Summary
我们描述了用小鼠大脑中表达荧光素酶 - 绿色荧光蛋白(GFP)的双报告载体转导的人神经祖细胞的实质内移植。移植后,使用荧光显微镜在脑切片 中鉴定的体内 生物发光和表达GFP的移植细胞反复测量荧光素酶信号。
Abstract
细胞疗法长期以来一直是实验神经生物学中新兴的治疗范式。然而,细胞移植研究通常依赖于终点测量,因此只能在有限的程度上评估细胞迁移和存活的纵向变化。本文提供了一种可靠的微创方案,用于移植和纵向跟踪成年小鼠大脑中的神经祖细胞(NPC)。在移植之前,用包含生物发光(萤火虫 - 荧光素酶)和荧光(绿色荧光蛋白[GFP])报告基因的慢病毒载体转导细胞。NPC在感觉运动皮层中使用立体定向注射移植到右皮质半球。移植后,通过完整的颅骨检测移植细胞长达五周(在第0,3,14,21,35天),使用 体内 生物发光成像的分辨率限制为6,000个细胞。随后,在组织学脑切片中鉴定移植的细胞,并用免疫荧光进一步表征。因此,该协议为移植,跟踪,量化和表征小鼠大脑中的细胞提供了有价值的工具。
Introduction
哺乳动物大脑在受伤或疾病后的再生能力有限,需要创新的策略来促进组织和功能修复。临床前策略侧重于脑再生的不同方面,包括神经保护,神经发生,血管生成1,2,血脑屏障修复3,4或细胞治疗5,6。细胞疗法的优点是能够同时促进许多这些促修复过程。在细胞移植实验中,组织修复是通过(1)直接细胞替代和(2)导致血管生成和神经发生的细胞因子的产生7发生的。干细胞技术的最新进展进一步促进了可扩展的,特征明确的神经细胞源的开发,这些神经细胞源现在正在进行临床试验(在 7,8,9中进行了审查)。虽然细胞疗法已经达到一些神经系统疾病(例如,帕金森病10,中风11和脊髓损伤12)的临床阶段,但它们的疗效一直各不相同,需要更多的临床前研究来了解移植物 - 宿主相互作用的机制。
许多临床前研究的一个主要限制是连续跟踪宿主内的移植细胞。通常只执行终点测量,省略了宿主6,13中的动态迁移和生存过程。这些局限性导致嫁接细胞的表征不佳,并且需要高动物数量来理解纵向变化。为了克服这些局限性,在这项研究中,我们用由红萤火虫荧光素酶和增强型绿色荧光蛋白(rFluc-eGFP)组成的市售双报告慢病毒载体转导诱导诱导多能干细胞(iPSC)来源的神经祖细胞。这些细胞通过立体定位实质内注射移植到小鼠大脑中,并在5周内使用 体内 生物发光成像进行纵向跟踪。在收集脑组织后,鉴定表达GFP的移植细胞,并在组织学脑切片中进一步表征。该方法可以顺利地适应替代的可转导细胞源和移植途径,用于啮齿动物大脑的 体内 应用。总体而言,该程序对于获得小鼠大脑中移植物存活和迁移的纵向信息很有价值,并促进随后的组织学表征。
Protocol
注意:所有涉及小鼠的实验均按照政府,机构和ARRIER指南进行,并得到苏黎世州兽医办公室的批准。使用成年男性和女性非肥胖糖尿病SCID γ(NSG)小鼠(10-14周,25-35g)。将小鼠饲养在常规的II / III型笼子中,每个笼子至少两只动物,在湿度和温度受控的房间里具有恒定的12/12小时光/暗循环。.).
