Summary

Идентификация популяций микроокружения костного мозга при миелодиспластическом синдроме и остром миелоидном лейкозе

Published: November 10, 2023
doi:

Summary

Здесь представлен подробный протокол выделения и характеристики микросредовых популяций костного мозга по мышиным моделям миелодиспластических синдромов и острого миелоидного лейкоза. Этот метод выявляет изменения в некроветворной нише костного мозга, включая эндотелиальные и мезенхимальные стромальные клетки, с прогрессированием заболевания.

Abstract

Микроокружение костного мозга состоит из отдельных клеточных популяций, таких как мезенхимальные стромальные клетки, эндотелиальные клетки, клетки остеолинии и фибробласты, которые обеспечивают поддержку гемопоэтических стволовых клеток (ГСК). Помимо поддержания нормальных ГСК, микроокружение костного мозга также играет роль в развитии заболеваний гемопоэтических стволовых клеток, таких как миелодиспластические синдромы (МДС) и острый миелоидный лейкоз (ОМЛ). МДС-ассоциированные мутации в ГСК приводят к блокированию дифференцировки и прогрессирующей недостаточности костного мозга, особенно у пожилых людей. МДС часто может прогрессировать до резистентного к терапии ОМЛ, заболевания, характеризующегося быстрым накоплением незрелых миелоидных бластов. Известно, что микроокружение костного мозга изменяется у пациентов с этими миелоидными новообразованиями. В данной работе описан комплексный протокол по выделению и фенотипической характеристике клеток микроокружения костного мозга из мышиных моделей миелодиспластического синдрома и острого миелоидного лейкоза. Выделение и характеристика изменений в популяциях ниши костного мозга может помочь определить их роль в инициации и прогрессировании заболевания и может привести к разработке новых терапевтических средств, нацеленных на способствующие раку изменения в стромальных популяциях костного мозга.

Introduction

Микроокружение костного мозга состоит из гемопоэтических клеток, негемопоэтических стромальных клеток и внеклеточного матрикса 1,2. Это микроокружение может способствовать самообновлению гемопоэтических стволовых клеток, регулировать дифференцировку линий и обеспечивать структурную и механическую поддержку костной ткани 1,2,3,4,5. Стромальная ниша включает костно-линейные клетки, фибробласты, нервные клетки и эндотелиальные клетки6, в то время как гемопоэтическая ниша состоит из лимфоидной и миелоидной популяций 1,2,3. В дополнение к поддержанию нормальных ГСК, микроокружение костного мозга также может играть роль в развитии заболеваний гемопоэтических стволовых клеток, таких как МДС и ОМЛ 7,8,9,10,11. Было показано, что мутации в клетках остеолинии способствуют развитию МДС, ОМЛ и других миелопролиферативных новообразований 10,12,13,14.

Миелодиспластические синдромы представляют собой группу предлейкозных заболеваний, которые возникают в результате мутаций в гемопоэтических стволовых клетках. МДС часто ассоциируется с блокированием дифференцировки ГСК и выработкой диспластических клеток, что часто может привести к недостаточности костного мозга. МДС является наиболее часто диагностируемым миелоидным новообразованием в Соединенных Штатах и ассоциируется с 3-летней выживаемостью 35%-45%15. МДС часто ассоциируется с высоким риском трансформации в острый миелоидный лейкоз. Это может быть фатальным осложнением, так как ОМЛ, вызванный МДС, устойчив к большинству методов лечения и склонен к рецидиву. ОМЛ, возникающий de novo из-за транслокаций или мутаций в кроветворном стволе и предшественниках, также часто устойчив к стандартной химиотерапии16,17. Поскольку МДС и ОМЛ являются в первую очередь заболеваниями пожилых людей, большинство из которых диагностируются в возрасте старше 60 лет, большинство пациентов не имеют права на лечебную трансплантацию костного мозга. Таким образом, существует значительная потребность в выявлении новых регуляторов прогрессирования заболевания. Поскольку микроокружение костного мозга может обеспечивать поддержку злокачественных клеток14, определение изменений в нише костного мозга с прогрессированием заболевания может привести к выявлению новых терапевтических средств, направленных на ингибирование ремоделирования опухолевых ниш. Таким образом, существует значительная потребность в выявлении новых регуляторов прогрессирования заболевания. С этой целью крайне важно идентифицировать и охарактеризовать изменения в популяциях стромальных клеток костного мозга, которые могут обеспечить поддержку злокачественным клеткам.

