Summary
Bu çalışma, etkili ve istikrarlı bir şekilde saf ve canlı fibroblastlar sağlayabilen keloid dokulardan primer fibroblastlar oluşturmak için optimize edilmiş bir protokolü açıklamaktadır.
Abstract
Keloid dokudaki ana hücre tipi olan fibroblastlar, keloidlerin oluşumunda ve gelişiminde önemli bir rol oynar. Keloid dokusundan türetilen primer fibroblastların izolasyonu ve kültürü, keloidlerin biyolojik fonksiyonu ve moleküler mekanizmalarının yanı sıra bunları tedavi etmek için yeni terapötik stratejiler hakkında daha ileri çalışmaların temelini oluşturur. Primer fibroblastları elde etmenin geleneksel yöntemi, zayıf hücresel durum, diğer hücre tipleriyle karışma ve kontaminasyona yatkınlık gibi sınırlamalara sahiptir. Bu makale, fibroblast elde edilirken olası sorunların ortaya çıkmasını azaltabilecek optimize edilmiş ve kolayca tekrarlanabilir bir protokolü açıklamaktadır. Bu protokolde fibroblastlar izolasyondan 5 gün sonra gözlenebilmekte ve 10 günlük kültürden sonra %80'e yakın birleşmeye ulaşabilmektedir. Daha sonra fibroblastlar, immünofloresan testleri için PDGFRa ve vimentin antikorları ve akış sitometrisi için CD90 antikorları kullanılarak pasajlanır ve doğrulanır. Sonuç olarak, keloid dokusundan fibroblastlar, keloid araştırmaları için laboratuvarda bol ve stabil bir hücre kaynağı sağlayabilen bu protokol aracılığıyla kolayca elde edilebilir.
Introduction
Fibroproliferatif bir hastalık olan keloid, genellikle çevredeki normal cildi kendi kendini sınırlamadan istila eden ve hastalar için çeşitli derecelerde kaşıntı, ağrı ve kozmetik ve psikolojik yüklere neden olan plakların sürekli büyümesi olarak kendini gösterir1. Keloidlerde yer alan birincil hücreler olan fibroblastlar, aşırı proliferasyon, gereksiz hücre dışı matriks üretimi ve düzensiz kollajenler yoluyla bu hastalığın oluşumunda ve gelişiminde önemli bir rol oynar 2,3. Bununla birlikte, altta yatan patogenez belirsizliğini korumaktadır ve keloid için etkili bir terapötik yöntem hala eksiktir; Bu nedenle, daha fazla araştırmaya acil ihtiyaç vardır 4,5.
İn vivo keloid araştırmaları için ideal bir hayvan modeli olmadığından, keloid dokulardan primer fibroblastlar elde ederek bir in vitro model oluşturmak, keloid araştırmaları için fizibilite ve güvenilirlik sağlayabilir 2,6. Birincil hücreler, doğrudan canlı dokudan türetilen hücrelerdir ve genel olarak bu hücrelerin, hücre dizilerine kıyasla birden fazla bireyin fizyolojik durumuna ve genetik arka planına daha yakından benzeyebileceği kabul edilmektedir 8,9. Birincil hücrelerin kültürlenmesi, hücrelerin büyümesini ve metabolizmasını ve diğer hücre fenotiplerini incelemek için güçlü bir araç sağlar.
Şu anda, primer fibroblastları elde etmek için iki yöntem vardır: enzim sindirimi ve eksplant kültürü. Bununla birlikte, primer fibroblastların elde edilmesinde, çeşitli bakteri veya mantarlar tarafından kontaminasyon riski, kolayca çıkarılamayan diğer hücre türleri ile karışma, kültür döngüsünün uzun süresi, orijinal hücrelere kıyasla hücre özelliklerinde müteakip değişiklikler vb. gibi çeşitli engeller tanımlanmıştır 9. Bu nedenle, primer fibroblastların elde edilmesi için uygulanabilir ve etkili bir süreç geliştirmek, daha ileri çalışmalar ve uygulamalar için temel oluşturur. Bu çalışma, saf ve canlı fibroblastları etkili ve istikrarlı bir şekilde sağlayabilen keloid dokulardan primer fibroblastların çıkarılması için optimize edilmiş bir protokolü tanımlamaktadır.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Bu çalışma, Güney Tıp Üniversitesi (2020081) Dermatoloji Hastanesi kurumsal inceleme kurulu tarafından onaylanmıştır. Bireylerden doku toplanmadan önce bilgilendirilmiş hasta onamları alındı.
