-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

TR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

tr_TR

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
Zebra balığı Gal4 kullanma Gene Yakalama
Zebra balığı Gal4 kullanma Gene Yakalama
JoVE Journal
Biology
This content is Free Access.
JoVE Journal Biology
Gene Trapping Using Gal4 in Zebrafish

Zebra balığı Gal4 kullanma Gene Yakalama

Full Text
18,532 Views
13:34 min
September 29, 2013

DOI: 10.3791/50113-v

Jorune Balciuniene1, Darius Balciunas1

1Department of Biology,Temple University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Summary

Bu protokol Zebrafish ikincil muhabir olarak birincil ve GFP raportör / RFP olarak Gal4-VP16 kullanılarak gen trap girmeyle mutagenez yöntemini anlatır. Yaklaşık bir yüksek ifade F0 balık verim gen trap döl GFP ve RFP co-ifade on. Tarama prosedürü kolayca sokma mutajenez ekranını performans laboratuvar boyutuna uyum ölçekli olabilir.

Transcript

Bu prosedürün genel amacı, birincil gen tuzağı raportörü olarak GAL dört, VP 16 ile vektörler üzerinde gen kırma transpoze kullanarak mutant balık üretmektir. Bu, önce gen tuzağı vektörünün uzun iki transpoze ile birlikte zebra balığı embriyolarına enjekte edilmesiyle gerçekleştirilir. Enjekte edilen embriyolar, döllenmeden üç gün sonra GFP floresansı için taranır ve en parlak embriyoların yaklaşık% 30'u F sıfır havuzunu oluşturmak için seçilir.

Daha sonra, F sıfır balığı, gen tuzağı olaylarının germ hattı iletimini taramak için U-A-S-M-R-F-P test hattına çaprazlanır. Son adım, F iki neslini oluşturmak için F1'i geçmek ve ters PCR ve beş asal ırk ile gen tuzağı olaylarının moleküler karakterizasyonu için embriyolar üretmektir. Sonuç olarak, taranan her 10 F sıfır balığından biri gen tuzağı dölleri üretmelidir.

Gen kırma transposları, protein kodlayan genlerin girişlerine entegre edildiğinde hiçbir mutasyon üretmeyecek şekilde tasarlanmıştır. GBT vektörlerimiz, birincil gen tuzağı raporlayıcısı olarak G dört P 16'yı kullanır. Bu modifikasyon, düşük seviyelerde eksprese edilen genler için duyarlılığı arttırır ve diğer transgenlerin doku spesifik ekspresyonu için G dört itici güç olarak fenotiplerden aşırı kaçınmadan gen tuzağı mutantlarını kullanmamızı mümkün kılar.

Yöntemimizin ana darboğazının, F zero balığının germ hattında yeterince yüksek gen trapp entegrasyon oranlarına ulaşmak olduğuna inanıyoruz. Bu gösteride, DNA hazırlama, MİKROENKSİYON ve F zero taraması gibi birkaç kritik adımı ele alacağız. GBTB bir gen tuzağı vektörü, birincil gen tuzağı raportörü olarak GAL dört VP 16'yı kullanır.

Gen tuzağı entegrasyonu için uçlarda minimal uzun iki devrik kullanılır. Gen tuzağı olayları, 14 X GAL dört UAS'ın kontrolü altında bir EGFP raportörü tarafından doğrudan tespit edilir. Tüm gen tuzağı kaseti, doğrudan kilitler P bölgeleri ile çevrilidir.

Bu, belirli bir gen tuzağı entegrasyonu ile gözlemlenen bir fenotip arasında bir nedensellik ilişkisinin kanıtını oluşturmak için Cree taraklarının ekspresyonu ile gen tuzağı olaylarını tersine çevrilebilir hale getirir. Ek olarak, U-A-S-E-G-F-P kaseti doğrudan FRT siteleri ile çevrilidir. Çevirmeli tarak mRNA'sının enjeksiyonu, U-A-S-E-G-F-P kasetinin eksizyonuna yol açacak, gen tuzağı mutasyonunu EGFP floresansı ile işaretlenmemiş halde bırakacak ve mikro enjeksiyondan önce GFP floresansı ile belirli dokuları veya gelişimsel olayları işaretleyen transgenik hatlarda kullanılmasını sağlayacaktır.