Было создано несколько мышиных моделей ОМЛ и МДС, которые могут быть использованы для изучения изменений микроокружения костного мозга во время инициации и прогрессирования заболевания 6,1,19,20,21,22. Описаны протоколы выявления изменений в популяциях стромальных клеток костного мозга с использованием мышиных моделей ретровирусно индуцированного ОМЛ 6,20, а также коммерчески доступной модели трансформации МДС в ОМЛ высокого риска Nup98-HoxD13 (NHD13). Мыши, пересаженные клетками ОМЛ de novo, умирают от болезни через 20-30 дней6. У мышей NHD13 развиваются цитопения и дисплазия костного мозга примерно через 15-20 недель, которая в конечном итоге трансформируется в ОМЛ, и почти 75% мышей умирают от болезни примерно на 32 неделе. Для анализа популяций микроокружения костного мозга мышиной модели кости собирают кости, переваривают костный мозг и костные спикулы с помощью ферментативного расщепления, а затем клетки обогащают для CD45-/Ter119-негемопоэтических популяций с помощью магнитной сортировки. Несмотря на то, что подобные анализы были описаны ранее 11,13,22,23,24,25, они часто фокусируются либо на костном мозге, либо на костной ткани и не включают в свои анализы клетки из обоих источников. Комбинированная характеристика этих популяций в сочетании с анализом экспрессии генов может обеспечить всестороннее понимание того, как клеточное кроветворное микроокружение обеспечивает поддержку инициации и прогрессирования заболевания (рис. 1). В то время как протокол, описанный ниже, фокусируется на ретровирусно-индуцированной модели ОМЛ и генетической модели МДС, эти стратегии могут быть легко адаптированы для изучения изменений в нише костного мозга любой интересующей нас мышиной модели.

Protocol

Все эксперименты на животных проводились в соответствии с протоколами, утвержденными Комитетом по ресурсам животных Университета Рочестера. Мыши были выведены и содержались в учреждениях по уходу за животными в Университете Рочестера. Для моделирования МДС высокого риска использует…

Representative Results

В данной статье описан метод анализа микросредовых популяций костного мозга, таких как эндотелиальные и мезенхимальные стромальные клетки, на основе проточной цитометрии на мышиных моделях МДС и лейкемии (рис. 1). На рисунке 2 показана стратегия стробиро…

Discussion

Модели мышиного лейкоза широко использовались для идентификации внутриклеточных и нишевых сигналов, способствующих прогрессированию агрессивного миелоидного лейкоза 6,19,21. Представлен комплексный протокол на основе проточной цитом…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Мы хотели бы поблагодарить URMC Flow Cytometry Core. Эта работа была поддержана премией Американского общества гематологов, премией Фонда исследования лейкемии и грантами NIH R01DK133131 и R01CA266617 присуждены J.B.