1. Hazırlık
NOT: Aşağıdaki prosedürler biyolojik güvenlik kabini altında steril bir ortamda yapılmalıdır.
- Yüksek glikozlu Dulbecco'nun modifiye Eagle besiyerine (DMEM) %10 fetal sığır serumu (FBS) ve %1 penisilin-streptomisin-amfoterisin B çözeltisi (PSA) ekleyerek tam kültür ortamı hazırlayın.
- 1x PBS'ye% 1 PSA ekleyerek PSA ile fosfat tamponlu salin çözeltisi (PBS) hazırlayın. 1x PBS'ye %1 FBS ekleyerek PBS'yi FBS ile hazırlayın.
- Otoklavlama ile birkaç sterilize makas, forseps ve neşter hazırlayın.
2. Çıkarılan dokuların elde edilmesi
- Keloid hastalarından ameliyat yoluyla doku elde edin. Taze keloid dokularını steril bir ambalaj torbasında veya steril santrifüj tüpünde toplayın ve mümkün olan en kısa sürede laboratuvardaki biyolojik güvenlik kabinine aktarın.
NOT: Bu protokolde elde edilen keloid dokusunun boyutu yaklaşık ~20 x 20 x 10mm3 olup, boyut ameliyata bağlı olarak değişebilir.
3. İzolasyon
- Steril cımbız kullanarak keloid dokusunu çıkarın ve 10 dakika boyunca% 1 PSA ile 10-25 mL PBS içeren 50 mL'lik steril bir santrifüj tüpüne yerleştirin. Daha sonra 6 oyuklu bir plaka hazırlayın ve her oyuğa %1 PSA ile takviye edilmiş 4 mL PBS ekleyin. Sterilize edilmiş cımbız kullanarak dokuyu çıkarın ve% 1 PSA ile desteklenmiş PBS ile iki kez yıkayın. Steril forseps kullanarak, dokuyu sırayla bir kuyudan diğerine aktarın.
- Cerrahi makas veya cerrahi neşter kullanarak yağ ve epidermis tabakalarını çıkarın ve dermis tabakasına dokunmayın. Dermis tabakasını makasla 3-5 mm2 parçaya kesin ve disekesin, bu parçaları steril forseps kullanarak bir sonraki kuyucuğa aktarın ve tekrar% 1 PSA solüsyonu ile PBS'de yıkayın.
4. Kültür
- Dermis dokusu parçalarını sterilize edilmiş forseps kullanarak Petri kaplarına yerleştirin; Parça sayısının 10 ile 30 arasında olmasına ve her parça arasındaki mesafenin >5 mm olmasına dikkat edin. Petri kaplarını 37 °C'de %5'lik birCO2 inkübatörde 30-60 dakika boyunca doku parçaları biraz kuruyana kadar baş aşağı koyun ve Petri kabına yapışın. Ardından, %10 FBS ve %1 PSA ile takviye edilmiş DMEM ekleyin ve Petri kaplarını 37 °C'de %5CO2 inkübatöre dikkatlice yerleştirin.
NOT: Fibroblastlar morfolojik ve fonksiyonel olarak heterojen bir hücre popülasyonudur. Bu karmaşıklık göz önüne alındığında, izolasyon ve kültür adımları dikkatle gerçekleştirilmelidir; keloid dermal doku parçalarını eşit şekilde seçin ve bu parçaları Petri kabına yerleştirmeden önce iyice karıştırın. - 3 gün sonra, süpernatantın yarısını tam bir kültür ortamı ile değiştirin. Kültür ortamını 2-3 günde bir değiştirin. Fibroblastları her gün 40x büyütmede mikroskop altında gözlemleyin.
NOT: Tüm adımlar nazikçe gerçekleştirilmelidir. Doku parçalarının Petri kaplarına yapışması zaman aldığından, PERI kabını izole ettikten sonra 2 gün boyunca hareket ettirmeyin. - Doku parçalarının etrafında büyüyen fibroblastlar yaklaşık% 90 birleşmeye ulaştığında, doku parçalarını ve kültür ortamını çıkarın. Fibroblastları steril 1x PBS ile yıkayın ve plakalara 2 mL steril 1x tripsin-EDTA çözeltisi ekleyin. Hücreleri nemlendirilmiş% 5 CO2 inkübatörde 37 ° C'de yaklaşık ~ 3-5 dakika inkübe edin. Kültür kabına hafifçe vurun ve mikroskop altında gözlemleyin. Hücrelerin çoğu plakadan ayrıldığında, sindirim işlemini sonlandırmak için 2 mL tam ortam ekleyin.
