Summary

Placering av extrakraniella stimulerande elektroder och mätning av cerebralt blodflöde och intrakraniella elektriska fält hos sövda möss

Published: June 02, 2023
doi:

Summary

Vi beskriver ett protokoll för att bedöma dos-responskurvor för extrakraniell stimulering i termer av mätningar av hjärnans elektriska fält och ett relevant biomarkör-cerebralt blodflöde. Eftersom detta protokoll innebär invasiv elektrodplacering i hjärnan behövs generell anestesi, där spontan andning föredras snarare än kontrollerad andning.

Abstract

Detektion av cerebral blodflödesrespons (CBF) på olika former av neuronal aktivering är avgörande för att förstå dynamisk hjärnfunktion och variationer i substrattillförseln till hjärnan. Denna artikel beskriver ett protokoll för att mäta CBF-svar på transkraniell växelströmsstimulering (tACS). Dos-responskurvor uppskattas både från CBF-förändringen som sker med tACS (mA) och från det intrakraniella elektriska fältet (mV/mm). Vi uppskattar det intrakraniella elektriska fältet baserat på de olika amplituderna som mäts av glasmikroelektroder i varje sida av hjärnan. I den här artikeln beskriver vi den experimentella uppställningen, som innebär att man använder antingen bilaterala laserdopplerprober (LD) eller laserfläckavbildning (LSI) för att mäta CBF; Som ett resultat kräver denna inställning anestesi för elektrodplacering och stabilitet. Vi presenterar en korrelation mellan CBF-responsen och strömmen som en funktion av ålder, och visar en signifikant större respons vid högre strömmar (1,5 mA och 2,0 mA) hos unga kontrolldjur (12-14 veckor) jämfört med äldre djur (28-32 veckor) (p < 0,005 skillnad). Vi visar också en signifikant CBF-respons vid elektriska fältstyrkor <5 mV/mm, vilket är en viktig faktor för eventuella studier på människa. Dessa CBF-svar påverkas också starkt av användningen av anestesi jämfört med vakna djur, andningskontrollen (dvs. intuberad kontra spontan andning), systemiska faktorer (dvs. CO2) och lokal ledning i blodkärlen, som medieras av pericyter och endotelceller. På samma sätt kan mer detaljerade avbildnings-/inspelningstekniker begränsa fältstorleken från hela hjärnan till endast ett litet område. Vi beskriver användningen av extrakraniella elektroder för applicering av tACS-stimulering, inklusive både hemmagjorda och kommersiella elektroddesigner för gnagare, samtidig mätning av CBF och intrakraniellt elektriskt fält med hjälp av bilaterala DC-inspelningselektroder av glas, och avbildningsmetoderna. Vi tillämpar för närvarande dessa tekniker för att implementera ett slutet format för att förstärka CBF i djurmodeller av Alzheimers sjukdom och stroke.

Introduction

Transkraniell elektrisk stimulering (tES; med sinusvågsstimulering, tACS) är en vanlig, extern, icke-invasiv metod för hjärnneuromodulering 1,2. Tidigare antog vi att vid vissa doser kan tES (och särskilt tACS) öka det cerebrala blodflödet (CBF) i de underliggande hjärnregionerna3. Vidare kan det finnas ett dos-responsförhållande mellan antingen den tillförda externa strömmen eller det intrakraniella elektriska fältet och de resulterande CBF-responserna. De flesta kliniska stimuleringsprotokoll har dock fokuserat på en maximal bekväm hudstimuleringsnivå (dvs. ~ 2 mA) under schemalagda tidsperioder (dvs. 30-45 min) som ett behandlingsprotokoll 4,5. Hos gnagare är det möjligt att använda invasiva, extrakraniella hjärnelektroder som appliceras direkt på skallen för att undersöka de elektriska fält i hjärnan som induceras av tES6. Målet med detta tillvägagångssätt är därför att bestämma effekterna av intensiteten av tACS vid relevanta frekvenser på CBF-förändringar i termer av dos-responsförhållandet. Denna dos-responskurva är baserad på en kortvarig fysiologisk biomarkör-direkt mätning av CBF i förhållande till det elektriska fält som hjärnan utsätts för. Vi har tidigare visat att det vid större amplituder, vanligtvis utanför området för elektriska fält i hjärnan inducerade av tACS kliniskt, finns en nästan linjär korrelation mellan det inducerade elektriska fältet och CBF i cortex3. Stimulering av mindre fält (dvs. 1-5 mV/mm intensitet) kan dock vara mer relevant och genomförbar för användning på människor; därför har vi modifierat våra tekniker för att upptäcka mindre CBF-förändringar.

