreservação de oócito seja um método estabelecido para a preservação da fertilidade, esses pacientes só poderiam preservar um número limitado de oócitos mesmo após a hiperestimulação ovariana, levando a estimulações repetidas para garantir oócitos suficientes para garantir a gravidez futura. Para resolver esse problema, desenvolvemos recentemente um procedimento de ativação in vitro (IVA) livre de drogas, que nos permite estimular estágios iniciais de folículos ovarianos a se desenvolverem até a fase do folículo pré-natural. Estes folículos pré-orais podem responder ao protocolo único de estimulação da gonadotropina, resultando em um aumento do número de oócitos recuperados por estimulação ovariana para criopreservação. O IVA livre de drogas compreendeu-se da abordagem cirúrgica e estimulação ovariana. Removemos uma parte do córtex de um ou ambos os ovários de pacientes sob cirurgia laparoscópica. Os tecidos cortical ovarianos foram cortados em pequenos cubos para interromper a via de sinalização do Hipopótamo e estimular o desenvolvimento de folículos em estágio inicial. Estes cubos foram enxertados ortotropicamente em ovários remanescentes, bem como sob a serosa de ambos os tubos de Falópio. Já publicamos o procedimento cirúrgico da IVA livre de drogas e o protocolo de estimulação ovariana subsequente, mas aqui apresentamos os detalhes dos métodos laboratoriais necessários para a IVA livre de drogas.
Introduction
A função ovariana diminui progressivamente durante o envelhecimento e algumas condições fisioterológicas, incluindo anormalidade do karyótipo, doenças autoimunes, terapias de quimioterapia e radiação e cirurgias ovarianas. A preservação da fertilidade é uma das melhores opções para mulheres solteiras com disfunção ovariana severa para preservar seu potencial para futura gravidez. Para a preservação da fertilidade, atualmente dois métodos estão disponíveis principalmente no campo onco-fertilidade. A criopreservação oócito é um procedimento bem estabelecido para a preservação da fertilidade e muitos casos de sucesso foram relatados1,2. Por outro lado, a criopreservação do tecido ovariano também foi estabelecida para preservação da fertilidade em pacientes com câncer, mas ainda é uma estratégia experimental3,4. Em ambos os métodos, são necessários múltiplos números de oócitos maduros para que a gravidez ocorra. Geralmente, pacientes com insuficiência ovariana prematura (POI), que se tornam amorréia antes dos 40 anos de idade, e mulheres de meia-idade com baixa reserva ovariana apresentaram baixa resposta ovariana (POR) à estimulação ovariana por produzir oócitos maduros5,6,7. Além disso, pacientes jovens com baixo número de folículos antral também mostraram POR para a estimulação ovariana7. Esses pacientes têm oócitos muito limitados mesmo após a hiperestimulação ovariana adequada, exigindo assim múltiplos procedimentos caros para garantir um número suficiente de oócitos para a gravidez.
A doação de oócitos seguida de fertilização in vitro (FIV) com a transferência de espermatozoides e embriões do marido (ET) é a única opção para esses pacientes POI e POR que têm dificuldades para obter seus próprios oócitos8,9,10. No entanto, a doação de oócitos é complicada por questões éticas, bem como complicações autoimunes e de gravidez11,12,13,14. Para resolver essas questões, deseja-se o estabelecimento do tratamento de infertilidade utilizando o próprio oócito dos pacientes. Para pacientes com POI, desenvolvemos a abordagem de ativação in vitro (IVA) para permitir o crescimento bem-sucedido do folículo e a geração de oócitos maduros, liderando uma série de gestações e partos15. No IVA, fragmentamos córtex ovariano após a remoção de ovários sob cirurgia laparoscópica e os cultivaram por dois dias para ativar folículos por drogas estimulantes de Akt e, em seguida, realizar enxerto heterotópico de volta em bolsas artificiais feitas sob a serosa de tubos de Falópio sob a segunda cirurgia laparoscópica15. Este procedimento promoveu o crescimento de folículos primordiais, primários e secundários após a fragmentação do córtex ovariano para promover a interrupção da sinalização de Hipopótamo16,seguido por dois dias de cultura com estimuladores de sinalização Akt17.