Materials

1 mL pipette Tips  Genesee Scientific  24-165RL
1.7 mL Microcentrifuge Tubes AVANT L211511-CS
10 µL pipette Tips Genesee Scientific  24-140RL
10 mL Individually Wrapped Sterile Serological Pipettes Globe scientific 1760
1000 mL Vacuum Filtration Flask NEST 344021
15 mL Centrifuge Tube VWR 10026-076
2 mL Aspirating Pipette NEST 325011
200 µL pipette Tips Genesee Scientific  24-150-RL
25 mL Individually Wrapped Sterile Serological Pipettes Globe scientific 1780
5 mL Individually Wrapped Sterile Serological Pipettes Globe scientific 1740
5 mL Polystyrene Round-Bottom Tube  12 x 75 mm style Falcon 352054
5 mL Polystyrene Round-Bottom Tube with Cell Strainer Cap 12 x 75 mm style Falcon 352235
50 mL Centrifuge Tube NEST 602052
6 Well, Flat Bottom with Low Evaporation Lid Falcon 353046
Absorbent Underpads with Waterproof Moisture Barrier VWR 56616-031
APC MicroBeads Miltenyi  130-090-855
autoMACS Pro Separator Miltenyi Biotec GmBH 4425745
BD Pharmingen Purified Rat Anti-Mouse CD16/CD32 (Mouse BD Fc Block) BD Biosciences 553141 0.5 mg/mL 
Bovine Serum Albumin Sigma-Aldrich A7906 66.000 g/mol
Brilliant Violet 421 anti-mouse Ly-6A/E (Sca-1) Antibody (D7) Invitrogen 404-5981 0.2 mg/mL
C57BL/6J Mice Jackson Laboratory  664
Carbon Dioxide Gas Tank Airgas CD50
CD31 (PECAM-1) Monoclonal Antibody (390), PE-Cyanine7 Invitrogen 25-0311-82 0.2 mg/mL
CD45 Monoclonal Antibody (30-F11), APC Invitrogen 17-0451-82 0.2 mg/mL
Cell Strainer 70 µm Nylon  Falcon 352350
Cole-Parmer Essentials Mortar and Pestle; Agate, 125 mL Cole-Parmer EW-63100-62
Collagenase from Clostridium histolyticum Sigma-Aldrich C5138-500MG
Collagenase Type I STEMCELL 7415
Corning Mini Centrifuge CORNING 6770
Corning Stripettor Ultra Pipet Controller Corning 4099
Deoxyribonuclease I from bovine pancreas Sigma-Aldrich D4513
Dispase II, powder Gibco 117105041
DPBS 10x gibco 14200-075
eBioscience 1x RBC Lysis Buffer Invitrogen 00-4333-57
Ethanol absolute, KOPTEC, meets analytical specification of BP, Ph. Eur., USP (200 Proof) VWR 89125-174
Fine scissors – sharp Fine Science Tools 14061-10
Foundation B Fetal Bovine Serum GeminiBio 900-208
Gilson PIPETMAN L Pipette Starter Kits FisherScientific  F167370G
Graefe Forceps Fine Science Tools 11051-10
Hank's Balanced Salt Solution (HBSS) 10x gibco 14185-052
Hemocytometer Fisher 02-671-10
Incubator  BINDER C150-UL
Kimwipes KIMTECH K222101
LABGARD Class II, Type A2 Biological Safety Cabinet Nuaire NU-425-400
LD Columns Miltenyi Biotec GmBH 130-042-901
LSE Vortex Mixer CORNING 6775
LSRII/Fortessa/Symphony A1 Becton, Dickinson and Company 647800L6
MACS MULTI STAND  Miltenyi Biotec GmBH 130-042-303
MACsmix Tube Rotator  Miltenyi Biotec GmBH 130-090-753
mIgG Millipore-Sigma 18765-10mg 2 mg/mL 
Nup98-HoxD13 (NHD13) Mice Jackson Laboratory  010505
PE anti-mouse CD51 Antibody (RMV-7) Biolegend 104106 0.2 mg/mL
PE/Cyanine5 anti-mouse CD140a Antibody (RUO) Biolegend 135920 0.2 mg/mL
Penicillin-Streptomycin  Gibco 15140122 10,000 U/mL
Plastipak 3 mL Syringe Becton, Dickinson and Company 309657
Propidium Iodide – 1.0 mg/mL Solution in Water ThermoFisher Scientific P3566
QuadroMACS  Separator  Miltenyi Biotec GmBH 130-090-976
Sorvall X Pro / ST Plus Series Centrifuge Thermo Scientific  75009521
TER-119 Monoclonal Antibody (TER-119), APC Invitrogen 17-5921-82 0.2 mg/mL
Trypan Blue Solution 0.4% Gibco 15-250-061
Ultrapure 0.5 M EDTA, pH 8.0  Invitrogen 15575-038

