RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
tr_TR
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/51168-v
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Yüksek kaliteli toplam RNA, %70 etanolde Azure B ile omurilik bölümlerini lekelendikten sonra lazer yakalama mikroseksiyonu ile fare omurilik motoru nöronlarının hücre gövdelerinden hazırlanmıştır. RNA-seq ve qRT-PCR tarafından aşağı akış RNA analizine izin vermek için 3.000-4.000 motor nörondan yeterli RNA (~40-60 ng) elde edilir.
Bu prosedürün genel amacı, komşu hücrelerden RNA ile kontaminasyon olmadan omurilik motor nöronlarından yüksek kaliteli RNA'yı geri kazanmaktır. Bu, önce kordonun kriyo gömme ortamına geri kazanılması, bölünmesi ve gömülmesi ve eksi 160 santigrat derecede dondurulmasıyla gerçekleştirilir. İkinci adım, kordonu eksi 20 santigrat derecede kalem zarı slaytları üzerine kriyo kesiti yapmaktır.
Daha sonra, slaytlar% 70 etanol içinde yıkanır ve% 70 etanol içinde Azure B ile boyanır. Son adım, tanımlanan motor nöron hücre cisimlerinin gine tiyosiyanat lizis tamponuna lazer yakalama mikro diseksiyonudur. Sonuç olarak, toplam RNA, kombine lizatlardan hazırlanır ve mutant ve vahşi tip hayvanların nöronlarındaki genel veya spesifik RNA transkripsiyonundaki farklılıkları ortaya çıkarmak için test edilir.
Lazer yakalama mikrodiseksiyonu, motor nöron hücre gövdelerinin omurilik bölümlerinden daha çok sayıda Scalia ve diğer hücre tipleri tarafından kontaminasyon olmadan kurtarılmasına izin verir. RNA hazırlama ve hastalıklı bir hayvandan alınan nöronlar ile normal bir hayvandan alınan nöronlar arasındaki transkripsiyonu karşılaştırma şansı vermek. Bu prosedürü geliştirmenin en zor yönü, hem lazer yakalama öncesinde hem de sırasında yüksek düzeyde RNA bütünlüğü ve ekstrakte kabiliyetini korurken omurilik bölümlerindeki motor nöronları tespit etmemize izin verecek bir boyama yöntemi bulmaktı.
Azure B ve %70 etanoldeki boyama bölümlerinin, diseke hücre cisimlerinin doğrudan Gine Tiyosiyanat lizis Tamponuna toplanmasıyla birleştirildiğinde bu kriterleri karşıladığını bulduk ve bu da prosedürün en iyi sonuçlar için laboratuvarımızda bir doktora sonrası olan Van Padia olduğunu gösteriyor. Ötenazi ve trans kardiyal perfüzyondan sonra tüm ekipmanın RNA dekontamine edici solüsyon ve ardından RNA içermeyen% 70 etanol ile temizlendiğinden emin olun. Omuriliği dikkatlice izole edin. Kordonu RNA'larda 10 saniye durulayın.
Kalan kanı yıkamak için serbest su ve çok nazikçe ama hızlı bir şekilde RNA içermeyen bir cam slayta koyun. Ardından, temiz bir tıraş bıçağı kullanarak omuriliği enine dokuz ila 10 parçaya bölün. Parçaları OCT ile doldurulmuş bir kriyo kalıba yerleştirin ve temiz bir iğne kullanarak dikey olarak hizalayın.
Kalıbı, sıvı nitrojen ile önceden soğutulmuş iki metil bütan içeren sığ bir tepsiye yerleştirin. RNA bozulmasını önlemek için tepsiyi sıvı nitrojen banyosuna yerleştirin. Omurilik parçalarını hızlı dondurmak için.
OCT gömülü bloğunu bölümlere ayırmadan önce altı aya kadar eksi 80 santigrat derecede saklayın. Kesit pozisyonu için hazır olduğunda, OCT gömülü bloğu soğutulmuş bir kriyostat içine yerleştirir. Her biri dokuz ila 10 omurilik kesiti içeren 20 mikronluk dilimler üretin.