1. 细胞培养和病毒转导
- 如前所述,使用小分子抑制剂区分神经祖细胞(NPC)和iPSCs14。
- 从传代2 开始,在神经干细胞维持培养基(NSMM; 表 1)在涂有聚鸟氨酸/层粘连蛋白521(pLO / L521)的6孔板(每孔2mL培养基)中补充小分子(表1)。每天更换培养基。
注意:要传代NPC,每孔加入1mL细胞解离试剂(参见 材料表),并在37°C下孵育1分钟,直到大多数细胞分离。- 对于包衣,将150μLpLO在1mL 0.1M磷酸盐缓冲盐水(PBS)中/孔中在室温(RT)下孵育2小时。用PBS洗涤三次后,在每孔1mL PBS中孵育10μgL 521,在室温下孵育2小时。
- 对于病毒转导,在涂有pLO / L521的24孔板中每孔板50,000个细胞,并向每个孔中加入预包装的病毒载体(pLL-EF1a-rFLuc-T2A-GFP-mPGK-Puro,LL410PA-1)。
注意:提供的总感染单位(IFU)>2×106 IFU,足以感染100,000个细胞,感染多重性(MOI)为20。细胞计数已使用自动细胞计数器执行。转导效率很大程度上取决于所使用的细胞系。使用慢病毒需要遵守当地生物安全2级(BSL-2)产品指南。 - 将细胞在37°C孵育72小时,同时继续每日更换培养基。
- 通过在荧光显微镜中检查细胞的GFP表达来确认转导成功。将显微镜放大倍率设置为10倍或20倍,并使用适当的激发(460-480nm)和发射范围(490-520nm)来检测转导的表达GFP的细胞。
- 量化GFP转导与总细胞的比率,以估计一般转导疗效。
注意:该协议实现了65-95%的转导率。移植前,转导疗效为 >50%, 作为入/不行的标准。如果不能达到50%的转导疗效,进行嘌呤霉素选择或使用流式细胞术对细胞进行分类,以提高转导细胞的产量。 - 可选:细胞冷冻
- 将细胞向下旋转(300× g,5分钟)并丢弃上清液。将沉淀重悬于1mL冷冻培养基中(见 材料表),并将悬浮液转移到小瓶中以获得106 个细胞/小瓶。将细胞转移到-80°C的冷冻箱中24小时,然后转移到-150°C进行长期储存。
2. 移植的细胞制备
- 从-150°C储存中收集一小瓶细胞并将其转移到实验室。使用自动细胞计数器对细胞进行计数。
注意:该小瓶包含1.5-2×10个6 个细胞。 - 将小瓶快速转移到37°C水浴中,直到没有冰晶残留(2-3分钟)。
注意:重要的是要快速解冻,以尽量减少对细胞膜的任何损害。不要将小瓶完全浸入水浴中,因为它会增加污染的风险。 - 将小瓶转移到生物安全柜中,并将全部内容物(约1mL)移液到无菌的15mL锥形管中。
注意:处理慢病毒转导细胞需要BSL-2。然而,洗涤和传代细胞从培养基中去除病毒颗粒。有关何时允许从BSL-2转移到BSL-1的信息应从地方当局获得。 - 加入9 mL无菌1x PBS,并在300× g下离心5分钟,室温。
- 使用移液器(1-10 mL)通过抽吸除去上清液;轻轻地将悬浮液向移液器尖端倾斜并开始吸气。注意不要干扰颗粒。
- 通过重悬于10mL无菌1x PBS中洗涤细胞。
注意:轻轻地按压管子以将细胞重悬于残余体积中。使用1mL移液管缓慢研磨细胞悬浮液,直到它不含团块或聚集体。 - 使用自动细胞计数器在最终旋转之前对细胞进行计数。
- 在300× g下离心5分钟,室温。
- 除去上清液(步骤2.5),并将细胞沉淀重悬于所需体积的无菌PBS至8×104 个细胞/ μL的浓度。
注意:该方案使用1.6×105 个细胞/ 2μL的PBS体积。
3. 移植程序
- 手术准备
- 清洁和消毒手术设备。
- 准备立体定位装置和显微注射泵系统。
注意:在开始之前,测试汉密尔顿注射器和30 G,2英寸针头至关重要。将针头插入含有无菌0.9%NaCl的管中,并缓慢地将溶液吸入和拉出。 - 设置麻醉机。在涉及任何动物之前测试机器。用70%乙醇清洁诱导室。
- 动物的制备
- 在实验前将小鼠在标准条件下保持至少7天以适应它们。
注意:以下动物用于该方案:雌性NOD / SCID / IL2rγnull(30-35g,也称为NSG)和雌性C57BL / 6J(20-25g,也称为B6)。该过程也可以与雄性小鼠一起进行。 - 测量小鼠体重并调整要注射的止痛药的剂量。腹膜内注射卡洛芬(5mg / kg体重)以减轻疼痛和/或预防炎症反应。
- 使用异氟醚(诱导期为3%,手术维持期为1.5-2%)麻醉动物,在氧气中蒸发。
注意:由于外科手术后快速醒来,并且可以轻松调节麻醉气体的水平,因此首选气态麻醉。 - 使用伤害感受反射来确保动物得到深度麻醉(例如,脚趾捏)。当达到深度麻醉时,将动物从诱导室运送到立体定位框架。使用面罩保持麻醉。