References

  1. Morrison, S. J., Scadden, D. T. The bone marrow niche for haematopoietic stem cells. Nature. 505 (7483), 327-334 (2014).
  2. Boulais, P. E., Frenette, P. S. Making sense of hematopoietic stem cell niches. Blood. 125 (17), 2621-2629 (2015).
  3. Pinho, S., Frenette, P. S. Haematopoietic stem cell activity and interactions with the niche. Nat Rev Mol Cell Biol. 20 (5), 303-320 (2019).
  4. Kfoury, Y., Scadden, D. T. Mesenchymal cell contributions to the stem cell niche. Cell Stem Cell. 16 (3), 239-253 (2015).
  5. Itkin, T., et al. Distinct bone marrow blood vessels differentially regulate haematopoiesis. Nature. 532 (7599), 323-328 (2016).
  6. Bajaj, J., et al. Cd98-mediated adhesive signaling enables the establishment and propagation of acute myelogenous leukemia. Cancer Cell. 30 (5), 792-805 (2016).
  7. Konopleva, M. Y., Jordan, C. T. Leukemia stem cells and microenvironment: Biology and therapeutic targeting. J Clin Oncol. 29 (5), 591-599 (2011).
  8. Kim, Y. W., et al. Defective notch activation in microenvironment leads to myeloproliferative disease. Blood. 112 (12), 4628-4638 (2008).
  9. Walkley, C. R., et al. A microenvironment-induced myeloproliferative syndrome caused by retinoic acid receptor gamma deficiency. Cell. 129 (6), 1097-1110 (2007).
  10. Kode, A., et al. Leukaemogenesis induced by an activating β-catenin mutation in osteoblasts. Nature. 506 (7487), 240-244 (2014).
  11. Hanoun, M., et al. Acute myelogenous leukemia-induced sympathetic neuropathy promotes malignancy in an altered hematopoietic stem cell niche. Cell Stem Cell. 15 (3), 365-375 (2014).
  12. Raaijmakers, M. H., et al. Bone progenitor dysfunction induces myelodysplasia and secondary leukaemia. Nature. 464 (7290), 852-857 (2010).
  13. Frisch, B. J., et al. Functional inhibition of osteoblastic cells in an in vivo mouse model of myeloid leukemia. Blood. 119 (2), 540-550 (2012).
  14. Bajaj, J., Diaz, E., Reya, T. Stem cells in cancer initiation and progression. J Cell Biol. 219 (1), e201911053 (2020).
  15. Sekeres, M. A., Taylor, J. Diagnosis and treatment of myelodysplastic syndromes: A review. Jama. 328 (9), 872-880 (2022).
  16. Zeisig, B. B., Kulasekararaj, A. G., Mufti, G. J., So, C. W. Snapshot: Acute myeloid leukemia. Cancer Cell. 22 (5), 698-698.e1 (2012).
  17. Krivtsov, A. V., Armstrong, S. A. Mll translocations, histone modifications and leukaemia stem-cell development. Nat Rev Cancer. 7 (11), 823-833 (2007).
  18. Yoshimi, A., et al. Coordinated alterations in rna splicing and epigenetic regulation drive leukaemogenesis. Nature. 574 (7777), 273-277 (2019).
  19. Lin, Y. W., Slape, C., Zhang, Z., Aplan, P. D. Nup98-hoxd13 transgenic mice develop a highly penetrant, severe myelodysplastic syndrome that progresses to acute leukemia. Blood. 106 (1), 287-295 (2005).
  20. Kwon, H. Y., et al. Tetraspanin 3 is required for the development and propagation of acute myelogenous leukemia. Cell Stem Cell. 17 (2), 152-164 (2015).
  21. Bajaj, J., et al. An in vivo genome-wide crispr screen identifies the rna-binding protein staufen2 as a key regulator of myeloid leukemia. Nat Cancer. 1 (4), 410-422 (2020).
  22. Krivtsov, A. V., et al. Transformation from committed progenitor to leukaemia stem cell initiated by mll-af9. Nature. 442 (7104), 818-822 (2006).
  23. Baryawno, N., et al. A cellular taxonomy of the bone marrow stroma in homeostasis and leukemia. Cell. 177 (7), 1915-1932.e16 (2019).
  24. Tikhonova, A. N., et al. The bone marrow microenvironment at single-cell resolution. Nature. 569 (7755), 222-228 (2019).
  25. Balderman, S. R., et al. Targeting of the bone marrow microenvironment improves outcome in a murine model of myelodysplastic syndrome. Blood. 127 (5), 616-625 (2016).
  26. Amend, S. R., Valkenburg, K. C., Pienta, K. J. Murine hind limb long bone dissection and bone marrow isolation. JoVE. 110, e53936 (2016).
  27. JoVE Science Education Database. Science Education Database. Basic Methods in Cellular and Molecular Biology. Using a Hemacytometer to Count Cells. , (2023).
  28. Passaro, D., et al. Increased vascular permeability in the bone marrow microenvironment contributes to acute myeloid leukemia progression and drug response. Blood. 128 (22), 2662 (2016).
  29. Xu, C., et al. Stem cell factor is selectively secreted by arterial endothelial cells in bone marrow. Nat Commun. 9 (1), 2449 (2018).
  30. Baccin, C., et al. Combined single-cell and spatial transcriptomics reveal the molecular, cellular and spatial bone marrow niche organization. Nat Cell Biol. 22 (1), 38-48 (2020).
  31. Ebrahimi Dastgurdi, M., Ejeian, F., Nematollahi, M., Motaghi, A., Nasr-Esfahani, M. H. Comparison of two digestion strategies on characteristics and differentiation potential of human dental pulp stem cells. Arch Oral Biol. 93, 74-79 (2018).
  32. Abreu-Velez, A. M., Howard, M. S. Collagen IV in normal skin and in pathological processes. N Am J Med Sci. 4 (1), 1-8 (2012).

Play Video

Cite This Article
Kaszuba, C. M., Rodems, B. J., Sharma, S., Franco, E. I., Ashton, J. M., Calvi, L. M., Bajaj, J. Identifying Bone Marrow Microenvironmental Populations in Myelodysplastic Syndrome and Acute Myeloid Leukemia. J. Vis. Exp. (201), e66093, doi:10.3791/66093 (2023).

View Video