- Hücre süspansiyonunu 15 mL'lik bir steril santrifüj tüpüne aktarın ve tüpü oda sıcaklığında 3 dakika boyunca 300 × g'da santrifüjleyin. Süpernatanı dikkatlice atın ve hücre peletini tam ortamda yeniden süspanse edin. Fibroblastları 9 cm'lik bir hücre kültürü kabına tohumlayın ve nemlendirilmiş% 5 CO2 inkübatörde 37 ° C'de inkübe edin.
5. Bakım ve koruma
- Yaklaşık 3-4 gün sonra, fibroblastlar% 80 birleşme noktasına ulaştığında, 4.2-4.4 adımlarını tekrarlayın ve fibroblastları 1: 3 oranında geçirin. Daha ileri deneyler için pasajlı fibroblastları kullanın.
NOT: Fibroblast kültürü 10 geçişten sonra durdurulmalıdır, çünkü hücreler orijinal hücrelere göre değişen özellikler göstermeye başlayabilir. - Daha fazla kullanım için sıvı nitrojen içinde P1-P3'ün geçiş hücrelerini kriyoprezervasyon.
- 4.2-4.3 arasındaki adımları tekrarlayın. Hücre süspansiyonunu 15 mL'lik bir steril santrifüj tüpüne aktarın ve tüpü 300 × g'da 3 dakika santrifüjleyin. Süpernatanı dikkatlice atın, hücre peletini %90 FBS ve %10 DMSO içeren 1 mL hücre dondurma ortamında yeniden süspanse edin ve süspansiyonu hücre kriyotüplerine aktarın.
- Hücreleri donmuş bir kutuya taşıyın ve ardından donmuş kutuyu −80 °C'lik bir dondurucuya koyun. 1 gün sonra, uzun süreli koruma için hücreleri sıvı nitrojene aktarın.
6. İmmünofloresan boyama ile fibroblastların tanımlanması
- Yuvarlak lamelleri 24 oyuklu bir plakaya yerleştirin ve pasajlı fibroblastları 1 × 104 hücre / kuyu konsantrasyonunda kültürleyin. Fibroblastlar% 60 birleşmeye ulaştığında, kültür ortamını çıkarın. Fibroblastları oda sıcaklığında 20 dakika sabitlemek için 1 mL% 4 paraformaldehit ekleyin ve her seferinde 1 dakika boyunca 3x PBS ile yıkayın.
NOT: Mikroskop altında bir hemositometre lamı veya otomatik hücre sayacı kullanarak hücre sayısını sayın. - PBS'yi çıkarın, hücre zarlarının geçirgenliği için% 0.5 Triton X-100 ile 20 dakika inkübe edin ve ardından her seferinde 1 dakika boyunca PBS ile 3x yıkayın. % 0.5 sığır serum albümini ile PBS ekleyin ve 30 dakika bekletin. Daha sonra çıkarın ve 1: 1.000'de antikor seyreltici içinde seyreltilmiş PDGFR-α/vimentin antikorunu ekleyin. Gece boyunca 4 °C'de inkübe edin.
- Ertesi gün, birincil antikoru çıkarın, hücreleri 3x PBS ile 3 dakika yıkayın ve 1: 200'de antikor seyreltici ile seyreltilmiş ikincil antikor Alexa Fluor-555 keçi anti-tavşan IgG'yi 1 saat bekletin.
- İkincil antikoru çıkarın ve hücreleri 3x PBS ile yıkayın. Forseps kullanarak yuvarlak lamelleri çıkarın, cam slaytlara koyun ve hücre çekirdeklerini boyamak için 50 μL 5 μg/mL 4',6-diamidino-2-fenilindol (DAPI) çözeltisi ekleyin. Numuneleri ıslak, karanlık bir kutuda saklayın ve lazer konfokal floresan mikroskobu altında gözlemleyin.
NOT: Spesifik olmayan boyamayı dışlamak için birincil antikoru olmayan ancak ikincil antikoru olan negatif bir kontrol grubu ekleyin.