Denna artikel beskriver ett protokoll för att analysera effekterna av tES alternerande sinusströmmar (tACS) med lägre fältstyrka på CBF (dvs. 0,5-2,0 mA ström, 1-5 mV/mm elektriskt fält), som kan tolereras av vakna gnagare5. Detta protokoll involverar användning av ny laserspeckelavbildning under tACS, såväl som dubbla intrakraniella glaselektroder, för att bestämma både spridningen av aktiv tACS i hjärnan (som övervakas av CBF) och den intrakraniella elektriska fältintensiteten, som visas både som ett diagram och ett faktiskt experimentellt fotografi (figur 1). Det finns många möjliga fysiologiska effekter av tES i hjärnan, inklusive direkt neuronal modulering, neural plasticitet och astrocytaktivering 7,8. Även om CBF har mätts med tDCS 9,10 var dessa mätningar långsamma, indirekta och otillräckliga för att bedöma dos-responsfunktionen i hjärnan. Genom att använda lämpliga kortvariga biomarkörer (t.ex. CBF, elektriska fält) och snabba på/av-sekvenser av tACS kan vi nu uppskatta dos-responsfunktionen mer exakt. Vidare kan vi tillämpa olika tekniker för att mäta CBF, inklusive både fokallaserdopplerprober (LD) och laserspeckelavbildning (LSI) med definierade intresseområden.

Figure 1
Figur 1: Transkraniell stimulering och fotografiskt exempel . (A) Diagram över den transkraniella stimuleringsinställningen. Diagrammet visar en musskalle med koronala och sagittala suturer. De transkraniella elektroderna placeras lateralt och symmetriskt på skallen och monteras med kirurgiskt lim och ledande pasta mellan elektroderna och skallen. Dessa elektroder är anslutna till en människokompatibel stimuleringsanordning med konstant ström, som kan specificera stimuleringens frekvens, amplitud och varaktighet. För bedömning av intrakraniella elektriska fält placeras bilaterala glaselektroder (~2 MΩ) i hjärnbarken (dvs. inom 1 mm från den inre aspekten av skallen genom små borrhål), och dessa är förseglade med mineralolja och har AgCl-jord i nackmuskeln (visas som större trådar i mitten begravda i den subkutana halsvävnaden). Dessa glaselektroder är anslutna till en DC-förstärkare och deras utgångar spelas in via en digitaliserare med minst fyra kanaler. Bilaterala laserdopplersonder placeras också på skallen för inspelningar. Hela skallen avbildas också med antingen en laserfläckavbildningsenhet eller en högupplöst (minst 1 024 x 1 024 pixlar, 12-14 bitars pixeldjup) kyld kamera för inbyggd optisk signaldetektering. Den isosbestiska hemoglobinfrekvensen väljs vanligtvis (dvs. 562 nm) för belysning för blodflödesavbildning. (B) En närbild av ett verkligt experiment, som visar de bilaterala laserdopplersonderna (till vänster), de (bilaterala) intrakraniella glasregistrerande mikroelektroderna placerade genom gradhålen, och med tACS-stimulerande elektroder i sidled. Förkortning: tACS = transkraniell växelströmsstimulering. Klicka här för att se en större version av denna figur.

Som ett sätt att bedöma mekanismerna kan vi också undersöka interaktioner med andra fysiologiska processer som också förändrar CBF, såsom K+-inducerad spridningsdepolarisering11. Vidare, snarare än schemalagda sessioner på regelbundna tider, är det också möjligt att utveckla ett slutet system baserat på ytterligare biomarkörer för en mängd olika sjukdomar, vilket har föreslagits för epilepsibehandling12 (dvs. kliniska Neuropace-enheter). Till exempel är hjärnstimulering med sluten slinga för Parkinsons sjukdom vanligtvis baserad på de inneboende, onormala lokala fältpotentialerna (LFP) som är inneboende i denna sjukdom i frånvaro av tillräckligt med dopamin (vanligtvis β-bands-LFP)13.

