Summary

Elektriske og magnetiske feltenheder til stimulering af biologisk væv

Published: May 15, 2021
doi:

Summary

Denne protokol beskriver den trinvise proces til opbygning af både elektriske og magnetiske stimulatorer, der bruges til at stimulere biologiske væv. Protokollen indeholder en retningslinje til at simulere beregningsmæssigt elektriske og magnetiske felter og fremstilling af stimulatorenheder.

Abstract

Elektriske felter (EF’er) og magnetfelter (MF’er) er i vid udstrækning blevet brugt af vævsteknik til at forbedre celledynamik såsom spredning, migration, differentiering, morfologi og molekylær syntese. Variabler sådanne stimuli styrke og stimuleringstider skal dog overvejes, når man stimulerer enten celler, væv eller stilladser. I betragtning af at EF’er og MF’er varierer afhængigt af cellulær respons, er det fortsat uklart, hvordan man opbygger enheder, der genererer tilstrækkelige biofysiske stimuli for at stimulere biologiske prøver. Faktisk er der mangel på dokumentation for beregning og distribution, når biofysiske stimuli anvendes. Denne protokol er fokuseret på design og fremstilling af enheder til at generere EF’er og MF’er og implementering af en beregningsmetode til at forudsige biofysisk stimulifordeling i og uden for biologiske prøver. EF-enheden bestod af to parallelle elektroder i rustfrit stål placeret øverst og nederst i biologiske kulturer. Elektroder blev forbundet til en oscillator for at generere spændinger (50, 100, 150 og 200 Vp-p) ved 60 kHz. MF-enheden bestod af en spole, som blev fyldt med energi med en transformer til at generere en strøm (1 A) og spænding (6 V) ved 60 Hz. En polymethyl methacrylat støtte blev bygget for at finde de biologiske kulturer i midten af spolen. Den beregningsmæssige simulering belyste den homogene fordeling af EF’er og MF’er i og uden for biologisk væv. Denne beregningsmæssige model er et lovende værktøj, der kan ændre parametre som spændinger, frekvenser, vævsmorfologier, godt pladetyper, elektroder og spolestørrelse for at estimere EF’erne og MF’erne for at opnå en cellulær respons.

Introduction

EF’er og MF’er har vist sig at ændre celledynamik, stimulere spredning og øge syntesen af de vigtigste molekyler forbundet med den ekstracellulære matrix af væv1. Disse biofysiske stimuli kan anvendes på forskellige måder ved hjælp af specifikke indstillinger og enheder. For så vidt angår anordninger til ledningsproduktion, anvender direkte koblingsstimulatorer elektroder, der er i kontakt med biologiske prøver in vitro eller implanteret direkte i væv fra patienter og dyr in vivo2; Der er dog stadig begrænsninger og mangler, der omfatter utilstrækkelig biokompatibilitet fra elektroderne i kontakt, ændringer i pH-niveauet og niveauet for molekylær ilt1. Tværtimod genererer indirekte koblingsanordninger EF’er mellem to elektroder, som placeres parallelt med biologiske prøver3, hvilket giver en ikke-invasiv alternativ teknik til at stimulere biologiske prøver og undgå direkte kontakt mellem væv og elektroder. Denne type enhed kan ekstrapoleres til fremtidige kliniske applikationer til at udføre procedurer med minimal invasion til patienten. I forhold til enheder, der genererer MF’er, skaber induktive koblingsstimulatorer en tids varierende elektrisk strøm, der strømmer gennem en spole, der er placeret omkringcellekulturer 4,5. Endelig er der kombinerede enheder, der bruger EF’er og statiske MF’er til at generere forbigående elektromagnetiske felter1. I betragtning af at der er forskellige konfigurationer til at stimulere biologiske prøver, er det nødvendigt at overveje variabler som spænding og frekvens, når biofysiske stimuli anvendes. Spænding er en vigtig variabel, da den påvirker adfærden af biologiske væv; for eksempel har det vist sig, at cellemigration, orientering og genekspression afhænger af amplitudsen af anvendt spænding3,6,7,8,9,10. Frekvens spiller en vigtig rolle i biofysisk stimulation, da det har vist sig, at disse forekommer naturligt in vivo. Det er blevet påvist, at høje og lave frekvenser har gavnlige virkninger på cellerne. især i cellemembranspænding-gated calciumkanaler eller endoplasmisk reticulum, som udløser forskellige signalveje på intracellulært niveau1,7,11.