注意:在整个过程中需要目视监测呼吸频率(每分钟40-60次呼吸)。使用保暖垫,以避免在手术过程中体温过低。 - 涂抹眼科润滑剂,以防止眼睛干燥。
- 用电动剃须刀剃掉小鼠头皮,并用棉签用5%betadine溶液消毒皮肤。
- 固定鼠标头并将耳杆插入外耳道。
注:注意不要损坏鼓膜。在插入耳杆之前,将利多卡因软膏涂抹在两个耳道上。要检查动物的头部是否处于稳定位置,请小心地向下推头部,看看是否有运动。如果注意到移动,则耳杆、物镜转换器位置或两者都不正确,需要重新调整。
- 在实验前将小鼠在标准条件下保持至少7天以适应它们。
- 颅骨切开术
- 使用手术刀片沿着中线进行足够大的切割,以揭示λ和bregma地标。
注意:可以应用皮肤牵开器来保持颅骨暴露。 - 用手术刀缩回骨膜和筋膜,并用无菌棉签干燥颅骨表面。
- 调整耳朵和嘴巴杆以标准化头部位置。
注意:前后定位的 bregma 和 lambda 的垂直坐标需要相同。 - 将针头放在前茅,并计算所需注射点的坐标(为此方案选择的目标坐标:前后(AP):+ 0.5 mm,内侧(ML):+ 1.5 mm)。将指针移动到该点并用墨水标记。
注意:坐标是根据富兰克林和帕克西诺斯小鼠大脑图谱 16选择的。距离布雷格玛是毫米。 - 将无菌的0.9%NaCl涂在颅骨上,并用外科牙钻在颅骨上钻一个直径为2-3毫米的孔。
- 将指针移动到硬脑膜表面并计算深度坐标。
- 使用手术刀片沿着中线进行足够大的切割,以揭示λ和bregma地标。
- 移植程序
- 将细胞重悬于试管中(步骤2.9),并将2μL细胞悬浮液吸入注射器(5μL或10μL)中。
注意:确保细胞悬浮液中没有气泡。注射器需要保持在水平位置,直到安装到立体定向装置中,以避免细胞沉降。 - 将注射器放在目标部位上方(计算坐标:AP:+ 0.5 mm,ML:+ 1.5 mm),然后将针头缓慢移动到硬脑膜表面。
注意:如果不确定正确的坐标,请在移植细胞之前用染料进行注射和注射部位的组织学评估(有关更多详细信息,请参阅 17)。 - 以0.02 mm / s的速率引导针头进入大脑直至适当的深度(为该协议选择的坐标是背腹侧(DV) - 0.8 mm)。将深度过冲0.1毫米,并将针头抽出相同的距离,为注射的细胞形成一个口袋。
- 使用镊子在针周围涂上组织粘合剂,以防止细胞泄漏。
- 以3-5nL / s的恒定速率注入2μL制备的细胞悬浮液。
注意:注射过程将持续7至12分钟。 - 注射后,将针头留在原位至少5分钟,然后慢慢取出。涂上组织粘合剂以密封颅骨上的孔,然后等待2分钟。
- 将细胞重悬于试管中(步骤2.9),并将2μL细胞悬浮液吸入注射器(5μL或10μL)中。
- 缝合线和后期护理
- 将无菌的0.9%NaCl溶液涂抹在暴露的颅骨上,以避免脱水。
- 用5/0丝缝线缝合伤口。
- 用0.5mL滴皮注射在下背部的林格乳酸盐溶液给动物补水。
- 中断麻醉输送,小心地将鼠标从立体定位装置中取出,并将其放回保持在加热垫上的笼子中。
- 在损伤后的急性期监测动物。每天至少检查两次缝合线,动物体重和整体健康状况。
4. 体内 成像
- 荧光素的制备
- 在室温下解冻D-荧光素钾盐,并在PBS中以30mg / mL制备D-荧光素的新鲜储备溶液。
- 通过0.22μm注射器过滤器对储备溶液进行灭菌。
注:建议立即使用工作解决方案。如有必要,溶解的荧光素可以储存在-20°C。 但是,长时间存储可能会导致信号衰减。荧光素是一种光敏试剂;尽可能避免直射光线。也可以考虑替代底物,例如环状物,以提高分辨率极限18。
- 成像
- 初始设置
注:生物发光成像是使用由暗室和冷却电荷耦合器件(CCD)相机组成的 体内 成像系统(参见 材料表)进行的。- 双击 动态映像软件 图标,然后从下拉列表中选择 用户 ID 。
- 在出现的控制面板中单击初始化。初始化过程完成后,控制面板中的温度盒将变为绿色。
- 在 控制面板 中,选中 “发光 ”和“ 照片 ”框,然后选择 “自动曝光 (约 60 秒)”。选择一个 视场 (为此协议选择了D/12.5cm)。输入拍摄对象高度(1.5 厘米),然后选择 使用拍摄对象高度 焦点选项。手动设置以下参数: 大分档、f/2、阻塞励磁滤光片、 开射滤光片。
- 确定D-荧光素的注射量在300mg / kg体重。注意:标准推荐剂量为150mg / kg D-荧光素。根据报告使用300mg / kg18的更高灵敏度的方案调整了该程序。
- 腹膜注射荧光素(ip)。
注意:如果动物在注射前需要镇静剂,请注意它可能会延长荧光素酶峰值表达时间。 - 等待5分钟,然后用连续供应异氟醚麻醉动物(诱导期4.5%,成像过程中维持期1.5-2%)。