Em contraste com os casos graves de POI, os pacientes com reserva ovariana reduzida têm múltiplos folículos secundários. Como a interrupção da sinalização de Hipopótamo por si só é eficaz na promoção do crescimento secundário do folículo16,recentemente demonstramos gestações e entregas bem sucedidas para pacientes por usando o procedimento IVA livre de drogas envolvendo fragmentação cortical e enxerto ortotópico sem tratamento das drogas estimulantes Akt. IVA livre de drogas estimula o estágio inicial dos folículos ovarianos a se desenvolverem para o estágio do folículo pré-cirúrgico após apenas uma cirurgia e aumentou o número de oócitos recuperados para transferência de embriões de FIV15,18. A abordagem IVA livre de medicamentos tem várias vantagens em comparação com o nosso IVA original por 1) evitar a perda potencial de folículo durante a cultura, 2) minimizar a invasividade e os custos da segunda cirurgia, 3) envolvendo apenas repouso pós-cirurgia de curto prazo e 4) potencial de gravidez espontânea devido ao enxerto ortotópico. Recentemente publicamos um artigo em vídeo mostrando os procedimentos cirúrgicos do IVA19 sem drogas e protocolos detalhados de estimulação ovariana após a cirurgia20. Aqui, apresentamos detalhes dos métodos laboratoriais necessários para o IVA livre de drogas.
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Protocol
O consentimento informado por escrito foi obtido de cada paciente por com diminuição da reserva ovariana que se inscreveu no tratamento IVA livre de medicamentos. Este estudo foi aprovado pelo Comitê de Ética da Universidade Internacional de Saúde e Bem-Estar (nº 17-S-21). O ensaio clínico foi registrado sob o número UMIN000034464 e realizado de acordo com o Código de Ética da Associação Médica Mundial (Declaração de Helsinque).
1. Extração do córtex ovariano
- Remova parte do córtex ovariano (10 x 10 mm, 2-3 mm de espessura) de um ou ambos os ovários sob anestesia geral através de cirurgia laparoscópica como descrito anteriormente19,20.
- Coloque os córtex ovarianos coletados em um recipiente estéril contendo 10 mL de HTF modificado (mHTF) a 37 °C.
2. Fragmentação do córtex ovariano
NOTA: Antes da dissecação do córtex ovariano, aqueça mHTF a 37 °C. Mantenha condições estéreis durante todo o procedimento. Todas as ferramentas para este procedimento estão listadas na Tabela de Materiais.
- Coloque os córtex ovarianos coletados em um prato plástico contendo 5-10 mL de mHTF a 37 °C e coloque-os na placa de calor para manter o tecido a 37 °C (Figura 2A).
- Tire uma foto de cada córtex usando uma câmera digital com o nome do paciente antes de iniciar o próximo procedimento para vincular dados de fundo do paciente.
- Coloque um córtex individual em uma gaze estéril umedeçada com mHTF(Figura 2B).
NOTA: Aplique mHTF adicional com uma pipeta descartável na gaze para evitar que a superfície do córtex seja seca durante este procedimento. - Remova o tecido de medula residual onde parece rosa usando uma micro-tesoura para que a espessura do tecido atinja 1-2 mm(Figura 2C e D).
NOTA: Para evitar a perda de folículos em estágio inicial, não prepare as tiras corticais com menos de 1 mm de espessura, pois os folículos em estágio inicial estão localizados dentro de 1-2 mm da superfície do córtex ovariano21. - Disseque uma peça de tecido de 1 mm x 1 mm x 5 mm de cada tira cortical ovariana utilizando um bisturi fino e submeta-o à análise histológica para determinar a presença de folículos residuais como descrito anteriormente18 (Figura 2E).
NOTA: Os tecidos dissecados para histologia estão imersos em mHTF e mantêm-se a 4 °C até a fixação(Figura 2F, ver Passo 4). - Corte o córtex em tiras de 1mm x 1 mm x 10 mm usando um bisturi fino(Figura 2G).
NOTA: É mais fácil cortar pressionando o bisturi do que puxando-o. - Corte essas tiras de tecido em cubos pequenos de 1 mm x 1 mm(Figura 2H).
NOTA: Para evitar alterações de pressão osmótica no meio, adicione mHTF com moderação antes do autoenxerto tecidual.
3. Enxerto automático de fragmentos cortical ovarianos
- Abra o pacote da cânula IVA e coloque-a em uma cortina estéril.