Ifølge ovennævnte består en anordning til produktion af EF’er af en spændingsgenerator, der er forbundet med to parallelle kondensatorer12. Denne enhed blev implementeret af Armstrong et al. for at stimulere både den proliferative hastighed og den molekylære syntese af chondrocytter13. En tilpasning af denne enhed blev udført af Brighton et al., der modificerede cellekulturens brøndplader ved at bore deres top- og bundlåg. Huller blev fyldt med dæksløtninger, hvor de nederste briller blev brugt til at dyrke biologiske væv. Elektroder blev placeret på hvert dækslør for at generereEF’er 14. Denne enhed blev brugt til elektrisk at stimulere chondrocytter, osteoblaster og brusk explants, viser en stigning i cellespredning14,15,16 og molekylær syntese3,17. Enheden designet af Hartig et al. bestod af en bølgegenerator og en spændingsforstærker, som var forbundet til parallelle kondensatorer. Elektroder blev lavet af rustfrit stål af høj kvalitet placeret i en isolerende sag. Enheden blev brugt til at stimulere osteoblaster, der viser en betydelig stigning i spredning og protein sekretion18. Den anordning, der anvendes af Kim et al. bestod af en bifasisk strøm stimulator chip, som blev bygget ved hjælp af en fremstillingsproces af komplementære halvledere af højspændingsmetaloxid. En kulturbrøndplade blev designet til at kulturceller over en ledende overflade med elektrisk stimulation. Elektroder var belagt med guld over siliciumplader19. Denne anordning blev brugt til at stimulere osteoblaster, der viser en stigning i spredning og syntese af den vaskulære endotel vækstfaktor19, og stimulere produktionen af alkalisk fosfatase aktivitet, calcium deposition og knogle morfogene proteiner20. På samme måde blev denne anordning brugt til at stimulere den proliferative hastighed og ekspression af vaskulær endotelvækstfaktor for humane knoglemarvs mesenchymale stamceller21. Enheden designet af Nakasuji et al. bestod af en spændingsgenerator forbundet til platinplader. Elektroder blev bygget til at måle det elektriske potentiale på 24 forskellige punkter. Denne enhed blev brugt til at stimulere chondrocytter, der viser, at EF’er ikke ændrede cellemorfologi og øget spredning og molekylær syntese22. Den anordning, der anvendes af Au et al. bestod af et glaskammer udstyret med to kulstofstænger forbundet til en hjertestimulator med platintråde. Denne stimulator blev brugt til at stimulere kardiomyocytter og fibroblaster, forbedre celleforlængelse og fibroblastjustering23.

Forskellige MF-enheder er fremstillet på basis af Helmholtz-spoler for at stimulere flere typer biologiske prøver. For eksempel har Helmholtz spoler blevet brugt til at stimulere spredning og molekylær syntese af chondrocytter24,25, forbedre proteoglycan syntese af ledbrusk explants26, forbedre genopregulering relateret til knogledannelse af osteoblast-lignende celler27, og øge spredning og molekylære udtryk for endotelceller28. Helmholtz spoler generereR MF’er i to spoler placeret foran den anden. Spolerne skal placeres med en afstand svarende til spolernes radius for at sikre en homogen MF. Ulempen ved at bruge Helmholtz spoler ligger i spoledimensionerne, fordi de skal være store nok til at generere den krævede MF-intensitet. Desuden skal afstanden mellem spolerne være tilstrækkelig til at sikre en ensartet fordeling af MF’er omkring biologisk væv. For at undgå problemer forårsaget af Helmholtz spoler, forskellige undersøgelser har været fokuseret på solenoid spoler fremstilling. Solenoid spoler er baseret på et rør, som er sår med kobbertråd til at generere MF’er. Kobbertråd indgange kan tilsluttes direkte til stikkontakten eller en strømforsyning til energi til spolen og skabe MF’er i midten af solenoid. Jo flere sving spolen har, jo større MF genereret. MF-størrelsen afhænger også af den spænding og strøm, der påføres for at give spolen29energi. Solenoid spoler er blevet brugt til at stimulere magnetisk forskellige slags celler som HeLa, HEK293 og MCF730 eller mesenchymale stamceller31.