Bölümleri RNA'ların serbest kalem zarına yerleştirin. Bölümlerin yapışmasını sağlamak için başlangıçta oda sıcaklığında tutulan iki mikronluk slaytlar. Kriyostatın içindeki eksi 20 santigrat derece yüzeydeki bölümü hemen yeniden dondurun.
Slaytları temiz bir raf aralığında kullanılana kadar eksi 80 santigrat derecede tutun. % 70 etanol içermeyen RNA'lar ile doldurulmuş altı adet 50 mililitrelik konik tüp. Derinlik, slayt suya daldırıldığında bir slayt üzerindeki tüm bölümleri kaplamak için yeterli olmalıdır.
Sonraki olarak %1 Azure B çözümünü aynı rafa yerleştirin. Yıkama veya boyama sırasında çözelti değiştirme arasındaki süreyi en aza indirmek için, fazla çözeltiyi hızlı bir şekilde boşaltmak için rafın önünde üç veya dört laboratuvar mendili bulundurun. Hazır olduğunda, slaytları eksi 80 santigrat derece dondurucudan çıkarın ve kuru buzun üzerine koyun, bir slaytı eldivenli bir avuç içine yerleştirerek çözdürün.
Slayttaki nem ve yoğuşmanın çoğunu, bölümlere dokunmamaya dikkat ederek bir laboratuvar mendiliyle silerek temizleyin. Slaytı, tamamen kuruması için 30 ila 40 saniye boyunca bir Petri kabında taze silika jel kurutucu üzerine koyun. Kuruduğunda, slaytı %70 etanol içeren ilk RNA tüpüne batırın.
Slaytı 30 saniye bekletin ve ardından OCT'yi 45 saniye ila bir dakika arasında yukarı ve aşağı daldırarak yıkayın. Ardından, slaytı solüsyondan çıkarın ve fazla sıvıyı laboratuvar mendillerinin üzerine boşaltın. Slaytı %70 etanol içeren ikinci tüpe batırarak bu işlemi tekrarlayın.
Omurilik bölümlerinin etrafında OCT kalırsa, üçüncü tüpte yıkamayı tekrarlayın. Fazla sıvıyı boşalttıktan sonra, slaydı %70 RNA'larda %1 Azure B çözeltisine, serbest etanole 30 ila 45 saniye daldırın. Laboratuvar temizlemesinde fazla Azure B'yi boşaltın.
Bu noktada, slaytın tamamı mavi olacaktır. Slaytı bir sonraki% 70 etanol tüpüne batırın ve fazla boyayı çıkarmak ve spesifik motor nöron boyamasını görünür hale getirmek için üç ila dört kez hızlı bir şekilde yukarı ve aşağı daldırın. Bölümler çok koyu lekeli görünüyorsa, %70 etanol içeren yeni bir tüpte boyama adımını tekrarlayın.
Boyama çok hafif görünüyorsa, slaydı başka bir 32. için Azure B çözümüne geri döndürün ve boyamayı tekrarlayın. Lekelenme tatmin ediciyse, sürgünün kısa bir süre kurumasını bekleyin ve bir sonraki adıma geçin. DES boyama ve kurutma işleminden sonra, gri madde açık mavi olacak ve koyu mavi lekeli motor nöronlar kolayca görülebilecektir.
Mikroskobu açtıktan hemen sonra diseksiyonu başlatın. 0,6 milimetrelik bir mikro füj tüpünün kapağını takmak için tüp tutucuyu boşaltın. Numune toplama için 30 mikrolitre gine ve tiyosiyanat lizis tamponunu kapağa koyun ve solüsyonu yayarak yüzeyi kaplayın.