- Enxágüe dentro da cânula IVA com mHTF aspirando e descarregando mHTF várias vezes.
- Aspire 100-200 μL de mHTF para encher a ponta da cânula IVA para evitar que os cubos corticais sequem durante o carregamento(Figura 3A).
- Carregue os cubos cortical na ponta da cânula IVA usando uma pinça fina (Figura 3B-E).
NOTA: O número de cubos corticais para carregamento depende do local de enxerto. Geralmente, 20-30 cubos podem ser transplantados em um ovário remanescente ortotrópico, enquanto 10-15 cubos podem ser transplantados em uma bolsa sob a serosa do tubo de Falópio. - Depois de carregar os cubos corticais, segure a ponta da cânula contendo os cubos corticais pelos dedos até transferir a cânula IVA para um cirurgião. Isso evitará que a temperatura do cubo diminua.
NOTA: Os detalhes do procedimento de autoenxerção sob cirurgia laparoscópica foram relatados anteriormente19. Para enxerto de cubos cortical ovariano, um dispositivo em forma de cânula (IVA cannula) foi desenvolvido pelo nosso colaborador, a Kitazato Corporation.
4. Análise histológica do córtex ovariano
NOTA: Para contar o número de folículos residuais, realize análise histológica conforme descritoanteriormente 15.
- Marque a superfície da tira cortical com um corante de marcação tecidual antes da fixação da amostra. Isso indicará o lado do córtex na tira para histologia.
- Fixar as tiras de tecido durante a noite a 4 °C usando a solução de Bouin.
NOTA: Para detectar folículos atreéticos, não recomendamos o uso de paraformaldeído para fixação para evitar o encolhimento do citoplasma oócito. - Desidratar e incorporar as tiras de tecido em parafina.
- Seção em série do bloco de parafina contendo a amostra de tecido.
- Manche cada seção usando hematoxilina e eosina para visualizar os folículos.
- Conte os folículos como descrito anteriormente17.
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Representative Results
Na primeira publicação da abordagem IVA15,transplantamos os cubos cortical ovariano um a um nos locais de enxerto sob cirurgia laparoscópica(Figura 1A). Como 100-150 cubos ovarianos foram usados, levou de 3 a 4 horas para enxerto de tecido sob cirurgia laparoscópica. Além disso, alguns cubos ovarianos foram perdidos antes do enxerto. Como a cânula IVA poderia transferir 20-30 cubos para um local de enxerto de uma só vez(Figura 1B),poderíamos encurtar o tempo de operação para 1-2 horas. Além disso, a cânula IVA poderia eliminar a perda de cubos cortical ovarianos durante a cirurgia.
Figura 1: A eficácia da cânula IVA. (A) Método anterior com transplante de cubos cortical ovariano um a um usando um fórceps. (B) O método atual com transplante de 20-30 cubos de uma só vez usando a cânula IVA. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 2: Dissecção do tecido ovariano para IVA livre de drogas. (A) Um pedaço de córtex ovariano é colocado em um prato plástico contendo mHTF a 37 °C.(B) Para remover tecidos residuais de medula, o córtex ovariano é colocado sobre uma gaze umedeçada. (C) O tecido de medula é removido usando uma microlasa fina. (D) A espessura do córtex a ser preparado é entre 1 a 2 mm. (E) Após a remoção do tecido medular, uma peça de tecido de 1 mm x 1 mm x 5 mm de cada tira cortical ovariana é dissecada para análise histológica. (F) O tecido dissecado é armazenado em tubo de 1,5 mL contendo mHTF a 4 °C até fixação para histologia. (G e H) O córtex ovariano é cortado em tiras de 1 mm x 1 mm x 10 mm, e depois cortado em cubos pequenos de 1 mm x 1 mm usando um bisturi fino. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 3: Enxerto automático de fragmentos cortical ovarianos. (A) Antes de carregar cubos, 100-200 μL de mHTF é aspirado a encher a ponta da cânula IVA para evitar que os cubos corticais sequem durante o carregamento(B-E) Carregando cubos corticais ovarianos na ponta da cânula IVA. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
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Discussion
Neste manuscrito, mostramos um protocolo laboratorial detalhado para IVA livre de drogas. O IVA sem medicamentos é uma nova abordagem do tratamento da infertilidade para pacientes com POR com diminuição da reserva ovariana para promover o crescimento de folículos secundários, resultando em produzir oócitos mais maduros após a estimulação ovariana e aumentando na gravidez bem sucedida20. Em 15 pacientes por com diminuição da reserva ovariana, essa abordagem alcançou uma gravidez espontânea, a transferência in vitro de fertilização-embrião permitiu quatro partos vivos, juntamente com uma gravidez contínua19.