Protocol

Alla djurförsök godkändes av Institutional Animal Care and Use Committee vid Duke University eller motsvarande lokala myndighet som reglerar forskning som involverar djur. Se materialtabellen för detaljer om alla material, instrument och utrustning som används i detta protokoll. 1. Förberedelse av instrumentet Se till att alla nödvändiga föremål och kirurgiska instrument är på plats (Figur 2): rengöringslös…

Representative Results

Representativa resultat visas i figur 4, figur 5 och figur 6. Figur 4 visar ett exempel på de fyra kanalerna med de två intrakraniella inspelningselektroderna på de övre kanalerna och CBF-svaren på de nedre kanalerna. tACS är symmetrisk över skallen, men i allmänhet är den intrakraniella fältresponsen något asymmetrisk för applicerade växelströmmar, där den ena sidan visar en större resp…

Discussion

Detta protokoll fokuserar på in vivo, bedövad mätning av CBF-svaret som en biomarkör för att uppskatta hjärnans svar på tES14. Långsiktiga biomarkörer för tES-svaret inkluderar histologiska behandlingseffekter, såsom förebyggande av eller förändringar i amyloid plackbildning (dvs. med gammastimulering vid 40 Hz i flera AD-modeller)16,17,18,19, men kortsiktiga…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denna studie stöddes av följande anslag (till D.A.T.): NIA RO1 AG074999, NIA R21AG051103, VA I21RX002223 och VA I21 BX003023.

Materials

Alcohol pads HenryShein 112-6131
Baby mineral oil Johnson & Johnson
BD 1 mL syringe Becton Dikinson REF 305699
C3 Flat Surface Electrodes Neuronexus
C57BI mice from NIH colonies 
Copper skull electrods In house preparation
Digidata 1440, Clampex Axon Instruments
Dumont #5 forceps FST #5
Dumont #7 forceps curved Dumont RS-5047
Eye ointment Major LubiFresh P.M. NDC-0904-6488-38
Flaming/Brown micropipette puller Sutter instrument Co. Model P-87
Forceps 11.5 cm slight curve  serrated Roboz RS-8254
Intramedic needle 23 G Becton Dikinson REF 427565
KCl 1 M In house preparation
Laser Doppler Probes Moor Instruments 0.46 mm laser doppler probes
Laser Speckle Imaging Device RWD RFLSI-ZW
Micro curette 13 cm FST 10080-05
Micro Dissecting Scissors, 11.5 cm Roboz RS-5914
Mouse anesthesia fixation Stoelting
Neuroconn-DS Neurocare DC-Stimulator Plus
PhysioSuite Monitoring Kent Scientific
Q-tips Fisherbrand 22363167
Saline 0.9% NaCl solution Baxter 281322
Sensicam QE PCO Instruments
Software Axon Instruments Clampex
Surgical glue Covetrus 31477
Surgical tape 3M Transpore T9784