Anordninger, der anvendes af forskellige forfattere, har hverken taget hensyn til elektrodernes tilstrækkelige størrelse eller den korrekte længde af spolen til homogent at distribuere både EF’er og MF’er. Desuden genererer enheder faste spændinger og frekvenser, hvilket begrænser deres anvendelse til at stimulere specifikke biologiske væv. Derfor udføres der i denne protokol en beregningssimuleringsretningslinje for at simulere både kapacitive systemer og spoler for at sikre homogen fordeling af EF’er og MF’er over biologiske prøver, så kanteffekten undgås. Derudover er det vist, at udformningen af elektroniske kredsløb generere spændinger og frekvens mellem elektroderne og spolen, skabe EF’er og MF’er, der vil overvinde begrænsninger forårsaget af impedans af cellekulturen godt plader og luft. Disse modifikationer vil gøre det muligt at skabe ikke-invasive og adaptive bioreaktorer for at stimulere ethvert biologisk væv.

Protocol

1. Simulering af EF’er og MF’er BEMÆRK: Simulering af EF’er og MF’er blev udført i COMSOL Multiphysics. Vælg en aksemetrisk 2D-konfiguration, der repræsenterer både domæner elektrisk og magnetisk. I den fysiske konfiguration skal du vælge enten den elektriske strømgrænseflade til beregning af EF’er i parallelle elektroder eller magnetfeltgrænsefladen til beregning af MF’er omkring spoler. I undersøgelseskonfigurationen …

Representative Results

BeregningssimuleringFordelingen af EF’er og MF’er fremgår af figur 3. På den ene side var det muligt at observere den homogene fordeling af EF’er i kapacitive systemet (figur 3A). Ef blev plottet til at observere feltets størrelse i den biologiske prøve (Figur 3B). Denne simulering var nyttig til at parametrisere elektrodernes størrelse og fremstille dem for at undgå kanteffekten. På den anden side var de…

Discussion

Behandlinger, der anvendes til at helbrede forskellige patologier, der påvirker humane væv er farmakologiske behandlinger32 eller kirurgiske indgreb33, som søger at lindre smerter lokalt eller erstatte berørte væv med explants eller transplantationer. For nylig er autolog celleterapi blevet foreslået som en alternativ behandling til behandling af skadet væv, hvor celler isoleres fra patienten og udvides gennem in vitro-teknikker, der skal implanteres på skadesstedet…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne takker den finansielle støtte fra “Fondo Nacional de Financiamiento para la Ciencia, la Tecnología, y la Innovación -Fondo Francisco José de Caldas- Minciencias” og Universidad Nacional de Colombia gennem tilskuddet nr. 80740-290-2020 og den støtte, som Valteam Tech – Research and Innovation modtog for at levere udstyr og teknisk støtte i videoens udgave.