Para a preparação do córtex ovariano enxerto, o tecido medular foi removido usando uma micro-tesoura com 1-2 mm de espessura. Anteriormente, demonstramos que os folículos primordiais, primários e secundários estavam localizados dentro da espessura de 1 mm da superfície do córtex ovariano nos pacientes com reserva ovariana normal21. Em pacientes com POI, descobrimos que os folículos secundários estavam localizados mais profundos que 1 mm, mas dentro de 2 mm da superfície do córtex ovariano21. Os folículos antrais são conhecidos por localizar em tecidos de medula21,mas nenhum folículo foi encontrado em tecidos de medula em pacientes poi21. Embora pacientes por com diminuição da reserva ovariana possam ter folículos antrales no tecido medular, folículos antral são difíceis de sobreviver após o enxerto devido à falta de comunicação dos vasos sanguíneos22. Por isso, determinamos que a espessura do córtex ovariano é de 1-2 mm e o passo crítico dentro do protocolo é não fazer com que as tiras corticais < 1-2 mm para evitar a perda de folículos residuais preciosos. Durante a preparação de tiras corticais e cubos, usamos mHTF, mas podemos usar meio semelhante que incluem tampão de ácido 4-(2-hidroxietila)-1-piperazineethanesulfonic ácido (HEPES).
Neste procedimento, transplantamos córtex ovariano após cortá-lo em cubosde 1 mm 315,20. Devido à dificuldade de manusear fragmentos tão pequenos para enxerto, cubos ovarianos de enxerto anterior, um a um sob a cirurgia laparoscópica, levaram de 3 a 4 horas com alguns cubos ocasionalmente perdidos durante a cirurgia. Após o desenvolvimento da cânula IVA, poderíamos encurtar o tempo de operação para 1-2 horas, resultando em minimizar a invasividade da cirurgia para permitir que o IVA livre de drogas se tornasse uma única cirurgia diária. Além disso, poderíamos eliminar a perda de cubos cortical de ovário durante a cirurgia. Devido ao número limitado de folículos no córtex ovariano em pacientes com diminuição da reserva ovariana, é importante evitar a perda de cubos corticais ovarianos. Se a cânula IVA não estiver disponível, você pode tentar encontrar uma cânula semelhante para poder usar sob cirurgia laparoscópica.
O declínio da função ovariana é progressivamente causado pelo envelhecimento e algumas condições fisiofisiológicas 23,24,25. Assim, em mulheres solteiras com disfunção ovariana grave, a preservação da fertilidade é importante para permitir a gravidez futura. Para esses pacientes, foram relatados os métodos de oócitos ou criopreservação de tecido ovariano26,27,28,29. Embora a criopreservação de oócito seja um método estabelecido para a preservação da fertilidade1,2, esses pacientes podem ter um número muito limitado de oócitos recuperáveis mesmo após a hiperestimulação ovariana devido à baixa reserva ovariana. Além disso, em pacientes com envelhecimento com disfunção ovariana, foi relatada alta incidência de anormalidades cromossômicas nos oócitos ovulados26,30. Isso leva à exigência de múltiplos procedimentos caros para garantir número suficiente de oócitos para garantir a gravidez. Para resolver esses problemas, desenvolvemos a abordagem IVA livre de drogas para aumentar o número de oócitos maduros para recuperação de oócitos. Como a criopreservação de oócitos não é mais um método experimental31,32, o IVA livre de drogas seguido pela criopreservação de oócito é esperado para ser um método promissor para a preservação da fertilidade em mulheres solteiras com disfunção ovariana grave. No entanto, estudos clínicos futuros usando os oócitos descongelados obtidos da IVA livre de drogas serão necessários para determinar a eficácia desta abordagem para a preservação da fertilidade em mulheres solteiras com disfunção ovariana grave.
