Farklı Dolaşım B Hücre Popülasyonları için Akış Sitometrisi Tabanlı Hücre Sınıflandırması

0 views • 3:01 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Hücre yüzeyi reseptörlerine dayanarak, insan dolaşımındaki B hücreleri, CD19 pozitif naif B hücreleri, CD19 ve CD27 pozitif bellek B hücreleri ve CD19, CD27 ve CD38 pozitif plazma hücreleri olarak sınıflandırılır.

Bu hücre popülasyonlarını sıralamak için saflaştırılmış bir B hücresi süspansiyonu alın. İnsan immünoglobulin G antikorları ile inkübe edin. Antikorlar, B hücrelerinin Fc reseptörlerini bloke ederek spesifik olmayan antikor bağlanmasını önler.

CD19, CD27 ve CD38'i hedefleyen floresan işaretli antikorlar ekleyin.

Anti-CD19 antikorları, B hücrelerinde her yerde eksprese edilen CD19 reseptörlerine bağlanır.

Anti-CD27 antikorları, bellek B hücreleri ve plazmablast plazma hücreleri üzerinde eksprese edilen CD27 reseptörlerine bağlanır.

Anti-CD38 antikorları, plazmablast plazma hücrelerinde eksprese edilen CD38 reseptörlerine bağlanır.

Ölü hücre işaretleyicisi olarak floresan DNA bağlayıcı bir boya ekleyin.

Ölü hücreler, boyanın hücresel girişine ve çift sarmallı DNA'ya bağlanmasına izin veren bir zar bütünlüğü kaybı sergiler; canlı hücreler boyanmadan kalır.

Bağlanmamış antikorları ve boyaları çıkarmak için santrifüjleyin ve hücreleri FACS tamponunda yeniden süspanse edin. Homojen bir süspansiyon elde etmek ve topakları ortadan kaldırmak için hücreleri bir süzgeçten süzün.

Bir akış sitometresi kullanarak, ölü hücreleri canlı olanlardan ayırın. Canlı hücreler içinde, CD19, CD27 ve CD38 ekspresyonu, saf B hücrelerini, hafıza B hücrelerini ve plazmablast plazma hücrelerini ayırt eder.

Spesifik olmayan bloklama yaptıktan sonra, buz üzerinde 30 dakikalık bir inkübasyon için hafifçe karıştırarak tüpe 1 x 106 hücre başına her seçim antikorundan 1 mikrogram ekleyin. İnkübasyonun son beş dakikasında, hücrelere 5 mikrolitre 7-AAD ekleyin. Ardından, hücrelere 2 mililitre taze PBS ekleyin ve santrifüjlemeden önce girdap yapın.

Peletleri mililitre konsantrasyonunda 1 ila 5 x 107 hücrede taze ayırma tamponunda yeniden süspanse edin ve hücreleri 40 mikronluk bir hücre süzgecinden yeni bir 5 mililitrelik polistiren tüpe süzün. Daha sonra, hücreleri akış sitometrisine göre, saf B hücrelerini, bellek B hücrelerini ve plazmablast plazma hücrelerini toplamak için 5 mililitre taze RPMI ortamı içeren üç adet 15 mililitrelik tüpe sıralayın.

11:06

Genom çapında modülasyon mikroRNA ve mRNA'ların B hücreleri indüklenen geçirmek sınıf--düğme DNA rekombinasyon ve Plazma hücre farklılaşması içinde analiz HDAC inhibitörü-aracılı

Related Videos

0 Views

08:25

Humoral bağışıklık çözülen anahtar oyuncular: gelişmiş ve lenfosit yalıtım antikorundan Peyer's yamalar iletişim kuralından en iyi duruma getirilmiş

Related Videos

0 Views

08:25

Murine B Hücre Gelişiminin Akış Sitometrik Karakterizasyonu

Related Videos

0 Views

15:29

Floresan Aktive Hücre Ayırma (FACS) Özgül Hücre Nüfus Arıtma

Related Videos

0 Views

09:53

Çekirdekli Hücreler Sirkülasyon zenginleştirilmesi için Otomatik mikroakışkan Kan Lizis Protokolü

Related Videos

0 Views

04:57

Periferik Kan Mononükleer Hücrelerinde İmmün Hücre Alt Kümelerini Tanımlamak için Bir Akış Sitometrisi Testi

Related Videos

0 Views

08:01

Fare kemik iliğinden plazmasitoid dendritik hücreleri Saflaştırılması floresans ile aktive edilen hücre sınıflandırma

Related Videos

0 Views

11:08

Spektral Sitometrisi ile Katı Dokular İzole Hücre Cezalar Analizi

Related Videos

0 Views

09:34

Bir moleküler karakterize etmek için Kombinatorik tek hücreli yaklaşım ve insan kök ve yaratıcı nüfus Immunophenotypic heterojen

Related Videos

0 Views

14:30

İnsan Birincil Kaynaklarından veya Hematopoetik Progenitörlerden Farklılaştırılmış In Vitro'dan İnsan MK'larının İmmünofenoping ve Hücre Sıralama

Related Videos

0 Views

Last updated: 20 June 2026