7. Fibroblastların akım sitometrisi ile tanımlanması
- Hücre peletini 1.5 mL'lik bir steril santrifüj tüpüne toplayın ve% 1 FBS içeren 50 μL PBS ile yeniden süspanse edin. Karanlıkta 30 dakika boyunca anti-CD90 ile inkübe edin ve kontrol grubuna bir anti-IgG izotip kontrolü ekleyin. Daha sonra,% 1 FBS içeren 200 μL PBS ekleyin ve tüpü 4 ° C'de 300 × g'de 10 dakika santrifüjleyin.
- Süpernatanı çıkarın ve% 1 FBS içeren 200 μL PBS ekleyin. Süspansiyonu bir hücre süzgecinden (70 göz) yeniden askıya alın ve filtreleyin. Filtrata 1:100'de 5 μg/mL'lik bir DAPI stok çözeltisi ekleyin ve ardından sonuçları akış sitometrisi ile elde edin. İleri saçılımı (FSC) apsis ve yan saçılımı (SSC) ordinat olarak ayarlayın ve ana hücre popülasyonunu daire içine alın. Hücre popülasyonunu seçin ve fikoeritrini apsis olarak ve sayıyı analiz için ordinat olarak ayarlayın.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Protokolün zaman çizelgesi Şekil 1A'da özetlenmiştir. İzolasyon sürecinin bazı temsili görüntüleri Şekil 2'de gösterilmektedir; epidermis ve yağ tabakaları dikkatlice çıkarıldı ve dermis tabakası 3-4mm2'lik küçük parçalara ayrıldı ve bunlar Petri kaplarına aşılandı.
Şekil 3A'da gösterildiği gibi, işlemden 5 gün sonra mikroskop altında doku parçalarında birkaç fibroblast büyümesi gözlendi. Şekil 3B'de gösterildiği gibi, fibroblastlar yüksek proliferasyon oranları sergiledi ve 10 gün sonra yüksek bir birleşme seviyesine ulaştı. Bu fibroblastlar uzun, iğ benzeri hücre gövdelerine sahipti ve yüksek bir birleşme seviyesine ulaştıklarında demetler halinde hizalandılar. Bu protokol izlenerek fibroblastlar 2-3 hafta içinde geçirildi ve istenilen miktara genişletildi.
Fibroblastların kimliğini ve saflığını doğrulamak için, fibroblasta özgü belirteçler PDGFRα10 ve vimentini tespit etmek için bir immünofloresan boyama testi kullanıldı. Beklendiği gibi, Şekil 4A ve Şekil 4C, tüm fibroblastların PDGFRa / vimentin antikoru tarafından, hücresel çekirdekte kırmızı immünofloresan ve mavi immünofloresan ile pozitif olarak boyandığını göstermektedir. Şekil 4C'de gösterildiği gibi, akış sitometrisi testi de hemen hemen tüm fibroblastlarda CD90 pozitifliği gösterdi.
Şekil 1: Keloid fibroblast izolasyonu ve kültür prosedürüne genel bakış. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.
Şekil 2: Keloid dokulardan fibroblastların izolasyonu ve kültürünün temsili görüntüleri . (A) Mendili yıkayın. (B) Epidermis ve yağ tabakalarını çıkarın. (C) Dermisi 3-4 mm3 parçaya bölün ve tekrar PBS ile yıkayın. (D) Doku parçalarını bir Petri kabına yerleştirin. (E) Petri kaplarını baş aşağı 37 °C'de %5CO2 inkübatörüne 30-60 dakika boyunca koyarak doku parçalarının biraz kurumasını ve Petri kabına yapışmasını sağlayın. (F) Petri kabına tam kültür ortamı ekleyin ve CO2 içeren hücre inkübatöründe kültürleyin. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.
Şekil 3: Keloid doku parçalarından fibroblast büyümelerinin temsili görüntüleri. (A) ~ 5 gün içinde doku parçalarından fibroblast büyümeleri. (B) Fibroblastlar ~ 10 gün içinde yüksek bir birleşme seviyesine ulaştı. Ölçek çubukları = 200 μm. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.