- 将眼科润滑剂涂抹在眼睛上,然后使用传统的剃须刀在头部区域剃须镇静的动物。将动物置于成像室中,并在荧光素注射后15分钟通过单击控制面板中的“ 获取 ”开始 成像 。
- 初始设置
5. 灌注
- 通过静脉注射戊巴比妥钠(150mg / kg体重)麻醉动物。等到鼠标不再对疼痛的刺激做出反应,例如脚趾捏。
- 将鼠标放在背部,用镊子和剪刀打开胸腔。
- 使用标准剪刀打开隔膜。
- 暴露心脏并将针头(从带有振铃器/ 4%多聚甲醛溶液(PFA)的管子)插入左心室的顶点。
注意:小心将针尖保持在心室腔内。 - 用剪刀切开右心室。
- 用振铃器溶液(可保持在室温下)浸泡3-4分钟(流速:17毫升/分钟)。继续,直到心脏洁净。
- 切换旋塞阀以允许PFA的流动(储存在4°C;在手术过程中保持在冰上),并再灌注5分钟(〜100毫升)。
- 停止泵,从左心室取出针头。
注意:PFA灌注均匀地保持组织完整性。它还有助于在移植中保存GFP信号,否则这些信号可能会因扩散而丢失。
6. 处理
- 组织收集
- 使用标准剪刀取下头部,并在皮肤上做一个中线切口。
- 将皮肤翻转到眼睛上以暴露头骨。
- 从顶骨尖端的尾部开始,用弹簧剪刀做一个小切口。将剪刀沿着中鼓动缝线向前推进到眼睛之间的一点。从尾部再次开始,在矢状平面上平行地进行两个平行的切口,相距约4毫米。
注意:注意不要将剪刀按在颅骨的内表面上来损坏大脑。 - 使用镊子小心地倾斜顶骨的一侧并将其折断。对另一方做同样的事情。
注意:使用微瓣将骨从脑膜中释放出来;否则,它们可能会在掰开颅骨的同时损害大脑。如果额骨的某些部分仍然存在,请做一个小切口以倾斜并折断骨板。 - 为了释放大脑,小心地将微瓣滑动到大脑下方(嗅球),并将其轻轻向上倾斜。
- 收集后,将大脑在4°C下保持在4%PFA溶液中4-6小时。 然后将其转移到无菌的1x PBS中。
- 免疫组织化学
- 将大脑转移到30%蔗糖溶液中,在4°C下至少48小时,以防止在冷冻过程中形成晶体。
- 使用滑动切片机切割厚度为40μm的冠状切片。收集切片并将其作为自由浮动切片(在24孔板中)储存在-20°C的冷冻保护剂溶液(表1)中,直到进一步处理。
- 用每个孔的450μL1x PBS冲洗切片(3次,每个5分钟,室温)。
- 用450μL封闭溶液为每个孔(表1)在室温下阻断非特异性位点1小时。
- 用450μL一抗在4°C下孵育每个孔过夜。将抗体稀释在3%驴血清中1:200;PBS中0.1%的Triton-X-100。为了鉴定宿主环境中的供体物质,请使用人特异性细胞核抗体(抗人核抗体,克隆235-1)。
- 用450μL1x PBS对每个孔洗涤切片(3次,每个5分钟,室温)。
- 用450μL相应的荧光二抗孵育每个孔2-3小时(RT)。将抗体稀释在3%驴血清中;0.1% Triton-X-100,1x PBS。
- 用450μL1x PBS对每个孔洗涤切片(3次,每个5分钟,室温)。
- 用450μL0.1μg/ mL 4',6-二脒基-2-苯基吲哚(DAPI)染色细胞核。
Representative Results
我们的目标是使用体内生物发光成像纵向跟踪小鼠大脑 中 移植的神经祖细胞,并在随后的组织学分析中鉴定移植的细胞(图1A)。因此,神经祖细胞用由EF1α-rFluc-eGFP组成的慢病毒载体转导。在移植之前,通过 体外 表达eGFP测试细胞成功转导(图1B)。将成功转导的细胞立体地移植到小鼠大脑中所需的坐标(例如,在感觉运动皮层中)。移植后,全身注射D-荧光素,rFluc的底物,并测量移植细胞的信号强度以确认移植成功(图1C)。
为了评估 体内 生物发光成像的检测限,将6,000-180,000个细胞的范围移植到小鼠的右感觉运动皮层中(图2A)。我们在移植后直接检测到<6,000个细胞和与移植细胞计数成比例的生物发光信号(图2B)。由于人细胞源对免疫功能小鼠具有免疫原性,因此使用NOD scid γ(NSG)免疫缺陷小鼠来观察细胞移植物的长期存活。细胞移植后确认了长达5周的生物发光信号的长期存活和检测(图2C,D)。移植的 细胞在随后 的组织学分析中通过eGFP报告基因和抗人细胞核和抗人线粒体抗体的免疫染色成功检测到(图2E)。
图1:神经祖细胞的移植。 (A)rFluc-eGFP NPC的产生和移植的示意图概述;(B)用DAPI复染的NPC的代表性免疫荧光图像(GFP报告基因,绿色);(B)用DAPI复染的NPC的代表性免疫荧光图像(GFP报告基因,绿色);(C)移植细胞中生物发光信号的 体内 检测;颜色条 = 蓝色 (0, 最小值, 无信号), 红色 (4 通量, p/s × 105, 最大信号) 缩写: NPCs = 神经祖细胞;GFP = 绿色荧光蛋白;rFluc-eGFP =红萤火虫荧光素酶和增强的绿色荧光蛋白;DAPI = 4',6-二脒基-2-苯基吲哚;p/s = 光子/s. 请点击这里查看此图的大图。