DNA üzerinde transpoze hazırlayın ve mRNA'yı transpoze edin. GBTB bir gen tuzağı vektör DNA'sını hazırlayın. Standart bir mini hazırlık kiti kullanarak ve üreticinin protokolünü izleyerek, DNA'yı hazırlarken PB yıkama adımını dahil etmek önemlidir.

Aksi takdirde, mini hazırlık DNA'sı RNA'lar tarafından kontamine olur, A transpoze Mr.NA bozulmasına yol açar, RNA'ların serbest suyundaki DNA'yı mikrolitre başına 10 nanograma seyreltir. Uzun iki transpozeyi hazırlamak için, önce mRNA, doğrusallaştırılmış PT, üç, TS, T, iki, xbo bir. Daha sonra, bir modifikasyon ile bir M mesaj makinesi T üç in vitro transkripsiyon kiti kullanarak Doğrusallaştırılmış DNA'yı kopyalayın.

DNA'nın tedavi adımından sonra 0,5 mikrolitre kaburga kilitli RNA inhibitörü ekleyin, standart bir kit kullanarak mRNA'yı saflaştırın ve in vitro transkribe edilen mRNA'nın kalitesini agros jel elektroforezi ile değerlendirin. RNA'ların serbest suyundaki mRNA'yı mikrolitre başına 40 nanograma seyreltin ve mikro enjeksiyondan hemen önce eksi 80 santigrat derecede iki mikrolitre alikot olarak saklayın. İki mikrolitrelik bir transpoze mRNA alikotuna DNA üzerine sekiz mikrolitre seyreltilmiş transpoz ekleyerek enjeksiyon karışımını hazırlayın.

Standart mikroenjeksiyon tekniklerini kullanarak bir hücreli zebra balığı embriyosunun sarısına üç nanolitre D-N-A-R-N-A karışımı enjekte edin, yumurta sarısı küfür arayüzünü hedefleyin: Enjeksiyondan sonra, transpoze mRNA'nın enjeksiyondan yaklaşık altı ila sekiz saat sonra bozulmadığından emin olmak için kalite kontrol için% 1 aros jel üzerinde beş mikrolitre artık enjeksiyon solüsyonu çalıştırın. Döllenmemiş ve ölü embriyoları çıkarın ve embriyoları 100 milimetrelik Petri kabı başına 60 ila 80'e dağıtın. Anormal ve ölü embriyolar, döllenmeden bir gün sonra, döllenmeden iki gün sonra ve döllenmeden üç gün sonra, döllenmeden üç gün sonra, floresan veya dik mikroskop ile donatılmış bir stereo mikroskop altında çıkarılır.

Embriyoları tarayın ve anormal embriyoları çıkarın. Kalan embriyoları açık kusurlar olmadan tarayın. GFP floresansı için en parlak F zero embriyolarını seçin ve bu laboratuvarda standart zebra balığı yetiştirme prosedürlerini kullanarak büyütün.

GBT'ler genellikle vahşi tip veya leopar pigmentasyon desenlerine sahip çizgilere enjekte edilir. Yetiştirme için seçilen enjekte edilen embriyoların %20 ila 30'unun yetişkinliğe kadar hayatta kalmasını beklemek mantıklıdır. GBTB bir gen tuzağı vektörünün entegrasyonu, iki farklı mekanizma ile EGFP ekspresyonuna yol açabilir.

Birincisi gerçek bir gen tuzağı olayıdır. Vektör bir gene entegre olur, bu endojen gen transkriptinin beş asal sayısı ile GAL dördü arasında bir füzyon transkripti olan VP 16 yapılır ve proteinin uç ucunu içeren bir füzyon proteinine çevrilir ve insert mutasyona uğramış gen ve GAL dört, VP 16 ile kaplanır. Bu füzyon proteini 14 XUAS'a bağlanır ve EGFP'nin transkripsiyonunu aktive eder.

Daha az arzu edilen ikinci olay, bir arttırıcı tuzağıdır. EGFP'nin önündeki minimal promotör, entegrasyon sahasının yakınındaki bir geliştiricinin kontrolü altına girer ve GAL dört, VP 16'nın yokluğunda EGFP üretimine yol açar. Bu iki olay sınıfını ayırt etmek için, lense özgü gama kristalin GFP ile işaretlenmiş 14 X-U-A-S-M-R-F-P transgenik çizgi yapıldı.