Şekil 4: İmmünofloresan boyama ve akış sitometrisi ile yüksek oranda saflaştırılmış fibroblastların tanımlanması . (A) Fibroblastların anti-PDGFRa ile immünofloresan boyanması. (B) PDGFRa için primer antikoru olmayan negatif kontrol grubu. (C) Fibroblastların anti-vimentin ile immünofloresan boyanması. (D) Vimentin için birincil antikoru olmayan negatif kontrol grubu. (E) Fibroblastların akış sitometrisi analizi. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Keloid dokulardan primer fibroblastların elde edilmesi, daha ileri araştırmalar için kritik bir temeldir. Şimdiye kadar, primer fibroblastları elde etmek için iki yöntem vardı: enzim sindirimi ve eksplant kültürü11,12,13,14. Bununla birlikte, her iki geleneksel yöntemin de kontaminasyona yatkınlık, diğer hücre tipleriyle karışma, uzun bir kültür süresi ve düşük başarı oranı gibi sınırlamaları vardır15,16. Bu çalışma, optimize edilmiş bir yöntemi tanımlamış ve bu mevcut zorlukları çözmek ve keloid fibroblastların izolasyonu ve kültürü için başarı şansını artırmak için açık talimatlar sağlamıştır.
Mikrobiyal kontaminasyon olasılığı, primer fibroblastların elde edilmesindeki en önemli sorunlardan biridir. Tüm ekipman ve solüsyonlar sterilize edilmeli ve protokoldeki tüm adımlar sırasında standart aseptik teknikler uygulanmalıdır. Protokol, kontaminasyon riskini azaltmak için aseptik kalmayı hatırlatan uyarılar içerir. İlk kritik adım izolasyon sürecidir; dokuların %1 PSA takviyeli PBS'ye batırılması ve birkaç kez yıkanmasının amacı mevcut mikropları ve kalıntı kan lekelerini uzaklaştırmaktır. Olası kontaminasyon transferini önlemek için, fazladan bir çift sterilize makas ve forseps hazırlanmalıdır; Bu aletler bir sonraki operasyonda kullanılmayanlarla değiştirilebilir. Ayrıca, mikropların büyümesini önlemek için kültür ortamına PSA eklenir. Keloid fibroblastların izolasyonu ve müteakip kültürü sırasında mikoplazma için periyodik testler protokole dahil edilmelidir. Bu işlemler sayesinde mikrobiyal kontaminasyon olasılığı önemli ölçüde azaltılabilir.
Diğer zorluk, keratinositler gibi diğer hücre türleriyle karışmaktır. Bu hücre tipi aynı zamanda yoğun bir proliferatif yeteneğe sahiptir ve bu da çıkarılmasını zorlaştırır. Fibroblastların saflığı büyük ölçüde izolasyon sürecine bağlıdır; Diğer hücrelerle karışmasını önlemek için epidermis ve yağ tabakaları tamamen çıkarılmalıdır. PDGFR-α, fibroblastların10,17,18 zarında ve sitoplazmasında eksprese edilen fibroblasta özgü bir belirteçtir. CD90 ve vimentin ayrıca fibroblastların 19,20,21 membranlarında spesifik olarak eksprese edilen spesifik mezenkimal belirteçlerdir. Bu çalışmadaki immünofloresan boyama testi, tüm hücrelerin PDGFR-α ve vimentini pozitif olarak eksprese ettiğini gösterdi. Akım sitometri testi ayrıca hemen hemen tüm fibroblastlarda CD90 pozitifliğini ve izotip kontrolüne kıyasla daha yüksek CD90 pozitifliğini doğrudan gösterdi, böylece bu protokolü kullanarak nispeten yüksek saflıkta fibroblastlar elde ettiğimizi doğruladı.
Fibroblastların büyümesini teşvik etmek ve proliferatif etkinliğini arttırmak için önerilen önemli adımlar aşağıdaki gibidir. İlk olarak, doku parçaları 3-5mm2'lik uygun boyutlarda kesilmelidir, çünkü daha küçük doku parçalarının Petri kabının hareketi sırasında yüzmesi daha olasıdır ve hücreler daha büyük parçaları kolayca büyütmez. İkincisi, doku parçalarının Petri kaplarına yapışması zaman aldığından, ilk ortam değişikliği üçüncü günden sonra olmalıdır. Petri kaplarını çok erken hareket ettirmek, dokuları rahatsız etme ve fibroblast büyümesi olasılığını azaltma eğilimindedir. Üçüncüsü, bu protokoldeki tüm adımlar nazikçe yürütülmelidir; Yanlış kullanım, doku parçalarının gereksiz yere hareket etmesine neden olur ve hücre büyümesini bozar.