图2:移植细胞的时间过程。 (A)移植用细胞数示意图。(B)移植后1 h移植细胞的检测限。(C、 D)移植的时间过程(180,000个细胞)在NSG小鼠中长达35天;色条 = 蓝色(0,最小值,无信号),红色(4 通量,p/s × 105,最大信号) 数据均± SEM (n = 3)。(E)移植后5周组织学切片和移植细胞的代表性荧光图像。比例尺 = 10 μm. 缩写: D = 移植后的第二天;NSG = 免疫缺陷 NOD scid γ;DAPI = 4',6-二脒基-2-苯基吲哚;GFP = 绿色荧光蛋白;HuNu = 抗人核抗体,克隆235-1;p/s = 光子/s. 请点击这里查看此图的大图。
Discussion
再生受伤的大脑以允许功能恢复仍然是一个未解决的挑战。许多创新的临床前方法已经进化出靶向,例如,免疫调节19,20,血管生成1,21,22,23,血脑屏障完整性2,3,24,25和细胞替代5,26.特别是近年来,由于干细胞技术和高效分化方案的重大进步,基于细胞的疗法已成为一种有前途的大脑治疗策略15,28。本文为移植和跟踪小鼠大脑中的神经细胞提供了一种有价值的方案。该方法适用于小鼠大脑体内应用的所有可转导细胞系。
所呈现的设置使用小鼠中人类起源的移植。由于免疫原性,这些移植在免疫功能正常的野生型小鼠中长期无效。因此,使用免疫缺陷NSG小鼠来克服这一限制。或者,使用小鼠移植可以优选地克服免疫原性方面。如果需要移植人类细胞,人源化小鼠模型代表了一种新兴的替代方案,以降低移植物排斥的可能性29。
使用EF1α启动子下由萤火虫荧光素酶和eGFP组成的商业双报告病毒载体来可视化移植。选择该启动子15以达到高信号强度。然而,除了NPC之外,其他细胞类型已被证明可以在受伤后促进脑功能,包括周细胞30和星形胶质细胞31;因此,根据所使用的细胞系,其他启动子可能更适合达到高表达水平。此外,使用转基因启动子,如CMV,可能导致下调,特别是在长期实验中32。慢病毒载体的转导效率很大程度上取决于所使用的细胞系,并且在单个实验之间可能有所不同。因此, 在开始体内 实验之前,必须评估转导效率,并纠正实验之间转导功效的变化。移植的大脑区域也会影响信号强度。虽然皮质移植的检测限达到<6,000个细胞,但可能需要更多的细胞来检测更深层大脑区域的信号,例如纹状体或海马体。
小鼠大脑中的移植体积限制为1-2μL。因此,确定适合实验的细胞号非常重要。先前已经观察到,增加细胞数量导致存活率降低,很可能是由于移植区域中营养物质和氧气的可用性有限33。与其他 体内 成像方法(如MRI或CT)相比, 体内 生物发光成像提供相对较低的空间分辨率。因此,嫁接细胞的短迁移路径只能在随后的 事后 分析中可靠地评估。
生物发光的绝对信号强度通常与移植的细胞数量成正比。然而,如果移植物移植到更深的大脑结构中,或者如果信号强度在 体内 成像系统的线性检测光谱之外,信号强度可能会降低。目前,开发新型底物以确保比D-荧光素更有效地穿透血脑屏障,包括cycluc1。这些底物可以在未来18进一步提高移植细胞的检测限。总体而言,该协议允许直接的微创手术来移植和观察小鼠大脑中的移植物。
Disclosures
作者没有潜在的利益冲突需要声明。
Acknowledgments
作者 RR 和 CT 感谢 Mäxi 基金会和 3R 能力中心的支持。
Materials
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Viral Transduction | |||
pLL-EF1a-rFLuc-T2A-GFP-mPGK-Puro (Lenti-Labeler virus) | Systembio | LL410VA-1 | |
Consumables | |||
Eppendorf microtubes; 1.5 mL | Sigma Aldrich | Z606340 | |
Falcon Tubes; 15 mL | TPP | 91015 | |
Microscope cover slips | Product of choice | ||
Microscope slides | Product of choice | ||
Sterlie cotton swabs | Product of choice | ||
Sutures; 5/0 silk with curved needle | B. Braun | G0762482 | |