Bir pipet ucuyla kapağı delik ve objektif ile hizalayın. Mikroskop yazılımı aşınmasıyla, lazer yakalamaya başlayana kadar kapağı kapalı konumda tutun. Havayla kurutulmuş slaytı, zar tarafı aşağı bakacak ve bölüm delikle aynı hizaya gelecek şekilde mikroskobun sahnesine baş aşağı yerleştirin.
Slayt yerindeyken, beş x objektif ile bir omurilik bölümüne odaklanın ve ardından diseksiyon için 20 x objektife geçin. İlk olarak, ışıklı kalemle sahte bir bölgeyi işaretleyin ve lazerin toplamadan kesmesine izin verin. Bu, zarı gevşetir ve birden fazla bölgeyi art arda işaretlemeyi ve kesmeyi mümkün kılar.
Ardından, ventral boynuz bölgesindeki motor nöronları yeniden odaklayın ve tanımlayın. Bu nöronlar, konumları, parmal morfolojileri, büyük boyutları ve Azure B ile koyu mavi boyama ile tanınabilir. Işık kalemini kullanarak, çizim aracını seçin ve motor nöronların kenarı boyunca tam bir taslak oluşturarak işaretleyin. Diğer hücrelerden kontaminasyonu önlemek için taslağı motor nörona mümkün olduğunca yakın hale getirmeye çalışın.
Yazılım kesmeye hazır olduğunda konumları hatırlayacağından, kapağı kesme konumunun altına getireceğinden ve lazerle motor nöron diseksiyonunu başlatmak için başlat düğmesine tıklayacağından, kesmeden önce birden fazla hücre işaretlenebilir. Tüm bölümlerdeki tüm motor nöronları tek bir slaytta bir mikro fuge tüpünün kapağına toplayın. Toplama işlemi tamamlandıktan sonra, tepsiyi boşaltarak ve tüpü yavaşça yerinden çıkararak mikro fuge tüpünü tutucudan çıkarın, motor nöronları tamamen çözün ve solüsyonu yukarı ve aşağı pipetleyerek tamponlayın.
Çözeltiyi santrifüjleme ile tüpün gövdesine taşıyın, numuneyi hemen kuru buzda dondurun ve Azure B ile boyandıktan sonra eksi 80 santigrat derecede saklayın. Anti CHATT antikorları, boyama ile doğrulanırlar ve daha küçük komşu hücrelerden kolayca ayırt edilirler. Bu örnekte, motor nöron hücre gövdeleri ışıklı kalemle ana hatları çizilmiş ve yazılım tarafından numaralandırılmıştır.
Burada hücre gövdeleri lazerle kesildi ve ana hatlar kapalı olarak toplama tüpüne bırakıldı. Komşu bölgelere verilen lazer hasarının boyutu belirgindir. LMD tarafından toplanan yaklaşık 4.000 fare motor nöron hücre gövdesinden alınan bir numunenin RNA bütünlüğünün elektroforetik analizinin tipik sonuçları burada gösterilmektedir.
Belirgin ribozomal RNA zirvelerine dikkat edin. Slayt boyamadan motor nöron diseksiyonuna kadar olan bu süreç, RNA bozulmasını en aza indirmek için tek bir slayttaki tüm bölümler için 30 dakika içinde tamamlanmalıdır. Bu prosedürü denerken, hem kordonun ilk diseksiyonu hem de gömülmesinde ve ayrıca motor nöronların boyanması ve lazer yakalama mikrodiseksiyonunun son adımlarında mümkün olduğunca çabuk çalışmayı hatırlamak önemlidir.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Related Videos
12:02
Related Videos
13.8K Views
10:06
Related Videos
16.2K Views
13:32
Related Videos
21.6K Views
12:38
Related Videos
12.4K Views
08:29
Related Videos
24.4K Views
07:01
Related Videos
12.8K Views
08:28
Related Videos
9K Views
06:38
Related Videos
19.4K Views
10:11
Related Videos
9.9K Views
09:20
Related Videos
7.4K Views