Fibroblastlar, morfolojik ve fonksiyonel olarak heterojen bir hücre popülasyonudur ve birkaç alt popülasyona ayrılabilir. Bu çalışmanın bir sınırlaması, tüm keloid dokusundan genel fibroblastlar elde edebilmemiz, ancak fibroblastların farklı alt popülasyonlarını elde edemememizdir. Gelecekte bu sorunu çözmek için daha iyi yöntemler bulmaya çalışıyoruz.
RNA-seq ile önceki çalışmalarımızda gösterildiği gibi, keloid fibroblastlar ile normal fibroblastlar arasında birçok fark vardır. Keloid fibroblastlar daha fazla kollajen I ve kollajen III üretir. Ek olarak, keloid fibroblastlar, diğerleri arasında POSTN gibi spesifik belirteçleri ifade eder. Fibroblastlar geçtikten sonra hala bu özelliklerini korurlar, bu da primer fibroblastların keloid hastalarında bulunan bazı özellikleri de sergileyebileceğini kanıtlar.
Sonuç olarak, bu çalışma, mikrobiyal kontaminasyon, diğer hücre tipleri ile karışma ve uzun kültür süresi gibi keloid fibroblast ekstraksiyonundaki mevcut zorlukları çözmek ve başarı şansını artırmak için optimize edilmiş bir yöntem sağlamakta ve net talimatlar vermektedir. Mevcut çalışma, gelecekteki çalışmalar ve araştırmalar için zengin bir kaynak sağlayacak veya bankacılık için sıvı nitrojen içinde dondurulabilecek keloid primer fibroblastların izole edilmesi ve kültürlenmesi için basit ve tekrarlanabilir bir yöntem sunmaktadır.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Beyan edilecek herhangi bir çıkar çatışması yoktur.
Acknowledgments
Bu çalışma, Çin Ulusal Doğa Bilimleri Vakfı (81903189 ve 82073418 numaralı hibeler) ve Guangzhou Bilim ve Teknoloji Vakfı'ndan (202102020025 numaralı hibe) alınan hibelerle desteklenmiştir.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 1.5 mL sterile centrifuge tube | JETBIOFIL | CFT002015 | |
| 15 mL sterile centrifuge tube | JETBIOFIL | 8076 | |
| 4% polyformaldehyde | Beyotime Biotechnology | P0099 | Cell fixation |
| 50 mL sterile centrifuge tube | JETBIOFIL | 8081 | Put keloid tissue |
| Alexa Fluor-555 goat anti-rabbit IgG | Abcam | Alexa Fluor 555 | second antibody for immunofluorescence staining assay |
| Anti human CD90 | BioLegend | B301002 | Identify the purity of fibroblasts |
| Antibody diluent | Beyotime Biotechnology | P0262 | |
| Biological safety cabinet | Thermo Scientific | 1300 series A2 | Isolation and culture cells |
| Bovine serum albumin | aladdin | B265993 | Blocking for immunofluorescence staining assay |
| Carbon dioxide incubator | ESCO | CCL-170B-8 | Using for culturing cells |
| Cell cryotubes | Corning | 43513 | Store the cells in low temperature |
| centrifugal machine | Thermo Fisher | ST 16R | Discard supernatant |
| DAPI | Beyotime Biotechnology | C1006 | Stain the cellular nucleus |
| DMSO | MP Biomedicals | 196055 | Using for preserving cells |
| Dulbecco's modified eagle medium | Gibco | C11995500BT | Culture medium solution |
| Fetal bovine serum | BI | 04-001-1A | |
| Flow cytometer | BD | BD FACSCelesta | Observing the identity of cells |
| frozen box | Thermo Scientific | 5100-0050 | |
| Inverted microscope | Nikon | ECLIPSE Ts2 | |
| Laser confocal microscope | Nikon | AIR-HD25 | Observing the immunofluorescence staining assay |
| PDGFR-α antibody | CST | 3174T | First antibody for immunofluorescence staining assay |
| Penicillin-streptomycin-Am solution | Solarbio | P1410 | Add in culture medium solution to avoid contamination |
| petri dish | JETBIOFIL | 7556 | Culture fibroblasts |
| Phosphate buffered saline solution | Gibco | C10010500BT | Culture medium solution |
| Rabbit (DAIE) mAB IgG XR (R) Isotuge Control (PE) | Cell Signaling Technology | 5742S | As a control for flow cytometry |
| Round coverslip | Biosharp | 801007 | Cell culture |
| Triton X 100 | Solarbio | T8200 | Punch holes in the cell membrane |
| Trypsin-EDTA | Gibco | 25200072 | Used for passaging cells |
| Vimentin antibody | Abcam | ab8978 | First antibody for immunofluorescence staining assay |
References
- Zhu, Y. Q., et al. Genome-wide analysis of Chinese keloid patients identifies novel causative genes. Annals Of Translational Medicine. 10 (16), 883 (2022).