Syringe filter; 0.22 µm | TPP | 99722 | |
Syringe; 1 mL and 0.5 mL | B. Braun | 9166017V | |
Tissue culture plate (24-well) | TPP | 92024 | |
Equipment | |||
Automated cell counter (Vi-CELL XR) | Beckmann Coulter Life Science | 383721 | |
Forceps | Fine Science Tools | 11064-07 | |
Forceps, fine | Fine Science Tools | 11412-11 | |
Heating pad | Product of choice | ||
High Speed Brushless Micromotor Kit | Foredom | K.1060-22. | |
Ideal Micro Drill Burr Set Of 5 | Cell Point Specific | 60-1000 | |
In-Vivo imaging system (IVIS Lumina III with Living Imaging 4.2 software package) | Perkin Elmer | CLS136334 | |
Isoflurane vaporizer | Provet AG | 330724 | |
Microinjection Syringe Pump system | World Precision Instruments | UMP3T-1 | |
Microliter syringe; 700-Series; Volume: 5-10 µL | Hamilton | 7635-01 | |
Microtome | Leica | HM430 | |
NanoFill-33 G-Needle (removable and reusable) | World Precision Instruments | NF33BV-2 | |
Needle Holder | Fine Science Tools | 12001-13 | |
Perfusion pump and tubing | Masterflex | HV-77120-42 | |
Scalpel | Fine Science Tools | 10003-12 | |
Small bonn scissors, straight | Fine Science Tools | 14184-09 | |
Small spring scissors, straight | Fine Science Tools | 15000-03 | |
Spatula | Merck | Z243213-2EA | |
Stereotaxic frame for rodents; motorized | World Precision Instruments | 99401 | |
Pharmaceuticals and Reagents | |||
Accutase | Invitrogen | A11105-01 | Proteolytic and collagenolytic; cell dissociation reagent |
Anti-Human Nuclei Antibody, clone 235-1, Biotin Conjugate | Merck | MAB1281B | |
B27 – Supplement (50x) | Gibco | 17504-001 | |
Betadine (11 mg Iod als Povidon-Iod pro 1 ml Lösung) | Mundipharma Medical Company | All pharmaceuticals were provided by the cantonal pharmacy, Zurich, Switzerland | |
Blocking solution (3% donkey serum; 0.1% Triton-X-100 in PBS) | Product of choice; can be homemade | ||
CHIR99021 (10 mM – 2,500x) | StemMACS | 130-103-926 | |
Cryoprotectant solution | Product of choice; can be homemade | ||