References

  1. Bestmann, S., Walsh, V. Transcranial electrical stimulation. Current Biology. 27 (23), R1258-R1262 (2017).
  2. Bikson, M., et al. Rigor and reproducibility in research with transcranial electrical stimulation: An NIMH-sponsored workshop. Brain Stimulation. 11 (3), 465-480 (2018).
  3. Turner, D. A., Degan, S., Galeffi, F., Schmidt, S., Peterchev, A. V. Rapid, dose-dependent enhancement of cerebral blood flow by transcranial AC stimulation in mouse. Brain Stimulation. 14 (1), 80-87 (2020).
  4. Shah, S., Chhatbar, P. Y., Feld, J. A., Feng, W. Integrating tDCS into routine inpatient rehabilitation practice to boost post-stroke recovery. Brain Stimulation. 13 (4), 953-954 (2020).
  5. Voroslakos, M., et al. Direct effects of transcranial electric stimulation on brain circuits in rats and humans. Nature Communications. 9 (1), 483 (2018).
  6. Alekseichuk, I., Mantell, K., Shirinpour, S., Opitz, A. Comparative modeling of transcranial magnetic and electric stimulation in mouse, monkey, and human. Neuroimage. 194, 136-148 (2019).
  7. Tavakoli, A. V., Yun, K. Transcranial alternating current stimulation (tACS) mechanisms and protocols. Frontiers in Cellular Neuroscience. 11, 214 (2017).
  8. Yavari, F., Jamil, A., Mosayebi Samani, M., Vidor, L. P., Nitsche, M. A. Basic and functional effects of transcranial electrical stimulation (tES)-An introduction. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 85, 81-92 (2018).
  9. Wachter, D., et al. Transcranial direct current stimulation induces polarity-specific changes of cortical blood perfusion in the rat. Experimental Neurology. 227 (2), 322-327 (2011).
  10. Han, C. H., et al. Hemodynamic responses in rat brain during transcranial direct current stimulation: A functional near-infrared spectroscopy study. Biomedical Optics Express. 5 (6), 1812-1821 (2014).
  11. Ayata, C., Lauritzen, M. Spreading depression, spreading depolarizations, and the cerebral vasculature. Physiological Reviews. 95 (3), 953-993 (2015).
  12. Berenyi, A., Belluscio, M., Mao, D., Buzsaki, G. Closed-loop control of epilepsy by transcranial electrical stimulation. Science. 337 (6095), 735-737 (2012).
  13. Hoang, K. B., Cassar, I. R., Grill, W. M., Turner, D. A. Biomarkers and stimulation algorithms for adaptive brain stimulation. Frontiers in Neuroscience. 11, 564 (2017).
  14. Turner, D., A, D. S., Hoffmann, U., Galleffi, F., Colton, C. A. CVN-AD Alzheimer’s mice show premature reduction in neurovascular coupling in response to spreading depression and anoxia compared to aged controls. Alzheimer’s and Dementia. 17 (7), 1109-1120 (2021).
  15. Colton, C. A., et al. mNos2 deletion and human NOS2 replacement in Alzheimer disease models. Journal of Neuropathology and Experimental Neurology. 73 (8), 752-769 (2014).
  16. Castano-Prat, P., et al. Altered slow (<1 Hz) and fast (beta and gamma) neocortical oscillations in the 3xTg-AD mouse model of Alzheimer’s disease under anesthesia. Neurobiology of Aging. 79, 142-151 (2019).
  17. Etter, G., et al. Optogenetic gamma stimulation rescues memory impairments in an Alzheimer’s disease mouse model. Nature Communications. 10 (1), 5322 (2019).
  18. Iaccarino, H. F., et al. Gamma frequency entrainment attenuates amyloid load and modifies microglia. Nature. 540 (7632), 230-235 (2016).
  19. Martorell, A. J., et al. Multi-sensory gamma stimulation ameliorates Alzheimer’s-associated pathology and improves cognition. Cell. 177 (2), 256-271 (2019).
  20. Dawson, J., et al. Vagus nerve stimulation paired with rehabilitation for upper limb motor function after ischaemic stroke (VNS-REHAB): A randomised, blinded, pivotal, device trial. Lancet. 397 (10284), 1545-1553 (2021).
  21. Hacker, M. L., et al. Deep brain stimulation in early-stage Parkinson disease: Five-year outcomes. Neurology. 95 (4), e393-e401 (2020).
  22. Duun-Henriksen, J., et al. A new era in electroencephalographic monitoring? Subscalp devices for ultra-long-term recordings. Epilepsia. 61 (9), 1805-1817 (2020).
  23. Haneef, Z., et al. Sub-scalp electroencephalography: A next-generation technique to study human neurophysiology. Clinical Neurophysiology. 141, 77-87 (2022).
check_url/65195?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Degan, S., Feng, Y., Hoffmann, U., Turner, D. A. Placement of Extracranial Stimulating Electrodes and Measurement of Cerebral Blood Flow and Intracranial Electrical Fields in Anesthetized Mice. J. Vis. Exp. (196), e65195, doi:10.3791/65195 (2023).

View Video