Em conclusão, desenvolvemos o IVA livre de medicamentos como uma nova abordagem do tratamento da infertilidade para pacientes com POR com diminuição da reserva ovariana e mostramos o protocolo laboratorial detalhado para poder repetir nossos procedimentos. As limitações metodológicas da IVA livre de medicamentos são a dificuldade na previsão do número do folículo residual antes da cirurgia e também a incapacidade de avaliar a sobrevida do enxerto. A técnica laboratorial de IVA livre de drogas pode se tornar a base da aplicação futura da cultura do tecido ovariano para obter oócitos maduros sem enxerto.
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Disclosures
Os autores confirmam que não têm conflito de interesses.
Acknowledgments
Agradecemos a Tatsuji Ihana, Sachiyo Kurimoto, Kazuko Takahasih, Yuki Yoshizawa, Maho Arashi, Kentaro Fujita, Erina Kudo, Yuka Kurimoto e Mayuko Wakatsuki por apoiarem o procedimento IVA livre de drogas e prof. Aaron J.W. Hsueh (Stanford University School of Medicine, Stanford, CA) pela leitura e edição críticas do manuscrito. Agradecemos também a Rebecca Truman e Gregory Truman por inserirem a narração inglesa. Este estudo foi apoiado pela The Japan Society for the Promotion of Science (JSPS), Scientific Research B (19H03801) e Challenging Exploratory Research (18K19624).
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 4.5 onz specimen container | FALCON | 354013 | Other products may also be suitable |
| 60mm dish | FALCON | 351007 | Other products may also be suitable |
| 50 x 50 cm sterile drape | HOGY Medical | SR-823 | Any type of sterile produsts may also be suitable |
| Disposable pippete | FALCON | 357575 | Other products may also be suitable |
| Fine scissors, Curved | WPI | #14224-G | Although other products may also be suitable, we strongly recommend use this products |
| Hot plate | TOKAI HIT | TPiE-SP | Use at operation room to maintain the temperature of dishes containing ovarian tissue before transplantation |
| Human Serum Albumin Solution | Irvine Scientific | 9988 | Medium for handling ovarian tissue |
| IVA cannule | KITAZATO | 446030 IVA-6030E | Specific cannula for tissue autografting |
| KAI medical Disposable scalpel | WPI | #5 10-A | Although other products may also be suitable, we strongly recommend use this products |
| Micro scissors, Curved | WPI | #503364 | Although other products may also be suitable, we strongly recommend use this products |
| Modified HTF Medium-HEPES | Irvine Scientific | 90126 | Medium for handling ovarian tissue |
| Sterile gauze | Osaki Medical | 15004 | Any type of sterile produsts may also be suitable |
| Swiss Tweezers, Curved Tips | KAI | #504505 | Although other products may also be suitable, we strongly recommend use this products |
References
- Liang, T., Motan, T. Mature Oocyte Cryopreservation for Fertility Preservation. Advances in Experimental Medicine and Biology. 951, 155-161 (2016).
- Yoon, T. K., et al. Live births after vitrification of oocytes in a stimulated in vitro fertilization-embryo transfer program. Fertility and Sterility. 79 (6), 1323-1326 (2003).
- Donnez, J., et al. Livebirth after orthotopic transplantation of cryopreserved ovarian tissue. Lancet. 364 (9443), 1405-1410 (2004).
- Meirow, D., et al. Pregnancy after transplantation of cryopreserved ovarian tissue in a patient with ovarian failure after chemotherapy. New England Journal of Medicine. 353 (3), 318-321 (2005).
- De Vos, M., Devroey, P., Fauser, B. C.
- Scott, R. T., et al. Follicle-stimulating hormone levels on cycle day 3 are predictive of in vitro fertilization outcome. Fertility and Sterility. 51 (4), 651-654 (1989).
- Ferraretti, A. P., et al. ESHRE consensus on the definition of 'poor response' to ovarian stimulation for in vitro fertilization: the Bologna criteria. Human Reproduction. 26 (7), 1616-1624 (2011).
- Huhtaniemi, I., et al. Advances in the Molecular Pathophysiology, Genetics, and Treatment of Primary Ovarian Insufficiency. Trends in Endocrinology and Metabolism. 29 (6), 400-419 (2018).
- Męczekalski, B., Maciejewska-Jeske, M., Podfigurna, A. Reproduction in premature ovarian insufficiency patients - from latest studies to therapeutic approach. Prz Menopauzalny. 17 (3), 117-119 (2018).