Gen tuzağı olayları, GBT enjekte edilmiş balıkları homozigot U-A-S-M-R-F-P balıklarıyla çaprazlayarak ve GFP ve RFP'nin birlikte ekspresyonunun taranmasıyla doğrulanır, bu ancak GAL dört, VP 16 yapılır ve transta U-A-S-M-R-F-P'yi aktive ederse mümkündür. GBT enjekte edilen balıklar yabani tip veya leopar pigmentasyon desenlerine sahip olduğundan ve homozigot U-A-S-M-R-F-P çizgisi pirinç bir arka planda olduğundan, F zero balığı U-A-S-M-R-F-P balığından kolayca ayırt edilebilir, bu da taranan F sıfırın erkek mi yoksa dişi mi olduğunu kaydetme ihtiyacını ve ayrıca her bir balığın cinsiyetini kaydetme ve/veya belirleme hatalarından kaynaklanan olası hataları ortadan kaldırır. Ertesi gün.

Pirinç U-A-S-M-R-F-P balığını tanklarına geri koyun. Embriyolar tarama için toplanırken embriyoları veren F zero balığını ayrı ayrı statik tanklara yerleştirin, temizleyin ve toplanan embriyoları sıfırıncı günün öğleden sonra yeni Petri kaplarına aktarın. Döllenmeden bir gün sonra ve döllenmeden üç gün sonra GFP ve RFP floresansı için embriyoları tarayın.

Hem GFP hem de RFP için pozitif olan embriyoları çıkarın, bunları G-F-P-R-F-P ekspresyon modeline göre sıralayın. Bir debriyajda birden fazla desen gözlemlenirse ve F1 neslini oluşturmak için bunları yükseltin. GFP için pozitif olan ancak RFP için pozitif olmayan 3D PF embriyolarının, arttırıcı tuzak olaylarını temsil ettikleri için dışarı çekilmediğini unutmayın.

İkinci bir parti pozitif elde etmek için G-F-P-R-F-P pozitif döl üreten F sıfır balığını tekrar çaprazlayın. F1 balıkları, gen trapp ekspresyon modelini belgelemek ve gen tuzağı lokuslarının moleküler tanımlanması için embriyo gruplarını dondurmak için F iki ailesi oluşturmak üzere taranır: İlk olarak, bireysel F1 balıklarını homozigot U-A-S-M-R-F-P balığı ile ertesi gün çaprazlar. Embriyolar döllenmeden bir gün sonra tarama için toplanırken, embriyoları veren F1 balıklarını ayrı ayrı statik tanklara yerleştirin.

RFP etiketlemesi henüz ortaya çıkmamış olabilir, bu nedenle embriyoları GFP floresansı için tarayın ve döllenmeden üç gün sonra GFP pozitif embriyoları hem GFP hem de RFP floresansı için tarayın ve çift pozitifleri çıkarın. Daha sonra, döllenmeden beş gün sonra hem GFP hem de RFP için pozitif olan embriyoları fotoğraflayın, 20 G-F-P-R-F-P pozitif ve 20 G-F-P-R-F-P negatif embriyo partilerini deneyin, ters PCR ve beş asal ırk ile mutasyona uğramış genlerin tanımlanması için. Başarılı bir enjeksiyonda F iki neslini oluşturmak için kalan G-F-P-R-F-P pozitif embriyoları yükseltin.

Gen tuzağı DNA uzun iki transpoze mRNA karışımı ile enjekte edilen embriyoların en az% 80'i bir dereceye kadar GFP floresan gösterecektir. Düşük GFP ekspresyonu, RNA'ların kontaminasyonu nedeniyle transpoze RNA'nın başarısız enjeksiyonunu veya bozunmasını gösterir. F zero havuzunu oluşturmak için en parlak GFP pozitif embriyolar seçildiğinde, taranan F zero balıklarının yaklaşık 10'da biri, gen tuzağı olaylarının geri kazanıldığı F zero balıkları arasında gen tuzağı dölleri verecektir.