- Feng, F., et al. Biomechanical regulatory factors and therapeutic targets in keloid fibrosis. Frontiers in Pharmacology. 13, 906212 (2022).
- Cohen, A. J., Nikbakht, N., Uitto, J. Keloid disorder: Genetic basis, gene expression profiles, and immunological modulation of the fibrotic processes in the skin. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. , (2022).
- Wang, W., et al. Current advances in the selection of adjuvant radiotherapy regimens for keloid. Frontiers in Medicine. 9, 1043840 (2022).
- Ghadiri, S. J., Kloczko, E., Flohr, C. Topical treatments in the management of keloids and hypertrophic scars: A critically appraised topic. British Journal of Dermatology. 187 (6), 855-856 (2022).
- Neves, L. M. G., Wilgus, T. A., Bayat, A. In vitro, ex vivo, and in vivo approaches for investigation of skin scarring: Human and animal models. Advances in Wound Care. 12 (2), 97-116 (2023).
- Supp, D. M. Animal models for studies of keloid scarring. Advances in Wound Care. 8 (2), 77-89 (2019).
- Künzel, S. R., et al. Ultrasonic-augmented primary adult fibroblast isolation. Journal of Visualized Experiments. (149), e59858 (2019).
- He, Y., et al. An improved explants culture method: Sustainable isolation of keloid fibroblasts with primary characteristics. Journal of Cosmetic Dermatology. 21 (12), 7131-7139 (2022).
- Philippeos, C., et al. Spatial and single-cell transcriptional profiling identifies functionally distinct human dermal fibroblast subpopulations. Journal of Investigative Dermatology. 138 (4), 811-825 (2018).
- Li, L., et al. Hydrogen sulfide suppresses skin fibroblast proliferation via oxidative stress alleviation and necroptosis inhibition. Medicine and Cellular Longevity. 2022, 7434733 (2022).
- Zhou, B. Y., et al. Nintedanib inhibits keloid fibroblast functions by blocking the phosphorylation of multiple kinases and enhancing receptor internalization. Acta Pharmacologica Sinica. 41 (9), 1234-1245 (2020).
- Wang, X. M., Liu, X. M., Wang, Y., Chen, Z. Y. Activating transcription factor 3 (ATF3) regulates cell growth, apoptosis, invasion and collagen synthesis in keloid fibroblast through transforming growth factor beta (TGF-beta)/SMAD signaling pathway. Bioengineered. 12 (1), 117-126 (2021).
- Sato, C., et al. Conditioned medium obtained from amnion-derived mesenchymal stem cell culture prevents activation of keloid fibroblasts. Plastic and Reconstructive Surgery. 141 (2), 390-398 (2018).
- Li, J., et al. Long-term explant culture: An improved method for consistently harvesting homogeneous populations of keloid fibroblasts. Bioengineered. 13 (1), 1565-1574 (2022).
- Wang, Q., et al. Altered glucose metabolism and cell function in keloid fibroblasts under hypoxia. Redox Biology. 38, 101815 (2021).
- Fan, C., et al. Single-cell transcriptome integration analysis reveals the correlation between mesenchymal stromal cells and fibroblasts. Frontiers in Genetics. 13, 798331 (2022).
- Yao, L., et al. Temporal control of PDGFRα regulates the fibroblast-to-myofibroblast transition in wound healing. Cell Reports. 40 (7), 111192 (2022).
- Domdey, M., et al. Consecutive dosing of UVB irradiation induces loss of ABCB5 expression and activation of EMT and fibrosis proteins in limbal epithelial cells similar to pterygium epithelium. Stem Cell Research. 40, 102936 (2022).
- Lin, Z., et al. Renal tubular epithelial cell necroptosis promotes tubulointerstitial fibrosis in patients with chronic kidney disease. FASEB Journal. 36 (12), e22625 (2022).
- Korosec, A., et al. Lineage identity and location within the dermis determine the function of papillary and reticular fibroblasts in human skin. Journal of Investigative Dermatology. 139 (2), 342-351 (2019).