- Baker, V. Life plans and family-building options for women with primary ovarian insufficiency. Seminars in Reproductive Medicine. 29 (4), 362-372 (2011).
- Englert, Y., Govaerts, I. Oocyte donation: particular technical and ethical aspects. Human Reproduction. 13, Suppl 2 90-97 (1998).
- Englert, Y., Rodesch, C., Laruelle, C., Govoerts, I. Oocyte donation: ethical aspects related to the donor. Contraception, Fertilite, Sexualite. 25 (3), 251-257 (1997).
- Storgaard, M., et al. Obstetric and neonatal complications in pregnancies conceived after oocyte donation: a systematic review and meta-analysis. BJOG: An International Journal of Obstetrics and Gynaecology. 124 (4), 561-572 (2017).
- Storgaard, M., Malchau, S., Loft, A., Larsen, E., Pinborg, A. Oocyte donation is associated with an increased risk of complications in the pregnant woman and the fetus. Ugeskrift for Laeger. 179 (11), (2017).
- Kawamura, K., et al. Hippo signaling disruption and Akt stimulation of ovarian follicles for infertility treatment. Proceedings of the National Academy of Sciences. 110 (43), 17474-17479 (2013).
- Hsueh, A. J., Kawamura, K., Cheng, Y., Fauser, B. C.
- Li, J., et al. Activation of dormant ovarian follicles to generate mature eggs. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 107 (22), 10280-10284 (2010).
- Suzuki, N., et al. Successful fertility preservation following ovarian tissue vitrification in patients with primary ovarian insufficiency. Human Reproduction. 30 (3), 608-615 (2015).
- Tanaka, Y., Hsueh, A. J., Kawamura, K. Surgical approaches of drug-free in activation and laparoscopic ovarian incision to treat patients with ovarian infertility. Fertility and Sterility. , (2020).
- Kawamura, K., Ishizuka, B., Hsueh, A. J. W. Drug-free in-vitro activation of follicles for infertility treatment in poor ovarian response patients with decreased ovarian reserve. Reproductive Biomedicine Online. 40 (2), 245-253 (2020).
- Haino, T., et al. Determination of Follicular Localization in Human Ovarian Cortex for Vitrification. Journal of Adolescent and Young Adult Oncology. 7 (1), 46-53 (2018).
- Baird, D. T., Webb, R., Campbell, B. K., Harkness, L. M., Gosden, R. G. Long-term ovarian function in sheep after ovariectomy and transplantation of autografts stored at -196 C. Endocrinology. 140 (1), 462-471 (1999).
- Qin, Y., Jiao, X., Simpson, J. L., Chen, Z. J. Genetics of primary ovarian insufficiency: new developments and opportunities. Human Reproduction Update. 21 (6), 787-808 (2015).
- Domniz, N., Meirow, D. Premature ovarian insufficiency and autoimmune diseases. Best Practice & Research: Clinical Obstetrics & Gynaecology. 60, 42-55 (2019).
- Laven, J. S.
- Grynberg, M., et al.
- Tomao, F., Spinelli, G. P., Panici, P. B., Frati, L., Tomao, S. Ovarian function, reproduction and strategies for fertility preservation after breast cancer. Critical Reviews in Oncology/Hematology. 76 (1), 1-12 (2010).
- Kim, S., Lee, Y., Lee, S., Kim, T. Ovarian tissue cryopreservation and transplantation in patients with cancer. Obstetrics & Gynecology Science. 61 (4), 431-442 (2018).
- Donnez, J., Dolmans, M. M. Ovarian tissue freezing: current status. Current Opinion in Obstetrics and Gynecology. 27 (3), 222-230 (2015).
- Wu, R. C., Kuo, P. L., Lin, S. J., Liu, C. H., Tzeng, C. C. X chromosome mosaicism in patients with recurrent abortion or premature ovarian failure. Journal of the Formosan Medical Association. 92 (11), 953-956 (1993).
- De Munck, N., Vajta, G. Safety and efficiency of oocyte vitrification. Cryobiology. 78, 119-127 (2017).
- Argyle, C. E., Harper, J. C., Davies, M. C. Oocyte cryopreservation: where are we now. Human Reproduction Update. 22 (4), 440-449 (2016).