DAPI solution (1 mg/mL) | Thermo Fisher Scientific | 62248 | |
D-Luciferin Potassium Salt | Perkin Elmer | 122799 | |
DMEM/F12 | Gibco | 11320-074 | |
Donkey anti-Mouse IgG (H+L) Highly Cross-Adsorbed Secondary Antibody, Alexa Fluor 555 | Invitrogen | A-31570 | |
Donkey serum | Product of choice | ||
Esconarcon (Pentobarbitalum natricum 300 mg) | Streuli Pharma AG | All pharmaceuticals were provided by the cantonal pharmacy, Zurich, Switzerland | |
Ethanol; 70% | Product of choice | ||
FGF Basic recombinant human protein, Animal-origin free | Thermo Fisher Scientific | PHG6015 | |
Glutamax (100x) | Gibco | A12860-01 | |
hLif (10 µg/mL – 1,000x) | PeproTech | AF-300-05-25UG | |
Isoflurane (Isofluran (1-Chlor-2,2,2-trifluorethyl-difluoromethylether) 99.9%) | Provet AG | All pharmaceuticals were provided by the cantonal pharmacy, Zurich, Switzerland | |
Laminin-L521 (L-521) | Biolaminin LN | LN521 | |
Lidocaine ointment (Lidocain: 25 mg , Prilocain: 25 mg) | Aspen Pharma Schweiz GmbH | All pharmaceuticals were provided by the cantonal pharmacy, Zurich, Switzerland | |
Mounting Medium | Product of choice; can be homemade | ||
N2- Supplement (100x) | Gibco | 75202-001 | |
Neurobasal | Gibco | 21103-049 | |
Ophtalmic lubricant (Retinol palmitat: 15,000 UI) | Bausch & Lomb Swiss AG | All pharmaceuticals were provided by the cantonal pharmacy, Zurich, Switzerland | |
Paraformaldehyde solution | Product of choice | ||
PBS | Thermo Fisher Scientific | 10010023 | Can also be homemade |
Poly-L-ornithine Solution (pLO) | Sigma-Aldrich | P4957 | |
Rimadyl (Carprofen 50 mg) | Zoetis Schweiz GmbH | All pharmaceuticals were provided by the cantonal pharmacy, Zurich, Switzerland | |
Ringer lactate | B. Braun | 3570500 | |
Ringer solution | B. Braun | 3570030 | |
Saline (0.9% NaCl) | B. Braun | 3570160 | |
SB431542 (10 mM – 3,333.3x) | StemMACS | 130-106-543 | |
Tissue Adhesive (Histoacryl) | B. Braun | 1050060 |
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