Materials

Electrical stimulator
Operational amplifier Motorola LF-353N —-
Quantity: 1
Resistors —- —- 22 kΩ
Quantity: 1
Resistors —- —- 10 kΩ
Quantity: 3
Resistors —- —- 2.6 kΩ
Quantity: 2
Resistors —- —- 2.2 kΩ
Quantity: 1
Resistors —- —- 1 kΩ
Quantity: 1
Resistors —- —- 220 Ω
Quantity: 2
Resistors —- —- 22 Ω
Quantity: 5
Resistors —- —- 10 Ω
Quantity: 1
Resistors —- —- 6.8 Ω
Quantity: 1
Resistors —- —- 3.3 Ω
Quantity: 2
Polyester capacitors —- —- 1 nF
Quantity: 2
Polyester capacitors —- —- 100 nF
Quantity: 1
VHF Band Amplifier Transistor JFET Toshiba 2SK161 —-
Quantity: 1
Power transistor BJT NPN Mospec TIP 31C —-
Quantity: 1
Zener diode Microsemi 1N4148 —-
Quantity: 1
Switch Toogle Switch SPDT – T13 —-
Quantity: 3
Toroidal ferrite core Caracol —- T*22*14*8
Quantity: 1
Cooper wire Greenshine —- AWG – 24
Quantity: 1
Relimate header with female housing ADAFRUIT —- 8 pin connectors
Quantity: 1
Relimate header with female housing ADAFRUIT —- 2 pin connectors
Quantity: 1
Female plug terminal connector JIALUN —- 4mm Lantern Plugs (Plug + Socket) 15 A
Quantity: 1
Aluminum Heat Sink AWIND —- For TIP 31C transistor
Quantity: 1
Led CHANZON —- 5 mm red
Quantity: 1
Integrated circuit socket connector Te Electronics Co., Ltd. —- Double row 8-pin DIP
Quantity: 1
3 pin connectors set STAR —- JST PH 2.0
Quantity: 3
2 pin screw connectors STAR —- For PCB
Quantity: 1
3 pin screw connectors STAR —- For PCB
Quantity: 1
Banana connector test lead JIALUN —- P1041 – 4 mm – 15 A
Quantity: 7
Bullet connectors to banana plug charge lead JIALUN —- 4 mm male-male/female-female adapters – 15 A
Quantity: 1
Case —- —- ABS
Quantity: 1
Electrodes —- —- Stainless – steel
Quantity: 2
Electrode support —- —- Teflon
Quantity: 2
Printed circuit board Quantity: 1
Magnetic stimulator
Cooper wire Greenshine —- AWG – 18
Quantity: 1
AC power plugs —- —- 120 V AC – 60 Hz
Quantity: 1
Banana female connector test lead JIALUN —- 1Set Dual Injection – 4 mm – 15 A
Quantity: 2
Banana male connector test lead JIALUN —- 1Set Dual Injection – 4 mm 15 A
Quantity: 1
Cell culture well plate support —- —- PMMA
Quantity: 1
Fuse Bussmann 2A —-
Quantity: 1
Transformer —- —- 1A – 6 V AC
Quantity: 1
Tube —- —- PVC
Quantity: 1
Variable rheostat MCP BXS150 10 Ω
Quantity: 1
General equipment
Digital dual source  PeakTech DG 1022Z 2 x 0 – 30 V / 0 – 5 A CC / 5 V / 3 A fijo
Quantity: 1
Digital Oscilloscope Rigol DS1104Z Plus 100 MHz, bandwidth, 4 channels
Quantity: 1
Digital multimeter Fluke F179 Voltage CC – CA (1000 V). Current CC – CA 10 A. Frequency 100 kHz
Quantity: 1