Çoğu, entegrasyonlarda birkaç eksprese olmayan transpoze ek olarak tek bir gen tuzağı olayı iletir. Tüm gen tuzağı kaseti, doğrudan kilit P bölgeleri ile çevrili olduğundan, bu diyagramda mutasyona uğramış genin eksonlarını temsil eden mavi kutularla gösterilen herhangi bir gen tuzağı mutasyonu, CRE taraklarının ekspresyonu ile geri dönüşümlüdür. Bu görüntüler, NSF TP'nin sinir sisteminde GFP ve RFP'nin birlikte ekspresyonunu göstermektedir, Cree RNA'nın altı gen tuzağı hattı enjeksiyonu, N, SF, TP, altı embriyo, GFP ve RFP ekspresyonunun kaybına yol açar.

Lenste GFP ifadesinde beklendiği gibi bir azalma olmadığını unutmayın. Burada özetlenen prosedürlerin çoğu, diğer gen tuzağı ekranlarının yanı sıra TOL iki ve diğer transpozonlarla düzenli transgenez deneylerine uygulanabilir Burada özetlenen gen tuzağı prosedürü ile. Haftada 20 ila 30 F sıfır çıkış çaprazı kurmak, haftada bir gen tuzağının geri kazanılmasına neden olmalıdır.

Bununla birlikte, prosedür kolayca ölçeklendirilebilir.

Explore More Videos

Gelişimsel Biyoloji Sayı 79 Zebra balığı Mutagenesis Genetik genetik (hayvan ve bitki) Gal4 transposon gen tuzak sokma mutajenez

Related Videos

Zebra balığı Embriyolar mRNA ve morfolino Antisens Oligonükleotidler Mikroenjeksiyon.

11:33

Zebra balığı Embriyolar mRNA ve morfolino Antisens Oligonükleotidler Mikroenjeksiyon.

Related Videos

37.1K Views

Gelişmekte olan Zebra balığı Epidermis Hücre Ekstrüzyon Canlı Görüntüleme

09:39

Gelişmekte olan Zebra balığı Epidermis Hücre Ekstrüzyon Canlı Görüntüleme

Related Videos

15K Views

Kombine Kullanımı Hedefleme Koku Ampul Nöronlar In Vivo Elektroporasyon ve Gal4 Tabanlı Enhancer Trap Zebra balığı Hatları

08:18

Kombine Kullanımı Hedefleme Koku Ampul Nöronlar In Vivo Elektroporasyon ve Gal4 Tabanlı Enhancer Trap Zebra balığı Hatları

Related Videos

12.3K Views

Larva Zebra balığı Skin bir İndüklenebilir Gal4 / UAS İfade Sisteminin Kullanılması doğuştan gelen bağışıklık ve preneoplastik Hücre Etkileşimleri Canlı Görüntüleme

08:52

Larva Zebra balığı Skin bir İndüklenebilir Gal4 / UAS İfade Sisteminin Kullanılması doğuştan gelen bağışıklık ve preneoplastik Hücre Etkileşimleri Canlı Görüntüleme

Related Videos

12.4K Views

Yaşayan Zebra balığı Embriyo Hücre alt yapıları görüntüleme

11:19

Yaşayan Zebra balığı Embriyo Hücre alt yapıları görüntüleme

Related Videos

12K Views

Zebra balığı erken embriyo ve tümör hücresel elektrik aktivitesinin görselleştirme

08:55

Zebra balığı erken embriyo ve tümör hücresel elektrik aktivitesinin görselleştirme

Related Videos

9.1K Views

Yüksek işlem hacmi DNA ekstraksiyon ve 3dpf zebra balığı larva Fin kırpma tarafından Genotipleme

10:12

Yüksek işlem hacmi DNA ekstraksiyon ve 3dpf zebra balığı larva Fin kırpma tarafından Genotipleme

Related Videos

14.5K Views

Meksika Cavefish işlevinde Gene manipülasyon

07:01

Meksika Cavefish işlevinde Gene manipülasyon

Related Videos

9.5K Views

Zebra Balığı Tol2 Sistemi: Modüler ve Esnek Ağ Geçidi Tabanlı Transgenez Yaklaşımı

10:00

Zebra Balığı Tol2 Sistemi: Modüler ve Esnek Ağ Geçidi Tabanlı Transgenez Yaklaşımı

Related Videos

3.5K Views

Zebra balıklarında düşük eksprese edilen proteinleri görselleştirmek için floresan etiketleme

09:38

Zebra balıklarında düşük eksprese edilen proteinleri görselleştirmek için floresan etiketleme

Related Videos

1K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code