References

  1. Balint, R., Cassidy, N. J., Cartmell, S. H. Electrical Stimulation: A Novel Tool for Tissue Engineering. Tissue Engineering Part B: Reviews. 19 (1), 48-57 (2013).
  2. Ercan, B., Webster, T. J. The effect of biphasic electrical stimulation on osteoblast function at anodized nanotubular titanium surfaces. Biomaterials. 31 (13), 3684-3693 (2010).
  3. Brighton, C., Wang, W., Clark, C. The effect of electrical fields on gene and protein expression in human osteoarthritic cartilage explants. The Journal of Bone and Joint Surgery-American. 90 (4), 833-848 (2008).
  4. Baerov, R. M., Morega, A. M., Morega, M. Analysis of magnetotherapy effects for post-traumatic recovery of limb fractures. Revue Roumaine des Sciences Techniques- Série électrotechnique et énergétique. 65 (1-2), 145-150 (2020).
  5. Escobar, J. F., et al. In Vitro Evaluation of the Effect of Stimulation with Magnetic Fields on Chondrocytes. Bioelectromagnetics. 41 (1), 41-51 (2019).
  6. Brighton, C., Wang, W., Clark, C. Up-regulation of matrix in bovine articular cartilage explants by electric fields. Biochemical and Biophysical Research Communications. 342 (2), 556-561 (2006).
  7. Xu, J., Wang, W., Clark, C., Brighton, C. Signal transduction in electrically stimulated articular chondrocytes involves translocation of extracellular calcium through voltage-gated channels. Osteoarthritis and Cartilage. 17 (3), 397-405 (2009).
  8. Xia, Y., et al. Magnetic field and nano-scaffolds with stem cells to enhance bone regeneration. Biomaterials. 183, 151-170 (2018).
  9. Richter, A., Bartoš, M., Ferková, &. #. 3. 8. 1. ;. Physical Analysis of Pulse Low-Dynamic Magnetic Field Applied in Physiotherapy BT. World Congress on Medical Physics and Biomedical Engineering 2018. , 239-245 (2019).
  10. Miyakoshi, J. Effects of static magnetic fields at the cellular level. Progress in Biophysics and Molecular Biology. 87, 213-223 (2005).
  11. Zhang, K., Guo, J., Ge, Z., Zhang, J. Nanosecond Pulsed Electric Fields (nsPEFs) Regulate Phenotypes of Chondrocytes through Wnt/β-catenin Signaling Pathway. Scientific Reports. 4 (5836), 1-8 (2014).
  12. Brighton, C. T., Unger, A. S., Stambough, J. L. In vitro growth of bovine articular cartilage chondrocytes in various capacitively coupled electrical fields. Journal of Orthopaedic Research. 2 (1), 15-22 (1984).
  13. Armstrong, P. F., Brighton, C., Star, A. M. Capacitively coupled electrical stimulation of bovine growth plate chondrocytes grown in pellet form. Journal of Orthopaedic Research. 6 (2), 265-271 (1988).
  14. Brighton, C., Townsend, P. Increased cAMP production after short-term capacitively coupled stimulation in bovine growth plate chondrocytes. Journal of Orthopaedic Research. 6 (4), 552-558 (1988).
  15. Brighton, C. T., Jensen, L., Pollack, S. R., Tolin, B. S., Clark, C. Proliferative and synthetic response of bovine growth plate chondrocytes to various capacitively coupled electrical fields. Journal of Orthopaedic Research. 7 (5), 759-765 (1989).
  16. Brighton, C. T., Okereke, E., Pollack, S. R., Clark, C. In vitro bone-cell response to a capacitively coupled electrical field. The role of field strength, pulse pattern, and duty cycle. Clinical Orthopaedics and Related Research. 285, 255-262 (1992).
  17. Wang, W., Wang, Z., Zhang, G., Clark, C., Brighton, C. T. Up-regulation of chondrocyte matrix genes and products by electric fields. Clinical Orthopaedics and Related Research. 427, 163-173 (2004).
  18. Hartig, M., Joos, U., Wiesmann, H. P. Capacitively coupled electric fields accelerate proliferation of osteoblast-like primary cells and increase bone extracellular matrix formation in vitro. European Biophysics Journal. 29 (7), 499-506 (2000).
  19. Kim, I. S., et al. Biphasic electric current stimulates proliferation and induces VEGF production in osteoblasts. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) – Molecular Cell Research. 1763 (9), 907-916 (2006).
  20. Kim, I., et al. Novel Effect of Biphasic Electric Current on In Vitro Osteogenesis and Cytokine Production in Human Mesenchymal Stromal Cells. Tissue Engineering Part A. 15, 2411-2422 (2009).
  21. Kim, I., et al. Novel action of biphasic electric current in vitro osteogenesis of human bone marrow mesenchymal stromal cells coupled with VEGF production. Bone. 43, 43-44 (2008).
  22. Nakasuji, S., Morita, Y., Tanaka, K., Tanaka, T., Nakamachi, E. Effect of pulse electric field stimulation on chondrocytes. Asian Pacific Conference for Materials and Mechanics. 1, 13-16 (2009).
  23. Au, H. T. H., Cheng, I., Chowdhury, M. F., Radisic, M. Interactive effects of surface topography and pulsatile electrical field stimulation on orientation and elongation of fibroblasts and cardiomyocytes. Biomaterials. 28 (29), 4277-4293 (2007).
  24. Vanessa, N., et al. In vitro exposure of human chondrocytes to pulsed electromagnetic fields. European Journal of Histochemistry. 51 (3), 203-211 (2007).
  25. Pezzetti, F., et al. Effects of pulsed electromagnetic fields on human chondrocytes: An in vitro study. Calcified Tissue International. 65 (5), 396-401 (1999).
  26. De Mattei, M., et al. Effects of electromagnetic fields on proteoglycan metabolism of bovine articular cartilage explants. Connective Tissue Research. 44 (3-4), 154-159 (2003).
  27. Sollazzo, V., Massari, L., Caruso, A., Mattei, M., Pezzetti, F. Effects of Low-Frequency Pulsed Electromagnetic Fields on Human Osteoblast-Like Cells In Wtro. Electromagnetobiology. 15, 75-83 (2009).
  28. Martino, C. F., Perea, H., Hopfner, U., Ferguson, V. L., Wintermantel, E. Effects of weak static magnetic fields on endothelial cells. Bioelectromagnetics. 31 (4), 296-301 (2010).
  29. Wada, K., et al. Design and implementation of multi-frequency magnetic field generator producing sinusoidal current waveform for biological researches. 2016 18th European Conference on Power Electronics and Applications (EPE’16 ECCE Europe). 2016, 1-8 (2016).
  30. Cho, H., Kim, S., Kim, K. K., Kim, K., Kim, K. Pulsed Electromagnetic Fields Stimulate Cellular Proliferation in Different Types of Cells. IEEE Transactions on Magnetics. 52 (7), 1-4 (2016).
  31. Yan, J., Dong, L., Zhang, B., Qi, N. Effects of extremely low-frequency magnetic field on growth and differentiation of human mesenchymal stem cells. Electromagnetic Biology and Medicine. 29 (4), 165-176 (2010).
  32. Enoch, S., Grey, J. E., Harding, K. G. ABC of wound healing. Non-surgical and drug treatments. BMJ. 332 (7546), 900-903 (2006).
  33. Bhosale, A. M., Richardson, J. B. Articular cartilage: Structure, injuries and review of management. British Medical Bulletin. 87 (1), 77-95 (2008).
  34. Al Hamed, R., Bazarbachi, A. H., Malard, F., Harousseau, J. -. L., Mohty, M. Current status of autologous stem cell transplantation for multiple myeloma. Blood Cancer Journal. 9 (4), 44 (2019).
  35. Massari, L., et al. Biophysical stimulation of bone and cartilage: state of the art and future perspectives. International Orthopaedics. 43 (3), 539-551 (2019).
  36. Naskar, S., Kumaran, V., Basu, B. Reprogramming the Stem Cell Behavior by Shear Stress and Electric Field Stimulation: Lab-on-a-Chip Based Biomicrofluidics in Regenerative Medicine. Regenerative Engineering and Translational Medicine. 5 (2), 99-127 (2019).
  37. Hunckler, J., de Mel, A. A current affair: electrotherapy in wound healing. Journal of Multidisciplinary Healthcare. 10, 179-194 (2017).
  38. Henry, S. L., Concannon, M. J., Yee, G. J. The effect of magnetic fields on wound healing: experimental study and review of the literature. Eplasty. 8, 393-399 (2008).
  39. Hiemer, B., et al. Effect of electric stimulation on human chondrocytes and mesenchymal stem cells under normoxia and hypoxia. Molecular Medicine Reports. 18 (2), 2133-2141 (2018).
  40. Chao, P. H., et al. Chondrocyte translocation response to direct current electric fields. Journal of Biomechanical Engineering. 122 (3), 261-267 (2000).
  41. Zhao, M., Bai, H., Wang, E., Forrester, J., McCaig, C. Electrical stimulation directly induces pre-angiogenic responses in vascular endothelial cells by signaling through VEGF receptors. Journal of Cell Science. 117 (3), 397-405 (2004).
  42. Li, X., Kolega, J. Effects of direct current electric fields on cell migration and actin filament distribution in bovine vascular endothelial cells. Journal of Vascular Research. 39 (5), 391-404 (2002).
  43. Singh, B., Dixit, A. Multistage amplifier and tuned amplifier. Analog Electronics. , 87-131 (2007).
  44. Esfandiari, E., et al. The effect of high frequency electric field on enhancement of chondrogenesis in human adipose-derived stem cells. Iranian Journal Basic Medical Sciences. 4 (3), 571-576 (2014).
  45. Mardani, M., et al. Induction of chondrogenic differentiation of human adipose-derived stem cells by low frequency electric field. Advanced Biomedical Research. 5 (97), 1-7 (2016).
  46. Karaman, O., Gümüşay, M., Demirci, E. A., Kaya, A. Comparative assessment of pulsed electromagnetic fields (PEMF) and pulsed radio frequency energy (PRFE) on an in vitro wound healing model. International Journal of Applied Electromagnetics and Mechanics. 57, 427-437 (2018).
  47. Glinka, M., et al. Test chambers for cell culture in static magnetic field. Journal of Magnetism and Magnetic Materials. 331, 208-215 (2013).
  48. Vacek, T. P., et al. Electrical stimulation of cardiomyocytes activates mitochondrial matrix metalloproteinase causing electrical remodeling. Biochemical and Biophysical Research Communications. 404 (3), 762-766 (2011).
  49. Okutsu, S., et al. Electric Pulse Stimulation Induces NMDA Glutamate Receptor mRNA in NIH3T3 Mouse Fibroblasts. The Tohoku Journal of Experimental Medicine. 215 (2), 181-187 (2008).

Play Video

Cite This Article
Saiz Culma, J. J., Escobar Huertas, J. F., Garzón-Alvarado, D. A., Vaca-Gonzalez, J. J. Electric and Magnetic Field Devices for Stimulation of Biological Tissues. J. Vis. Exp. (171), e62111, doi:10.3791/62111 (2021).

View Video